- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT07408544
Efficacité Clinique d'une Méthode de Diagnostic Rapide Basée sur la PCR Multiplex dans les Infections Sanguines (CEMP-RDI)
Évaluation de l'efficacité clinique d'une méthode de diagnostic rapide par PCR multiplex dans les infections de la circulation sanguine : une étude prospective randomisée contrôlée
Les infections du flux sanguin (BSI) sont associées à une morbidité et une mortalité élevées, et les retards dans l'initiation d'une antibiothérapie appropriée aggravent significativement les résultats cliniques. Les méthodes microbiologiques conventionnelles basées sur la culture nécessitent 24 à 72 heures pour fournir une identification définitive de l'agent pathogène et les résultats de sensibilité aux antimicrobiens, conduisant souvent à une utilisation prolongée d'une antibiothérapie empirique à large spectre. Les tests diagnostiques rapides basés sur la PCR multiplex ont le potentiel de raccourcir les délais diagnostiques en identifiant les agents pathogènes et les gènes de résistance en environ une heure ; cependant, les données sur leur impact clinique réel restent limitées.
Cette étude prospective, randomisée, contrôlée et monocentrique vise à évaluer l'efficacité clinique et les performances diagnostiques d'une méthode diagnostique rapide basée sur la PCR multiplex appliquée directement aux flacons d'hémoculture positifs chez les patients adultes atteints d'infections du flux sanguin. Un total de 300 patients (≥18 ans) avec des signaux d'hémoculture positifs seront randomisés 1:1 soit dans un groupe d'étude soit dans un groupe témoin. Dans le groupe d'étude, les hémocultures positives seront analysées à la fois par des méthodes microbiologiques standard et par un panel de PCR multiplex, tandis que le groupe témoin subira uniquement des diagnostics microbiologiques standard.
Le critère d'évaluation principal est le délai jusqu'à l'antibiothérapie optimale (OTT), défini comme le temps entre le prélèvement de l'hémoculture et l'initiation de l'agent antimicrobien à spectre le plus étroit, recommandé par les lignes directrices et actif contre l'agent pathogène identifié. Les critères d'évaluation secondaires incluent le délai jusqu'à l'antibiothérapie efficace (ETT), le délai jusqu'à l'identification de l'agent pathogène, les taux d'escalade ou de désescalade antimicrobienne, la durée du séjour hospitalier, la durée totale de l'antibiothérapie et la mortalité toutes causes confondues à 28 jours.
Les données cliniques, démographiques et microbiologiques seront collectées prospectivement, y compris les indices de comorbidité et les scores de gravité. La randomisation sera stratifiée par admission en USI versus service, présence de neutropénie et indice de comorbidité de Charlson pour assurer des groupes équilibrés. La précision diagnostique du panel de PCR multiplex sera évaluée en calculant la sensibilité, la spécificité, les valeurs prédictives et la concordance avec les méthodes de culture standard.
Cette étude cherche à déterminer si les diagnostics rapides par PCR multiplex peuvent améliorer de manière significative la gestion des antimicrobiens et les résultats cliniques chez les patients atteints d'infections du flux sanguin par rapport aux processus diagnostiques conventionnels.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Description détaillée
Les infections du sang (BSI) font partie des maladies infectieuses les plus graves rencontrées chez les patients hospitalisés et sont associées à une morbidité et une mortalité significatives. L'initiation précoce d'une antibiothérapie appropriée est l'un des déterminants les plus importants de la survie chez ces patients. Cependant, l'optimisation rapide du traitement antimicrobien est souvent limitée par les délais inhérents aux méthodes de diagnostic microbiologique conventionnelles basées sur la culture, qui nécessitent généralement 24 à 72 heures pour fournir une identification définitive du pathogène et des résultats de sensibilité aux antimicrobiens. En conséquence, les cliniciens s'appuient souvent sur une antibiothérapie empirique à large spectre prolongée, ce qui contribue à la résistance aux antimicrobiens, aux événements indésirables liés aux médicaments et à l'augmentation des coûts des soins de santé.
Les progrès récents en diagnostic moléculaire ont permis le développement de tests multiplex basés sur la réaction en chaîne par polymérase (PCR) capables de détecter rapidement les pathogènes sanguins courants et certains gènes de résistance aux antimicrobiens directement à partir des flacons d'hémocultures positives. Ces tests peuvent fournir des résultats en environ une heure, offrant la possibilité de raccourcir considérablement les délais de diagnostic et de soutenir une escalade, une désescalade ou une optimisation plus précoce de l'antibiothérapie. Malgré leur disponibilité croissante, il existe encore des preuves de haute qualité limitées concernant l'efficacité clinique réelle de ces outils de diagnostic rapide, en particulier en ce qui concerne leur impact sur la gestion des antimicrobiens et les résultats centrés sur le patient.
Cette étude est conçue comme un essai clinique prospectif, randomisé, contrôlé et monocentrique pour évaluer l'efficacité clinique et la performance diagnostique d'un panel de diagnostic rapide multiplex basé sur la PCR appliqué directement aux échantillons d'hémocultures positives chez les patients adultes atteints d'infections du sang. L'étude sera menée dans un hôpital universitaire tertiaire de 810 lits et prévoit d'inclure un total de 300 patients sur une période de 12 mois.
Les patients adultes (≥18 ans) avec une suspicion clinique d'infection du sang et un signal d'hémoculture positif seront dépistés pour l'éligibilité. Après confirmation de l'éligibilité et consentement éclairé, les patients seront randomisés selon un rapport 1:1 soit dans le groupe d'étude, soit dans le groupe témoin. La randomisation sera effectuée en utilisant une méthode de randomisation par blocs permutés générée par ordinateur et sera stratifiée par admission en unité de soins intensifs (USI) contre service, présence de neutropénie et catégorie d'indice de comorbidité de Charlson pour assurer une distribution équilibrée des facteurs de risque de base entre les bras de l'étude.
Dans le groupe d'étude, les échantillons d'hémocultures positives subiront un test rapide en utilisant un panel de diagnostic in vitro multiplex basé sur la PCR en plus des méthodes de diagnostic microbiologique standard. Le test PCR multiplex est conçu pour détecter des pathogènes bactériens et fongiques prédéfinis ainsi que certains gènes de résistance aux antimicrobiens directement à partir des flacons d'hémocultures positives. L'extraction d'ADN sera réalisée en utilisant un système d'extraction d'acides nucléiques automatisé rapide selon les instructions du fabricant, suivie d'une amplification et d'une détection par PCR en temps réel. Les résultats du test PCR multiplex seront disponibles en environ une heure et seront rapidement rapportés à l'équipe clinique traitante. Ces résultats pourront être utilisés pour guider les décisions de gestion antimicrobienne, y compris l'escalade précoce, la désescalade ou l'optimisation du traitement, en conjonction avec le jugement clinique et les lignes directrices de traitement institutionnelles.
Dans le groupe témoin, les échantillons d'hémocultures positives seront traités en utilisant uniquement les méthodes de diagnostic microbiologique standard, conformément à la pratique clinique habituelle. Les diagnostics standard incluent la coloration de Gram réalisée directement à partir des flacons d'hémocultures positives, la sous-culture sur milieux solides appropriés, l'identification des microorganismes en utilisant des méthodes conventionnelles et automatisées telles que la spectrométrie de masse MALDI-TOF, et les tests de sensibilité aux antimicrobiens en utilisant des techniques standardisées. Les résultats seront rapportés à l'équipe clinique dès qu'ils seront disponibles via le flux de travail de laboratoire habituel.
Définitions des paramètres de temps diagnostiques et thérapeutiques
Pour permettre une évaluation précise des délais de diagnostic et des processus de traitement antimicrobien, les variables temporelles suivantes seront enregistrées de manière prospective pour tous les patients inclus :
- Le temps jusqu'à l'identification du pathogène (TPI) par méthodes standard est défini comme le temps entre la collecte de l'hémoculture et l'identification du microorganisme causal en utilisant les méthodes standard basées sur la culture.
- Le temps jusqu'au test de sensibilité rapide aux antimicrobiens (RAST) par méthodes standard est défini comme le temps entre la collecte de l'hémoculture et l'obtention du premier résultat interprétable de sensibilité aux antimicrobiens à partir du test de diffusion sur disque rapide appliqué au groupe de microorganismes déterminé par la coloration de Gram.
- Le temps jusqu'à l'identification du pathogène et des gènes de résistance (PRGI) par PCR multiplex est défini comme le temps entre la collecte de l'hémoculture et l'identification initiale du pathogène et des gènes de résistance aux antimicrobiens en utilisant le panel PCR multiplex.
- Le temps jusqu'au test de sensibilité aux antimicrobiens (AST) par méthodes standard est défini comme le temps entre la collecte de l'hémoculture et la réalisation du test de sensibilité aux antimicrobiens définitif en utilisant les techniques de culture standard, y compris les systèmes automatisés, la microdilution ou les méthodes de diffusion sur disque.
- Le temps jusqu'au traitement antimicrobien efficace (ETT) est défini comme le temps entre la collecte de l'hémoculture et l'administration de la première dose de tout agent antimicrobien connu pour être actif in vitro contre le microorganisme isolé, quel que soit le spectre antimicrobien.
- Le temps jusqu'au traitement antimicrobien optimal (OTT) est défini comme le temps entre la collecte de l'hémoculture et l'administration de la première dose du traitement antimicrobien de première ligne recommandé par les lignes directrices, au spectre le plus étroit, ciblant le microorganisme isolé. Le traitement optimal représente un sous-ensemble du traitement efficace et reflète l'agent antimicrobien le plus approprié sans inclusion de couverture à large spectre inutile.
Critères de jugement et résultats de l'étude
Le critère de jugement principal de l'étude est le temps jusqu'au traitement antimicrobien optimal (OTT). Les critères de jugement secondaires incluent le temps jusqu'au traitement antimicrobien efficace (ETT), le temps jusqu'à l'identification du pathogène, les événements d'escalade et de désescalade antimicrobienne, la durée totale du traitement antimicrobien, la durée du séjour hospitalier et la mortalité toutes causes confondues à 28 jours.
Les classifications de traitement antimicrobien efficace et optimal prendront en compte tous les agents antimicrobiens administrés dans les 48 heures suivant la collecte de l'hémoculture et la disponibilité des résultats de diagnostic microbiologique et moléculaire. L'arrêt du traitement antimicrobien pour les microorganismes déterminés comme représentant une contamination sera enregistré et inclus dans l'analyse comme temps jusqu'au traitement antimicrobien optimal.
Les données cliniques et démographiques seront collectées de manière prospective pour tous les patients inclus, y compris l'âge, le sexe, la localisation hospitalière, les comorbidités, le statut immunosuppresseur, les scores de gravité de la maladie, la présence de dispositifs intravasculaires, la source de l'infection et les mesures de contrôle de la source. Les variables temporelles, y compris la collecte de l'hémoculture, la détection du signal positif, la disponibilité des résultats de diagnostic et l'administration d'antimicrobiens, seront enregistrées avec des horodatages précis.
La performance diagnostique du panel PCR multiplex sera évaluée par comparaison avec les méthodes standard basées sur la culture, qui serviront de standard de référence. La sensibilité, la spécificité, la valeur prédictive positive, la valeur prédictive négative et les statistiques d'accord seront calculées pour la détection des pathogènes et des gènes de résistance.
Toutes les analyses statistiques seront réalisées en utilisant un logiciel statistique standard. Les analyses finales seront effectuées après l'achèvement de la collecte des données pour tous les participants inclus. Les variables continues seront résumées en utilisant des statistiques descriptives appropriées basées sur la distribution des données, et les variables catégorielles seront exprimées sous forme de fréquences et de pourcentages. Les comparaisons entre les groupes d'étude seront menées en utilisant des tests paramétriques ou non paramétriques appropriés. Des analyses de survie seront réalisées pour évaluer la mortalité à 28 jours, et des modèles de régression multivariés pourront être utilisés pour identifier les prédicteurs indépendants des résultats cliniques.
Cette étude vise à fournir des preuves robustes concernant l'utilité clinique des diagnostics rapides par PCR multiplex dans les infections du sang et à déterminer si leur mise en œuvre peut conduire à une optimisation plus précoce du traitement antimicrobien, une meilleure gestion des antimicrobiens et de meilleurs résultats pour les patients par rapport aux flux de travail diagnostiques conventionnels.
Type d'étude
Inscription (Estimé)
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Meyha Sahin, Assoc. Prof. Dr.
- Numéro de téléphone: +905374505311
- E-mail: meyha.sahin@medipol.edu.tr
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Mehmet Emre Tekinsen, Medical Student
- Numéro de téléphone: +905454753281
- E-mail: mehmet.tekinsen@std.medipol.edu.tr
Lieux d'étude
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Bagcılar
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Istanbul, Bagcılar, Turquie (Türkiye), 34218
- Recrutement
- Istanbul Medipol University Hospital
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Contact:
- Mehmet Emre Tekinsen, Medical Student
- Numéro de téléphone: +905454753281
- E-mail: mehmet.tekinsen@std.medipol.edu.tr
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Contact:
- Meyha Sahin, Assoc. Prof. Dr.
- Numéro de téléphone: 05374505311
- E-mail: meyha.sahin@medipol.edu.tr
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Sous-enquêteur:
- Osman Aliskan, Medical Student
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Chercheur principal:
- Meyha Sahin, Assoc. Prof. Dr.
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Sous-enquêteur:
- Mehmet Emre Tekinsen, Medical Student
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
- Adulte
- Adulte plus âgé
Accepte les volontaires sains
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
La description
Critères d'inclusion :
- Âge de 18 ans ou plus
- Suspicion clinique d'infection du sang
- Signal positif de culture sanguine
- Patients pris en charge dans les services hospitaliers ou les unités de soins intensifs
- Capacité à fournir un consentement éclairé (patient ou représentant légal)
Critères d'exclusion :
- Épisode récurrent de la même infection du sang
- Échantillon de culture sanguine inadéquat ou insuffisant pour l'analyse
- Refus ou incapacité à fournir un consentement éclairé
- Décès dans les premières 24 heures après la collecte de la culture sanguine
- Perte de suivi pendant la période de l'étude
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
Intervention / Traitement |
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Groupe PCR Multiplex
Les participants présentant des signaux de culture sanguine positive subissent un test PCR multiplex rapide en plus des méthodes de diagnostic microbiologiques standard.
Les résultats du test PCR multiplex sont rapportés à l'équipe clinique et peuvent être utilisés pour guider la gestion des antimicrobiens.
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L'intervention consiste en un test de diagnostic in vitro basé sur une réaction en chaîne par polymérase (PCR) multiplex en temps réel, appliqué directement aux flacons d'hémocultures positives.
Suite à la détection d'un signal d'hémoculture positive, un aliquot de l'échantillon est traité pour une extraction rapide d'acides nucléiques et analysé à l'aide d'un panel PCR multiplex conçu pour identifier des pathogènes bactériens et fongiques prédéfinis ainsi que des gènes de résistance aux antimicrobiens sélectionnés.
Les résultats du test sont disponibles en environ une heure et sont communiqués à l'équipe clinique traitante.
Les résultats de la PCR multiplex peuvent être utilisés pour éclairer les décisions de traitement antimicrobien, notamment l'escalade, la désescalade ou l'optimisation du traitement, en conjonction avec les résultats microbiologiques standards.
Les diagnostics microbiologiques standards comprennent le traitement de routine des hémocultures positives selon les pratiques institutionnelles.
Cela consiste en une coloration de Gram, un repiquage sur milieux gélosés appropriés, une identification des micro-organismes par des méthodes conventionnelles et automatisées, et des tests de sensibilité aux antimicrobiens réalisés avec des techniques standardisées.
Les résultats sont communiqués à l'équipe clinique dès qu'ils sont disponibles et orientent la prise en charge antimicrobienne selon les soins habituels.
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Groupe de diagnostics standard
Les participants présentant des signaux de culture sanguine positive ne reçoivent que des tests diagnostiques microbiologiques standard, conformément à la pratique clinique de routine.
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Les diagnostics microbiologiques standards comprennent le traitement de routine des hémocultures positives selon les pratiques institutionnelles.
Cela consiste en une coloration de Gram, un repiquage sur milieux gélosés appropriés, une identification des micro-organismes par des méthodes conventionnelles et automatisées, et des tests de sensibilité aux antimicrobiens réalisés avec des techniques standardisées.
Les résultats sont communiqués à l'équipe clinique dès qu'ils sont disponibles et orientent la prise en charge antimicrobienne selon les soins habituels.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Temps jusqu'à la thérapie antimicrobienne optimale
Délai: Par hospitalisation, jusqu'à 28 jours
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Délai entre le prélèvement de l'hémoculture et l'administration de la première dose du traitement antimicrobien de première ligne à spectre le plus étroit, recommandé par les directives, actif contre le microorganisme isolé.
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Par hospitalisation, jusqu'à 28 jours
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Temps d'identification du pathogène (TPI)
Délai: Par hospitalisation, jusqu'à 28 jours
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Temps entre le prélèvement de l'hémoculture et l'identification du micro-organisme responsable par les méthodes de culture standard.
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Par hospitalisation, jusqu'à 28 jours
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Temps d'identification du pathogène et du gène de résistance (PRGI)
Délai: Par hospitalisation, jusqu'à 28 jours
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temps entre la collecte d'hémoculture et l'identification initiale du pathogène et des gènes de résistance aux antimicrobiens à l'aide du panel PCR multiplex.
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Par hospitalisation, jusqu'à 28 jours
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Temps jusqu'au test de sensibilité antimicrobienne rapide (RAST)
Délai: Par hospitalisation, jusqu'à 28 jours
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Délai entre le prélèvement de l'hémoculture et l'obtention du premier résultat interprétable d'antibiogramme par la méthode rapide de diffusion sur disque.
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Par hospitalisation, jusqu'à 28 jours
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Temps jusqu'au test de sensibilité antimicrobienne définitif (AST)
Délai: Par hospitalisation, jusqu'à 28 jours
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Temps entre le prélèvement d'hémoculture et l'obtention des résultats définitifs de l'antibiogramme par les techniques standard basées sur la culture.
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Par hospitalisation, jusqu'à 28 jours
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Meyha Sahin, Medipol University
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Estimé)
Achèvement de l'étude (Estimé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
- E-66291034-202.3.02-8843
Plan pour les données individuelles des participants (IPD)
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Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
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