- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT06562842
Bewegung, Darmmikrobiota und Typ-2-Diabetes (Ex-GM-T2D)
Die Auswirkungen regelmäßiger Bewegung auf die Zusammensetzung der Darmmikrobiota bei Personen mit Typ-2-Diabetes
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Typ-2-Diabetes ist eine globale Stoffwechselepidemie und eine große globale Gesundheitsbedrohung. Im Jahr 2021 litten weltweit 537 Millionen Erwachsene im Alter von 20 bis 79 Jahren an Diabetes. T2D ist mit lebensbedrohlichen mikrovaskulären und makrovaskulären Gesundheitskomplikationen verbunden, die weltweit enorm zur Belastung durch Mortalität und Behinderung beitragen. T2D wird durch eine Nüchternhyperglykämie definiert, die weitgehend auf eine unzureichende Insulinwirkung zurückzuführen ist. T2D geht in der Regel ein Zustand mittlerer Hyperglykämie oder Prä-D voraus, der durch eine verminderte Nüchternglukose (IFG), eine beeinträchtigte Glukosetoleranz (IGT) oder beides gekennzeichnet ist und das T2D-Risiko stark erhöht. Obwohl der Insulinspiegel bei T2D normal oder hoch ist, werden Gewebe wie Leber, Skelettmuskel und Fettgewebe resistent gegen Insulin, was zu hohen Blutzuckerspiegeln führt. T2D ist mit einer systemischen Entzündungsreaktion verbunden, die ein unabhängiger Risikofaktor für die Entwicklung von T2D zu sein scheint. Darüber hinaus neigen Menschen mit Typ-2-Diabetes dazu, ein stärker oxidatives inneres Milieu zu haben als gesunde Menschen. Es wurde festgestellt, dass durch Hyperglykämie verursachter oxidativer Stress die Insulin-Signalkaskade beeinflusst, die Transkription des GLUT4-Gens verringert und auch die mitochondriale Aktivität verändert. Die T2D-Pathophysiologie wurde auch mit der GM-Zusammensetzung in Verbindung gebracht. Es wird vermutet, dass die GM-Dysbiose über mehrere Mechanismen eine zentrale Rolle bei der Pathogenese der Insulinresistenz und T2D spielt.
Die wichtige Rolle regelmäßiger körperlicher Betätigung zur Vorbeugung und Behandlung von Typ-2-Diabetes wurde nachgewiesen. Die meisten Vorteile von Bewegung bei der T2D-Behandlung und -Prävention werden durch Anpassungen der Skelettmuskulatur erzielt, die wiederum zu akuten und chronischen Verbesserungen der Insulinwirkung führen. Sport hat auch eine entzündungshemmende Wirkung. Neue Erkenntnisse deuten darauf hin, dass sportliche Betätigung sich durch eine Verbesserung der GM-Zusammensetzung auch positiv auf T2D auswirken kann. Der vielversprechendste Effekt regelmäßiger körperlicher Betätigung ist die Veränderung von GM hin zu einer gesünderen mikrobiellen Zusammensetzung durch die Produktion vielfältigerer GM, die Verringerung pathogener Bakteriengemeinschaften und die Zunahme von SCFAs produzierenden Bakterien. Allerdings ist der Einfluss von Bewegung auf die GM-Struktur und -Funktion von T2D-Personen kaum bekannt, da bisher nur eine begrenzte Anzahl von Studien in diesem Bereich existiert.
Laut einer vorläufigen Power-Analyse (ein Wahrscheinlichkeitsfehler von 0,05 und eine statistische Power von 80 %) wurde eine Stichprobengröße von 8–10 Teilnehmern/Gruppe als angemessen erachtet, um statistisch bedeutsame Veränderungen zwischen den Versuchen zu erkennen. Somit werden ≥60 Personen mittleren Alters auf ihre Eignung zur Teilnahme an der Studie geprüft. Die Studie wird in einem parallelen, randomisierten, kontrollierten Design durchgeführt. Die Teilnehmer werden in erster Linie über den Studienablauf sowie die Vorteile und möglichen Risiken informiert und unterzeichnen außerdem eine Einverständniserklärung zur Teilnahme an der Studie. Alle berechtigten Personen werden Blutproben zur Bestimmung von Nüchternblutzucker, glykosyliertem Hämoglobin (HbA1c) und Nüchternplasmainsulin abgeben und einen oralen Glukosetoleranztest (OGTT) durchführen, um ihr glykämisches Profil zu bestimmen, anhand dessen sie ermittelt werden charakterisiert als Personen mit normaler Glukosetoleranz (NGT), Personen mit Prädiabetes (Prä-D) oder Personen mit Typ-2-Diabetes (T2D). Das Ausmaß der körperlichen Aktivität wird auch anhand des International Physical Activity Questionnaire (IPAQ) bewertet. Anschließend werden die Teilnehmer jeder Glukosetoleranzstufe nach dem Zufallsprinzip entweder einem 12-wöchigen regulären kombinierten Aerobic- und Widerstandstraining gemäß den Richtlinien für Prä-D- und T2D-Personen zugeteilt oder bleiben 12 Wochen lang sesshaft. Somit werden sechs Interventionsgruppen wie folgt aussehen: i) NGT-Gruppe (NGTG), NGT-Einzelpersonen – keine Übung, ii) NGT-Übungsgruppe (NGTG+Ex), NGT-Einzelpersonen, die an Training und Entschulung teilnehmen, iii) vor D Gruppe (Pre-DG), Pre-D-Individuen – kein Training, iv) Pre-D-Übungsgruppe (Pre-DG+Ex), Pre-D-Individuen, die an Training und Detraining teilnehmen, v) T2D-Gruppe (T2DG), T2D-Personen – kein Training, und vi) T2D-Übungsgruppe (T2DG+Ex), T2D-Personen, die am Training und Enttraining teilnehmen. Die Randomisierung der Bedingungen erfolgt durch eine Software, die zufällige Ganzzahlen generiert und im Internet verfügbar ist (Random.org).
Basismessungen werden im Labor für Biochemie, Physiologie und Bewegungsernährung (SmArT Lab) der Abteilung für Leibeserziehung und Sport der Universität Thessalien durchgeführt: physiologische Messungen (Ruheherzfrequenz, systolischer und diastolischer Ruheblutdruck, Ruhestoffwechselrate) , anthropometrische Merkmale (Körpergröße, Körpermasse, Body-Mass-Index), Körperzusammensetzung (Körperfettmenge, fettfreie Körpermasse, Fettmasse, Knochendichte), Muskelleistung [aerobe Kapazität (VO2max), isokinetische Kraft der unteren Extremitäten ( isometrisches, konzentrisches und exzentrisches Drehmoment der Kniestrecker und Kniebeuger), Handgriffkraft, Muskelkraft (Gegenbewegungssprung)]. Darüber hinaus stellen die Teilnehmer Kot zur Bestimmung der GM-Zusammensetzung und der GM-Metaboliten [kurzkettige Fettsäuren (SCFAs)] sowie Blutproben zur Bestimmung des vollständigen Blutbildes (CBC), systemischer Entzündungen [Tumornekrosefaktor Alpha ( TNF-α), Interleukin 6 (IL-6), C-reaktives Protein (CRP), Zonulin, Lipopolysaccharid-bindendes Protein (LBP)], Blutredoxstatus [Gesamtantioxidationskapazität (TAC), Katalase (CAT), Proteincarbonyle (PC), reduziertes Glutathion (GSH), oxidiertes Glutathion (GSSG), GSH/GSSG-Verhältnis, Malondialdehyd (MDA), Harnsäure, Bilirubin] und Lipidprofil [Gesamtcholesterin (CHO-T), Lipoprotein niedriger Dichte (LDL) , High Density Lipoprotein (HDL), Triglyceride (TG)]. Darüber hinaus werden die Teilnehmer ihre Ernährung durch einen 7-tägigen Rückruf vor ihrer Teilnahme an der ersten Versuchsbedingung aufzeichnen und die Ernährungsdaten werden analysiert. Alle oben genannten Messungen werden nach der 12-wöchigen Trainingsintervention sowie nach der 4-wöchigen Trainingspause wiederholt. Die Teilnehmer, die mit Ausnahme von VO2max dem regulären Training zugeteilt werden, werden außerdem einer Schätzung der maximalen Kraft der Hauptmuskelgruppen unterzogen, um die Intensität des Trainingsprogramms jedes Teilnehmers zu bestimmen. Die Bestimmung der aeroben Kapazität und der Muskelkraft wird auch nach vier Wochen des regulären Trainings wiederholt, um die notwendigen Intensitätsanpassungen des Trainingsprogramms vorzunehmen.
Studientyp
Einschreibung (Geschätzt)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Athanasios Z Jamurtas, PhD
- E-Mail: ajamurt@pe.uth.gr
Studieren Sie die Kontaktsicherung
- Name: Chariklia K. Deli, PhD
- Telefonnummer: +302431047011
- E-Mail: delixar@pe.uth.gr
Studienorte
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Tríkala, Griechenland, 42100
- Rekrutierung
- Department of Physical Education and Sport Science, Uninersity of Thessaly
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Kontakt:
- Chariklia K. Deli, Phd
- E-Mail: delixar@pe.uth.gr
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Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
- Erwachsene
- Älterer Erwachsener
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Alter zwischen 45 und 65 Jahren
- Bewegungsmangel oder unzureichende tägliche körperliche Aktivität gemäß den Richtlinien für T2D
- Abstinenz von entzündungshemmenden Medikamenten und/oder Antibiotika und/oder Nahrungsergänzungsmitteln, die die GM-Zusammensetzung beeinflussen könnten, vor der Studie (>3 Monate)
- Keine weiteren chronischen Erkrankungen und/oder Muskel-Skelett-Verletzungen (>6 Monate)
Ausschlusskriterien:
- Alter <45 Jahre oder >65 Jahre
- Körperlich aktive Personen
- Konsum von entzündungshemmenden Medikamenten und/oder Antibiotika und/oder Nahrungsergänzungsmitteln, die die GM-Zusammensetzung beeinflussen könnten, vor der Studie (<3 Monate)
- Andere chronische Erkrankungen oder kürzliche Verletzungen des Bewegungsapparates (<6 Monate)
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Screening
- Zuteilung: Zufällig
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
|---|---|
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Experimental: NGT – Übung
Regelmäßige Bewegung für 12 Wochen und Entlastung für 4 Wochen
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Die Teilnehmer absolvieren 12 Wochen lang ein regelmäßiges Trainingstraining, gefolgt von 4 Wochen Entlastungstraining.
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Aktiver Komparator: NGT – Kontrollkomparator
Sitzendes Verhalten seit 16 Wochen
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Die Teilnehmer bleiben während des gesamten 16-wöchigen Interventionszeitraums sesshaft.
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Experimental: Pre-D – Übung
Regelmäßige Bewegung für 12 Wochen und Entlastung für 4 Wochen
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Die Teilnehmer absolvieren 12 Wochen lang ein regelmäßiges Trainingstraining, gefolgt von 4 Wochen Entlastungstraining.
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Aktiver Komparator: Pre-D – Kontrollkomparator
Sitzendes Verhalten seit 16 Wochen
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Die Teilnehmer bleiben während des gesamten 16-wöchigen Interventionszeitraums sesshaft.
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Experimental: T2D – Übung
Regelmäßige Bewegung für 12 Wochen und Entlastung für 4 Wochen
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Die Teilnehmer absolvieren 12 Wochen lang ein regelmäßiges Trainingstraining, gefolgt von 4 Wochen Entlastungstraining.
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Aktiver Komparator: T2D – Kontrollkomparator
Sitzendes Verhalten seit 16 Wochen
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Die Teilnehmer bleiben während des gesamten 16-wöchigen Interventionszeitraums sesshaft.
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Veränderungen in der Zusammensetzung der Darmmikrobiota
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Die Zusammensetzung der Darmmikrobiota wird im Kot mittels Next-Generation-Sequenzierung beurteilt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen im Butyrat
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Butyrat wird im Stuhl mittels HPLC/MS bestimmt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen im Propionat
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Propionat wird im Stuhl mittels HPLC/MS bestimmt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen im Acetat
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Acetat wird im Stuhl mittels HPLC/MS bestimmt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der weißen Blutkörperchen (WBC)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
WBC wird im Vollblut mit einem hämatologischen Analysegerät beurteilt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen der Lymphozyten (LYM)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
LYM wird im Vollblut mit einem hämatologischen Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen in Monozyten (MON)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
MON wird im Vollblut über ein hämatologisches Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen der Granulozyten (GRA)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
GRA wird im Vollblut über ein hämatologisches Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen in Prozent Lymphozyten (LYM%)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
LYM% wird im Vollblut mit einem hämatologischen Analysegerät bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen der prozentualen Monozyten (MON%)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
MON% wird im Vollblut über ein hämatologisches Analysegerät bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen in Prozent Granulozyten (GRA%)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
GRA% wird im Vollblut über ein hämatologisches Analysegerät bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen der roten Blutkörperchen (RBC)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die Erythrozyten werden im Vollblut mit einem hämatologischen Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen des Hämoglobins (HGB)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
HGB wird im Vollblut mit einem hämatologischen Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen des Hämatokrits (HCT)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Der HCT wird im Vollblut mit einem hämatologischen Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Änderungen des mittleren Korpuskularvolumens (MCV)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
MCV wird im Vollblut über ein hämatologisches Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen des mittleren korpuskulären Hämoglobins (MCH)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
MCH wird im Vollblut mit einem hämatologischen Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen der mittleren korpuskulären Hämoglobinkonzentration (MCHC)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
MCHC wird im Vollblut über ein hämatologisches Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen in der Verteilungsbreite der roten Blutkörperchen (RDW)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
RDW wird im Vollblut über ein hämatologisches Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen der Blutplättchen (PLT)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
PLT wird im Vollblut über ein hämatologisches Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen des mittleren Thrombozytenvolumens (MPV)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
MPV wird im Vollblut über ein hämatologisches Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen des Thrombozytenkrits (PCT)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
PCT wird im Vollblut mittels eines hämatologischen Analysegeräts beurteilt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Änderungen der Plateletcrit-Verteilungsbreite (PDW)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
PDW wird im Vollblut über ein hämatologisches Analysegerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen der TNF-α-Konzentration
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die TNF-α-Konzentration wird im Serum mittels ELISA bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen der IL-6-Konzentration
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die IL-6-Konzentration wird im Serum mittels ELISA bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der Konzentration des hochempfindlichen C-reaktiven Proteins
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die Konzentration des C-reaktiven Proteins wird im Serum mittels ELISA bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen in der Konzentration des Lipopolysaccharid-bindenden Proteins (LBP).
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die LBP-Konzentration wird im Serum mittels ELISA bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen der Zonulinkonzentration
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die Zonulinkonzentration wird im Serum und im Kot mittels ELISA bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Veränderungen in der Konzentration von Proteincarbonylen (PC).
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die PC-Konzentration wird im Plasma über ein Spektrophotometer bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
|
Änderungen der Malondialdehyd (MDA)-Konzentration
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die MDA-Konzentration wird im Plasma mittels HPLC bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen der Konzentration von reduziertem Glutathion (GSH).
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die GSH-Konzentration wird im Lykat roter Blutkörperchen mit einem Spektrophotometer bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Änderungen der Konzentration von oxidiertem Glutathion (GSSG).
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die GSSG-Konzentration wird im Lykat roter Blutkörperchen mit einem Spektrophotometer bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Änderungen im GSH/GSSG-Verhältnis
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Das GSH/GSSG-Verhältnis wird berechnet, indem die GSH-Konzentration durch die GSSG-Konzentration dividiert wird
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der Katalasekonzentration
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die Katalasekonzentration wird im Lykat roter Blutkörperchen mit einem Spektrophotometer bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der gesamten antioxidativen Kapazität (TAC)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Der TAC wird im Lykat roter Blutkörperchen mithilfe eines Spektrophotometers bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der Harnsäurekonzentration
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die Harnsäurekonzentration im Serum wird mit einem biochemischen Analysegerät bestimmt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der Bilirubinkonzentration
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die Bilirubinkonzentration im Serum wird über ein biochemisches Analysegerät bestimmt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der Konzentration von glykosyliertem Hämoblobin (HbA1c).
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Die HbA1c-Konzentration wird im Vollblut mit einem HbA1c-Analysegerät bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen des Nüchtern-Plasmaglukosespiegels
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Der Nüchternplasmaglukosespiegel wird im Plasma über ein biochemisches Analysegerät bestimmt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen des Nüchtern-Plasmainsulins
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Nüchternplasma-Insulin wird im Plasma über einen biochemischen Analysator bestimmt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der Insulinresistenz
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Die Insulinresistenz wird über den HOMA-IR-Index (Homeostatic Model Assessment of Insulin Resistance) berechnet
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der Insulinresistenz – Oraler Glukosetoleranztest (OGTT)
Zeitfenster: Vor, 30 Minuten nach, 60 Minuten nach, 90 Minuten nach und 120 Minuten nach dem Glukoseverbrauch
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OGTT wird anhand der Schätzung der 2-Stunden-Plasmaglukose nach oraler Glukoseaufnahme beurteilt
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Vor, 30 Minuten nach, 60 Minuten nach, 90 Minuten nach und 120 Minuten nach dem Glukoseverbrauch
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Veränderungen des Gesamtcholesterins (CHOL-T)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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CHOL-T wird über ein biochemisches Analysegerät bewertet
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen des Low-Density-Lipoprotein-Cholesterins (LDL-C)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
LDL-C wird über ein biochemisches Analysegerät bestimmt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen des High-Density-Lipoprotein-Cholesterins (HDL-C)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
HDL-C wird über ein biochemisches Analysegerät bewertet
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der Triglyceride (TG)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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TG wird über ein biochemisches Analysegerät bewertet
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Änderungen der Gegenbewegungssprunghöhe (CMJ)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Die CMJ-Höhe wird über ein optisches System gemessen
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der isokinetischen Kraft der Kniestrecker und Kniebeuger
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Das isometrische, konzentrische und exzentrische Spitzendrehmoment der Kniestrecker und Kniebeuger beider Gliedmaßen wird mit einem isokinetischen Dynamometer bewertet
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der Handgriffstärke
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die Handgriffstärke wird mit einem Handgriff-Dynamometer beurteilt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen der Ruheherzfrequenz (HF)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die Ruhe-Herzfrequenz wird über einen Herzfrequenzmonitor beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen des systolischen Ruheblutdrucks (SBP) und des diastolischen Blutdrucks (DBP)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Ruhe-SBP und DBP werden mit einem manuellen Blutdruckmessgerät beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen der Stoffwechselrate im Ruhezustand (RMR)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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RMR wird mittels indirekter Kalorimetrie bewertet
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen der Körpermasse (BM)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Der BM wird über eine Stadiometer-Beam-Balance beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen der Körpergröße
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
Die Körpergröße wird über eine Stadiometer-Beam-Balance beurteilt
|
Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen des Body-Mass-Index (BMI)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Der BMI wird berechnet, indem die Körpermasse durch das Quadrat der Körpergröße geteilt wird
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
|
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Veränderungen der maximalen Sauerstoffaufnahme (VO2max)
Zeitfenster: Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Veränderungen der maximalen Sauerstoffaufnahme (VO2peak) werden über einen submaximalen Test auf einem Laufband beurteilt
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Ausgangswert (vor), 12 Wochen nach dem Training, 16 Wochen (nach dem Training)
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Ermittler
- Hauptermittler: Chariklia K. Deli, PhD, University of Thessaly
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Zheng Y, Ley SH, Hu FB. Global aetiology and epidemiology of type 2 diabetes mellitus and its complications. Nat Rev Endocrinol. 2018 Feb;14(2):88-98. doi: 10.1038/nrendo.2017.151. Epub 2017 Dec 8.
- Gurung M, Li Z, You H, Rodrigues R, Jump DB, Morgun A, Shulzhenko N. Role of gut microbiota in type 2 diabetes pathophysiology. EBioMedicine. 2020 Jan;51:102590. doi: 10.1016/j.ebiom.2019.11.051. Epub 2020 Jan 3.
- Pasini E, Corsetti G, Assanelli D, Testa C, Romano C, Dioguardi FS, Aquilani R. Effects of chronic exercise on gut microbiota and intestinal barrier in human with type 2 diabetes. Minerva Med. 2019 Feb;110(1):3-11. doi: 10.23736/S0026-4806.18.05589-1.
- Torquati L, Gajanand T, Cox ER, Willis CRG, Zaugg J, Keating SE, Coombes JS. Effects of exercise intensity on gut microbiome composition and function in people with type 2 diabetes. Eur J Sport Sci. 2023 Apr;23(4):530-541. doi: 10.1080/17461391.2022.2035436. Epub 2022 Mar 23.
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