硬质小麦面包的血糖和胰岛素反应
硬质小麦面包中麸质添加和细胞壁完整性对体内血糖和胰岛素反应的综合影响。
在过去的几十年里,高能量饮食(主要由面包等易消化的淀粉类食物)的消费,加上全球肥胖率的增加和久坐的生活方式,已成为非传染性疾病发展的主要因素例如心血管疾病(CVD)和2型糖尿病。因此,需要降低烘焙产品的淀粉消化率,进而降低其血糖指数,特别是小麦面包。 已采用多种策略来降低面包的血糖指数和胰岛素反应;然而,这些技术中的大多数都会对面包的质地、体积、味道和颜色产生不利影响,限制了消费者的接受度。 保留天然微观结构(细胞壁完整性)并采用加工技术创建宏观结构(蛋白质网络和食物基质)可用于影响产品结构,从而影响产品的咀嚼方式(口腔加工),以及这些因素如何影响产品的结构。影响碳水化合物的消化和血糖反应。 本研究的目的是检查面包的不同质地特征对口腔加工的影响以及三种面包的血糖和胰岛素反应。 在本研究中,总共将招募16名健康志愿者,如果符合条件(需要满足纳入和排除标准),他们将参加对三种面包的口腔加工测试,这是一项测量血糖指数(ISO )和胰岛素反应。
面包样品的成分如下:
面包 A 由 95% 硬粒小麦细粗面粉(< 400 微米)+ 5% 面筋+ 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59% 水制成 面包 B 由 80% 硬粒小麦细粗面粉(< 400 微米)+ 20% 制成面筋+ 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59 % 水 面包 C 由 80% 硬质小麦粗粗面粉(> 500 微米)+ 20% 面筋+ 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59% 水制成。
研究概览
地位
详细说明
全球范围内,患有2型糖尿病的人数约为4.22亿,并且这一数字还在不断上升。 全球一致认为,到 2025 年,必须采取严厉行动遏制这种疾病的传播,这也是因为糖尿病是心血管疾病发展的主要原因。 过去几十年来,糖尿病的蔓延是全球肥胖率上升、久坐生活方式和高能量饮食(主要是高度消化的淀粉类食物的过度消费)的结果。 在易消化的淀粉类食物中,面包是西方国家日常食用的主食,其特点是升糖指数高。 富含碳水化合物的食物根据其血糖指数(GI)可分为三类(低:GI < 55,中:55 < GI < 69,或高:GI > 70)。 此分类基于含碳水化合物食物的消耗如何影响与参考食物(例如葡萄糖溶液或白面包)相关的血糖水平,参考食物具有相同数量的可用碳水化合物(50 克)。 高GI食物会导致餐后血糖浓度显着升高,从而导致高胰岛素反应,这可能导致高胰岛素血症和胰岛素抵抗。 因此,如何降低淀粉类食物(例如面包)的血糖反应及其血糖指数在过去几十年中得到了广泛的研究。 在植物性食品中,淀粉颗粒自然封装在细胞中。 对于谷物来说,完整的细胞可能会限制面粉(小麦、高粱和大麦)和简单食品(例如粥)中淀粉的体外和体内吸收。 然而,当使用含有完整细胞的粗面粉来生产面包等复杂食品时,这种保护作用就会消失。 作者假设,在长时间的混合和发酵过程中,由于细胞壁成分(如β-葡聚糖和阿拉伯木聚糖)的溶解,细胞壁的孔隙率增加,从而增加了细胞内酶的扩散性。 此外,在面包中,添加粗面粉还可以限制面包屑的粘合性,增加崩解速率,进而增加酶与其底物之间的接触面积。 由于这些原因,粗面粉不能有效降低烘焙产品的体外淀粉消化率。 蛋白质是谷物中存在的第二种大量营养素,也具有降低淀粉消化率的作用。 麦醇溶蛋白和麦谷蛋白是小麦籽粒的主要蛋白质,它们形成了包围淀粉颗粒的不连续网络,称为面筋。 事实证明,致密且紧凑的面筋网络可以降低淀粉的可及性,充当淀粉和酶之间的屏障。更具体地说,在意大利面中,与面包相比,其葡萄糖释放量较低,反过来,其血糖指数较低,必须进行研究强筋网络赋予的致密紧凑的结构。 事实上,面食的致密结构限制了口腔加工和胃消化过程中的崩解。 与具有相同配方但具有更多孔且更容易崩解结构的食物相比,这导致餐后血糖和胰岛素反应更低。 因此,面包中强大的面筋网络可以改变面包屑结构,增加面包屑的粘着性和弹性。
越来越多的证据表明食物结构在营养物质的消化和吸收中起着重要作用。 面包质地影响面包在胃期的崩解,但主要影响口腔加工和咀嚼率。 口腔加工行为导致对食物的血糖反应存在个体差异,特别是在植物组织中,咀嚼行为可以调节细胞基质中淀粉的释放。 添加麸质不仅可以从物理上阻碍淀粉和酶之间的接触,减少胃消化过程中的物理分解,而且还证明这种蛋白质复合物可以结合胰腺α-淀粉酶,从而抑制淀粉的消化率。 然而,麸质对结合唾液α-淀粉酶的影响尚未得到研究。 将研究面包样品的口腔加工,以评估麸质对口腔崩解、唾液 α-淀粉酶抑制以及由此产生的葡萄糖释放的影响。 本研究的目的是检查面包的不同质地特征对口腔加工的影响以及三种面包的血糖和胰岛素反应。 总共将招募16名健康志愿者,如果符合资格(他们需要满足纳入和排除标准),他们将参加对三种面包的口腔加工测试,这是一项测量血糖指数(ISO)和胰岛素反应的测试。
面包样品的成分如下:
面包 A 由 95% 硬粒小麦细粗面粉(< 400 微米)+ 5% 面筋+ 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59% 水制成 面包 B 由 80% 硬粒小麦细粗面粉(< 400 微米)+ 20% 制成面筋+ 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59 % 水 面包 C 由 80% 硬质小麦粗粗面粉(> 500 微米)+ 20% 面筋+ 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59% 水制成。
为了测定血糖指数和胰岛素反应,参与者到达科室后 5 分钟内将立即采集一份空腹毛细血管血样。 这些血液样本结果将用作基线血糖浓度(以毫摩尔每升 (mmol/L) 表示)和胰岛素浓度(以毫升每升 (mU/L) 表示)。 面包样品和葡萄糖溶液将含有 50 克可用碳水化合物。 不同的面包样品和葡萄糖溶液将按照随机时间表提供给志愿者,他们将在 12 至 15 分钟内吃完这一份。 测试食品将与250毫升室温天然水一起食用;每个受试者将被要求在所有测试中喝相同量的水。 血液样本将在参与者开始消耗样本的确切时间后的六个时间点(15、30、45、60、90 和 120 分钟)采集。 在测试过程中,受试者将休息并保持坐姿。 使用采样刺血针(21G x 1.8 mm,ACCU-CHEK Safe-T-Pro Plus,罗氏,瑞士)通过手指刺破分析来采集毛细血管血样。 血液将被收集在两个试管中。 在每个时间点,将在一个 Microvette® CB 300 氟化物/肝素(SARSTEDT AG & Co.,Nümbrech,德国)中收集 3-4 滴血液,用于毛细血管血糖分析,并收集 6-8 滴血液在一台 Microvette® B 300 K2E(Sarstedt Ltd.,德国)中用于分析血浆胰岛素。 收集的血糖试管将立即进行分析,而来自第二组试管的血浆将在 4°C 下以 4500 rpm 离心 10 分钟后获得(Labnet Hermle 台式离心机 Z 200 M/H,Labnet International, Inc.)。 ,纽约,美国)并储存在-80°C用于胰岛素测定。 使用YSI 2500生化分析仪(美国Yellow Springs Instrument Company)进行血糖分析。 血浆样品中的胰岛素浓度将使用特定的免疫测定试剂盒(Mercodia 胰岛素 ELISA 10-1113-10,Mercodia AB-乌普萨拉,瑞典)测定。 测试膳食消耗后的饥饿感、饱腹感和胃肠道症状评级将通过向志愿者发放的自我报告问卷进行评估,以检查特定时间点(进食前,[T0],以及之后、30、60 和 120 分钟)使用 10 厘米视觉模拟标度。 将在受刺激的唾液中测试α-淀粉酶活性。 咀嚼一块封口膜(5×10cm,Parafilm M PM996)1分钟后收集刺激的唾液。 淀粉酶活性 (U/mL) 将使用 Ceralpha 方法 (Megazyme, Bray, Ireland) 通过 α-淀粉酶唾液比色测定来确定。 将通过视频记录评估每个面包样品的口腔加工参数。 在本次会议中,参与者将坐在椅子上,他们前面有一张桌子,桌子上有一个摄像头,距离他们的脸大约 50 厘米。 将指示参与者将整个样品放入口中(例如,咬一口)并自然咀嚼,直到丸剂准备好吞咽。 口腔加工行为将通过以下参数来描述,这些参数将手动从视频记录中提取: 咀嚼和吞咽的次数;总进食时间(以秒为单位);咀嚼率(每分钟咀嚼次数);进食率(每分钟消耗的食物量,以克为单位)。 将通过图像分析对每个面包样品的食物丸进行评估,以确定颗粒尺寸分布和丸中存在的颗粒数量,以及水分含量、唾液含量(每 100 克面包中的唾液克数)和唾液掺入率(每分钟唾液克数)。 为了确定还原糖含量,参与者将被要求咀嚼并吐出两口面包。 在第一次推注中,将添加 HCl 以立即停止 α-淀粉酶活性,然后对还原糖含量进行定量。 第二次反应15分钟后停止,然后测量还原糖。 还原糖将通过3,5-二硝基水杨酸(DNS)方法进行分析。
研究类型
注册 (实际的)
阶段
- 不适用
联系人和位置
学习地点
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-
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Udine、意大利、33100
- Department of Agricultural, Food, Environmental and Animal Sciences, University of Udine,
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参与标准
资格标准
适合学习的年龄
- 成人
接受健康志愿者
描述
纳入标准:
- 年龄在18-50岁之间;
- 身体健康;
- 具有正常的嗅觉和味觉功能;
- 体重指数正常(BMI 18.5-24.9 kg/m2)(基于自我报告的体重和身高)。
排除标准:
- 口腔内或口腔周围有牙套或穿孔(可拆卸穿孔除外);
- 使用已知影响葡萄糖耐量和影响营养物质消化和吸收的药物(不包括口服避孕药)——稳定剂量的口服避孕药、乙酰水杨酸、甲状腺素、维生素和矿物质补充剂或治疗高血压的药物是可以接受的。
- 有已知的糖尿病病史或使用降血糖药物或胰岛素治疗糖尿病及相关病症;
- 过去 3 个月内发生过需要住院治疗的重大医疗或手术事件;
- 有任何食物过敏或麸质不耐受;
- 怀孕或哺乳(自我报告);
- 使用可能影响味觉、嗅觉、咀嚼和流涎功能的药物;
学习计划
研究是如何设计的?
设计细节
- 主要用途:基础科学
- 分配:随机化
- 介入模型:交叉作业
- 屏蔽:单身的
武器和干预
参与者组/臂 |
干预/治疗 |
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有源比较器:葡萄糖溶液1
将 55 g 一水葡萄糖粉末溶解在 250 mL 水中制备葡萄糖溶液
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将 55 g 一水葡萄糖粉末溶解在 250 mL 水中制备葡萄糖溶液
其他名称:
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有源比较器:葡萄糖溶液2
将 55 g 一水葡萄糖粉末溶解在 250 mL 水中制备葡萄糖溶液
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将 55 g 一水葡萄糖粉末溶解在 250 mL 水中制备葡萄糖溶液
其他名称:
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实验性的:面包A
95% 硬质小麦细粗面粉(< 400 微米)+ 5% 面筋+ 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59% 水(相当于 50 克可用碳水化合物的部分)+250 毫升水制成的面包
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用 95% 硬粒小麦细粗面粉(< 400 微米)+ 5% 面筋 + 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59% 水制成的面包(部分相当于 50 克可用碳水化合物)+ 250 毫升水
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实验性的:面包B
用 80% 硬质小麦细粗面粉(< 400 微米)+ 20% 面筋+ 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59% 水(相当于 50 克可用碳水化合物的部分)+250 毫升水制成的面包
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用 80% 硬质小麦细粗面粉(< 400 微米)+ 20% 面筋 + 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59% 水(相当于 50 克可用碳水化合物的部分)+250 毫升水制成的面包
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实验性的:面包C
用 80% 硬质小麦粗粒小麦粉(> 500 微米)+ 20% 面筋+ 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59% 水制成的面包(相当于 50 克可用碳水化合物的部分)+250 毫升水
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用 80% 硬质小麦粗粒小麦粉(> 500 微米)+ 20% 面筋+ 1.2% 酵母 + 1% 盐 + 59% 水(相当于 50 克可用碳水化合物的部分)+250 mL 水制成的面包
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研究衡量的是什么?
主要结果指标
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
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餐后血糖反应
大体时间:时间 2小时(0-空腹-、15、30、45、60、90和120分钟采样)
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餐后血糖反应(曲线下增量面积)
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时间 2小时(0-空腹-、15、30、45、60、90和120分钟采样)
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次要结果测量
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
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葡萄糖的最大峰值
大体时间:时间 2小时(0-空腹-、15、30、45、60、90和120分钟采样)
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餐后血糖最大值
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时间 2小时(0-空腹-、15、30、45、60、90和120分钟采样)
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胰岛素最大峰值
大体时间:时间 2小时(0-空腹-、15、30、45、60、90和120分钟采样)
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餐后胰岛素最大值
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时间 2小时(0-空腹-、15、30、45、60、90和120分钟采样)
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餐后胰岛素反应
大体时间:时间 2小时(0-空腹-、15、30、45、60、90和120分钟采样)
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餐后胰岛素反应(曲线下面积增量)
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时间 2小时(0-空腹-、15、30、45、60、90和120分钟采样)
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咀嚼次数
大体时间:消耗样品 2.30 小时后进行 5 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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从面包食用过程中录制的视频中提取的咀嚼次数。
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消耗样品 2.30 小时后进行 5 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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燕子数量
大体时间:消耗样品 2.30 小时后进行 5 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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从食用面包时录制的视频中提取的吞咽次数
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消耗样品 2.30 小时后进行 5 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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进食时长
大体时间:消耗样品 2.30 小时后进行 5 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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从食用面包期间录制的视频中提取的进食持续时间
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消耗样品 2.30 小时后进行 5 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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食物丸中的唾液含量
大体时间:消耗样品 2.30 小时后进行 5 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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咀嚼过程中融入食物丸中的唾液量
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消耗样品 2.30 小时后进行 5 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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丸剂的粒径分布
大体时间:消耗样品 2.30 小时后进行 5 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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通过图像分析分析在容器中咀嚼和吐出后丸剂的粒度分布
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消耗样品 2.30 小时后进行 5 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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咀嚼时间 0 后还原大丸中产生的糖
大体时间:消耗样品 2.30 小时后进行 10 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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丸剂吐入特定容器后,立即由 α-淀粉酶产生的还原糖量
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消耗样品 2.30 小时后进行 10 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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咀嚼时间 15 后还原丸剂中产生的糖
大体时间:消耗样品 2.30 小时后进行 25 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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将丸剂吐入特定容器并孵育 15 分钟后,丸剂中 α-淀粉酶产生的还原糖量
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消耗样品 2.30 小时后进行 25 分钟以确定血糖和胰岛素曲线
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使用 10 厘米视觉模拟量表测量饱腹感
大体时间:时间 2小时(餐前、餐后30、60、120分钟)
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使用视觉模拟量表的受试者评定的饱腹感差异由一条 10 厘米线组成,其两个端点分别代表 0(“不满意”)和 10(“完全满意”)。
更高的分数意味着更好的结果。
曲线下的增量面积将用于检查随时间变化的差异。
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时间 2小时(餐前、餐后30、60、120分钟)
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使用问卷调查胃肠道症状,并使用 10 厘米视觉模拟量表对症状进行评级
大体时间:时间 2小时(餐前、餐后30、60、120分钟)
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使用视觉模拟量表评估受试者胃肠道症状的差异,由一条 10 厘米线组成,两个端点代表 0(“无疼痛”)和 10(“尽可能严重的疼痛”)。
分数越高意味着结果越差。
曲线下的增量面积将用于检查随时间变化的差异。
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时间 2小时(餐前、餐后30、60、120分钟)
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合作者和调查者
调查人员
- 首席研究员:Nicoletta Pellegrini, PhD、Department of Food Environmental and Animal Sciences
出版物和有用的链接
一般刊物
- Chatterjee S, Khunti K, Davies MJ. Type 2 diabetes. Lancet. 2017 Jun 3;389(10085):2239-2251. doi: 10.1016/S0140-6736(17)30058-2. Epub 2017 Feb 10. Erratum In: Lancet. 2017 Jun 3;389(10085):2192.
- Stamataki NS, Yanni AE, Karathanos VT. Bread making technology influences postprandial glucose response: a review of the clinical evidence. Br J Nutr. 2017 Apr;117(7):1001-1012. doi: 10.1017/S0007114517000770. Epub 2017 May 2.
- Tagliasco M, Tecuanhuey M, Reynard R, Zuliani R, Pellegrini N, Capuano E. Monitoring the effect of cell wall integrity in modulating the starch digestibility of durum wheat during different steps of bread making. Food Chem. 2022 Dec 1;396:133678. doi: 10.1016/j.foodchem.2022.133678. Epub 2022 Jul 15.
- Vanhatalo S, Dall'Asta M, Cossu M, Chiavaroli L, Francinelli V, Pede GD, Dodi R, Narvainen J, Antonini M, Goldoni M, Holopainen-Mantila U, Cas AD, Bonadonna R, Brighenti F, Poutanen K, Scazzina F. Pasta Structure Affects Mastication, Bolus Properties, and Postprandial Glucose and Insulin Metabolism in Healthy Adults. J Nutr. 2022 Apr;152(4):994-1005. doi: 10.1093/jn/nxab361. Epub 2023 Feb 18.
- Dall'Asta M, Dodi R, Pede GD, Marchini M, Spaggiari M, Gallo A, Righetti L, Brighenti F, Galaverna G, Dall'Asta C, Ranieri R, Folloni S, Scazzina F. Postprandial blood glucose and insulin responses to breads formulated with different wheat evolutionary populations (Triticum aestivum L.): A randomized controlled trial on healthy subjects. Nutrition. 2022 Feb;94:111533. doi: 10.1016/j.nut.2021.111533. Epub 2021 Nov 3.
- Dhital S, Bhattarai RR, Gorham J, Gidley MJ. Intactness of cell wall structure controls the in vitro digestion of starch in legumes. Food Funct. 2016 Mar;7(3):1367-79. doi: 10.1039/c5fo01104c.
- Lau E, Soong YY, Zhou W, Henry J. Can bread processing conditions alter glycaemic response? Food Chem. 2015 Apr 15;173:250-6. doi: 10.1016/j.foodchem.2014.10.040. Epub 2014 Oct 19.
- Zou W, Sissons M, Warren FJ, Gidley MJ, Gilbert RG. Compact structure and proteins of pasta retard in vitro digestive evolution of branched starch molecular structure. Carbohydr Polym. 2016 Nov 5;152:441-449. doi: 10.1016/j.carbpol.2016.06.016. Epub 2016 Jun 3.
- Korompokis K , De Brier N , Delcour JA . Differences in endosperm cell wall integrity in wheat (Triticum aestivum L.) milling fractions impact on the way starch responds to gelatinization and pasting treatments and its subsequent enzymatic in vitro digestibility. Food Funct. 2019 Aug 1;10(8):4674-4684. doi: 10.1039/c9fo00947g. Epub 2019 Jul 11.
- Chen X, He X, Zhang B, Sun L, Liang Z, Huang Q. Wheat gluten protein inhibits alpha-amylase activity more strongly than a soy protein isolate based on kinetic analysis. Int J Biol Macromol. 2019 May 15;129:433-441. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2019.01.215. Epub 2019 Feb 1.
- Edwards CH, Grundy MM, Grassby T, Vasilopoulou D, Frost GS, Butterworth PJ, Berry SE, Sanderson J, Ellis PR. Manipulation of starch bioaccessibility in wheat endosperm to regulate starch digestion, postprandial glycemia, insulinemia, and gut hormone responses: a randomized controlled trial in healthy ileostomy participants. Am J Clin Nutr. 2015 Oct;102(4):791-800. doi: 10.3945/ajcn.114.106203. Epub 2015 Sep 2.
- Chen Y, Capuano E, Stieger M. Chew on it: influence of oral processing behaviour on in vitro protein digestion of chicken and soya-based vegetarian chicken. Br J Nutr. 2021 Nov 14;126(9):1408-1419. doi: 10.1017/S0007114520005176. Epub 2020 Dec 28.
- Gao J, Lin S, Jin X, Wang Y, Ying J, Dong Z, Zhou W. In vitro digestion of bread: How is it influenced by the bolus characteristics? J Texture Stud. 2019 Jun;50(3):257-268. doi: 10.1111/jtxs.12391. Epub 2019 Feb 14.
- Li HT, Li Z, Fox GP, Gidley MJ, Dhital S. Protein-starch matrix plays a key role in enzymic digestion of high-amylose wheat noodle. Food Chem. 2021 Jan 30;336:127719. doi: 10.1016/j.foodchem.2020.127719. Epub 2020 Aug 1.
- Mosca AC, Moretton M, Angelino D, Pellegrini N. Effect of presence of gluten and spreads on the oral processing behavior of breads. Food Chem. 2022 Mar 30;373(Pt B):131615. doi: 10.1016/j.foodchem.2021.131615. Epub 2021 Nov 16.
研究记录日期
研究主要日期
学习开始 (实际的)
初级完成 (实际的)
研究完成 (实际的)
研究注册日期
首次提交
首先提交符合 QC 标准的
首次发布 (实际的)
研究记录更新
最后更新发布 (实际的)
上次提交的符合 QC 标准的更新
最后验证
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