- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT07249411
In-Vitro-Oozyten-Reifung mit autologen Exosomen bei Frauen (Exosom2025-1)
In-vitro-Oozyten-Reifung mit autologen Exosomen bei Frauen mit geringer Eierstockreserve: Vorläufige Phase einer prospektiven randomisierten klinischen Studie
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Detaillierte Beschreibung
Frauen mit verminderter ovarieller Reserve weisen nach kontrollierter ovarieller Stimulation häufig einen hohen Anteil unreifer Eizellen auf. Diese unreifen Eizellen können nicht befruchtet werden und begrenzen die Anzahl der für assistierte Reproduktionsverfahren verfügbaren reifen Eizellen. Die Eizellenreifung wird durch ein koordiniertes Zusammenspiel intrazellulärer Signalwege, interzellulärer Kommunikation mit Granulosazellen und molekularer Mechanismen reguliert, die den meiotischen Arrest aufrechterhalten und die meiotische Wiederaufnahme auslösen. Neuere wissenschaftliche Erkenntnisse deuten darauf hin, dass extrazelluläre Vesikel, einschließlich autologer Exosomen, durch den Transfer bioaktiver Moleküle eine Rolle bei der Unterstützung der Eizellenreifung spielen könnten.<\/p>
Diese vorläufige klinische Studie wurde konzipiert, um die Sicherheit und Machbarkeit der Verwendung autologer Exosomen als Ergänzung zu konventionellen In-vitro-Maturation(IVM)-Medien zu bewerten. Die Studienpopulation umfasst Frauen im Alter von 38-46 Jahren mit dokumentierter verminderter ovarieller Reserve, die eine Eizellenspende abgelehnt haben und vordefinierte klinische, endokrine und reproduktive Kriterien erfüllten. Alle Teilnehmerinnen gaben eine schriftliche Einwilligung nach Aufklärung. Die Studie wurde in Übereinstimmung mit nationalen Vorschriften und internationalen ethischen Grundsätzen für die Forschung am Menschen durchgeführt.<\/p>
Für geeignete Teilnehmerinnen erfolgt eine kontrollierte ovarielle Stimulation mit rekombinantem follikelstimulierendem Hormon, humanem menopausalen Gonadotropin und einem Antagonistenprotokoll, gefolgt von Human-Choriongonadotropin-Triggerung und Eizellentnahme. Nur Metaphase-I-Eizellen werden in den Interventionsabschnitt der Studie einbezogen. Nach Identifizierung werden Metaphase-I-Eizellen mittels einer einfachen computergenerierten Randomisierungsmethode einer von zwei Gruppen zugeordnet.<\/p>
In der Kontrollgruppe werden die Eizellen in konventionellem In-vitro-Maturation-Medium kultiviert. In der Versuchsgruppe werden die Eizellen im selben Medium kultiviert, ergänzt mit einer standardisierten Menge autologer Exosomen, die gemäß Studienprotokoll aus jeder Teilnehmerin isoliert wurden. Die Kulturdauer beträgt 24 bis 36 Stunden. Nach der Kultivierungsperiode werden die Eizellen, die die Metaphase II erreichen, mittels intrazytoplasmatischer Spermieninjektion befruchtet, um das Befruchtungsverfahren zu standardisieren. Embryonen, die sich nach der Befruchtung entwickeln, werden unter standardisierten Laborbedingungen kultiviert, nach etablierten morphologischen Kriterien bewertet und für die Verwendung in einer zukünftigen Phase der Forschung kryokonserviert. In dieser vorläufigen Phase wird kein Embryotransfer durchgeführt.<\/p>
Das primäre Ziel der Studie ist zu bewerten, ob die Supplementierung mit autologen Exosomen für die Verwendung in IVM-Kultursystemen machbar und sicher ist. Sekundäre Ziele umfassen die Dokumentation der Verfahren im Zusammenhang mit Eizellenhandhabung, Befruchtung und Embryokryokonservierung, um zukünftige Phasen der Studie zu unterstützen. Die Studie beinhaltet keine Analyse von Ergebnissen oder klinischen Endpunkten, da im Protokollabschnitt des ClinicalTrials.gov-Eintrags keine Endpunkte berichtet werden dürfen. Eine nachfolgende Phase der Forschung wird die Implantation, klinische Schwangerschaft und Lebendgeburt nach Transfer der in diesem Protokoll erzeugten kryokonservierten Embryonen bewerten.<\/p>
Studientyp
Einschreibung (Tatsächlich)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienorte
-
-
-
Caracas, Venezuela, 1080
- Biotech Fertility C.A
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Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
- Erwachsene
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Frauen mit primärer oder sekundärer Infertilität in Verbindung mit verminderter Ovarialreserve, definiert durch Ultraschallbefunde und Laborparameter (FSH > 10 mIU/ml und Östradiol < 60 pg/ml).
- Serum-Anti-Müller-Hormon (AMH)-Konzentration < 1 ng/ml.
- Anzahl antraler Follikel < 3-6 Follikel pro Eierstock.
- Anatomische Erhaltung beider Eierstöcke.
- Body-Mass-Index (BMI) zwischen 24,5 und 30 kg/m².
- Fehlen aktiver onkologischer Pathologien oder Bindegewebserkrankungen (Kollagenopathien).
- Keine Vorgeschichte klinisch relevanter hämatologischer Störungen.
- Ausreichende Serumspiegel von für die Reproduktionsfunktion essentiellen Vitaminen, einschließlich Vitamin D, B-Komplex und Vitamin C.
- Letzte Lebendgeburt innerhalb von ≤ 10 Jahren vor Studienbeginn.
- Normale Schilddrüsenfunktion (TSH und freie Schilddrüsenhormone im Normbereich).
- Fehlen eines Antiphospholipid-Antikörper-Syndroms.
- Männlicher Partner mit Samenparametern innerhalb der Normalgrenzen gemäß den Kriterien der Weltgesundheitsorganisation (WHO) von 2010 (5. Auflage) und 2021 (6. Auflage).
- Unterschriebene Einwilligungserklärung zur Studienteilnahme.
Ausschlusskriterien:
• Patienten ohne Diagnose einer Infertilität.
- Frauen ohne dokumentierte verminderte Ovarialreserve.
- Serum-Anti-Müller-Hormon (AMH)-Konzentration > 1 ng/ml.
- Anzahl antraler Follikel > 3-6 Follikel pro Eierstock.
- Fehlen eines oder beider Eierstöcke.
- Body-Mass-Index (BMI) > 30 kg/m².
- Vorliegen aktiver onkologischer Pathologien oder Bindegewebserkrankungen (Kollagenopathien).
- Vorgeschichte klinisch relevanter hämatologischer Störungen.
- Mangelhafte oder veränderte Serumspiegel von für die Reproduktionsfunktion essentiellen Vitaminen (Vitamin D, B-Komplex und Vitamin C).
- Letzte Lebendgeburt > 10 Jahre vor Studienbeginn.
- Veränderte Schilddrüsenfunktion (TSH oder freie Schilddrüsenhormone außerhalb des Normbereichs).
- Vorgeschichte eines Antiphospholipid-Antikörper-Syndroms.
- Männlicher Partner mit abnormalen Samenparametern gemäß den Kriterien der Weltgesundheitsorganisation (WHO) von 2010 (5. Auflage) und 2021 (6. Auflage).
- Verweigerung der Unterschrift der Einwilligungserklärung zur Studienteilnahme.
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: Zufällig
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
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Aktiver Komparator: MI-Oozyten wurden in konventionellem IVM-Medium kultiviert, das mit 10 µg autologer Exosomen ergänzt war
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MI-Oozyten wurden in konventionellem IVM-Medium kultiviert, ergänzt mit 10 µg autologer Exosomen, die mit dem ExoSMarT®-Exosomen-Filtrationssystem gewonnen wurden
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Aktiver Komparator: MI-Oozyten wurden ausschließlich in konventionellem IVM-Medium (VITROLIFE®) kultiviert.
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MI-Oozyten wurden in konventionellem IVM-Medium kultiviert, ergänzt mit 10 µg autologer Exosomen, die mit dem ExoSMarT®-Exosomen-Filtrationssystem gewonnen wurden
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Anteil der Metaphase-I-Oozyten, die nach In-vitro-Kultur autologe Exosomen, die mit dem ExoSMarT®-Exosomenfiltrierungssystem gewonnen wurden, die Metaphase II erreichen
Zeitfenster: 24-36 Stunden
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Dieses Maß bewertet die Anzahl und den Anteil der Metaphase-I-Oozyten, die innerhalb von 24–36 Stunden in vitro-Kultivierung entweder in konventionellem IVM-Medium oder in IVM-Medium, das mit autologen Exosomen ergänzt ist, in das Metaphase-II-Stadium übergehen.
Die Reifung wird durch das Vorhandensein des ersten Polkörpers identifiziert.
Die Daten werden als Anteil der insgesamt kultivierten Metaphase-I-Oozyten zusammengefasst.
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24-36 Stunden
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Anzahl der nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion (ICSI) befruchteten reifen Oozyten
Zeitfenster: Ungefähr 18 Stunden nach ICSI
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Dieses Maß erfasst die Anzahl und den Anteil der in vitro-gereiften Metaphase-II-Oozyten, die nach ICSI eine normale Befruchtung aufweisen, definiert durch das Vorhandensein von zwei Pronuklei unter Standardkriterien des embryologischen Labors.
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Ungefähr 18 Stunden nach ICSI
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
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- Coticchio G, Cimadomo D, Rienzi L. The daunting goal to rescue oocytes collected immature in conventional ovarian stimulation cycles. Fertil Steril. 2025 May;123(5):747-748. doi: 10.1016/j.fertnstert.2025.02.026. Epub 2025 Feb 22.
- Navarro C, Torrecillas Cabrera P, Teppa Garran A. Comparative analysis of the use of autologous exosomes and platelet-derived growth factors in women with premature ovarian insufficiency and infertility: A prospective, randomized, observational, analytical study. Regen Ther. 2025 Jun 30;30:309-320. doi: 10.1016/j.reth.2025.06.007. eCollection 2025 Dec.
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- Vaccari S, Horner K, Mehlmann LM, Conti M. Generation of mouse oocytes defective in cAMP synthesis and degradation: endogenous cyclic AMP is essential for meiotic arrest. Dev Biol. 2008 Apr 1;316(1):124-34. doi: 10.1016/j.ydbio.2008.01.018. Epub 2008 Jan 26.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Tatsächlich)
Studienabschluss (Tatsächlich)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
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