- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT04962100
Fosforilazione della tirosina proteica associata alla capacità come possibile biomarcatore della selezione dello sperma (FOSFOTIR)
Fosforilazione della tirosina proteica associata alla capacità come possibile biomarcatore della selezione dello sperma nello sperma di pazienti e donatori
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Descrizione dettagliata
Il maschio umano deposita milioni di spermatozoi nella vagina della donna al momento dell'eiaculazione. Tuttavia, solo pochi spermatozoi sono in grado di raggiungere le tube di Falloppio. Infatti solo tra 100-1000 spermatozoi raggiungeranno il complesso cumulo-ovocita e solo uno sarà in grado di fecondare l'ovocita.
Gli spermatozoi dell'eiaculato di tutti i mammiferi non sono in grado di fecondare l'ovocita. Per acquisire la competenza alla fecondazione, lo sperma deve subire un processo chiamato capacitazione. La capacitazione è stata definita come un fenomeno complesso che coinvolge cambiamenti biochimici e fisiologici nello sperma.
Questi cambiamenti sono come:
- Perdita di proteine o sostituzione con altre di peso molecolare inferiore
- Trasformazione dei fosfolipidi, riduzione del rapporto colesterolo/fosfolipidi
- Cambiamenti nella frazione di carboidrati delle glicoproteine
- Mobilità lipidica e proteica
Non sono noti tutti gli eventi coinvolti nel complesso processo di capacitazione.
Si possono distinguere le seguenti fasi:
- Fluidificazione della membrana cellulare
- Aumento del Ca2+ intracellulare
- Generazione di quantità controllate di specie reattive dell'ossigeno
- Aumento del pH intracellulare e iperpolarizzazione del potenziale della membrana spermatica
- Fosforilazione proteica (residui di serina, treonina e tirosina)
In condizioni in vivo, gli spermatozoi mobili migrano attivamente attraverso il muco cervicale e vengono separati dal resto dell'eiaculato. In vitro, la capacità degli spermatozoi può essere raggiunta se sono sottoposti a particolari condizioni di coltura durante il periodo di tempo necessario.
Dopo la capacitazione, lo sperma acquisisce tre caratteristiche:
- Iperattivazione.
- Reazione acrosomica.
- Interazione spermatozoo-ovocita.
Il processo di capacitazione è necessario affinché gli spermatozoi possano attraversare lo strato di cellule che circondano l'ovocita e subire la reazione acrosomiale. È noto che solo una frazione di spermatozoi raggiunge lo stato di capacitazione ad un certo punto.
Il processo di capacitazione dipende principalmente dalle modificazioni post-traduzionali delle proteine. Una delle modificazioni più importanti che queste proteine subiscono è la fosforilazione. Durante la capacitazione degli spermatozoi, i residui di serina, treonina e tirosina vengono fosforilati. Tuttavia, la fosforilazione dei residui di tirosina è il miglior indicatore della capacità degli spermatozoi.
La valutazione della fosforilazione dei residui tirosinici delle proteine spermatiche mediante citometria a flusso permette di valutare il grado di capacitazione degli spermatozoi in vitro e di determinare quanti di essi hanno svolto adeguatamente questo processo. Come accennato in precedenza, non tutti gli spermatozoi di un campione subiscono il processo di capacitazione e non tutti presentano la stessa percentuale di proteine fosforilate nei residui di tirosina.
Alcuni eventi, come il processo di crioconservazione e i tempi di incubazione dei campioni fino al loro utilizzo nei trattamenti di fertilità (IA o FIVET/ICSI), possono influenzare il processo di capacitazione. Pertanto, la misurazione dei livelli di fosforilazione della tirosina dello sperma mediante citometria a flusso può consentire agli investigatori di conoscere il livello di capacitazione del campione. Esistono studi che riportano cambiamenti nelle percentuali di successo quando i campioni vengono incubati per diversi periodi di tempo. Il periodo di incubazione influenza la velocità della reazione acrosomiale dello sperma e può anche influenzare la frammentazione del DNA. Inoltre, anche la temperatura alla quale viene effettuata tale incubazione sembra influenzare la capacità degli spermatozoi.
Sulla base di quanto sopra, questo progetto si propone di analizzare la possibile correlazione tra i livelli di fosforilazione della tirosina nello sperma e la qualità funzionale del campione seminale, nonché il successo riproduttivo del ciclo. Parallelamente, gli investigatori analizzeranno se il processo di capacitazione degli spermatozoi è influenzato dai tempi di incubazione del campione una volta che è stato capacitato o se dipende esclusivamente dalla qualità del campione seminale ed è intrinseco al maschio.
Tipo di studio
Iscrizione (Anticipato)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Cristina González Ravina, PhD
- Numero di telefono: 19540 +34 954 286 274
- Email: cristina.gonzalez@ivirma.com
Backup dei contatti dello studio
- Nome: Esther Santamaría López, MSc
- Numero di telefono: 19555 +34 954 286 274
- Email: esther.santamaria@ivirma.com
Luoghi di studio
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Sevilla, Spagna, 41092
- Reclutamento
- IVI RMA Sevilla
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Contatto:
- Cristina González Ravina, PhD
- Numero di telefono: 19540 +34 954 286 274
- Email: cristina.gonzalez@ivirma.com
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Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Sessi ammissibili allo studio
Descrizione
Criterio di inclusione:
- Avere firmato il consenso informato scritto prima di iniziare qualsiasi procedura relativa allo studio.
- Astinenza sessuale (da 2 a 5 giorni).
- Essere un paziente maschio che consegna un campione seminale fresco per la diagnosi o il trattamento di inseminazione artificiale.
- Essere un donatore maschio che consegna un campione seminale fresco per la donazione o per test precedenti per includerlo nel programma di donazione.
- Essere una paziente sottoposta a inseminazione artificiale.
Criteri di esclusione:
- Uso di spermatozoi di origine testicolare o epididimale.
- Criptozoospermia o oligozoospermia con concentrazione di spermatozoi <1 mill/ml.
- Eiaculati ottenuti con più di 5 giorni di astinenza sessuale.
- Campioni di seme congelato per cicli di inseminazione artificiale con seme del partner.
- Pazienti di sesso femminile che presentano malformazioni uterine che compromettono la vitalità della gravidanza (fibromi intramurali o sottomucosi > 3 cm, polipi, adenomiosi o malformazioni congenite o acquisite). Pazienti di sesso femminile con idrosalpinge.
- Pazienti che hanno subito due o più aborti precedenti (aborti ripetuti).
- Pazienti con un indice di massa corporea superiore a 30 Kg/m2.
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Scienza basilare
- Assegnazione: N / A
- Modello interventistico: Assegnazione di gruppo singolo
- Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
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Sperimentale: Popolazione di studio
I pazienti maschi e i donatori che forniscono un campione di sperma fresco eiaculato saranno la popolazione di questo studio, così come le pazienti sottoposte a inseminazione artificiale con lo sperma del loro partner o lo sperma congelato del donatore.
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Dopo la valutazione delle caratteristiche macroscopiche e microscopiche del campione, laveremo il campione e lo elaboreremo utilizzando tre strati di gradienti di densità. Nel caso di campioni per analisi diagnostiche, il volume rimanente verrà incubato a 37ºC e 0,1-0,2 aliquote in ml verranno prelevate dalla fine della processazione a t0 (appena prima di introdurre il campione nell'incubatore), a t1 (dopo un'ora di incubazione) ea t3 (dopo 3 ore di incubazione). Inoltre, verrà prelevato un campione dopo il lavaggio, prima dell'elaborazione del campione con i gradienti di densità. Nel caso di campioni processati per l'inseminazione, verrà prelevata un'ulteriore aliquota nel momento esatto in cui viene effettuata l'inseminazione e annotato il tempo di incubazione trascorso. La valutazione della capacitazione sarà effettuata analizzando lo stato di fosforilazione delle tirosine mediante citofluorimetria. |
Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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Determinare lo stato di capacitazione degli spermatozoi valutando la fosforilazione dei residui di tirosina
Lasso di tempo: 1 giorno
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Verranno effettuate analisi di citometria a flusso per valutare i livelli di fosforilazione dei residui di tirosina nelle proteine spermatiche di campioni seminali capacitati in vitro al fine di determinarne lo stato di capacitazione citometria di campioni seminali capacitati in vitro al fine di determinarne lo stato di capacitazione
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1 giorno
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Collaboratori e investigatori
Sponsor
Investigatori
- Investigatore principale: Cristina González Ravina, PhD, IVI RMA Sevilla
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
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- Aitken RJ, Nixon B. Sperm capacitation: a distant landscape glimpsed but unexplored. Mol Hum Reprod. 2013 Dec;19(12):785-93. doi: 10.1093/molehr/gat067. Epub 2013 Sep 26.
- Bianchi E, Doe B, Goulding D, Wright GJ. Juno is the egg Izumo receptor and is essential for mammalian fertilization. Nature. 2014 Apr 24;508(7497):483-7. doi: 10.1038/nature13203. Epub 2014 Apr 16.
- Henkel R. Sperm preparation: state-of-the-art--physiological aspects and application of advanced sperm preparation methods. Asian J Androl. 2012 Mar;14(2):260-9. doi: 10.1038/aja.2011.133. Epub 2011 Dec 5.
- Visconti PE, Bailey JL, Moore GD, Pan D, Olds-Clarke P, Kopf GS. Capacitation of mouse spermatozoa. I. Correlation between the capacitation state and protein tyrosine phosphorylation. Development. 1995 Apr;121(4):1129-37. doi: 10.1242/dev.121.4.1129.
- Visconti PE. Understanding the molecular basis of sperm capacitation through kinase design. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009 Jan 20;106(3):667-8. doi: 10.1073/pnas.0811895106. Epub 2009 Jan 14. No abstract available.
- Liu DY, Clarke GN, Baker HW. Tyrosine phosphorylation on capacitated human sperm tail detected by immunofluorescence correlates strongly with sperm-zona pellucida (ZP) binding but not with the ZP-induced acrosome reaction. Hum Reprod. 2006 Apr;21(4):1002-8. doi: 10.1093/humrep/dei435. Epub 2006 Jan 20.
- Kumaresan A, Siqueira AP, Hossain MS, Johannisson A, Eriksson I, Wallgren M, Bergqvist AS. Quantification of kinetic changes in protein tyrosine phosphorylation and cytosolic Ca(2)(+) concentration in boar spermatozoa during cryopreservation. Reprod Fertil Dev. 2012;24(4):531-42. doi: 10.1071/RD11074.
- Escoffier J, Navarrete F, Haddad D, Santi CM, Darszon A, Visconti PE. Flow cytometry analysis reveals that only a subpopulation of mouse sperm undergoes hyperpolarization during capacitation. Biol Reprod. 2015 May;92(5):121. doi: 10.1095/biolreprod.114.127266. Epub 2015 Apr 8.
- Naresh S, Atreja SK. The protein tyrosine phosphorylation during in vitro capacitation and cryopreservation of mammalian spermatozoa. Cryobiology. 2015 Jun;70(3):211-6. doi: 10.1016/j.cryobiol.2015.03.008. Epub 2015 Mar 28.
- Mansour RT, Serour MG, Abbas AM, Kamal A, Tawab NA, Aboulghar MA, Serour GI. The impact of spermatozoa preincubation time and spontaneous acrosome reaction in intracytoplasmic sperm injection: a controlled randomized study. Fertil Steril. 2008 Sep;90(3):584-91. doi: 10.1016/j.fertnstert.2006.11.176. Epub 2008 Mar 4.
- Zhang XD, Chen MY, Gao Y, Han W, Liu DY, Huang GN. The effects of different sperm preparation methods and incubation time on the sperm DNA fragmentation. Hum Fertil (Camb). 2011 Sep;14(3):187-91. doi: 10.3109/14647273.2011.604817. Epub 2011 Aug 23.
- Marin-Briggiler CI, Tezon JG, Miranda PV, Vazquez-Levin MH. Effect of incubating human sperm at room temperature on capacitation-related events. Fertil Steril. 2002 Feb;77(2):252-9. doi: 10.1016/s0015-0282(01)02982-x.
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- 1608-SEV-065-CG
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