- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT04222140
Wczesna interwencja regeneracyjna w pourazowej chorobie zwyrodnieniowej stawów (ERIPTO)
Przegląd badań
Status
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
Dziedzina medycyny regeneracyjnej i ortbiologii wzbudziła zainteresowanie wielu klinicystów i członków społeczności naukowej. W ciągu ostatnich 20 lat ta dziedzina cieszyła się dużym zainteresowaniem i rozwojem. Wyszukiwarka Scopus dotycząca komórek mięśniowo-szkieletowych i macierzystych zaowocowała ponad 3000 dokumentów, z czego ponad jedna trzecia to recenzje. Wyszukiwanie w PubMed w ciągu ostatnich 6 lat zaowocowało 52 publikacjami w ciągu ostatnich 5 lat.
Niestety doszło do rozdrobnienia medycyny regeneracyjnej, gdzie wielu klinicystów stosowało uogólnione protokoły, co skutkowało niewielką znaczącą poprawą kliniczną lub krótkoterminowymi korzyściami, które często zanikają z czasem.
Nadal istnieje wiele badań, które należy przeprowadzić, aby wyjaśnić, jak najlepiej wykorzystać różne składniki medycyny regeneracyjnej, a także patofizjologię choroby zwyrodnieniowej stawów.
Badanie ERIPTO ma na celu zbadanie proponowanego protokołu wykorzystującego różne składniki medycyny regeneracyjnej, w tym osocze bogatopłytkowe (PRP), kwas hialuronowy (HA) i koncentrat aspiratu ludzkiego szpiku kostnego (BMAC).
W urazach i prawidłowym gojeniu się ran kolagen jest często początkowym aktywatorem płytek krwi z rozwojem monowarstw płytek krwi na odsłoniętych powierzchniach kolagenu, co widać w stawach pourazowych. Jest to przeciwieństwo natychmiastowego proteolitycznego rozszczepienia płytek krwi przez trombinę z późniejszym natychmiastowym uwolnieniem zmagazynowanych czynników wzrostu. Zbadano ekspresję genów w stawach po urazach mechanicznych chrząstki stawowej. W modelu ścinania i wbijania badacze stwierdzili wzrost ekspresji kolagenu typu 1 po urazie powierzchni stawowej. Ta ekspresja kolagenu może działać jako kotwica dla PRP wstrzykniętego przezskórnie w stawy pourazowe, aby ułatwić stałe wydzielanie czynników wzrostu.
Wiadomo, że średnia długość życia komórki mezangialnej po wprowadzeniu do stawu wynosi około 30 dni. Tylko 26% przeszczepionych komórek przeżywa w stawie. Te ramy czasowe są uzależnione od zapewnienia odpowiedniego i przyjaznego środowiska dla komórki, do której ma zostać wstrzyknięta. Biorąc pod uwagę kataboliczne mikrośrodowisko choroby zwyrodnieniowej stawów, oczywiste jest, że staw z zapaleniem stawów często zawiera środowisko molekularne, które nie jest odpowiednie lub korzystne dla przeszczepionych komórek mezangium i komórek natywnych, w tym chondrocytów, kolagenu typu 2, macierzy zewnątrzkomórkowej, błony maziowej , a także podchrzęstne komórki progenitorowe. Może również promować osteogenne różnicowanie chrząstki natywnej i prowadzić do progresji do schyłkowej fazy choroby stawów.
Na światło dzienne wychodzą również badania dotyczące niszy zapalnej obecnej w środowisku w momencie przeszczepiania komórek mezangialnych, która może mieć znaczenie w odniesieniu do czynników troficznych wydzielanych przez mezenchymalne komórki macierzyste (MSC), a także ich działania immunomodulacyjnego. Stymulacja receptora toll-like na polaryzacji MSC odgrywa ważną rolę w rozwoju prozapalnego lub przeciwzapalnego MSC. Czynniki prozapalne obecne w środowisku, takie jak interferon (IFN) gamma lub IFN alfa, mogą wpływać na różnicowanie w dół prozapalnej linii MSC i pomagać w promowaniu późniejszej modulacji immunologicznej w celu promowania różnicowania makrofagów M1 (prozapalnych), aktywację limfocytów T CD8, a także zwiększoną ekspresję chemokin prozapalnych, takich jak CCL2, CXCL-9 i CXCL-10. [17] Jeśli obecny jest niski poziom iNOS, może to następnie prowadzić do aktywacji i proliferacji limfocytów T za pośrednictwem chemokin indukowanych cytokinami. Chociaż jest to w dużej mierze prawda, ekspresja IL-6 indukowana przez MSC pomogła promować różnicowanie do linii M2 (przeciwzapalnej).
Ostatnie badania rzuciły światło na nową koncepcję stawów pourazowych i artretycznych. Jest to wpływ środowiska zapalnego i reaktywnych form tlenu na dysfunkcję tkanek natywnych, w szczególności na czynniki wzrostu, takie jak nadrodzina TGF-B wraz z BMP. W 2019 roku badacze badali dysfunkcję natywnego MSC z dysfunkcyjnym TGF-B, prawdopodobnie w wyniku środowiska katabolicznego w chorobie zwyrodnieniowej stawów. Białko indukowane przez TGF-B (TGF-Bi) jest postrzegane jako czynnik wzrostu wyrażany w MSC natywnych w stawach, jak również w szpiku kostnym. Stwierdzono, że odgrywa dwie role w normalnym różnicowaniu chondrogennym.
W jednej roli stymuluje proliferację i różnicowanie, w innej hamuje mineralizację i końcowe różnicowanie chondrocytów. Postuluje się, że TGF-Bi w BM-MSC pomaga regulować kondensację BM-MSC we wczesnej fazie chondrogenezy poprzez działanie pomostowe między komórkami, kolagenami i proteoglikanami. W swoich badaniach badacze doszli do wniosku, że osiągnięto to poprzez modulację cząsteczek adhezyjnych ITGB1, ITGB5 i NCAD. W swoich badaniach badacze byli w stanie wykazać sprzeczną z intuicją regulację w górę TGF-Bi w kości i chrząstce stawowej stawów dotkniętych chorobą zwyrodnieniową stawów, co rodzi pytanie o deregulację natywnych czynników wzrostu.
Badacze postulowali, że może to być wynikiem próby TGF-Bi do odwrócenia zmian zwapniających zachodzących w chondrocytach obszarów silnie artretycznych kolana i zauważyli zwiększone stężenie takich w osteofitach i obszarach rozległych uszkodzeń. Badacze zasugerowali również rozregulowanie rodziny genów TGF-B w OA i zauważyli regulacyjną rolę, jaką TGF-Bi odgrywa w stosunku do kolagenu X, markera przerostu chondrocytów. Pojawiają się również dowody na to, że w stawach istnieje wiele nisz MSC, które pomagają w utrzymaniu integralności chrząstki i pomagają leczyć mikrodefekty w uszkodzonej chrząstce. Badacze zauważyli wśród MSC, że poziom TGF-Bi był obniżony w poduszce tłuszczowej podrzepkowej i BM-MSC ze stawów OA i zauważyli, że skuteczność BM-MSC w naprawie uszkodzeń chrząstki in vivo wymaga dalszych badań.
Zbadano również rolę reaktywnych form tlenu w rozregulowaniu natywnego BMP w warunkach układu mięśniowo-szkieletowego. Badacze dyskutowali o tym, jak niskie poziomy ROS są wymagane do utrzymania niezróżnicowanych MSC i jak ROS (generowane przez NOX-2 i NOX-4) oraz BMP odgrywają kluczową rolę fizjologiczną w chondrogenezie. W dyskusji dotyczącej martwicy kości i choroby zwyrodnieniowej stawów badacze zauważyli, że zmiany martwicze prowadzą do zwiększonej produkcji wolnych rodników tlenowych (O-, H2O2), a następnie do zwiększonej produkcji BMP-2, obserwowanej w zmianach martwiczych i uszkodzonych chrząstkach u pacjentów z chorobą zwyrodnieniową stawów. Podwyższone poziomy H2O2, wytwarzane przez aktywację NOX lub stan zapalny, indukują aktywację NF-kB, która zwiększa ekspresję BMP-2. BMP2 stymuluje syntezę proteoglikanów, indukuje unaczynienie, promuje osteogenezę śródchrzęstną i ma działanie anaboliczne na metabolizm i funkcję chondrocytów i jest uważane za marker ciężkości choroby zwyrodnieniowej stawów. Rozregulowanie tego systemu może prowadzić do stresu oksydacyjnego i dysfunkcji komórek, co może przyczyniać się do różnych patologii.
Ponadto, biorąc pod uwagę zdolność MSC do promowania tworzenia nowej chrząstki, zapalenie z pewnością odgrywa rolę w odniesieniu do jego skuteczności. Czynniki zapalne, takie jak TNF-alfa, IL-1B i IL-6, hamują zdolność MSC do promowania chondrogenezy poprzez wytwarzanie nadmiernej ilości wolnych rodników. Oceniono również rolę IL-1B w przyczynianiu się do powstawania mikrośrodowiska zapalnego. Obejmują one degradację chrząstki, indukcję fosforylacji Ik-B alfa, a następnie translokację jądrową czynnika jądrowego - kappa B (NF-kB), zwiększoną produkcję reaktywnych form tlenu (ROS) (może również aktywować NF-kB), zwiększoną ekspresję ADAMTS- 4 (hamuje ekspresję genów agrekanu i COMP) oraz zmniejsza ekspresję genów enzymów antyoksydacyjnych. Badacze omówili, w jaki sposób podwyższony stres oksydacyjny wytwarzany przez te zapalne cytokiny hamuje syntezę makrocząsteczek macierzy chrząstki (tj. kolagen typu 2 i agrekan), sprzyja degradacji chrząstki stawowej w stawach z zapaleniem stawów oraz hamuje chondrogenezę natywnych i wszczepionych mezenchymalnych komórek macierzystych.
Obecnie wiadomo, że PRP ma różny wpływ na MSC w połączeniu z leczeniem MSC, w tym zwiększa szybkość proliferacji chondrocytów, pomagając promować różnicowanie chondrogenne, hamując RUN X 2, wychwytując NF-KB i wpływając na ogólną zmianę anaboliczną w mikrośrodowisku.
Obecnie wiadomo, że komórki mezangialne odgrywają rolę koordynacyjną poprzez mechanizmy parakrynne w ekspresji czynników anabolicznych, w tym ekspresji kolagenu typu 2, dobrze udokumentowanej roli przeciwzapalnej i immunomodulacyjnej, a także w badaniach wykazujących rekrutację natywnych komórek progenitorowych w porównaniu z bezpośrednim różnicowaniem . To jest sedno tego, co robią przeszczepione MSC, aby pomóc w procesie gojenia. Jak wspomniano wcześniej, wskaźnik przeżywalności przeszczepionych komórek wynosi tylko 26% i istnieje znaczny nacisk na znalezienie metod bioinżynierii, które wspomogą przeżycie przeszczepionych MSC. Wśród metod znajduje się przeszczep MSC z matrycami pochodzącymi z kwasu hialuronowego.
Zarówno CD44, jak i CD168 biorą udział w regulacji sygnalizacji czynnika wzrostu. Wszczepienie MSC w rusztowanie HA może pomóc w zwiększeniu komunikacji MSC w mikrośrodowisku stawu. Badacze omawiają również dobrze udokumentowane plejotropowe działanie HA, w tym działanie przeciwapoptotyczne, przeciwzapalne, immunosupresyjne, przeciwzwłóknieniowe i chondroprotekcyjne. Jak wspomniano powyżej, w przypadku endogennej dysfunkcji MSC spowodowanej obecnością niszy zapalnej w obrębie stawów objętych chorobą zwyrodnieniową występuje odpowiedź immunologiczna, która również przyczynia się do powstania środowiska artretycznego w obrębie stawów. HA wykazał właściwości immunosupresyjne i zaobserwował spadek poziomu aktywowanych limfocytów T. Istnieje również korzyść z wykorzystania dostępnego w handlu HA do wspomagania normalizacji endogennej syntezy HA.
W proponowanym protokole ERIPTO istnieje logiczne podejście do osiągnięcia trwalszych i klinicznie istotnych wyników.
Typ studiów
Zapisy (Oczekiwany)
Faza
- Nie dotyczy
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
Illinois
-
Aurora, Illinois, Stany Zjednoczone, 60504
- The Center for Primary Care and Sports Medicine
-
Oak Brook, Illinois, Stany Zjednoczone, 60523
- Affinity Health Research Institute
-
Oak Brook, Illinois, Stany Zjednoczone, 60523
- Genesis Orthopedics and Sports Medicine
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria przyjęcia:
- wiek 25-60 mężczyzn i kobiet
- dowody na OA zarówno klinicznie, jak i na zwykłych filmach, co najmniej stopień 1 KL
- brak wcześniejszego leczenia dostawowego w ciągu ostatnich 3 miesięcy
- Osoby zdrowe i aktywne ćwiczące 1-2 razy w tygodniu
- BMI 25-30
- Historia uszkodzeń chrząstki łąkotkowej, więzadłowej, torebkowej lub stawowej w przeszłości
- Historia urazu spowodowanego uderzeniem, złamania kłykcia kości udowej, złamania kości piszczelowej lub jakichkolwiek zmian OCD w ciągu ≤ 5 lat
Kryteria wyłączenia:
- Pacjenci otrzymujący terapie regeneracyjne w ciągu ostatnich 12 miesięcy
- Pacjenci otrzymujący zastrzyki z kortykosteroidów w ciągu ostatnich 3 miesięcy
- Pacjenci ze sztucznymi stawami
- Pacjenci z wtórną chorobą zwyrodnieniową stawów spowodowaną mechanizmami nieurazowymi (tj. RZS lub inne artropatie zapalne)
- Pacjenci z licznymi chorobami współistniejącymi, które mogą mieć wpływ na stan zapalny
- Historia zaburzeń snu
- Historia resztkowej nieregularności powierzchni stawowych, nadmierna niestabilność stawu
- Historia urazu wbijania, złamania kłykcia kości udowej, złamania plateau kości piszczelowej lub zmian OCD > 5 lat
- Historia nowotworów złośliwych, dyskrazji krwi lub dysfunkcji płytek krwi
- Aktywne infekcje ogólnoustrojowe lub miejscowe, szczególnie Klebsiella Pneumoniae, Enterococcus i Pseudomonas
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Pojedynczy
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Protokół ERIPTO
Ramię protokołu aktywnie badane
|
skojarzone leczenie biologiczne
|
|
Aktywny komparator: Tylko BMAC
tylko ramię z koncentratem aspiratu szpiku kostnego
|
Tylko leczenie BMAC
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Zmiany radiograficzne
Ramy czasowe: 1 rok
|
Ocena rezonansu magnetycznego przed i po leczeniu mierząca zmiany w pourazowej chorobie zwyrodnieniowej stawu kolanowego, w tym jakość chrząstki stawowej, obecność podchrzęstnego obrzęku szpiku kostnego, obecność osteofitów, jakość łąkotki przyśrodkowej i bocznej, integralność więzadeł i obecność wysiękowego.
|
1 rok
|
|
Zmiany radiograficzne
Ramy czasowe: 1 rok
|
Do analizy zdjęć rentgenowskich kolana przed i po leczeniu wykorzystany zostanie system klasyfikacji Kellgren Lawrence.
Stopniowanie jest od I-IV, przy czym I to choroba minimalna do łagodnej, a IV to schyłkowa choroba stawu.
|
1 rok
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Subiektywne zmiany objawów kolana
Ramy czasowe: 1 rok
|
Trzy oddzielne kwestionariusze zostaną podane po 2, 4, 6 i 12 miesiącach, przy czym wizyta po 12 miesiącach oznaczać będzie koniec badania. Ocena wyniku urazu stawu kolanowego i choroby zwyrodnieniowej stawów: Wyniki mieszczą się w zakresie od 0 do 100, przy czym wynik 0 oznacza najgorsze możliwe objawy kolana, a 100 oznacza brak objawów kolana. |
1 rok
|
|
Subiektywne zmiany objawów kolana
Ramy czasowe: 1 rok
|
Międzynarodowa Komisja Dokumentacji Kolana Subiektywna Forma Kolana: Wyniki wahają się od 0 punktów (najniższy poziom funkcji lub najwyższy poziom objawów) do 100 punktów (najwyższy poziom funkcji i najniższy poziom objawów).
|
1 rok
|
|
Subiektywne zmiany objawów kolana
Ramy czasowe: 1 rok
|
Wizualny wynik analogowy: Jest mierzony od 0 do 10, gdzie 0 oznacza brak bólu, a 10 oznacza silny ból.
|
1 rok
|
Współpracownicy i badacze
Współpracownicy
Śledczy
- Główny śledczy: Mohammed M Qureshi, DO, CAQSM, MRO, Affinity Health
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Buckwalter JA, Brown TD. Joint injury, repair, and remodeling: roles in post-traumatic osteoarthritis. Clin Orthop Relat Res. 2004 Jun;(423):7-16.
- Abate, Michele, Isabel Andia and Vincenzo Salini (July 1st, 2015). The Conservative Management of Osteoarthritis - Hyaluronic Acid, Platelet Rich Plasma or the Combination?, Osteoarthritis - Progress in Basic Research and Treatment, Qian Chen, IntechOpen, DOI: 10.5772/60538
- Anderson DD, Chubinskaya S, Guilak F, Martin JA, Oegema TR, Olson SA, Buckwalter JA. Post-traumatic osteoarthritis: improved understanding and opportunities for early intervention. J Orthop Res. 2011 Jun;29(6):802-9. doi: 10.1002/jor.21359. Epub 2011 Feb 11.
- Andia I, Abate M. Knee osteoarthritis: hyaluronic acid, platelet-rich plasma or both in association? Expert Opin Biol Ther. 2014 May;14(5):635-49. doi: 10.1517/14712598.2014.889677. Epub 2014 Feb 17.
- Angele P, Johnstone B, Kujat R, Zellner J, Nerlich M, Goldberg V, Yoo J. Stem cell based tissue engineering for meniscus repair. J Biomed Mater Res A. 2008 May;85(2):445-55. doi: 10.1002/jbm.a.31480.
- Anitua E, Sanchez M, De la Fuente M, Zalduendo MM, Orive G. Plasma rich in growth factors (PRGF-Endoret) stimulates tendon and synovial fibroblasts migration and improves the biological properties of hyaluronic acid. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 2012 Sep;20(9):1657-65. doi: 10.1007/s00167-011-1697-4. Epub 2011 Oct 11.
- Bain BJ. Bone marrow biopsy morbidity: review of 2003. J Clin Pathol. 2005 Apr;58(4):406-8. doi: 10.1136/jcp.2004.022178.
- Barry FP, Murphy JM. Mesenchymal stem cells: clinical applications and biological characterization. Int J Biochem Cell Biol. 2004 Apr;36(4):568-84. doi: 10.1016/j.biocel.2003.11.001.
- Bielecki TM, Gazdzik TS, Arendt J, Szczepanski T, Krol W, Wielkoszynski T. Antibacterial effect of autologous platelet gel enriched with growth factors and other active substances: an in vitro study. J Bone Joint Surg Br. 2007 Mar;89(3):417-20. doi: 10.1302/0301-620X.89B3.18491.
- Bui, K., Duong, T., Nguyen, N., Nguyen, T., Le, V., Mai, V., Phan, N., Le, D., Phan, N., & Pham, P. (2014). Symptomatic knee osteoarthritis treatment using autologous adipose derived stem cells and platelet rich plasma: a clinical study. Biomedical Research And Therapy, 1(1):2-8.
- Chen WH, Lo WC, Hsu WC, Wei HJ, Liu HY, Lee CH, Tina Chen SY, Shieh YH, Williams DF, Deng WP. Synergistic anabolic actions of hyaluronic acid and platelet-rich plasma on cartilage regeneration in osteoarthritis therapy. Biomaterials. 2014 Dec;35(36):9599-607. doi: 10.1016/j.biomaterials.2014.07.058. Epub 2014 Aug 28.
- Deakon, Timothy. "Hyaluronic Acid in the Knee: History, Characteristics and Efficacy." The Medical Xchange , 2014, pp. 7-12
- Degen RM, Bernard JA, Oliver KS, Dines JS. Commercial Separation Systems Designed for Preparation of Platelet-Rich Plasma Yield Differences in Cellular Composition. HSS J. 2017 Feb;13(1):75-80. doi: 10.1007/s11420-016-9519-3. Epub 2016 Aug 19.
- Doorn J, Moll G, Le Blanc K, van Blitterswijk C, de Boer J. Therapeutic applications of mesenchymal stromal cells: paracrine effects and potential improvements. Tissue Eng Part B Rev. 2012 Apr;18(2):101-15. doi: 10.1089/ten.TEB.2011.0488. Epub 2011 Dec 22.
- Everts PA, Malanga GA, Paul RV, Rothenberg JB, Stephens N, Mautner KR. Assessing clinical implications and perspectives of the pathophysiological effects of erythrocytes and plasma free hemoglobin in autologous biologics for use in musculoskeletal regenerative medicine therapies. A review. Regen Ther. 2019 May 10;11:56-64. doi: 10.1016/j.reth.2019.03.009. eCollection 2019 Dec.
- Filardo G, Kon E, Roffi A, Di Matteo B, Merli ML, Marcacci M. Platelet-rich plasma: why intra-articular? A systematic review of preclinical studies and clinical evidence on PRP for joint degeneration. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 2015 Sep;23(9):2459-74. doi: 10.1007/s00167-013-2743-1. Epub 2013 Nov 26.
- Glenn JD, Whartenby KA. Mesenchymal stem cells: Emerging mechanisms of immunomodulation and therapy. World J Stem Cells. 2014 Nov 26;6(5):526-39. doi: 10.4252/wjsc.v6.i5.526.
- Gobbi A, Karnatzikos G, Scotti C, Mahajan V, Mazzucco L, Grigolo B. One-Step Cartilage Repair with Bone Marrow Aspirate Concentrated Cells and Collagen Matrix in Full-Thickness Knee Cartilage Lesions: Results at 2-Year Follow-up. Cartilage. 2011 Jul;2(3):286-99. doi: 10.1177/1947603510392023.
- Gobbi A, Whyte GP. One-Stage Cartilage Repair Using a Hyaluronic Acid-Based Scaffold With Activated Bone Marrow-Derived Mesenchymal Stem Cells Compared With Microfracture: Five-Year Follow-up. Am J Sports Med. 2016 Nov;44(11):2846-2854. doi: 10.1177/0363546516656179. Epub 2016 Jul 29.
- Goldring MB, Otero M, Plumb DA, Dragomir C, Favero M, El Hachem K, Hashimoto K, Roach HI, Olivotto E, Borzi RM, Marcu KB. Roles of inflammatory and anabolic cytokines in cartilage metabolism: signals and multiple effectors converge upon MMP-13 regulation in osteoarthritis. Eur Cell Mater. 2011 Feb 24;21:202-20. doi: 10.22203/ecm.v021a16.
- Grassel S, Ahmed N. Influence of cellular microenvironment and paracrine signals on chondrogenic differentiation. Front Biosci. 2007 Sep 1;12:4946-56. doi: 10.2741/2440.
- Green JD, Tollemar V, Dougherty M, Yan Z, Yin L, Ye J, Collier Z, Mohammed MK, Haydon RC, Luu HH, Kang R, Lee MJ, Ho SH, He TC, Shi LL, Athiviraham A. Multifaceted signaling regulators of chondrogenesis: Implications in cartilage regeneration and tissue engineering. Genes Dis. 2015 Dec;2(4):307-327. doi: 10.1016/j.gendis.2015.09.003. Epub 2015 Nov 6.
- Greene MA, Loeser RF. Aging-related inflammation in osteoarthritis. Osteoarthritis Cartilage. 2015 Nov;23(11):1966-71. doi: 10.1016/j.joca.2015.01.008.
- Grogan SP, D'Lima DD. Joint aging and chondrocyte cell death. Int J Clin Rheumtol. 2010 Apr;5(2):199-214. doi: 10.2217/ijr.10.3.
- Harrell CR, Markovic BS, Fellabaum C, Arsenijevic A, Volarevic V. Mesenchymal stem cell-based therapy of osteoarthritis: Current knowledge and future perspectives. Biomed Pharmacother. 2019 Jan;109:2318-2326. doi: 10.1016/j.biopha.2018.11.099. Epub 2018 Nov 29.
- Harrison S, Vavken P, Kevy S, Jacobson M, Zurakowski D, Murray MM. Platelet activation by collagen provides sustained release of anabolic cytokines. Am J Sports Med. 2011 Apr;39(4):729-34. doi: 10.1177/0363546511401576. Epub 2011 Mar 11.
- Hofer HR, Tuan RS. Secreted trophic factors of mesenchymal stem cells support neurovascular and musculoskeletal therapies. Stem Cell Res Ther. 2016 Sep 9;7(1):131. doi: 10.1186/s13287-016-0394-0.
- Bahrampour Juybari K, Kamarul T, Najafi M, Jafari D, Sharifi AM. Restoring the IL-1beta/NF-kappaB-induced impaired chondrogenesis by diallyl disulfide in human adipose-derived mesenchymal stem cells via attenuation of reactive oxygen species and elevation of antioxidant enzymes. Cell Tissue Res. 2018 Aug;373(2):407-419. doi: 10.1007/s00441-018-2825-y. Epub 2018 Mar 26.
- Lamo-Espinosa JM, Mora G, Blanco JF, Granero-Molto F, Nunez-Cordoba JM, Sanchez-Echenique C, Bondia JM, Aquerreta JD, Andreu EJ, Ornilla E, Villaron EM, Valenti-Azcarate A, Sanchez-Guijo F, Del Canizo MC, Valenti-Nin JR, Prosper F. Intra-articular injection of two different doses of autologous bone marrow mesenchymal stem cells versus hyaluronic acid in the treatment of knee osteoarthritis: multicenter randomized controlled clinical trial (phase I/II). J Transl Med. 2016 Aug 26;14(1):246. doi: 10.1186/s12967-016-0998-2.
- Lana, Jose F. Lecture Notes in Bioengineering: Platelet-Rich Plasma, Regenerative Medicine: Sports Medicine, Orthopedic, and Recovery of Musculoskeletal Injuries. Vol. 1, Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 2014.
- Lana JF, Weglein A, Sampson SE, Vicente EF, Huber SC, Souza CV, Ambach MA, Vincent H, Urban-Paffaro A, Onodera CM, Annichino-Bizzacchi JM, Santana MH, Belangero WD. Randomized controlled trial comparing hyaluronic acid, platelet-rich plasma and the combination of both in the treatment of mild and moderate osteoarthritis of the knee. J Stem Cells Regen Med. 2016 Nov 29;12(2):69-78. doi: 10.46582/jsrm.1202011. eCollection 2016.
- Liu-Bryan R, Terkeltaub R. Emerging regulators of the inflammatory process in osteoarthritis. Nat Rev Rheumatol. 2015 Jan;11(1):35-44. doi: 10.1038/nrrheum.2014.162. Epub 2014 Sep 30.
- Livshits G, Zhai G, Hart DJ, Kato BS, Wang H, Williams FM, Spector TD. Interleukin-6 is a significant predictor of radiographic knee osteoarthritis: The Chingford Study. Arthritis Rheum. 2009 Jul;60(7):2037-45. doi: 10.1002/art.24598.
- Loebel C, Burdick JA. Engineering Stem and Stromal Cell Therapies for Musculoskeletal Tissue Repair. Cell Stem Cell. 2018 Mar 1;22(3):325-339. doi: 10.1016/j.stem.2018.01.014. Epub 2018 Feb 8.
- Luyten FP, Vanlauwe J. Tissue engineering approaches for osteoarthritis. Bone. 2012 Aug;51(2):289-96. doi: 10.1016/j.bone.2011.10.007. Epub 2011 Oct 17.
- Mabey T, Honsawek S. Cytokines as biochemical markers for knee osteoarthritis. World J Orthop. 2015 Jan 18;6(1):95-105. doi: 10.5312/wjo.v6.i1.95. eCollection 2015 Jan 18.
- McCulloch RS, Ashwell MS, Maltecca C, O'Nan AT, Mente PL. Progression of Gene Expression Changes following a Mechanical Injury to Articular Cartilage as a Model of Early Stage Osteoarthritis. Arthritis. 2014;2014:371426. doi: 10.1155/2014/371426. Epub 2014 Nov 16.
- Mobasheri A, Matta C, Zakany R, Musumeci G. Chondrosenescence: definition, hallmarks and potential role in the pathogenesis of osteoarthritis. Maturitas. 2015 Mar;80(3):237-44. doi: 10.1016/j.maturitas.2014.12.003. Epub 2014 Dec 24.
- Mokbel AN, El Tookhy OS, Shamaa AA, Rashed LA, Sabry D, El Sayed AM. Homing and reparative effect of intra-articular injection of autologus mesenchymal stem cells in osteoarthritic animal model. BMC Musculoskelet Disord. 2011 Nov 15;12:259. doi: 10.1186/1471-2474-12-259.
- Montaseri A, Busch F, Mobasheri A, Buhrmann C, Aldinger C, Rad JS, Shakibaei M. IGF-1 and PDGF-bb suppress IL-1beta-induced cartilage degradation through down-regulation of NF-kappaB signaling: involvement of Src/PI-3K/AKT pathway. PLoS One. 2011;6(12):e28663. doi: 10.1371/journal.pone.0028663. Epub 2011 Dec 14.
- Moussa M, Lajeunesse D, Hilal G, El Atat O, Haykal G, Serhal R, Chalhoub A, Khalil C, Alaaeddine N. Platelet rich plasma (PRP) induces chondroprotection via increasing autophagy, anti-inflammatory markers, and decreasing apoptosis in human osteoarthritic cartilage. Exp Cell Res. 2017 Mar 1;352(1):146-156. doi: 10.1016/j.yexcr.2017.02.012. Epub 2017 Feb 13.
- Murphy JM, Dixon K, Beck S, Fabian D, Feldman A, Barry F. Reduced chondrogenic and adipogenic activity of mesenchymal stem cells from patients with advanced osteoarthritis. Arthritis Rheum. 2002 Mar;46(3):704-13. doi: 10.1002/art.10118.
- Murphy JM, Fink DJ, Hunziker EB, Barry FP. Stem cell therapy in a caprine model of osteoarthritis. Arthritis Rheum. 2003 Dec;48(12):3464-74. doi: 10.1002/art.11365.
- Osterman C, McCarthy MB, Cote MP, Beitzel K, Bradley J, Polkowski G, Mazzocca AD. Platelet-Rich Plasma Increases Anti-inflammatory Markers in a Human Coculture Model for Osteoarthritis. Am J Sports Med. 2015 Jun;43(6):1474-84. doi: 10.1177/0363546515570463. Epub 2015 Feb 25.
- Bum Park Y, Ah Choi W, Kim YK, Chul Lee S, Hae Lee J. Accuracy of blind versus ultrasound-guided suprapatellar bursal injection. J Clin Ultrasound. 2012 Jan;40(1):20-5. doi: 10.1002/jcu.20890. Epub 2011 Oct 28.
- Park YB, Ha CW, Kim JA, Han WJ, Rhim JH, Lee HJ, Kim KJ, Park YG, Chung JY. Single-stage cell-based cartilage repair in a rabbit model: cell tracking and in vivo chondrogenesis of human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells and hyaluronic acid hydrogel composite. Osteoarthritis Cartilage. 2017 Apr;25(4):570-580. doi: 10.1016/j.joca.2016.10.012. Epub 2016 Oct 24.
- Patti AM, Gabriele A, Vulcano A, Ramieri MT, Della Rocca C. Effect of hyaluronic acid on human chondrocyte cell lines from articular cartilage. Tissue Cell. 2001 Jun;33(3):294-300. doi: 10.1054/tice.2001.0178.
- Purita, Joseph. Lecture Notes in Bio Engineering: Platelet-Rich Plasma. Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 2014
- Quartana PJ, Finan PH, Page GG, Smith MT. Effects of insomnia disorder and knee osteoarthritis on resting and pain-evoked inflammatory markers. Brain Behav Immun. 2015 Jul;47:228-37. doi: 10.1016/j.bbi.2014.12.010. Epub 2014 Dec 20.
- Rannou, Francois. Atlas of Osteoarthritis. 2nd ed. London: Springer Healthcare, 2018.
- Research and Development, Arthrex. "Bone Marrow Aspirate Processing Systems: A Comparison Study." Arthrex Research and Development , 2018.
- Ruiz M, Maumus M, Fonteneau G, Pers YM, Ferreira R, Dagneaux L, Delfour C, Houard X, Berenbaum F, Rannou F, Jorgensen C, Noel D. TGFbetai is involved in the chondrogenic differentiation of mesenchymal stem cells and is dysregulated in osteoarthritis. Osteoarthritis Cartilage. 2019 Mar;27(3):493-503. doi: 10.1016/j.joca.2018.11.005. Epub 2018 Nov 28.
- Sanchez-de-Diego C, Valer JA, Pimenta-Lopes C, Rosa JL, Ventura F. Interplay between BMPs and Reactive Oxygen Species in Cell Signaling and Pathology. Biomolecules. 2019 Sep 26;9(10):534. doi: 10.3390/biom9100534.
- Sobacchi C, Palagano E, Villa A, Menale C. Soluble Factors on Stage to Direct Mesenchymal Stem Cells Fate. Front Bioeng Biotechnol. 2017 May 17;5:32. doi: 10.3389/fbioe.2017.00032. eCollection 2017.
- Sommerlath K, Lysholm J, Gillquist J. The long-term course after treatment of acute anterior cruciate ligament ruptures. A 9 to 16 year followup. Am J Sports Med. 1991 Mar-Apr;19(2):156-62. doi: 10.1177/036354659101900211.
- Southworth TM, Naveen NB, Tauro TM, Leong NL, Cole BJ. The Use of Platelet-Rich Plasma in Symptomatic Knee Osteoarthritis. J Knee Surg. 2019 Jan;32(1):37-45. doi: 10.1055/s-0038-1675170. Epub 2018 Nov 13.
- Spees JL, Lee RH, Gregory CA. Mechanisms of mesenchymal stem/stromal cell function. Stem Cell Res Ther. 2016 Aug 31;7(1):125. doi: 10.1186/s13287-016-0363-7.
- Srinivasan PP, McCoy SY, Jha AK, Yang W, Jia X, Farach-Carson MC, Kirn-Safran CB. Injectable perlecan domain 1-hyaluronan microgels potentiate the cartilage repair effect of BMP2 in a murine model of early osteoarthritis. Biomed Mater. 2012 Apr;7(2):024109. doi: 10.1088/1748-6041/7/2/024109. Epub 2012 Mar 29.
- Sundman EA, Cole BJ, Karas V, Della Valle C, Tetreault MW, Mohammed HO, Fortier LA. The anti-inflammatory and matrix restorative mechanisms of platelet-rich plasma in osteoarthritis. Am J Sports Med. 2014 Jan;42(1):35-41. doi: 10.1177/0363546513507766. Epub 2013 Nov 5.
- Tohidnezhad M, Wruck CJ, Slowik A, Kweider N, Beckmann R, Bayer A, Houben A, Brandenburg LO, Varoga D, Sonmez TT, Stoffel M, Jahr H, Lippross S, Pufe T. Role of platelet-released growth factors in detoxification of reactive oxygen species in osteoblasts. Bone. 2014 Aug;65:9-17. doi: 10.1016/j.bone.2014.04.029. Epub 2014 May 4.
- Van Pham P, Bui KH, Ngo DQ, Vu NB, Truong NH, Phan NL, Le DM, Duong TD, Nguyen TD, Le VT, Phan NK. Activated platelet-rich plasma improves adipose-derived stem cell transplantation efficiency in injured articular cartilage. Stem Cell Res Ther. 2013 Aug 1;4(4):91. doi: 10.1186/scrt277.
- Vangsness CT Jr, Farr J 2nd, Boyd J, Dellaero DT, Mills CR, LeRoux-Williams M. Adult human mesenchymal stem cells delivered via intra-articular injection to the knee following partial medial meniscectomy: a randomized, double-blind, controlled study. J Bone Joint Surg Am. 2014 Jan 15;96(2):90-8. doi: 10.2106/JBJS.M.00058.
- Wang Y, Shimmin A, Ghosh P, Marks P, Linklater J, Connell D, Hall S, Skerrett D, Itescu S, Cicuttini FM. Safety, tolerability, clinical, and joint structural outcomes of a single intra-articular injection of allogeneic mesenchymal precursor cells in patients following anterior cruciate ligament reconstruction: a controlled double-blind randomised trial. Arthritis Res Ther. 2017 Aug 2;19(1):180. doi: 10.1186/s13075-017-1391-0.
- Wasterlain AS, Braun HJ, Harris AH, Kim HJ, Dragoo JL. The systemic effects of platelet-rich plasma injection. Am J Sports Med. 2013 Jan;41(1):186-93. doi: 10.1177/0363546512466383. Epub 2012 Dec 4.
- Webber TA, Webber AE, Matzkin E. Rate of adverse reactions to more than 1 series of viscosupplementation. Orthopedics. 2012 Apr;35(4):e514-9. doi: 10.3928/01477447-20120327-26.
- Wu CC, Sheu SY, Hsu LH, Yang KC, Tseng CC, Kuo TF. Intra-articular Injection of platelet-rich fibrin releasates in combination with bone marrow-derived mesenchymal stem cells in the treatment of articular cartilage defects: An in vivo study in rabbits. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2017 Aug;105(6):1536-1543. doi: 10.1002/jbm.b.33688. Epub 2016 Apr 29.
- Wyles CC, Houdek MT, Behfar A, Sierra RJ. Mesenchymal stem cell therapy for osteoarthritis: current perspectives. Stem Cells Cloning. 2015 Aug 28;8:117-24. doi: 10.2147/SCCAA.S68073. eCollection 2015.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Oczekiwany)
Zakończenie podstawowe (Oczekiwany)
Ukończenie studiów (Oczekiwany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- ERIPTO
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
produkt wyprodukowany i wyeksportowany z USA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .