Cette page a été traduite automatiquement et l'exactitude de la traduction n'est pas garantie. Veuillez vous référer au version anglaise pour un texte source.

Formations aérobies sur les patients victimes d'AVC

20 octobre 2019 mis à jour par: Chang Gung Memorial Hospital

Effets de l'entraînement par intervalles aérobies sur les fibroblastes cardiaques et les cellules cérébrales chez les patients victimes d'AVC

Les effets des différentes stratégies d'exercice sur les patients victimes d'AVC restent incertains. Un essai contrôlé randomisé avec répartition masquée a été réalisé du 1er août 2016 au 30 juin 2018. Nous avons retracé 23 patients victimes d'AVC, recrutés au cours de la période ci-dessus, âgés d'environ 55 ans avec une durée d'AVC > 24 mois. Intervention : 13 d'entre eux ont suivi 36 entraînements continus d'intensité modérée (MICT) à 60 % de la consommation maximale d'oxygène (VO2peak) pendant 30 minutes, et 10 ont suivi un entraînement par intervalles de haute intensité (HIIT) à 80 % et 40 % de VO2peak. avec les mêmes horaires et la même durée d'entraînement. Mesures des résultats : pic de VO2, débit cardiaque (CO), volume sanguin bilatéral du cortex frontal (∆[THb]), oxyhémoglobine (∆[O2Hb]) et désoxyhémoglobine (∆[HHb]), efficacité de la ventilation, facteur neurotrophique sérique dérivé du cerveau (BDNF ), les niveaux cognitifs et le questionnaire de qualité de vie, le pourcentage de neurites porteurs de cellules neuroblastiques (% de neurites) et la coloration fluorescente des cellules ont été examinés avant et après les interventions.

Aperçu de l'étude

Description détaillée

Conception Le comité d'examen institutionnel d'un hôpital de soins tertiaires a approuvé l'étude (IRB n° 201600576A3). Un essai contrôlé randomisé a été réalisé chez des patients victimes d'AVC avec différents régimes d'exercice et était aveugle aux évaluateurs. L'étude a été menée d'août 2016 à juin 2018. Les participants ont été répartis au hasard dans les groupes MICT ou HIIT à l'aide d'un calendrier d'attribution caché généré par ordinateur. Tous les patients victimes d'AVC inclus ont reçu des programmes de rééducation traditionnels, y compris l'équilibre, l'amplitude des mouvements ou des exercices thérapeutiques, ainsi que 30 minutes supplémentaires supervisées à l'hôpital de MICT ou HIIT pendant 36 fois. Les données ont été recueillies par un évaluateur en aveugle avant la randomisation après avoir terminé les entraînements à l'exercice.

Participants Des patients victimes d'AVC, diagnostiqués par le neurologue, ont été interrogés. Les critères d'inclusion étaient listés comme suit : (I) ≥ 20 ans ; (II) accidents vasculaires cérébraux avec état clinique stable ≥ 3 mois ; (III) mini-examen de l'état mental (MMSE)> 24 ; (IV) pas de syndrome coronarien aigu. Ceux qui avaient un angor instable, une pression artérielle systolique> 200 mmHg ou une pression artérielle diastolique> 110 mmHg, une hypotension orthostatique symptomatique, une sténose aortique sévère (gradient de pression systolique de pointe> 50 mmHg, ou une zone d'ouverture de la valve aortique < 0,75 cm2), une maladie inflammatoire au cours des 3 derniers mois, troubles du rythme cardiaque non contrôlés, IC non compensée, bloc auriculo-ventriculaire du troisième degré, péricardite ou myocardite au cours des 3 derniers mois, maladie embolique au cours des 3 derniers mois, déplacement du segment ST ≥ 2 mm au repos et diabète non contrôlé (glycémie ≥ 300 mg /dL ou ≥ 250 mg/dL avec des corps cétoniques) n'étaient pas candidats à l'étude.

Les patients victimes d'AVC présentaient des contre-indications absolues au test d'effort cardiopulmonaire (CPET) et les activités aérobies, suggérées par l'American College of Sports Medicine (ACSM), ont également été exclues de l'étude. Ensuite, les participants éligibles ont été répartis au hasard dans les groupes MICT et HIIT. Les caractéristiques démographiques de base ont également été enregistrées. Tous les sujets ont donné leur consentement éclairé après que les procédures expérimentales aient été expliquées.

Test d'effort cardiopulmonaire (CPET) Les participants ont subi un test d'effort incrémentiel sur un vélo ergomètre (Ergoselect 150P, ergoline GmbH, Bitz, Allemagne) et l'examen a été effectué à un rythme de travail de 10 W/min avec une surveillance continue de la fréquence cardiaque, du sang brachial pression, et saturation artérielle en oxygène, jusqu'aux conditions d'arrêt décrites précédemment. La consommation d'oxygène (VO2) a été mesurée par un appareil de mesure cardiopulmonaire (MasterScreen CPX, CareFusion Corp., Hoechberg, Allemagne). Le pic de VO2, la ventilation minute (VE) et la production de dioxyde de carbone (VCO2) ont été définis comme la ligne directrice pour les tests d'effort suggérés par l'ACSM. Les réponses VE et VCO2, acquises depuis le début de l'exercice jusqu'aux valeurs maximales, ont été utilisées pour calculer la pente VE-VCO2 en utilisant la régression linéaire des moindres carrés. La pente d'efficacité d'absorption d'O2 (OUES), une estimation de l'efficacité de la consommation d'O2 pendant l'exercice, a été dérivée de la pente d'un tracé de logarithme naturel de VE vs VO2.

Mesures hémodynamiques cardiaques Un système de surveillance continue du débit cardiaque non invasif (NICOM, Cheetah Medical, Wilmington, Delaware) a été utilisé pour évaluer la réponse hémodynamique cardiaque à l'exercice, qui analyse le déphasage (ΔΦ) créé par le courant électrique alternatif à travers la poitrine du sujet comme décrit dans notre précédente étude.

Mesures hémodynamiques cérébrales Deux paires de sondes de spectroscopie proche infrarouge (NIRS) (Oxymon, Artinis, The Netherland) ont été attachées aux zones frontales bilatérales de chaque sujet inclus pendant le CPET. La loi de Beer-Lambert a été appliquée pour mesurer l'absorption de la lumière à travers chaque paire de détecteurs NIRS reflétant les changements d'oxyhémoglobine ([O2Hb]) et de désoxyhémoglobine ([HHb]) dans le cortex frontal pendant l'exercice. La quantité totale d'Hb ([THb]) a été calculée comme la somme de [O2Hb] et [HHb], et a été utilisée comme indice de variation du volume sanguin dans le cortex frontal. Les différences d'oxygénation tissulaire (Δ[O2Hb] et Δ[HHb]) et de débit sanguin régional (Δ[THb]) entre les cortex frontaux impliqués et non impliqués (impliqués-non impliqués) ont été utilisées pour estimer les effets de différents régimes d'exercice sur l'oxygénation des tissus cérébraux et le flux sanguin régional.

Qualité de vie liée à la santé La qualité de vie a été mesurée par le questionnaire Short Form-36 Health Survey (SF-36), et un mini-examen de l'état mental (MMSE) a été utilisé pour évaluer la qualité de vie et les fonctions cognitives des participants.

Protocoles d'entraînement à l'exercice Les sujets inclus ont subi 36 fois un entraînement supervisé en milieu hospitalier (2-3 séances/semaine) sur un vélo ergomètre (Ergoselect 150P, Allemagne) comme notre protocole précédent.15 L'entraînement comprenait un échauffement à 30 % de VO2peak pendant 3 min, suivi d'un MICT (60 % de VO2peak) ou HIIT (cinq intervalles de 3 min à 80 % de VO2peak et chaque intervalle séparé par un exercice de 3 min à 40 ans). % de VO2peak) pendant 30 min, puis un refroidissement à 30 % de VO2peak pendant 3 min. La formation a pris fin lorsque le sujet présentait des symptômes/signes suggérés par les directives de l'ACSM.

Préparation du sérum Une quantité de 20 ml de sang frais a été prélevée sur tous nos sujets avant et après l'entraînement physique. Les échantillons ont été centrifugés à 2500 tr/min pendant 5 min à température ambiante, et le sérum supérieur a été conservé pour la culture cellulaire et la mesure des taux sériques de BDNF.

Mesure des taux sériques de BDNF Les niveaux de BDNF ont été évalués avant et après les entraînements d'exercices aérobiques. Du sérum préparé de 100 µL a été ajouté dans chaque puits revêtu de l'anticorps de capture de BDNF humain dans un kit ELISA (enzyme linked immunoassay) à deux sites en sandwich en phase solide (BioVision Inc., Milpitas, CA). Le niveau de BDNF a ensuite été déterminé par le lecteur de microplaques (SpectraMax M3, Molecular Devices LLC, San Jose, CA).

Culture cellulaire et test de croissance des neurites Des cellules neuroblastiques de rat (lignée cellulaire PC-12) ont été cultivées dans du milieu d'Eagle modifié de Dulbecco (DMEM) additionné de 7,5 % de sérum de patient (avant et après l'entraînement physique), 7,5 % de sérum de cheval (HS), 100 unités /ml de pénicilline et 100 mg/L de streptomycine.

Un total de 100 000 cellules ont été étalées pendant une nuit sur des boîtes de 35 mm recouvertes de poly-DL-lysine. Après privation de sérum dans du DMEM contenant 2 % de HS pendant 12 à 18 h, les cellules ont été traitées avec 50 ng/ml de NGF pendant le temps indiqué. Des changements morphologiques ont été observés à l'aide de la microscopie confocale Leica TCS SP8 7 jours après la mise en culture avec des sérums de patients avant et après l'entraînement physique. Le pourcentage de cellules avec des neurites d'au moins un diamètre de corps cellulaire en longueur a été déterminé dans cinq champs indépendants de chaque plaque.

Taches fluorescentes Des cellules (100 000) ont été inoculées dans chaque puits de la lame à huit chambres (lame Millicell EZ, Millipore Corp., Billerica, MA) et ont été incubées dans les sérums pré et post-MICT ou HIIT pendant 12 h. Une coloration vive de Mitotracker (Invitrogen corp., Carlsbad, CA) a été utilisée pour observer les mitochondries dans les cellules neuroblastiques traitées avec des sérums des différents statuts ci-dessus. Les cellules ont été colorées avec des anticorps monoclonaux primaires de lapin anti-⍺-tubuline (Cell Signaling Technology Inc., Boston, MA). L'IgG anti-lapin AffiniPure Goat conjugué à l'isothiocyanate de fluorescéine (Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, PA) a été utilisé comme anticorps secondaire. Les noyaux ont été contre-colorés avec un milieu de montage (Vector Laboratories Inc., Burlingame, CA) contenant du 40,6-diamidino-2-phénylindole. Les cellules colorées ont été examinées avec un examen microscopique confocal (Leica TCS SP8, Leica Microsystems Inc., Buffalo Grove, IL).

Analyse statistique Le test Chi-carré a été effectué pour comparer les différences de paramètres non paramétriques entre les deux groupes. Le test Mann-Whitney U a été utilisé pour évaluer les différences d'âge, de durée d'AVC, d'indice de masse corporelle (IMC), de changements de capacité d'exercice, de changements d'oxygénation cérébrale ainsi que de volume sanguin régional, de changements de niveaux de BDNF et de changements de comportements cellulaires entre les deux groupes. Les différences de changements au sein du groupe dans les données numériques ont été évaluées par le test de rang signé de paires appariées de Wilcoxon. Les relations entre les changements des paramètres cliniques mesurés après l'entraînement physique et les informations cliniques ont été analysées par corrélation de Pearson. Une valeur p < 0,05 a été considérée comme une signification statistique.

Type d'étude

Interventionnel

Inscription (Réel)

23

Phase

  • N'est pas applicable

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

20 ans à 80 ans (Adulte, Adulte plus âgé)

Accepte les volontaires sains

Non

Sexes éligibles pour l'étude

Tout

La description

Critère d'intégration:

  • Des patients victimes d'AVC, diagnostiqués par le neurologue, avec un état clinique stable pendant plus de 3 mois après un traitement ou une intervention conservatrice ont été inclus dans l'étude.
  • Mini-examen de l'état mental (MMSE)> 24
  • Pas de syndrome coronarien aigu

Critère d'exclusion:

  • Une angine instable
  • Pression artérielle systolique > 200 mmHg ou tension artérielle diastolique > 110 mm Hg
  • Hypotension orthostatique symptomatique
  • Sténose aortique sévère (gradient de pression systolique de pointe > 50 mmHg, ou surface d'ouverture de la valve aortique < 0,75 cm2)
  • Maladie inflammatoire au cours des 3 derniers mois
  • Troubles du rythme cardiaque non contrôlés
  • Insuffisance cardiaque non compensée
  • Péricardite ou myocardite au cours des 3 derniers mois
  • Maladie embolique au cours des 3 derniers mois
  • Déplacement du segment ST≥ 2 mm au repos
  • Diabète non contrôlé (glycémie ≥ 300 mg/dL ou ≥ 250 mg/dL avec corps cétoniques).

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

  • Objectif principal: La prévention
  • Répartition: N / A
  • Modèle interventionnel: Affectation à un seul groupe
  • Masquage: Aucun (étiquette ouverte)

Armes et Interventions

Groupe de participants / Bras
Intervention / Traitement
Expérimental: Effets d'entraînement avant et après l'exercice
Tous les sujets recrutés ont reçu un entraînement aérobique (HIIT ou MICT). VO2peak, débit cardiaque (CO), volume sanguin bilatéral du cortex frontal (∆[THb]), oxyhémoglobine (∆[O2Hb]) et désoxyhémoglobine (∆[HHb]), efficacité de la ventilation, taux sériques de facteur neurotrophique dérivé du cerveau (BDNF), le questionnaire cognitif et de qualité de vie, le pourcentage de neurites porteurs de cellules neuroblastiques (% de neurites) et la coloration fluorescente des cellules ont été examinés avant et après les interventions.
Tous les sujets recrutés ont suivi 36 entraînements continus d'intensité modérée (MICT) à 60 % de la consommation maximale d'oxygène (VO2peak) pendant 30 minutes, et 10 ou ont suivi un entraînement par intervalles de haute intensité (HIIT) à 80 % et 40 % de VO2peak avec le mêmes heures et durée de formation.

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Débit cardiaque maximal (CO)
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Pic de CO en millimètres par minute mesuré par une mesure non invasive du débit cardiaque lors d'un test d'effort avant et après l'entraînement physique.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Consommation maximale d'oxygène à l'effort (VO2peak)
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Pic de VO2 en ml/min/kg mesuré par test de la fonction cardiopulmonaire avant et après l'entraînement physique.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Pente d'efficacité d'absorption d'oxygène (OUES)
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
OUES en litre par minute/log (litre par minute) dérivé des consommations d'oxygène au cours du temps pendant le test d'effort avant et après l'entraînement physique.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Rapport ventilation/VCO2 (Ve-VCO2)
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Ve-VCO2, un nombre, dérivé du graphique du CO2 expiré (ml/min/kg) par rapport à la ventilation (ml/min/kg) au cours du temps pendant le test d'effort avant et après l'entraînement physique.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Différences de l'oxyhémoglobine du tissu cérébral (∆[O2Hb])
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Différences d'oxyhémoglobine entre les cortex frontaux impliqués et non impliqués en μM mesurées par deux paires de sondes de spectroscopie proche infrarouge (NIRS) avant et après l'entraînement physique.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Différences de désoxygénation du tissu cérébral (∆[HHb])
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Différences de désoxyhémoglobine entre les cortex frontaux impliqués et non impliqués en μM mesurées par deux paires de sondes de spectroscopie proche infrarouge (NIRS) avant et après l'entraînement physique.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Différences de volume sanguin régional (∆[THb])
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Différences de volume sanguin régional entre les cortex frontaux impliqués et non impliqués en μM mesurés par deux paires de sondes de spectroscopie proche infrarouge (NIRS) avant et après l'entraînement physique.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Score des composants physiques (PCS)
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Fonction de rôle physique obtenue à partir du questionnaire court du formulaire 36 (SF-36) avant et après l'entraînement physique. Le SF-36 se compose de huit scores gradués (vitalité, fonctionnement physique, douleur corporelle, perceptions générales de la santé, fonctionnement du rôle physique, fonctionnement du rôle émotionnel, fonctionnement du rôle social, santé mentale), qui sont les sommes pondérées des questions de leur section. Chaque échelle est directement transformée en une échelle de 0 à 100 en supposant que chaque question a le même poids. Plus le score est bas, plus le handicap est important. Plus le score est élevé, moins il y a d'incapacité, c'est-à-dire qu'un score de zéro équivaut à une incapacité maximale et qu'un score de 100 équivaut à aucune incapacité.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Score de la composante mentale (MCS)
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Score de santé mentale obtenu à partir du questionnaire court du formulaire 36 (SF-36) avant et après l'entraînement physique. Le SF-36 se compose de huit scores gradués (vitalité, fonctionnement physique, douleur corporelle, perceptions générales de la santé, fonctionnement du rôle physique, fonctionnement du rôle émotionnel, fonctionnement du rôle social, santé mentale), qui sont les sommes pondérées des questions de leur section. Chaque échelle est directement transformée en une échelle de 0 à 100 en supposant que chaque question a le même poids. Plus le score est bas, plus le handicap est important. Plus le score est élevé, moins il y a d'incapacité, c'est-à-dire qu'un score de zéro équivaut à une incapacité maximale et qu'un score de 100 équivaut à aucune incapacité.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Mini-examen de l'état mental (MMSE)
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
un questionnaire en 30 points largement utilisé pour mesurer les troubles cognitifs avant et après l'entraînement physique.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Facteur neurotrophique dérivé du cerveau (BDNF)
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Le BDNF humain (ng/mL), essentiel au maintien de la neurogenèse et de la plasticité synaptique, capture l'anticorps dans un kit ELISA (enzyme linked immunoassay) en sandwich à deux sites. Le niveau de BDNF a ensuite été déterminé par le lecteur de microplaques avant et après l'entraînement physique.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Pourcentage de cellules porteuses de neurites
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Un total de 100 000 cellules ont été étalées pendant une nuit sur des boîtes de 35 mm recouvertes de poly-DL-lysine. Après privation de sérum dans du DMEM contenant 2 % de HS pendant 12 à 18 h, les cellules ont été traitées avec 50 ng/ml de NGF pendant le temps indiqué. Des changements morphologiques ont été observés à l'aide de la microscopie confocale Leica TCS SP8 7 jours après la mise en culture avec des sérums de patients avant et après l'entraînement physique. Le pourcentage de cellules avec des neurites d'au moins un diamètre de corps cellulaire en longueur a été déterminé dans cinq champs indépendants de chaque plaque.
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Images de neurones
Délai: 3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)
Les cellules (100 000) ont été inoculées dans chaque puits de la lame à huit chambres (lame Millicell EZ, Millipore Corp., Billerica, MA) et ont été incubées dans les sérums pré- et post-MICT ou HIIT pendant 12 h. Une coloration vive de Mitotracker (Invitrogen corp., Carlsbad, CA) a été utilisée pour observer les mitochondries dans les cellules neuroblastiques traitées avec des sérums des différents statuts ci-dessus. Les cellules ont été colorées avec des anticorps monoclonaux primaires de lapin anti-⍺-tubuline (Cell Signaling Technology Inc., Boston, MA). L'IgG anti-lapin AffiniPure Goat conjugué à l'isothiocyanate de fluorescéine (Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, PA) a été utilisé comme anticorps secondaire. Les noyaux ont été contre-colorés avec un milieu de montage (Vector Laboratories Inc., Burlingame, CA) contenant du 40,6-diamidino-2-phénylindole. Les cellules colorées ont été examinées avec un examen microscopique confocal (Leica TCS SP8, Leica Microsystems Inc., Buffalo Grove, IL).
3-4 mois (pour 36 fois d'entraînement physique)

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Publications et liens utiles

La personne responsable de la saisie des informations sur l'étude fournit volontairement ces publications. Il peut s'agir de tout ce qui concerne l'étude.

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

1 août 2016

Achèvement primaire (Réel)

30 juin 2018

Achèvement de l'étude (Réel)

30 juin 2018

Dates d'inscription aux études

Première soumission

20 octobre 2019

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

20 octobre 2019

Première publication (Réel)

22 octobre 2019

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Réel)

22 octobre 2019

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

20 octobre 2019

Dernière vérification

1 juillet 2019

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Plan pour les données individuelles des participants (IPD)

Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?

Non

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

produit fabriqué et exporté des États-Unis.

Oui

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

S'abonner