- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT02948673
Produksjonen av reaktive oksygenarter som respons på glutationtilskudd og akutt trening (DIMITOS)
Produksjonen av reaktive oksygenarter som respons på glutationtilskudd og akutt trening hos pasienter med type 2-diabetes
Mål: Forskningsfokuset for studien er produksjon av reaktive oksygenarter (ROS) hos pasienter med type 2 diabetes (T2D) som respons på glutation (GSH) tilskudd og som respons på akutt trening.
Oksidativt stress foreslås som en mulig årsaksfaktor i patofysiologien til insulinresistens i skjelettmuskulaturen. GSH er den mest utbredte endogene antioksidanten i cellen og dermed en viktig beskytter mot oksidativt stress og insulinresistens. Det har blitt funnet at pasienter med T2D har et redusert nivå av GSH i plasma og at 1 times GSH-infusjon forbedrer skjelettmuskulaturens glukoseopptak med ~25 % og redoksmiljøet hos pasienter med T2D. Derfor ønsker vi å undersøke effekten av 3 måneders GSH-tilskudd på skjelettmuskulaturens insulinfølsomhet og mitokondriell ROS-produksjon hos pasienter med T2D og friske kontroller.
Hypotese: Oralt GSH-tilskudd vil forbedre skjelettmuskulaturens insulinfølsomhet hos pasienter med T2D og denne effekten vil være knyttet til redusert mitokondriell ROS-produksjon i skjelettmuskulaturen.
I motsetning til koblingen mellom oksidativt stress og insulinresistens, er ROS produsert som respons på trening en viktig fysiologisk stimulans, da det antydes å spille en nøkkelrolle i den gunstige mitokondrielle biogenesen observert som respons på trening. Det er rapportert at noen pasienter med T2D har en redusert mitokondriell biogenese som respons på trening, men årsaken til denne defekten er ikke kjent. Vi ønsker å undersøke sammenhengen mellom treningsstimulert ROS-produksjon og mitokondriell biogeneserespons hos pasienter med T2D og friske kontroller som respons på akutt trening ved to forskjellige intensiteter.
Hypotese: Tatt i betraktning den patologiske tilstanden til T2D skjelettmuskulatur (dvs. høyt kronisk ROS-nivå), spekulerer vi i at en lavere treningsintensitet, som fører til en lavere treningsstimulert ROS-produksjon er en mer optimal stimulans (dvs. ikke for høy) for mitokondriell biogenese hos pasienter med T2D.
Studieoversikt
Status
Intervensjon / Behandling
Detaljert beskrivelse
ROS-produksjon som svar på glutationtilskudd:
I dag lider 387 millioner mennesker over hele verden av T2D, og dette tallet forventes å øke til 592 millioner i 2035. Skjelettmuskulatur er ansvarlig for ~75 % av det totale glukoseopptaket, noe som gjør skjelettmuskulaturen til det kvantitativt viktigste vevet når det gjelder insulinresistens (1). Det har blitt antydet at oksidativt stress kan representere en mulig årsaksfaktor i patofysiologien til insulinresistens i skjelettmuskulaturen. Koblingen mellom ROS og skjelettmuskelinsulinresistens er etablert både in vitro og in vivo (2, 3), men få studier har faktisk målt ROS-produksjon i skjelettmuskulatur hos T2D-pasienter (4-6). Mitokondrier er en kilde til ROS, og også et hovedmål for oksidativ skade (7). Det mitokondrielle forsvarssystemet mot oksidativt stress er avhengig av endogene antioksidanter. Glutation (GSH) er den mest utbredte endogene antioksidanten i cellen og dermed en avgjørende beskytter mot oksidativt stress og insulinresistens (8). Som støtte for dette har pasienter med T2D et redusert nivå av GSH og et økt nivå av oksidert GSH (GSSG) i plasma (9) og insulinresistente personer rapporteres å ha økt mitokondriell ROS-produksjon samt redusert GSH/GSSG-forhold i skjelettmuskulatur sammenlignet med friske kontroller (3). I tillegg er det funnet at 1 times glutationinfusjon øker glukoseopptaket hos pasienter med T2D med ~25 % og forbedrer redoksmiljøet, noe som gjenspeiles av et økt GSH/GSSG-forhold i plasma; effekter som ikke ble sett hos de friske kontrollene (10). Effekten av forlenget oral GSH-tilskudd på skjelettmuskulaturens insulinfølsomhet og mitokondriell ROS-produksjon hos pasienter med T2D har, så vidt vi vet, aldri blitt undersøkt.
Forskningsspørsmål 1: Forbedrer oral GSH-tilskudd skjelettmuskulaturens insulinfølsomhet hos pasienter med T2D og friske kontroller? Og i så fall, kan denne effekten knyttes til en mer fordelaktig redokstilstand i muskelcellen? Hypotese: Oralt GSH-tilskudd vil forbedre skjelettmuskulaturens insulinfølsomhet hos pasienter med T2D og denne effekten vil være knyttet til redusert mitokondriell ROS-produksjon i skjelettmuskulaturen.
ROS-produksjon som svar på akutt trening:
Akutt trening induserer en markant økning i transkripsjonen av peroksisomproliferatoraktivert reseptor-γ koaktivator-1α (PGC-1α) (11), og derfor antas PGC-1α å spille en nøkkelrolle i treningsindusert mitokondriell biogenese (12) ). Sammentrekning av rotteskjelettmuskelceller øker ROS-produksjon og PGC-1α mRNA-ekspresjon, men i nærvær av antioksidanter reduseres ROS-produksjonen og økningen i PGC-1α mRNA oppheves (13). Trening kombinert med allopurinol (en hemmer av ROS-produksjon) demper også omfanget av treningsindusert økt PGC-1α mRNA hos rotter, sammenlignet med trening alene (14). Disse funnene tyder på at PGC-1α, i det minste delvis, er regulert gjennom en mekanisme som involverer ROS. Videre har det blitt foreslått at ROS regulerer PGC-1α via aktivering av AMP-aktivert proteinkinase (AMPK) (15). Interessant nok har forsøkspersoner med insulinresistens en redusert treningsstimulert AMPK-aktivitet sammenlignet med magre kontroller (16, 17), noe som kan forklare den svekkede treningsinduserte mitokondrielle biogenesen observert hos noen pasienter med T2D (5, 17, 18), men ikke alle (19). Hvorvidt ROS-produksjon er involvert i en unormal treningsrespons er ikke kjent. Vår nåværende kunnskap om ROS som respons på akutt trening er avledet fra studier på dyr og celler, og ingen studie har, så vidt vi vet, undersøkt sammenhengen mellom ROS og mitokondriell biogenese hos pasienter med T2D som respons på akutt trening.
Forskningsspørsmål 2: Er den treningsinduserte økte ROS-produksjonen som kreves for en mitokondriell biogenese-respons forskjellig mellom pasienter med T2D og friske kontroller? Hvis ja, reduserer trening med lav intensitet den forbigående ROS-produksjonen og resulterer dermed i en høyere mitokondriell biogeneserespons hos pasienter med T2D, sammenlignet med trening med høy intensitet? Hypotese: Tatt i betraktning den patologiske tilstanden til T2D skjelettmuskulatur (dvs. høyt kronisk ROS-nivå), antas det at en lavere treningsintensitet, som fører til en lavere treningsstimulert ROS-produksjon, er en mer optimal stimulans (dvs. ikke for høy) for mitokondriell biogenese hos pasienter med T2D.
Materiale og metodikk:
20 pasienter med T2D (ikke-insulinavhengig) og 20 friske kontroller vil bli rekruttert til studien. De to gruppene vil bli matchet på alder, vekt og maksimalt oksygenforbruk (VO2 maks).
Tilnærming til studien: Studien er en dobbeltblindet randomisert placebokontrollert studie.
Ved hvert oppmøte på laboratoriet (bortsett fra dagen for screening) blir forsøkspersonene bedt om å:
- Rapporter til laboratoriet i fastende tilstand over natten
- Avstå fra alkohol og fysisk aktivitet 24 timer før hver studiedag.
- Gjenta den samme dietten som vedlagte 24-timers tilbakekallingsspørreskjema foreskriver (forsøkspersonene blir også bedt om å fylle ut et 24-timers kostholdsspørreskjema ved første gang de er på laboratoriet)
Screening: Før forsøkspersonene inkluderes i studien vil det bli gjennomført en standard klinisk undersøkelse, inkludert sykehistorie, glykert hemoglobin (HbA1c) og EKG.
Hvis de er inkludert i studien, gjennomgår forsøkspersonene 3 eksperimentelle dager før og etter intervensjonen.
Test dag 1:
- Dual Energy X-ray Absorptiometry-skanning for å måle kroppssammensetning,
- Inkrementell treningstest for å bestemme treningsintensiteten som fremkaller maksimal fettoksidasjon (Fatmax-test)
- Inkrementell treningstest til utmattelse for å bestemme VO2 maks.
Test dag 2:
- Muskelbiopsier fra vastus lateralis (basal, umiddelbart etter avsluttet trening og etter 90 minutter med restitusjon)
Akutte treningstester på sykkelergometre ved 70 % av VO2 maks (moderat intensitet) eller ved 50 % av VO2 maks (lav intensitet). De to treningstestene vil bli matchet for total arbeidsmengde (kJ).
10 forsøkspersoner med T2D og 10 kontrollpersoner er randomisert til hver treningstest.
Test dag 3:
- Måling av hvilestoffskifte ved kalesjehette (basal og under klemmen)
- Intravenøs glukosetoleransetest
- Hyperinsulinemisk euglykemisk klemme
Etter forsøksdagene blir forsøkspersonene randomisert til placebo- eller GSH-tilskudd og instruert om å innta enten 1000 mg GSH/dag eller placebo daglig (2 tabletter om morgenen og 2 tabletter om kvelden) i 4 uker.
Statistiske betraktninger:
Sammenligningen av gruppene eller intervensjonene vil bli utført ved bruk av en enveis eller en toveis ANOVA-test med gjentatte tiltak, etter behov. Basert på variasjonen vist i tidligere studier en forventet 80% kraft og et signifikansnivå på P
Studietype
Registrering (Faktiske)
Fase
- Ikke aktuelt
Kontakter og plasseringer
Studiesteder
-
-
Nørrebro
-
Copenhagen, Nørrebro, Danmark, 2200
- Xlab, Department of Biomedical Sciences, Faculty Of Health Sciences, University of Copenhagen
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Kjønn som er kvalifisert for studier
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
For pasienter med type 2 diabetes:
- Mann
- 30-50 år
- BMI: 28-35
- EKG uten tegn på hjertesykdom
- HbA1c > 6,5 % (48 mmol/mol)
For kontrollemner:
- Mann
- 30-50 år
- BMI: 28-35
- EKG uten tegn på hjertesykdom
Ekskluderingskriterier:
For pasienter med type 2 diabetes:
- Insulinbehandling
- Antioksidanttilskudd eller andre kosttilskudd
- Kolesterolsenkende medisin
For kontrollemner:
- Antioksidanttilskudd eller andre kosttilskudd
- Kolesterolsenkende medisin
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: Grunnvitenskap
- Tildeling: Randomisert
- Intervensjonsmodell: Parallell tildeling
- Masking: Dobbelt
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Placebo komparator: Styre
4 placebotabletter/dag (2 om morgenen og 2 om kvelden)
|
4 orale placebotabletter i 4 uker
|
|
Aktiv komparator: Glutation
4 orale GSH-tabletter/dag (2 om morgenen og 2 om kvelden)
|
4 orale GSH-tabletter/dag (1000mg/dag) i 4 uker
Andre navn:
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Insulinfølsomhet
Tidsramme: 12 uker
|
Forskjell i insulinfølsomhet (målt som glukoseinfusjonshastighet under en hyperinsulinemisk euglykemisk klemme) mellom pasienter med type 2-diabetes som får glutationtilskudd og pasienter med type 2-diabetes som får placebo.
|
12 uker
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Produksjon av mitokondriell reaktive oksygenarter
Tidsramme: 12 uker
|
Forskjeller i produksjonen av mitokondrielle reaktive oksygenarter mellom pasienter med type 2 diabetes som får glutationtilskudd og pasienter med type 2 diabetes som får placebo.
|
12 uker
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Sponsor
Etterforskere
- Hovedetterforsker: Steen Larsen, Ass. prof., University of Copenhagen
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Phielix E, Meex R, Moonen-Kornips E, Hesselink MK, Schrauwen P. Exercise training increases mitochondrial content and ex vivo mitochondrial function similarly in patients with type 2 diabetes and in control individuals. Diabetologia. 2010 Aug;53(8):1714-21. doi: 10.1007/s00125-010-1764-2. Epub 2010 Apr 27.
- DeFronzo RA. Lilly lecture 1987. The triumvirate: beta-cell, muscle, liver. A collusion responsible for NIDDM. Diabetes. 1988 Jun;37(6):667-87. doi: 10.2337/diab.37.6.667. No abstract available.
- Houstis N, Rosen ED, Lander ES. Reactive oxygen species have a causal role in multiple forms of insulin resistance. Nature. 2006 Apr 13;440(7086):944-8. doi: 10.1038/nature04634.
- Anderson EJ, Lustig ME, Boyle KE, Woodlief TL, Kane DA, Lin CT, Price JW 3rd, Kang L, Rabinovitch PS, Szeto HH, Houmard JA, Cortright RN, Wasserman DH, Neufer PD. Mitochondrial H2O2 emission and cellular redox state link excess fat intake to insulin resistance in both rodents and humans. J Clin Invest. 2009 Mar;119(3):573-81. doi: 10.1172/JCI37048. Epub 2009 Feb 2.
- Abdul-Ghani MA, Jani R, Chavez A, Molina-Carrion M, Tripathy D, Defronzo RA. Mitochondrial reactive oxygen species generation in obese non-diabetic and type 2 diabetic participants. Diabetologia. 2009 Apr;52(4):574-82. doi: 10.1007/s00125-009-1264-4. Epub 2009 Jan 30.
- Hey-Mogensen M, Hojlund K, Vind BF, Wang L, Dela F, Beck-Nielsen H, Fernstrom M, Sahlin K. Effect of physical training on mitochondrial respiration and reactive oxygen species release in skeletal muscle in patients with obesity and type 2 diabetes. Diabetologia. 2010 Sep;53(9):1976-85. doi: 10.1007/s00125-010-1813-x. Epub 2010 Jun 6.
- Chanseaume E, Barquissau V, Salles J, Aucouturier J, Patrac V, Giraudet C, Gryson C, Duche P, Boirie Y, Chardigny JM, Morio B. Muscle mitochondrial oxidative phosphorylation activity, but not content, is altered with abdominal obesity in sedentary men: synergism with changes in insulin sensitivity. J Clin Endocrinol Metab. 2010 Jun;95(6):2948-56. doi: 10.1210/jc.2009-1938. Epub 2010 Apr 9.
- Murphy MP. How mitochondria produce reactive oxygen species. Biochem J. 2009 Jan 1;417(1):1-13. doi: 10.1042/BJ20081386.
- Richie JP Jr, Nichenametla S, Neidig W, Calcagnotto A, Haley JS, Schell TD, Muscat JE. Randomized controlled trial of oral glutathione supplementation on body stores of glutathione. Eur J Nutr. 2015 Mar;54(2):251-63. doi: 10.1007/s00394-014-0706-z. Epub 2014 May 5.
- Calabrese V, Cornelius C, Leso V, Trovato-Salinaro A, Ventimiglia B, Cavallaro M, Scuto M, Rizza S, Zanoli L, Neri S, Castellino P. Oxidative stress, glutathione status, sirtuin and cellular stress response in type 2 diabetes. Biochim Biophys Acta. 2012 May;1822(5):729-36. doi: 10.1016/j.bbadis.2011.12.003. Epub 2011 Dec 11.
- De Mattia G, Bravi MC, Laurenti O, Cassone-Faldetta M, Armiento A, Ferri C, Balsano F. Influence of reduced glutathione infusion on glucose metabolism in patients with non-insulin-dependent diabetes mellitus. Metabolism. 1998 Aug;47(8):993-7. doi: 10.1016/s0026-0495(98)90357-2.
- Pilegaard H, Saltin B, Neufer PD. Exercise induces transient transcriptional activation of the PGC-1alpha gene in human skeletal muscle. J Physiol. 2003 Feb 1;546(Pt 3):851-8. doi: 10.1113/jphysiol.2002.034850.
- Hood DA. Invited Review: contractile activity-induced mitochondrial biogenesis in skeletal muscle. J Appl Physiol (1985). 2001 Mar;90(3):1137-57. doi: 10.1152/jappl.2001.90.3.1137.
- Silveira LR, Pilegaard H, Kusuhara K, Curi R, Hellsten Y. The contraction induced increase in gene expression of peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR)-gamma coactivator 1alpha (PGC-1alpha), mitochondrial uncoupling protein 3 (UCP3) and hexokinase II (HKII) in primary rat skeletal muscle cells is dependent on reactive oxygen species. Biochim Biophys Acta. 2006 Sep;1763(9):969-76. doi: 10.1016/j.bbamcr.2006.06.010. Epub 2006 Jul 7.
- Kang C, O'Moore KM, Dickman JR, Ji LL. Exercise activation of muscle peroxisome proliferator-activated receptor-gamma coactivator-1alpha signaling is redox sensitive. Free Radic Biol Med. 2009 Nov 15;47(10):1394-400. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2009.08.007. Epub 2009 Aug 14.
- Irrcher I, Ljubicic V, Hood DA. Interactions between ROS and AMP kinase activity in the regulation of PGC-1alpha transcription in skeletal muscle cells. Am J Physiol Cell Physiol. 2009 Jan;296(1):C116-23. doi: 10.1152/ajpcell.00267.2007. Epub 2008 Nov 12.
- Sriwijitkamol A, Coletta DK, Wajcberg E, Balbontin GB, Reyna SM, Barrientes J, Eagan PA, Jenkinson CP, Cersosimo E, DeFronzo RA, Sakamoto K, Musi N. Effect of acute exercise on AMPK signaling in skeletal muscle of subjects with type 2 diabetes: a time-course and dose-response study. Diabetes. 2007 Mar;56(3):836-48. doi: 10.2337/db06-1119.
- De Filippis E, Alvarez G, Berria R, Cusi K, Everman S, Meyer C, Mandarino LJ. Insulin-resistant muscle is exercise resistant: evidence for reduced response of nuclear-encoded mitochondrial genes to exercise. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2008 Mar;294(3):E607-14. doi: 10.1152/ajpendo.00729.2007. Epub 2008 Jan 8.
- Holten MK, Zacho M, Gaster M, Juel C, Wojtaszewski JF, Dela F. Strength training increases insulin-mediated glucose uptake, GLUT4 content, and insulin signaling in skeletal muscle in patients with type 2 diabetes. Diabetes. 2004 Feb;53(2):294-305. doi: 10.2337/diabetes.53.2.294.
- Sondergard SD, Cintin I, Kuhlman AB, Morville TH, Bergmann ML, Kjaer LK, Poulsen HE, Giustarini D, Rossi R, Dela F, Helge JW, Larsen S. The effects of 3 weeks of oral glutathione supplementation on whole body insulin sensitivity in obese males with and without type 2 diabetes: a randomized trial. Appl Physiol Nutr Metab. 2021 Sep;46(9):1133-1142. doi: 10.1139/apnm-2020-1099. Epub 2021 Mar 19.
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart
Primær fullføring (Faktiske)
Studiet fullført (Faktiske)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Anslag)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Nøkkelord
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
Andre studie-ID-numre
- DIMITOS
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .