- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT02780375
Gjennomførbarhetsstudie tester transkripsjonelle responser som en indikator på individualiserte responser på strålingseffekter (RTGene)
Gjennomførbarhetsstudie testing av multipanelkoding og ikke-kodende transkripsjonelle responser som en indikator på individualiserte responser på stråleeffekter hos stråleterapipasienter
Studieoversikt
Status
Forhold
Intervensjon / Behandling
Detaljert beskrivelse
Biologiske markører for strålingseksponering spiller en avgjørende rolle i triage av mistenkte eksponerte personer etter en stråleulykke eller -hendelse. De kan også estimere individuelle doser som muliggjør vurdering av sene strålingseffekter hos berørte individer. De siste årene har genekspresjonsanalysen vist seg å være en sensitiv biologisk markør for strålingseksponering med potensial til å bli brukt for virkelig individualisert dosimetri. Muligheten for at denne genekspresjonsanalysen kan brukes i et storskala masseskadescenario har blitt foreslått og testet i en nylig sammenlikningsøvelse. Klassiske cytogenetiske teknikker, og spesielt den disentriske gullstandarden, har to hovedulemper: (1) mangel på høy gjennomstrømning og (2) forsinkelser på flere dager mellom blodprøvetaking og tilgjengeligheten av resultater. Selv om det må gjøres mer arbeid for å vurdere dens egnethet for triageformål, er det klart at genekspresjonsanalyse i blodprøver kan gi verdifull informasjon, siden det er et tidsvindu (dvs. 12-48 timer) etter strålingseksponering der spesifikke strålingsresponsive gener har lineære doseresponser (0-5 Gy). Mesteparten av arbeidet til dags dato har fokusert på å utvikle sensitive analyser for å studere genekspresjonsmodifikasjoner ved bruk av moderne teknologi, dvs. multipleks kvantitativ, digital polymerasekjedereaksjon (qPCR) og molekylære tellesystemer.
Hos Public Health England (PHE) tillater nylig etablert teknologi direkte telling av nukleinsyremolekyler (DNA, mRNA, miRNA og lncRNA) uten behov for enzymatisk reaksjon eller amplifikasjonstrinn, og reduserer dermed tiden for datainnsamling. Systemet tilbyr multiplekseringskapasitet som kan sammenlignes med mikromatriser, men med større presisjon og følsomhet. En annen unik fordel med denne teknologien er at det ikke er behov for lange, tidkrevende bioinformatiske analyser ettersom resultatene oppnås som talt antall hendelser. Denne nye genekspresjonsanalyseteknikken har blitt vurdert for strålingsbiodosimetriapplikasjoner med lovende resultater. Videre har genuttrykk vist en høy grad av lovende som en markør for seneffekter av stråling, for eksempel normale vevsreaksjoner etter kurativ strålebehandling for brystkreft. Kliniske data tyder på at systemiske inflammatoriske responser spiller en kritisk rolle i progresjonen av strålingseffekter: for eksempel representerer nøytrofil-til-lymfocytt-forholdet en markør for systemisk betennelse før behandling og er en uavhengig prognostisk faktor som er nyttig for individuell risikovurdering i bryst. kreftpasienter som gjennomgår strålebehandling. Gener som er relevante for inflammatoriske responser er derfor interessante kandidater for videre undersøkelse. Linearitet av den transkripsjonelle dose-responsen for spesifikke strålingsresponsive gener i ex vivo-eksponerte humane blodprøver har nylig blitt demonstrert for første gang, og inter-individuell variasjon i responsen etter eksponering for lave doser og høye doser er nylig blitt vurdert. Det logiske neste trinnet for biologisk utvikling av genekspresjonsanalysen er å validere disse nye teknikkene med humane blodprøver utsatt for stråling in vivo.
Bruken av prøver fra pasienter som gjennomgår strålebehandling for validering av teknikker har blitt stadig mer populær de siste årene. Sofistikert behandlingsplanlegging for klinisk strålebehandling fører til svært nøyaktige individuelle doseberegninger som muliggjør validering av biologiske estimater av dose. Utvalget av standard strålebehandlingsplaner valgt for inkludering i denne studien vil gi et bredt spekter av doser for vurdering av genekspresjonsanalysen alene og i kombinasjon med de andre cytogenetiske analysene, for å simulere en rekke potensielle eksponeringsscenarier.
Perifere blodprøver vil bli tatt med informert samtykke fra pasienter som gjennomgår standard strålebehandling før og under behandling for bryst-, lunge-, gastrointestinale og genitourinære svulster. Svar fra paneler med opptil 800 kodende og ikke-kodende RNA-er vil bli vurdert i prøvene ved hjelp av nCounter-systemet. Kandidatgener identifisert av PHE, Columbia og/eller i litteraturen som spesifikke for strålingsresponser vil bli inkludert, sammen med gener som er relevante for systemiske inflammatoriske responser, for å identifisere transkripsjonelle responser for en rekke doser og eksponeringer på interindividuell basis. Data vil bli analysert ved hjelp av eksisterende og nye statistiske verktøy fokusert på telledatamodellering. Det tiltenkte resultatet er identifisering av et strålingsspesifikt panel av gener for å informere individuelle strålingsresponser, og hvis resultatene er gunstige, forventes en storskala oppfølging av denne foreslåtte piloten etter hvert.
Studietype
Registrering (Faktiske)
Kontakter og plasseringer
Studiesteder
-
-
-
Sutton, Storbritannia, SM2 5PT
- The Royal Marsden
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Kjønn som er kvalifisert for studier
Prøvetakingsmetode
Studiepopulasjon
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
- Alder ≥18 år
- Krav om ekstern strålebehandling for bryst-, lunge-, gastrointestinale eller genitourinære svulster
- Skriftlig informert samtykke
Ekskluderingskriterier:
- Tidligere strålebehandling
- Samtidig kjemoterapi eller kjemoterapi før strålebehandling med mindre enn 4 uker
- Samtidig hormonbehandling eller hormonbehandling før strålebehandling med mindre enn 4 uker
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
Kohorter og intervensjoner
Gruppe / Kohort |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Bloddonasjon under strålebehandling
Deltakerne vil bli bedt om å gi en blodprøve på 5 tidspunkter før og under strålebehandlingen
|
Deltakerne vil bli bedt om å gi en blodprøve på 5 tidspunkter før og under strålebehandlingen
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tidsramme |
|---|---|
|
Transkripsjonelle responser målt ved nCounter molekylær profilering som biomarkør for individuell strålingseksponering
Tidsramme: 3 måneder etter at alle frivillige er ferdig med strålebehandling og donert blodprøver
|
3 måneder etter at alle frivillige er ferdig med strålebehandling og donert blodprøver
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Samarbeidspartnere
Etterforskere
- Hovedetterforsker: Navita Somaiah, Institute of Cancer Research, United Kingdom
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Lloyd, D.C. and A.A. Edwards, Biological dosimetry after radiation accidents. In: G. Obe et al.,(eds). Chromosomal Aberrations. Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg. 1990.
- Maznik, N.A., et al., Chromosomal dosimetry for some groups of evacuees from Prypiat and Ukrainian liquidators at Chernobyl. Radiation Protection Dosimetry, 1997. 74(1-2): p. 5-11.
- Kabacik S, Mackay A, Tamber N, Manning G, Finnon P, Paillier F, Ashworth A, Bouffler S, Badie C. Gene expression following ionising radiation: identification of biomarkers for dose estimation and prediction of individual response. Int J Radiat Biol. 2011 Feb;87(2):115-29. doi: 10.3109/09553002.2010.519424. Epub 2010 Nov 10.
- Manning G, Kabacik S, Finnon P, Bouffler S, Badie C. High and low dose responses of transcriptional biomarkers in ex vivo X-irradiated human blood. Int J Radiat Biol. 2013 Jul;89(7):512-22. doi: 10.3109/09553002.2013.769694. Epub 2013 Feb 27.
- Kabacik S, Ortega-Molina A, Efeyan A, Finnon P, Bouffler S, Serrano M, Badie C. A minimally invasive assay for individual assessment of the ATM/CHEK2/p53 pathway activity. Cell Cycle. 2011 Apr 1;10(7):1152-61. doi: 10.4161/cc.10.7.15231. Epub 2011 Apr 1.
- Badie C, Kabacik S, Balagurunathan Y, Bernard N, Brengues M, Faggioni G, Greither R, Lista F, Peinnequin A, Poyot T, Herodin F, Missel A, Terbrueggen B, Zenhausern F, Rothkamm K, Meineke V, Braselmann H, Beinke C, Abend M. Laboratory intercomparison of gene expression assays. Radiat Res. 2013 Aug;180(2):138-48. doi: 10.1667/RR3236.1. Epub 2013 Jul 25.
- Ainsbury EA, Bakhanova E, Barquinero JF, Brai M, Chumak V, Correcher V, Darroudi F, Fattibene P, Gruel G, Guclu I, Horn S, Jaworska A, Kulka U, Lindholm C, Lloyd D, Longo A, Marrale M, Monteiro Gil O, Oestreicher U, Pajic J, Rakic B, Romm H, Trompier F, Veronese I, Voisin P, Vral A, Whitehouse CA, Wieser A, Woda C, Wojcik A, Rothkamm K. Review of retrospective dosimetry techniques for external ionising radiation exposures. Radiat Prot Dosimetry. 2011 Nov;147(4):573-92. doi: 10.1093/rpd/ncq499. Epub 2010 Dec 23.
- Kabacik S, Manning G, Raffy C, Bouffler S, Badie C. Time, dose and ataxia telangiectasia mutated (ATM) status dependency of coding and noncoding RNA expression after ionizing radiation exposure. Radiat Res. 2015 Mar;183(3):325-37. doi: 10.1667/RR13876.1. Epub 2015 Mar 4.
- Manning, G., et al., Assessing a new gene expression analysis technique for radiation biodosimetry applications. Radiation Measurements, 2011. 46(9): p. 1014-1018.
- Finnon P, Kabacik S, MacKay A, Raffy C, A'Hern R, Owen R, Badie C, Yarnold J, Bouffler S. Correlation of in vitro lymphocyte radiosensitivity and gene expression with late normal tissue reactions following curative radiotherapy for breast cancer. Radiother Oncol. 2012 Dec;105(3):329-36. doi: 10.1016/j.radonc.2012.10.007. Epub 2012 Nov 15.
- Krenn-Pilko S, Langsenlehner U, Stojakovic T, Pichler M, Gerger A, Kapp KS, Langsenlehner T. The elevated preoperative derived neutrophil-to-lymphocyte ratio predicts poor clinical outcome in breast cancer patients. Tumour Biol. 2016 Jan;37(1):361-8. doi: 10.1007/s13277-015-3805-4. Epub 2015 Jul 29.
- Chua ML, Horn S, Somaiah N, Davies S, Gothard L, A'Hern R, Yarnold J, Rothkamm K. DNA double-strand break repair and induction of apoptosis in ex vivo irradiated blood lymphocytes in relation to late normal tissue reactions following breast radiotherapy. Radiat Environ Biophys. 2014 May;53(2):355-64. doi: 10.1007/s00411-014-0531-z. Epub 2014 Mar 13.
- Chua ML, Somaiah N, A'Hern R, Davies S, Gothard L, Yarnold J, Rothkamm K. Residual DNA and chromosomal damage in ex vivo irradiated blood lymphocytes correlated with late normal tissue response to breast radiotherapy. Radiother Oncol. 2011 Jun;99(3):362-6. doi: 10.1016/j.radonc.2011.05.071. Epub 2011 Jun 23.
- Chua ML, Somaiah N, Bourne S, Daley F, A'hern R, Nuta O, Davies S, Herskind C, Pearson A, Warrington J, Helyer S, Owen R, Yarnold J, Rothkamm K. Inter-individual and inter-cell type variation in residual DNA damage after in vivo irradiation of human skin. Radiother Oncol. 2011 May;99(2):225-30. doi: 10.1016/j.radonc.2011.04.009. Epub 2011 May 26.
- Prise KM, O'Sullivan JM. Radiation-induced bystander signalling in cancer therapy. Nat Rev Cancer. 2009 May;9(5):351-60. doi: 10.1038/nrc2603. Epub 2009 Apr 20.
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Faktiske)
Primær fullføring (Faktiske)
Studiet fullført (Faktiske)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Anslag)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Nøkkelord
Andre studie-ID-numre
- CCR4553
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .