- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT04998500
Veksthormon som modell for reversibel aktivering av fettvevsfibrose
Bakgrunn: Fettvevsfibrose betegner overdreven patologisk akkumulering av ekstracellulær matrise (ECM) i fettvev og er en markør for dysfunksjon. Veksthormon (GH) aktiverer fettvevslipolyse og stimulerer kollagensyntese i magert vev. Interessant nok har vi nye pilotdata som tyder på at GH-overskudd (akromegali) også induserer reversibel fibrose in vivo og potent aktiverer uttrykket av fibroblastaktiveringsprotein alfa (FAPα).
Hypotese: GH induserer fettvevsfibrose ved økt FAPα-ekspresjon sammen med proliferasjon og fibrogen differensiering av fibro-adipogene stamceller (FAP).
Mål: Å avdekke mekanismene bak GH-indusert fettvevsfibrose med vekt på FAPα-ekspresjon og proliferasjon av FAP-celler.
Emner og metoder: I en enkelt blindet, randomisert, dobbeltdummy crossover-design, vil 10 voksne, moderat overvektige individer bli utsatt for én uke med GH- og GH-reseptorblokkering (Pegvisomant). Vi vil bruke enkeltcelleteknologier, fluorescensaktivert cellesortering (FACS), RNA-sekvensering og cellekulturstudier på fettvevsprøver, kombinert med in vivo vurdering av fettvevsomsetning og metabolisme.
Perspektiver: Å forstå fibrosedannelse i menneskelige modeller kan identifisere nye mål for behandling av fedme-assosierte lidelser.
Studieoversikt
Status
Forhold
Intervensjon / Behandling
Detaljert beskrivelse
Bakgrunn og foreløpige data: Fettvev er et flercellet vev omgitt av en ekstracellulær matrise, som gjennomgår kontinuerlig remodellering. Pertubasjoner i remodelleringsprosessene kan forårsake akkumulering av overflødig ekstracellulært matriseprotein og dermed fibrose. Fettvevsfibrose er anerkjent som en komponent i det metabolske syndromet sammen med insulinresistens, dyslipidemi og overvekt, og fibrose spiller sannsynligvis en kausativ rolle (1,2). I denne sammenheng er det fascinerende at langvarig eksponering for GH in vivo induserer insulinresistens til tross for en samtidig mobilisering og reduksjon av fettmasse (3). Denne effekten av GH kommer til uttrykk hos pasienter med en GH-produserende hypofysetumor (akromegali) (4). Dessuten er GH en potent aktivator av kollagenomsetning, og det fremmer også fibrose i menneskelige sener og skjelettmuskler (5-7). Økt AT-fibrose er rapportert i en GH-transgen musemodell (8), og vi har foreløpige data som viser AT-fibrose hos pasienter med aktiv akromegali, som reverserer etter sykdomskontroll.
Lite er kjent om mekanismene bak GH-indusert fibrose, men nyere bevis peker på en potensiell involvering av FAPα, et enzym som er sterkt uttrykt i muse-AT FAP-celler (9). Dessuten har vi nylig rapportert at menneskelige skjelettmuskel-FAP-celler oppregulerer FAPα (DPP4) under fibrogen differensiering (19). FAPα er en underenhet av et heterodimert proteinasekompleks festet til cellemembranen i tillegg til en løselig form som også finnes i sirkulasjonen (10). Flere proteiner er anerkjent som FAPα-substrater, inkludert kollagen type I (11) og III (12), og FAPα ser ut til å spille en betydelig rolle ved remodellering av levervev (13) og ved lungefibrose (14). Vi har nylig registrert forhøyede sirkulerende nivåer av FAPα ved aktiv akromegali, som korrelerer med reversering av kollagenomsetning etter sykdomskontroll (15). Fibro-adipogene stamceller er mesenkymale stamceller med det iboende potensialet til å differensiere seg til enten kollagenproduserende fibroblaster eller adipocytter. De er studert i murin hjerte- og skjelettmuskulatur, hvor de bidrar til enten fibrose eller fettavsetning under muskelsvekket regenerering eller degenerasjon (16-18). Vi har nylig demonstrert at en undergruppe av FAP-celler driver akkumuleringen av ECM-protein og adipocytter i muskelen fra pasienter med type 2-diabetes og sannsynligvis bidrar til dårlig metabolsk og mekanisk muskelfunksjon (19). Hvorvidt GH påvirker fettvevs FAP-celleproliferasjon og -differensiering er ukjent, men FAP-celleproliferasjon reguleres av IGF-I (16), som er et sterkt GH-avhengig peptid. Økt FAP-proliferasjon er også rapportert å bidra til intramuskulært fettvev (IMAT) ved flere tilstander, og vi har observert IMAT etter behandling ved akromegali (upubliserte data). Videre har vi foreløpige data fra FACS-isolerte fettvev FAP-celler inkubert med serum fra akromegalipasienter, noe som tyder på GH-avhengig økt FAP-celleproliferasjon og fibrogent utseende. Samlet antyder disse funnene at GH fremmer en pro-proliferativ og fibrogen FAP-fenotype på bekostning av adipogen differensiering.
Hypoteser: Veksthormon: 1) Aktiverer FAPα-proteinekspresjon, 2) Øker proliferasjon og fibrogen differensiering av FAP-celler, og 3) Induserer reversibel fibrose i fettvev hos mennesker
Emner og metoder: I en enkelt blindet, randomisert, dobbeltdummy crossover-design, vil 10 voksne, moderat overvektige individer bli utsatt for én uke med GH- og GH-reseptorblokkering (Pegvisomant). Pegvisomant er et modifisert GH-molekyl som selektivt blokkerer GH-reseptoren og er et lisensiert legemiddel for behandling av akromegali. Vi inkluderer Pegvisomant som en "aktiv kontroll" for å undertrykke endogene GH-handlinger. Deltakerne vil få daglige subkutane injeksjoner av veksthormon, 0,6-2,0 mg avhengig av alder, i 7 dager i GH-intervensjonen. I kontrollintervensjonen vil deltakerne få daglige subkutane injeksjoner av enten Pegvisomant eller saltvann. Pegvisomant i en dose på 30 mg gis to ganger, i begynnelsen og slutten av kontrollintervensjonen, mens saltvann gis de andre 5 dagene av kontrollintervensjonen. De to intervensjonsperiodene er atskilt med en utvaskingsperiode på 1-4 måneder. Deltakerne vil bli randomisert til enten å starte med GH-intervensjonen og deretter bli utsatt for kontrollintervensjonen, eller starte med kontrollintervensjonen og deretter bli utsatt for GH-intervensjonen. Deltakerne vil møte på sykehuset daglig for injeksjoner og en liten blodprøve. Hver intervensjonsperiode initieres av en igangsettingsdag hvor det vil bli tatt blodprøver, fettvev og muskelprøver, utføres temperaturmålinger og bioimpedans, samt gis tungtvann og første injeksjon av intervensjon enten GH eller kontrollintervensjon. På den første initieringsdagen vil det bli utført en DXA-skanning for vurdering av kroppssammensetning. Hver intervensjonsperiode vil bli avsluttet med en studiedag hvor det vil bli tatt blodprøver, fettvev og muskelprøver, utføres temperaturmålinger, indirekte kalorimetri, palmitatsporer kinetikk og bioimpedans, og gis siste injeksjon av intervensjon enten GH eller kontroll. innblanding. Deltakerne skal faste under oppstarts- og studiedagene, og i intervensjonsperiodene vil de logge inntaket av mat og drikke.
Studieresultater:
Primær: FAP-cellefunksjon, FAPα-proteinekspresjon og markører for fibrose i AT-biopsier oppnådd før og etter intervensjon. Spesielt vil vi utføre:
- FACS for å kvantifisere og isolere cellepopulasjoner, inkludert kvantifisering av FAP-celler i fettvev, og in vitro bestemmelse av proliferasjon og fibro-/adipogent differensieringspotensial
- FAPα-uttrykk i blod og fettvev
- Markører for fibrose i fettvev vurdert ved lysmikroskopi og immunhistokjemisk, RNA-sekvensering og tungtvannsmerket bindevevsomsetning
Sekundært: å studere virkningen av GH-eksponering på:
- Sirkulerende biomarkører for kollagenomsetning (PINP, PIIINP)
- Hele kroppens energimetabolisme og fettsyreomsetning (indirekte kalorimetri og palmitatsporkinetikk)
- Bindevevsomsetning i muskelvev (merking av tungt vann (D2O))
- Temperaturmålinger
Statistisk analyseplan: Sammenligning mellom grupper vil bli utført ved bruk av standard statistiske metoder (t-test eller tilsvarende ikke-parametrisk test). Sammenligning innen gruppe vil bli utført ved å bruke paret t-test av ekvivalent ikke-parametrisk test. I tillegg vil ANOVA (gjentatte tiltak) bli brukt. En p-verdi mindre enn 0,05 vil bli sett på som statistisk signifikant.
Perspektiv og relevans: Dette er den første studien som undersøker GH-effekter på fettvevsfibrose hos mennesker, som har implikasjoner utover GH-patofysiologi. En dypere forståelse av veiene som kontrollerer fibroblast- og fettvevsbalansen i fettvev er viktig grunnarbeid og kan avdekke nye mål for å bekjempe fettvevsdysfunksjon og relaterte lidelser. Som nylig demonstrert hos pasienter med type 2-diabetes er disse progenitorcellene nøkkelmediatorer av vevsplastisitet og funksjon hos mennesker (19).
Studietype
Registrering (Antatt)
Fase
- Ikke aktuelt
Kontakter og plasseringer
Studiesteder
-
-
-
Aarhus, Danmark, DK-8200
- Aarhus University
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
- Skriftlig og muntlig samtykke før påmelding
- Juridisk kompetente fag
- Sunn (unntatt ukomplisert hypertensjon og hyperkolesterolemi)
- Mannlig kjønn
- Alder ≥ 18 år og ≤ 50 år
- BMI 25-35
Ekskluderingskriterier:
- Enhver tilstand som etterforskeren vurderer kan påvirke deltakerens evne til å fullføre studien
- Kjent for antatt akutt eller kronisk sykdom
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: Grunnvitenskap
- Tildeling: Randomisert
- Intervensjonsmodell: Crossover-oppdrag
- Masking: Enkelt
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentell: GH intervensjon - kontroll intervensjon
Deltakerne vil få daglige subkutane injeksjoner av veksthormon i 7 dager.
Omtrent 1-4 måneder senere vil deltakerne få daglige subkutane injeksjoner av kontrollintervensjon i 7 dager bestående av saltvann og GH-reseptorblokkade (Pegvisomant).
|
Denne studien tar sikte på å avdekke fysiologiske effekter av veksthormon (GH).
Intervensjonen med GH- og GH-reseptorblokkade (Pegvisomant) vil derfor bli brukt som verktøy for å aktivere en velkjent fysiologisk respons.
Dermed er ikke denne studien en legemiddelprøve.
|
|
Eksperimentell: Kontrollintervensjon - GH intervensjon
Deltakerne vil motta daglige subkutane injeksjoner av kontrollintervensjon i 7 dager bestående av saltvann og GH-reseptorblokkering (Pegvisomant).
Omtrent 1-4 måneder senere vil deltakerne få daglige subkutane injeksjoner av veksthormon i 7 dager.
|
Denne studien tar sikte på å avdekke fysiologiske effekter av veksthormon (GH).
Intervensjonen med GH- og GH-reseptorblokkade (Pegvisomant) vil derfor bli brukt som verktøy for å aktivere en velkjent fysiologisk respons.
Dermed er ikke denne studien en legemiddelprøve.
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Fibro-adipogene stamceller (FAP) celler
Tidsramme: Forventet ca 1-5 måneder
|
Kvantifisering av FAP-celler i fettvev, og in vitro bestemmelse av proliferasjon og fibro-/adipogent differensieringspotensial
|
Forventet ca 1-5 måneder
|
|
Fibroblastaktiveringsprotein (FAPα)
Tidsramme: Forventet ca 1-5 måneder
|
FAPα-konsentrasjon og aktivitet i blod, og uttrykk i fettvev
|
Forventet ca 1-5 måneder
|
|
Fettvevsfibrose
Tidsramme: Forventet ca 1-5 måneder
|
Markører for fibrose i fettvev vurdert ved lysmikroskopi og immunhistokjemisk, RNA-sekvensering og tungtvannsmerket bindevevsomsetning
|
Forventet ca 1-5 måneder
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Sirkulerende biomarkører for kollagenomsetning
Tidsramme: Forventet ca 1-5 måneder
|
(PINP, PIIINP)
|
Forventet ca 1-5 måneder
|
|
Proteinomsetning i muskelvev
Tidsramme: Forventet ca 1-5 måneder
|
Tungtvannsmerket protein- og bindevevsomsetning i muskelvev for å sammenligne med proteinomsetning i fettvev
|
Forventet ca 1-5 måneder
|
|
Metabolisme og fettsyreomsetning
Tidsramme: Forventet ca 1-5 måneder
|
Hele kroppens energimetabolisme og fettsyreomsetning (indirekte kalorimetri og palmitatsporkinetikk)
|
Forventet ca 1-5 måneder
|
|
Temperatur
Tidsramme: Forventet ca 1-5 måneder
|
Temperaturmålinger
|
Forventet ca 1-5 måneder
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Sponsor
Samarbeidspartnere
Etterforskere
- Hovedetterforsker: Amanda Bæk, MD, University of Aarhus
- Studieleder: Jens Otto L Jørgensen, Professor, University of Aarhus
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Moller N, Jorgensen JO. Effects of growth hormone on glucose, lipid, and protein metabolism in human subjects. Endocr Rev. 2009 Apr;30(2):152-77. doi: 10.1210/er.2008-0027. Epub 2009 Feb 24.
- Hamson EJ, Keane FM, Tholen S, Schilling O, Gorrell MD. Understanding fibroblast activation protein (FAP): substrates, activities, expression and targeting for cancer therapy. Proteomics Clin Appl. 2014 Jun;8(5-6):454-63. doi: 10.1002/prca.201300095. Epub 2014 Mar 24.
- Munoz A, Abate N, Chandalia M. Adipose tissue collagen and inflammation in nonobese Asian Indian men. J Clin Endocrinol Metab. 2013 Aug;98(8):E1360-3. doi: 10.1210/jc.2012-3841. Epub 2013 Jun 18.
- Lawler HM, Underkofler CM, Kern PA, Erickson C, Bredbeck B, Rasouli N. Adipose Tissue Hypoxia, Inflammation, and Fibrosis in Obese Insulin-Sensitive and Obese Insulin-Resistant Subjects. J Clin Endocrinol Metab. 2016 Apr;101(4):1422-8. doi: 10.1210/jc.2015-4125. Epub 2016 Feb 12.
- Melmed S. Acromegaly pathogenesis and treatment. J Clin Invest. 2009 Nov;119(11):3189-202. doi: 10.1172/JCI39375. Epub 2009 Nov 2.
- Longobardi S, Keay N, Ehrnborg C, Cittadini A, Rosen T, Dall R, Boroujerdi MA, Bassett EE, Healy ML, Pentecost C, Wallace JD, Powrie J, Jorgensen JO, Sacca L. Growth hormone (GH) effects on bone and collagen turnover in healthy adults and its potential as a marker of GH abuse in sports: a double blind, placebo-controlled study. The GH-2000 Study Group. J Clin Endocrinol Metab. 2000 Apr;85(4):1505-12. doi: 10.1210/jcem.85.4.6551.
- Doessing S, Heinemeier KM, Holm L, Mackey AL, Schjerling P, Rennie M, Smith K, Reitelseder S, Kappelgaard AM, Rasmussen MH, Flyvbjerg A, Kjaer M. Growth hormone stimulates the collagen synthesis in human tendon and skeletal muscle without affecting myofibrillar protein synthesis. J Physiol. 2010 Jan 15;588(Pt 2):341-51. doi: 10.1113/jphysiol.2009.179325. Epub 2009 Nov 23.
- Doessing S, Holm L, Heinemeier KM, Feldt-Rasmussen U, Schjerling P, Qvortrup K, Larsen JO, Nielsen RH, Flyvbjerg A, Kjaer M. GH and IGF1 levels are positively associated with musculotendinous collagen expression: experiments in acromegalic and GH deficiency patients. Eur J Endocrinol. 2010 Dec;163(6):853-62. doi: 10.1530/EJE-10-0818. Epub 2010 Sep 21.
- Householder LA, Comisford R, Duran-Ortiz S, Lee K, Troike K, Wilson C, Jara A, Harberson M, List EO, Kopchick JJ, Berryman DE. Increased fibrosis: A novel means by which GH influences white adipose tissue function. Growth Horm IGF Res. 2018 Apr;39:45-53. doi: 10.1016/j.ghir.2017.12.010. Epub 2017 Dec 20.
- Merrick D, Sakers A, Irgebay Z, Okada C, Calvert C, Morley MP, Percec I, Seale P. Identification of a mesenchymal progenitor cell hierarchy in adipose tissue. Science. 2019 Apr 26;364(6438):eaav2501. doi: 10.1126/science.aav2501.
- Park JE, Lenter MC, Zimmermann RN, Garin-Chesa P, Old LJ, Rettig WJ. Fibroblast activation protein, a dual specificity serine protease expressed in reactive human tumor stromal fibroblasts. J Biol Chem. 1999 Dec 17;274(51):36505-12. doi: 10.1074/jbc.274.51.36505.
- Christiansen VJ, Jackson KW, Lee KN, McKee PA. Effect of fibroblast activation protein and alpha2-antiplasmin cleaving enzyme on collagen types I, III, and IV. Arch Biochem Biophys. 2007 Jan 15;457(2):177-86. doi: 10.1016/j.abb.2006.11.006. Epub 2006 Nov 17.
- Levy MT, McCaughan GW, Marinos G, Gorrell MD. Intrahepatic expression of the hepatic stellate cell marker fibroblast activation protein correlates with the degree of fibrosis in hepatitis C virus infection. Liver. 2002 Apr;22(2):93-101. doi: 10.1034/j.1600-0676.2002.01503.x.
- Fan MH, Zhu Q, Li HH, Ra HJ, Majumdar S, Gulick DL, Jerome JA, Madsen DH, Christofidou-Solomidou M, Speicher DW, Bachovchin WW, Feghali-Bostwick C, Pure E. Fibroblast Activation Protein (FAP) Accelerates Collagen Degradation and Clearance from Lungs in Mice. J Biol Chem. 2016 Apr 8;291(15):8070-89. doi: 10.1074/jbc.M115.701433. Epub 2015 Dec 9.
- Arlien-Soborg MC, Grondahl C, Baek A, Dal J, Madsen M, Hogild ML, Pedersen SB, Bjerre M, Jorgensen JOL. Fibroblast Activation Protein is a GH Target: A Prospective Study of Patients with Acromegaly Before and After Treatment. J Clin Endocrinol Metab. 2020 Jan 1;105(1):dgz033. doi: 10.1210/clinem/dgz033.
- Farup J, Madaro L, Puri PL, Mikkelsen UR. Interactions between muscle stem cells, mesenchymal-derived cells and immune cells in muscle homeostasis, regeneration and disease. Cell Death Dis. 2015 Jul 23;6(7):e1830. doi: 10.1038/cddis.2015.198.
- Joe AW, Yi L, Natarajan A, Le Grand F, So L, Wang J, Rudnicki MA, Rossi FM. Muscle injury activates resident fibro/adipogenic progenitors that facilitate myogenesis. Nat Cell Biol. 2010 Feb;12(2):153-63. doi: 10.1038/ncb2015. Epub 2010 Jan 17.
- Uezumi A, Fukada S, Yamamoto N, Takeda S, Tsuchida K. Mesenchymal progenitors distinct from satellite cells contribute to ectopic fat cell formation in skeletal muscle. Nat Cell Biol. 2010 Feb;12(2):143-52. doi: 10.1038/ncb2014. Epub 2010 Jan 17.
Hjelpsomme linker
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Faktiske)
Primær fullføring (Antatt)
Studiet fullført (Antatt)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Faktiske)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Nøkkelord
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
Andre studie-ID-numre
- 1-10-72-283-20
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .