Tämä sivu käännettiin automaattisesti, eikä käännösten tarkkuutta voida taata. Katso englanninkielinen versio lähdetekstiä varten.

Tissue Reactions to Calcium Silicate

torstai 26. marraskuuta 2020 päivittänyt: Seçil Çalışkan, Eskisehir Osmangazi University

Subcutaneous Connective Tissue Reactions to New Calcium Silicate Cements: An Animal Study

The aim of this study was to determine the subcutaneous connective tissue reactions to these new materials.

Materials and Methods These materials were placed in polyethylene tubes and implanted into the dorsal connective tissue of Sprague Dawley rats. The presence of inflammation, edema, necrosis, dystrophic calcification, and thickness of fibrous capsule formation was recorded by histological examination 7, 30, and 60 days after the implantation procedure. Inflammation scores were defined as follows: 0 = no or few inflammatory cells, no reaction, 1 = <25 cells, mild reaction; 2 = 25 to 125 cells, moderate reaction; and 3 = ≥125 cells, severe reaction. Fibrous capsule thickness, necrosis, and formation of calcification were recorded.

Tutkimuksen yleiskatsaus

Yksityiskohtainen kuvaus

24 Twenty-four male Sprague Dawley rats weighing 250--300 gr were used in the study. For preliminary study, 1 one rat was used on each experimental day . During the study period, the animals were kept in cages in groups of five and taken to daily care under standard care conditions without restriction ofno feed and water supply restrictions.

ProRoot White MTA, Medcem Pure Portland Cement, and Medcem MTA mixed according to the manufacturer's' instructions were filled placed into sterile p olyethylene tubules (internal diameter: 1.3 mm internal diameter, x external diameter: 1.6 mm external diameter, x length: 5.0 mm length) sterilized with ethylene oxide gas, as specified by ISO , with using a sterile Llentulo. Twenty-one empty polyethylene tubes remained empty to bewere used as in the control group.

Surgical Procedures The rats were anesthetized in an ether jar, followed byand then received intraperitoneal administration of 70- mg/kg ketamine and 10- mg/kg xylazine intraperitoneally. The operation area (backs) of the anesthetizedeach rats were was shaved with a certain razor blade, and the surgical area was disinfected with Betadine skin disinfectant ,. After shaving, the operation area wasand covered with sterile drapes to be exposed. In orderTo induce local hemostasis, operations of 0.5 cc, 0.006- mg/ml 4% articaine containing epinephrine (Ultracaine D-S-Aventis Forte, Istanbul, Turkey) by infiltrating local anesthesia was performedadministered.

Incision lines were determined marked on the dorsal, anterior, and posterior extremities of the experimental animals, two in the anterior and two in the posterior region and two in the posterior region. When determining the incision lines, cCare was taken to keep a distance of at least 2 cm distance between the placed materials to prevent them from being affected . Skin iIncisions of approximately 1 cm length long was performedwere made with the a sterile scalpel in the designated areas. The cCanals were entered through the incision site with a sterile periosteal elevator, and ducts were opened under the skin by blunt dissection approximately 2 cm deep. Subsequently, polyethylene tubules filled with the experimental material according toof the each groups and sterile empty polyethylene tubules for the control groups were placed in the prepared subcutaneous canals. The incision sites were then closed primarily using 3/0 silk sutures. Antibacterial spray was applied on the sutures.

Histological Procedures After surgery, on the 7th, 30th and 60th days, 7seven animals from each group, (21 animals) were euthanized intraperitoneally with high doses of thiopentalsodium (Pental, İ.E. Ulagay Med. San. , Istanbul, Turkey) administered intraperitoneally under ether anesthesia on Days 7, 30, and 60. Then, tThe test tubules placed were then removed together with the surrounding tissues and placed in bottles containing 10% neutral formalin. Paraffin blocks were prepared from test samples fixed in bottles containing 10% formalin for 2 two days. From the tissues embedded in the paraffin blocks, 4- μm serial sections parallel to the long axis of the tube were taken cut with a microtome (Leica SM 2000R, Leica Instruments, Wetzlar, Germany) and stained with hematoxylin and eosin (H&E).

All histological evaluations were performed The tissue samples were histologically examined under an optical microscope (Nikon Eclipse E 600, Nikon Corp., Tokyo, Japan) at 40×x, 100×x, 200×x, and 400×x magnifications. All the slides were examined and rated by a pathologists blinded to all procedures.

Opintotyyppi

Havainnollistava

Ilmoittautuminen (Todellinen)

24

Yhteystiedot ja paikat

Tässä osiossa on tutkimuksen suorittajien yhteystiedot ja tiedot siitä, missä tämä tutkimus suoritetaan.

Opiskelupaikat

      • Eskişehir, Turkki, 26040
        • Eskisehir Osmangazi University

Osallistumiskriteerit

Tutkijat etsivät ihmisiä, jotka sopivat tiettyyn kuvaukseen, jota kutsutaan kelpoisuuskriteereiksi. Joitakin esimerkkejä näistä kriteereistä ovat henkilön yleinen terveydentila tai aiemmat hoidot.

Kelpoisuusvaatimukset

Opintokelpoiset iät

  • Lapsi
  • Aikuinen
  • Vanhempi Aikuinen

Hyväksyy terveitä vapaaehtoisia

Ei käytössä

Näytteenottomenetelmä

Todennäköisyysnäyte

Tutkimusväestö

24 Twenty-four male Sprague Dawley rats weighing 250--300 gr were used in the study.

Kuvaus

Inclusion Criteria:

  • Male Sprague Dawley rats weighing 250--300 gr

Exclusion Criteria:

-

Opintosuunnitelma

Tässä osiossa on tietoja tutkimussuunnitelmasta, mukaan lukien kuinka tutkimus on suunniteltu ja mitä tutkimuksella mitataan.

Miten tutkimus on suunniteltu?

Suunnittelun yksityiskohdat

Kohortit ja interventiot

Ryhmä/Kohortti
Interventio / Hoito
Control
Twenty-one empty polyethylene tubes remained empty to bewere used as in the control group.
The presence of inflammation, edema, necrosis, dystrophic calcification, and thickness of fibrous capsule formation was recorded by histological examination 7, 30, and 60 days after the implantation procedure of materials.
ProRoot MTA
ProRoot White MTA mixed according to the manufacturer's' instructions were filled placed into sterile p olyethylene tubules (internal diameter: 1.3 mm internal diameter, x external diameter: 1.6 mm external diameter, x length: 5.0 mm length) sterilized with ethylene oxide gas, as specified by ISO , with using a sterile Llentulo.
The presence of inflammation, edema, necrosis, dystrophic calcification, and thickness of fibrous capsule formation was recorded by histological examination 7, 30, and 60 days after the implantation procedure of materials.
Medcem MTA
Medcem MTA mixed according to the manufacturer's' instructions were filled placed into sterile p olyethylene tubules (internal diameter: 1.3 mm internal diameter, x external diameter: 1.6 mm external diameter, x length: 5.0 mm length) sterilized with ethylene oxide gas, as specified by ISO , with using a sterile Llentulo.
The presence of inflammation, edema, necrosis, dystrophic calcification, and thickness of fibrous capsule formation was recorded by histological examination 7, 30, and 60 days after the implantation procedure of materials.
Medcem Pure Portland Cement
Medcem Pure Portland Cement mixed according to the manufacturer's' instructions were filled placed into sterile p olyethylene tubules (internal diameter: 1.3 mm internal diameter, x external diameter: 1.6 mm external diameter, x length: 5.0 mm length) sterilized with ethylene oxide gas, as specified by ISO , with using a sterile Llentulo.
The presence of inflammation, edema, necrosis, dystrophic calcification, and thickness of fibrous capsule formation was recorded by histological examination 7, 30, and 60 days after the implantation procedure of materials.

Mitä tutkimuksessa mitataan?

Ensisijaiset tulostoimenpiteet

Tulosmittaus
Toimenpiteen kuvaus
Aikaikkuna
Biocompatiblity
Aikaikkuna: 1 year
determine the subcutaneous connective tissue reactions to ProRoot MTA, Medcem MTA and Medcem Pure Portland Cement
1 year

Yhteistyökumppanit ja tutkijat

Täältä löydät tähän tutkimukseen osallistuvat ihmiset ja organisaatiot.

Opintojen ennätyspäivät

Nämä päivämäärät seuraavat ClinicalTrials.gov-sivustolle lähetettyjen tutkimustietueiden ja yhteenvetojen edistymistä. National Library of Medicine (NLM) tarkistaa tutkimustiedot ja raportoidut tulokset varmistaakseen, että ne täyttävät tietyt laadunvalvontastandardit, ennen kuin ne julkaistaan ​​julkisella verkkosivustolla.

Opi tärkeimmät päivämäärät

Opiskelun aloitus (Todellinen)

Maanantai 1. huhtikuuta 2019

Ensisijainen valmistuminen (Todellinen)

Keskiviikko 1. huhtikuuta 2020

Opintojen valmistuminen (Todellinen)

Lauantai 1. elokuuta 2020

Opintoihin ilmoittautumispäivät

Ensimmäinen lähetetty

Torstai 26. marraskuuta 2020

Ensimmäinen toimitettu, joka täytti QC-kriteerit

Torstai 26. marraskuuta 2020

Ensimmäinen Lähetetty (Todellinen)

Torstai 3. joulukuuta 2020

Tutkimustietojen päivitykset

Viimeisin päivitys julkaistu (Todellinen)

Torstai 3. joulukuuta 2020

Viimeisin lähetetty päivitys, joka täytti QC-kriteerit

Torstai 26. marraskuuta 2020

Viimeksi vahvistettu

Sunnuntai 1. marraskuuta 2020

Lisää tietoa

Tähän tutkimukseen liittyvät termit

Muut tutkimustunnusnumerot

  • 13.02.2019 / 2019-02/04

Yksittäisten osallistujien tietojen suunnitelma (IPD)

Aiotko jakaa yksittäisten osallistujien tietoja (IPD)?

PÄÄTTÄMÄTÖN

Lääke- ja laitetiedot, tutkimusasiakirjat

Tutkii yhdysvaltalaista FDA sääntelemää lääkevalmistetta

Joo

Nämä tiedot haettiin suoraan verkkosivustolta clinicaltrials.gov ilman muutoksia. Jos sinulla on pyyntöjä muuttaa, poistaa tai päivittää tutkimustietojasi, ota yhteyttä register@clinicaltrials.gov. Heti kun muutos on otettu käyttöön osoitteessa clinicaltrials.gov, se päivitetään automaattisesti myös verkkosivustollemme .

Tilaa