- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk forsøg NCT04962100
Kapacitetsassocieret proteintyrosinphosphorylering som en mulig biomarkør for sædselektion (FOSFOTIR)
Kapacitetsassocieret proteintyrosinphosphorylering som en mulig biomarkør for sædselektion i sæd fra patienter og donorer
Studieoversigt
Status
Betingelser
Intervention / Behandling
Detaljeret beskrivelse
Den menneskelige mand aflejrer millioner af sædceller i kvindens vagina på tidspunktet for ejakulation. Men kun få sædceller er i stand til at nå æggelederne. Faktisk vil kun mellem 100-1000 sædceller nå cumulus-oocytkomplekset, og kun én vil være i stand til at befrugte oocytten.
Sædcellerne fra ejakulatet fra alle pattedyr er ikke i stand til at befrugte oocytten. For at opnå befrugtningskompetencen skal sædcellerne gennemgå en proces kaldet kapacitering. Kapacitation er blevet defineret som et komplekst fænomen, der involverer biokemiske og fysiologiske ændringer i sæden.
Disse ændringer er som:
- Tab af proteiner eller erstatning med andre med lavere molekylvægt
- Transformation af fosfolipider, nedsat kolesterol/fosfolipid-forhold
- Ændringer i kulhydratfraktionen af glykoproteiner
- Lipid- og proteinmobilitet
Ikke alle hændelser involveret i den komplekse kapacitetsproces er kendt.
Følgende faser kan differentieres:
- Cellemembranfluidificering
- Øget intracellulær Ca2+
- Generering af kontrollerede mængder af reaktive oxygenarter
- Øget intracellulær pH og hyperpolarisering af sædmembranpotentiale
- Proteinphosphorylering (serin-, threonin- og tyrosinrester)
Under in vivo-betingelser migrerer bevægelige sædceller aktivt gennem cervikal slim og adskilles fra resten af ejakulatet. In vitro kan sædkapacitation opnås, hvis de udsættes for særlige dyrkningsbetingelser i det nødvendige tidsrum.
Efter kapacitering får sædceller tre egenskaber:
- Hyperaktivering.
- Akrosomisk reaktion.
- Sperm-oocyt interaktion.
Kapacitationsprocessen er nødvendig for, at sæden kan krydse det lag af celler, der omgiver oocytten, og for at gennemgå akrosomreaktionen. Kun en brøkdel af sæden er kendt for at nå kapacitationstilstanden på et tidspunkt.
Kapacitationsprocessen afhænger hovedsageligt af post-translationelle modifikationer af proteiner. En af de vigtigste modifikationer, som disse proteiner gennemgår, er phosphorylering. Under spermkapacitet phosphoryleres serin-, threonin- og tyrosinrester. Imidlertid er phosphorylering af tyrosinrester den bedste indikator for sædkapacitet.
Evalueringen af phosphoryleringen af sædproteinernes tyrosinrester ved flowcytometri gør det muligt at vurdere sædcellens kapacitationsgrad in vitro og bestemme, hvor mange af dem, der har gennemført denne proces tilstrækkeligt. Som tidligere nævnt gennemgår ikke alle sædceller i en prøve kapaciteringsprocessen, og ikke alle af dem præsenterer den samme procentdel af phosphorylerede proteiner i tyrosinrester.
Visse hændelser, såsom kryokonserveringsprocessen og prøvernes inkubationstid indtil deres anvendelse i fertilitetsbehandlinger (IA eller IVF/ICSI), kan påvirke kapacitationsprocessen. Derfor kan måling af niveauerne af tyrosinphosphorylering af sæden ved flowcytometri tillade efterforskerne at kende prøvens kapacitationsniveau. Der er undersøgelser, der rapporterer ændringer i succesrater, når prøver inkuberes forskellige perioder. Inkubationsperioden påvirker hastigheden af akrosomal reaktion af sæd og kan endda påvirke DNA-fragmentering. Desuden synes den temperatur, ved hvilken en sådan inkubation udføres, også at påvirke sædkapaciteten.
Baseret på ovenstående har dette projekt til formål at analysere den mulige sammenhæng mellem niveauerne af tyrosinphosphorylering i sædceller og den funktionelle kvalitet af sædprøven, såvel som cyklussens reproduktive succes. Parallelt hermed vil efterforskerne analysere, om sædkapacitationsprocessen påvirkes af prøvens inkubationstid, når den er blevet kapaciteret, eller om den udelukkende afhænger af sædprøvens kvalitet og er iboende for hannen.
Undersøgelsestype
Tilmelding (Faktiske)
Fase
- Ikke anvendelig
Kontakter og lokationer
Studiesteder
-
-
-
Sevilla, Spanien, 41092
- IVI RMA Sevilla
-
-
Deltagelseskriterier
Berettigelseskriterier
Aldre berettiget til at studere
Tager imod sunde frivillige
Beskrivelse
Inklusionskriterier:
- At have underskrevet det skriftlige informerede samtykke, før der påbegyndes en procedure relateret til undersøgelsen.
- Seksuel afholdenhed (2 til 5 dage).
- At være en mandlig patient, der afleverer en frisk sædprøve til diagnose eller kunstig inseminationsbehandling.
- At være en mandlig donor, der leverer en frisk sædprøve til donation eller til tidligere test for at inkludere ham i donationsprogrammet.
- At være en kvindelig patient, der gennemgår kunstig befrugtning.
Ekskluderingskriterier:
- Brug af sæd af testikel- eller epididymal oprindelse.
- Cryptozoospermi eller oligozoospermi med spermkoncentration <1 mill/ml.
- Ejakuler opnået med mere end 5 dages seksuel afholdenhed.
- Frosne sædprøver til kunstig befrugtning med partners sæd.
- Kvindelige patienter, som viser uterine misdannelser, der kompromitterer levedygtigheden af graviditeten (intramurale eller submucosale fibromer > 3 cm, polypper, adenomyose eller medfødte eller erhvervede misdannelser). Kvindelige patienter med hydrosalpinx.
- Patienter, der har været udsat for to eller flere tidligere aborter (gentagne aborter).
- Patienter med et kropsmasseindeks større end 30 kg/m2.
Studieplan
Hvordan er undersøgelsen tilrettelagt?
Design detaljer
- Primært formål: Grundvidenskab
- Tildeling: N/A
- Interventionel model: Enkelt gruppeopgave
- Maskning: Ingen (Åben etiket)
Våben og indgreb
Deltagergruppe / Arm |
Intervention / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentel: Studiepopulation
Mandlige patienter og donorer, der giver en prøve af frisk ejakuleret sæd, vil være populationen af denne undersøgelse, såvel som kvindelige patienter, der gennemgår kunstig insemination med deres partners sæd eller frossen donorsæd.
|
Andet: Analyse af kapacitationsassocieret tyrosinphosphorylering i menneskelig sæd ved flowcytometri
Efter vurderingen af prøvens makroskopiske og mikroskopiske karakteristika vil vi vaske prøven og behandle den ved hjælp af tre lag tæthedsgradienter. I tilfælde af prøver til diagnostisk analyse vil det resterende volumen blive inkuberet ved 37ºC og 0,1-0,2 ml alikvoter tages fra slutningen af behandlingen ved t0 (lige før prøven indføres i inkubatoren), ved t1 (efter en times inkubation) og ved t3 (efter 3 timers inkubation). Derudover vil der blive taget en prøve efter vask, før prøven behandles med densitetsgradienterne. I tilfælde af prøver behandlet til insemination udtages en ekstra alikvot på det nøjagtige tidspunkt, hvor inseminationen udføres, og den forløbne inkubationstid noteres. Evalueringen af kapaciteten vil blive udført ved at analysere tilstanden af phosphorylering af tyrosiner ved flowcytometri. |
Hvad måler undersøgelsen?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
At bestemme tilstanden af spermkapacitet ved at vurdere fosforyleringen af tyrosinrester
Tidsramme: 1 dag
|
Flowcytometrianalyse vil blive udført for at evaluere niveauerne af phosphorylering af tyrosinrester i sædproteiner fra sædprøver kapaciteret in vitro for at bestemme deres kapacitationsstatuscytometri af sædprøver kapaciteret in vitro for at bestemme deres kapacitationsstatus
|
1 dag
|
Samarbejdspartnere og efterforskere
Sponsor
Efterforskere
- Ledende efterforsker: Cristina González Ravina, PhD, IVI RMA Sevilla
Publikationer og nyttige links
Generelle publikationer
- Said TM, Land JA. Effects of advanced selection methods on sperm quality and ART outcome: a systematic review. Hum Reprod Update. 2011 Nov-Dec;17(6):719-33. doi: 10.1093/humupd/dmr032. Epub 2011 Aug 25.
- Aitken RJ, Nixon B. Sperm capacitation: a distant landscape glimpsed but unexplored. Mol Hum Reprod. 2013 Dec;19(12):785-93. doi: 10.1093/molehr/gat067. Epub 2013 Sep 26.
- Bianchi E, Doe B, Goulding D, Wright GJ. Juno is the egg Izumo receptor and is essential for mammalian fertilization. Nature. 2014 Apr 24;508(7497):483-7. doi: 10.1038/nature13203. Epub 2014 Apr 16.
- Henkel R. Sperm preparation: state-of-the-art--physiological aspects and application of advanced sperm preparation methods. Asian J Androl. 2012 Mar;14(2):260-9. doi: 10.1038/aja.2011.133. Epub 2011 Dec 5.
- Visconti PE, Bailey JL, Moore GD, Pan D, Olds-Clarke P, Kopf GS. Capacitation of mouse spermatozoa. I. Correlation between the capacitation state and protein tyrosine phosphorylation. Development. 1995 Apr;121(4):1129-37. doi: 10.1242/dev.121.4.1129.
- Visconti PE. Understanding the molecular basis of sperm capacitation through kinase design. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009 Jan 20;106(3):667-8. doi: 10.1073/pnas.0811895106. Epub 2009 Jan 14. No abstract available.
- Liu DY, Clarke GN, Baker HW. Tyrosine phosphorylation on capacitated human sperm tail detected by immunofluorescence correlates strongly with sperm-zona pellucida (ZP) binding but not with the ZP-induced acrosome reaction. Hum Reprod. 2006 Apr;21(4):1002-8. doi: 10.1093/humrep/dei435. Epub 2006 Jan 20.
- Kumaresan A, Siqueira AP, Hossain MS, Johannisson A, Eriksson I, Wallgren M, Bergqvist AS. Quantification of kinetic changes in protein tyrosine phosphorylation and cytosolic Ca(2)(+) concentration in boar spermatozoa during cryopreservation. Reprod Fertil Dev. 2012;24(4):531-42. doi: 10.1071/RD11074.
- Escoffier J, Navarrete F, Haddad D, Santi CM, Darszon A, Visconti PE. Flow cytometry analysis reveals that only a subpopulation of mouse sperm undergoes hyperpolarization during capacitation. Biol Reprod. 2015 May;92(5):121. doi: 10.1095/biolreprod.114.127266. Epub 2015 Apr 8.
- Naresh S, Atreja SK. The protein tyrosine phosphorylation during in vitro capacitation and cryopreservation of mammalian spermatozoa. Cryobiology. 2015 Jun;70(3):211-6. doi: 10.1016/j.cryobiol.2015.03.008. Epub 2015 Mar 28.
- Mansour RT, Serour MG, Abbas AM, Kamal A, Tawab NA, Aboulghar MA, Serour GI. The impact of spermatozoa preincubation time and spontaneous acrosome reaction in intracytoplasmic sperm injection: a controlled randomized study. Fertil Steril. 2008 Sep;90(3):584-91. doi: 10.1016/j.fertnstert.2006.11.176. Epub 2008 Mar 4.
- Zhang XD, Chen MY, Gao Y, Han W, Liu DY, Huang GN. The effects of different sperm preparation methods and incubation time on the sperm DNA fragmentation. Hum Fertil (Camb). 2011 Sep;14(3):187-91. doi: 10.3109/14647273.2011.604817. Epub 2011 Aug 23.
- Marin-Briggiler CI, Tezon JG, Miranda PV, Vazquez-Levin MH. Effect of incubating human sperm at room temperature on capacitation-related events. Fertil Steril. 2002 Feb;77(2):252-9. doi: 10.1016/s0015-0282(01)02982-x.
Datoer for undersøgelser
Studer store datoer
Studiestart (Faktiske)
Primær færdiggørelse (Faktiske)
Studieafslutning (Faktiske)
Datoer for studieregistrering
Først indsendt
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først opslået (Faktiske)
Opdateringer af undersøgelsesjournaler
Sidste opdatering sendt (Faktiske)
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidst verificeret
Mere information
Begreber relateret til denne undersøgelse
Andre undersøgelses-id-numre
- 1608-SEV-065-CG
Plan for individuelle deltagerdata (IPD)
Planlægger du at dele individuelle deltagerdata (IPD)?
IPD-planbeskrivelse
IPD-delingstidsramme
IPD-delingsadgangskriterier
IPD-deling Understøttende informationstype
- CSR
Lægemiddel- og udstyrsoplysninger, undersøgelsesdokumenter
Studerer et amerikansk FDA-reguleret lægemiddelprodukt
Studerer et amerikansk FDA-reguleret enhedsprodukt
produkt fremstillet i og eksporteret fra U.S.A.
Disse oplysninger blev hentet direkte fra webstedet clinicaltrials.gov uden ændringer. Hvis du har nogen anmodninger om at ændre, fjerne eller opdatere dine undersøgelsesoplysninger, bedes du kontakte register@clinicaltrials.gov. Så snart en ændring er implementeret på clinicaltrials.gov, vil denne også blive opdateret automatisk på vores hjemmeside .