临床循环肿瘤细胞 (CTC) 三维 (3-D) 细胞培养模型的建立与应用
本观察性研究的目的是验证和评估使用 3-D 细胞培养模型分离/纯化 CTC 及其细胞数量在移行细胞癌患者和非癌症患者中的临床可行性。
该项目首先旨在研究利用 3-D 细胞培养模型以无标记、可行和高纯度的方式分离/纯化血液样本中所有可能的 CTC 的临床可行性。 此外,通过 3-D CTC 培养,可以充分扩大 CTC 的细胞数量。 所有这些有利的特征都超出了目前使用现有方法所能达到的。 此外,发现具有上述特征的 CTC 的收获对于后续的学术研究或临床研究(例如 癌症转移的分子机制、癌症相关基因突变、生物标志物发现,特别是基于 CTC 的化疗药物测试)。 这些都可以促进和加速科学家为未来的癌症治疗开发新的治疗解决方案。
研究概览
详细说明
循环肿瘤细胞 (CTC) 是血液中存在的稀有细胞种类,被认为主要导致癌症转移或复发。 因此,CTC 的检测被认为是检测转移性癌症的重要临床工具。 此外,CTC 可以成为转移性癌症治疗的治疗靶点。 因此,使用活的 CTC 作为活组织检查来选择治疗方案(例如 基于 CTCs 的抗癌药物检测)为实现个性化癌症治疗开辟了一条有前途的途径。 随着细胞分离或检测技术的最新进展,人们积极提出各种新方法来分离/检测 CTC。 然而,目前的大多数方法可能无法获得所有可能的、可行的和无标记的 CTC,并具有足够的细胞纯度和细胞数量,用于后续基于 CTC 的抗癌药物测试或其他生物测定。 为解决上述技术障碍,该研究项目提出使用特定的 3-D 细胞培养技术来分离/纯化 CTC 和扩大细胞数量。
工作原理基于我们的初步发现,表明人类白细胞会在 3-D 细胞培养条件下死亡,而 CTC 会在这种环境中聚集和增殖。 基于这一现象,3-D CTC 细胞培养可用于以阴性选择和无标记的方式从白细胞背景中分离和纯化活的 CTC,从而能够收集血液样本中所有可能的 CTC。 此外,在这种 3-D 细胞培养中 CTC 的增殖可以充分扩展 CTC 的细胞数量以用于后续应用,这在目前使用现有方法是不可能的。
在第一年的研究项目中,研究人员将进一步验证和评估使用 3-D 细胞培养模型进行 CTC 分离/纯化及其细胞数量扩增的临床可行性。 在第二年和第三年的研究项目中,研究人员将优化 3-D 细胞培养模型,以提高 CTC 分离/纯化和增殖的性能。 在优化过程中,研究人员将探索细胞培养模型(例如 静态或灌注细胞培养,以及使用不同 3-D 支架材料的 3-D 细胞培养)或生化因素(例如 葡萄糖浓度、血清浓度、pH 或生长因子/细胞因子的补充)对 CTC 分离/纯化和增殖性能的影响。 总的来说,研究人员希望拟议的研究项目能够找到一种有效的方法,以可行、无标记和高纯度的方式分离/纯化/扩增临床 CTC。 这些收获的 CTC 对后续的分析任务很有价值。
研究类型
注册 (实际的)
联系人和位置
学习地点
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New Taipei City、台湾、236
- Chang Gung Memorial Hospital
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参与标准
资格标准
适合学习的年龄
接受健康志愿者
取样方法
研究人群
描述
纳入标准:
- 同意研究方案知情同意书内容的患者
- 同意研究人员查看病历的患者
- 成人 >20 岁
- 患者有权在任何时间点要求退出试验
- 满足以下要求(1)癌症参与者:患有移行细胞癌的癌症患者(2)健康参与者:未患癌症的参与者
排除标准:
- 拒绝采血和复核病历的患者
- 调查人员建议撤回
学习计划
研究是如何设计的?
设计细节
- 观测模型:病例对照
- 时间观点:横截面
队列和干预
团体/队列 |
干预/治疗 |
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CTC 培养的癌症
参与者是患有移行细胞癌的癌症患者
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在第一年的研究项目中,研究人员将进一步验证和评估使用 3-D 细胞培养模型进行 CTC 分离/纯化及其细胞数量扩增的临床可行性。
在第二年和第三年的研究项目中,研究人员将优化 3-D 细胞培养模型,以提高 CTC 分离/纯化和增殖的性能。
在优化过程中,研究人员将探索细胞培养模型(例如
静态或灌注细胞培养,以及使用不同 3-D 支架材料的 3-D 细胞培养)或生化因素(例如
葡萄糖浓度、血清浓度、pH 或生长因子/细胞因子的补充)对 CTC 分离/纯化和增殖性能的影响。
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有益于 CTC 培养
招募没有癌症的参与者
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在第一年的研究项目中,研究人员将进一步验证和评估使用 3-D 细胞培养模型进行 CTC 分离/纯化及其细胞数量扩增的临床可行性。
在第二年和第三年的研究项目中,研究人员将优化 3-D 细胞培养模型,以提高 CTC 分离/纯化和增殖的性能。
在优化过程中,研究人员将探索细胞培养模型(例如
静态或灌注细胞培养,以及使用不同 3-D 支架材料的 3-D 细胞培养)或生化因素(例如
葡萄糖浓度、血清浓度、pH 或生长因子/细胞因子的补充)对 CTC 分离/纯化和增殖性能的影响。
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研究衡量的是什么?
主要结果指标
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
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细胞培养模型对细胞活力的影响
大体时间:3个月
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优化 3-D 细胞培养模型以测量细胞活力
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3个月
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细胞培养模型对细胞活力的影响
大体时间:6个月
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优化 3-D 细胞培养模型以测量细胞活力
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6个月
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细胞培养模型对细胞数的影响
大体时间:3个月
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优化 3-D 细胞培养模型以测量细胞数
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3个月
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细胞培养模型对细胞数的影响
大体时间:6个月
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优化 3-D 细胞培养模型以测量细胞数
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6个月
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细胞培养模型对细胞活力的影响
大体时间:基线
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优化 3-D 细胞培养模型以测量细胞活力
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基线
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细胞培养模型对细胞数的影响
大体时间:基线
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优化 3-D 细胞培养模型以测量细胞数
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基线
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次要结果测量
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
|---|---|---|
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生化因素对葡萄糖浓度的影响
大体时间:基线,干预前
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研究生化因素对测量葡萄糖浓度的影响
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基线,干预前
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生化因素对葡萄糖浓度的影响
大体时间:3个月
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研究生化因素对测量葡萄糖浓度的影响
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3个月
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生化因素对葡萄糖浓度的影响
大体时间:6个月
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研究生化因素对测量葡萄糖浓度的影响
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6个月
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生化因素对生长因子/细胞因子血清浓度的影响
大体时间:基线,干预前
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研究生化因素对测量生长因子/细胞因子血清浓度的影响
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基线,干预前
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生化因素对生长因子/细胞因子血清浓度的影响
大体时间:3个月
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研究生化因素对测量生长因子/细胞因子血清浓度的影响
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3个月
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生化因素对生长因子/细胞因子血清浓度的影响
大体时间:6个月
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研究生化因素对测量生长因子/细胞因子血清浓度的影响
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6个月
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生化因素对血清pH值的影响
大体时间:3个月
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研究生化因素对测量血清pH值的影响
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3个月
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生化因素对血清pH值的影响
大体时间:6个月
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研究生化因素对测量血清pH值的影响
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6个月
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生化因素对血清pH值的影响
大体时间:基线
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研究生化因素对测量血清pH值的影响
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基线
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合作者和调查者
调查人员
- 研究主任:Hsuan-Chih Kuo、Ye,Siou-Ru
出版物和有用的链接
一般刊物
- Oppenheimer SB. Cellular basis of cancer metastasis: A review of fundamentals and new advances. Acta Histochem. 2006;108(5):327-34. doi: 10.1016/j.acthis.2006.03.008. Epub 2006 May 26.
- Mehlen P, Puisieux A. Metastasis: a question of life or death. Nat Rev Cancer. 2006 Jun;6(6):449-58. doi: 10.1038/nrc1886.
- Konstantopoulos K, Thomas SN. Cancer cells in transit: the vascular interactions of tumor cells. Annu Rev Biomed Eng. 2009;11:177-202. doi: 10.1146/annurev-bioeng-061008-124949.
研究记录日期
研究主要日期
学习开始 (实际的)
初级完成 (实际的)
研究完成 (实际的)
研究注册日期
首次提交
首先提交符合 QC 标准的
首次发布 (实际的)
研究记录更新
最后更新发布 (估计的)
上次提交的符合 QC 标准的更新
最后验证
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