- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT03090815
ADN tumoral circulant (ADNct) comme outil pronostique chez les patients atteints d'adénocarcinome pulmonaire avancé
Le cancer du poumon est la principale cause de décès par cancer aux États-Unis et dans le monde. Les cancers du poumon sont largement divisés histologiquement en cancer du poumon à petites cellules (SCLC) et cancer du poumon non à petites cellules (NSCLC). Environ 25 % des patients atteints de NSCLC ont une maladie de stade I ou II. La principale modalité de traitement est la résection chirurgicale,2 et les taux de survie à 5 ans sont de 65 % pour le stade I et de 41 % pour le stade II de la maladie. Cependant, plus de 70 % des patients atteints de NSCLC présentent une maladie de stade III ou IV. Les patients atteints de la maladie de stade III sont le plus souvent traités par chimioradiothérapie et le taux de survie à 5 ans est de 26 %. La chimiothérapie et la thérapie ciblée sont souvent utilisées pour la maladie de stade IV, qui a un taux de survie à 5 ans de 4 %.
L'inhibiteur de tyrosine kinase (TKI) est une thérapie ciblée contre des molécules spécifiques dans les voies de signalisation cellulaire critiques impliquées dans la carcinogenèse pulmonaire. Les TKI actuellement disponibles et approuvés par la FDA pour le NSCLC avancé comprennent l'afatinib, le gefitinib et l'erlotinib qui inhibent la signalisation du récepteur du facteur de croissance épidermique (EGFR) 6 et le crizotinib qui inhibe la signalisation de la kinase du lymphome anaplasique (ALK). Cependant, seules les tumeurs qui portent les mutations oncogènes correspondantes (par exemple, les mutations sensibilisantes de l'EGFR) répondraient bien à ces ITK. Les méta-analyses d'essais cliniques évaluant l'efficacité du gefitinib et de l'erlotinib ont démontré que les patients atteints de CBNPC qui sont positifs pour la mutation de l'EGFR ont un risque plus faible de progression de la maladie lorsqu'ils sont traités avec un EGFR-TKI par rapport à ceux traités par chimiothérapie (HR = 0,43, intervalle de confiance à 95 %, IC = 0,38-0,49). L'EGFR-TKI, cependant, ne confère aucun avantage aux patients qui sont de type sauvage EGFR (HR = 1,06, IC à 95 % = 0,94-1,19). Un essai de phase III sur le crizotinib a également démontré la supériorité du crizotinib sur la chimiothérapie standard chez les patients atteints de CPNPC ALK-positif (HR = 0,49 ; IC à 95 % = 0,37-0,64).
À Hong Kong, comme dans d'autres parties de l'Asie comme en Chine et à Taïwan, outre la majorité des patients atteints de cancer du poumon qui sont des fumeurs, il existe également une proéminence de non-fumeurs dans le cancer du poumon. Par rapport aux Caucasiens, il existe également une incidence relativement plus élevée de mutation de l'EGFR dans les adénocarcinomes pulmonaires. La prévalence de la mutation de l'EGFR dans la population asiatique atteinte d'adénocarcinomes pulmonaires peut atteindre jusqu'à 60 % contre au plus 30 % dans la population caucasienne. Ces tumeurs mutantes EGFR démontreront une meilleure réponse au médicament EGFR-TKI, augmentant le taux de réponse à près de 70 % contre 30 % avec la chimiothérapie conventionnelle pour le cancer du poumon. Même avec cette réponse remarquable, cependant, l'EGFR-TKI finira par échouer dans le cancer du poumon mutant de l'EGFR. Il existe un besoin imminent de rechercher de nouvelles cibles ou agents thérapeutiques capables de surmonter cette résistance acquise aux médicaments anticancéreux et d'explorer d'autres voies de signalisation moléculaire qui pourraient interagir ou améliorer les voies de signalisation de l'EGFR pour moduler la réponse thérapeutique dans le cancer du poumon.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Bien que les ITK-EGFR et ALK puissent atteindre un taux de réponse aussi élevé que 70 %, tous les patients traités avec des ITK développent invariablement une résistance à la thérapie. La médiane de survie sans progression est de 10 à 16 mois. Le mécanisme le plus courant de résistance acquise aux ITK est la sélection clonale induite par la thérapie d'une sous-population mineure de cellules cancéreuses résistantes qui étaient présentes dans la tumeur d'origine. L'émergence de la mutation EGFR T790M survient chez environ 50 à 70 % des patients présentant une résistance acquise aux EGFR-TKI. D'autres mutations de l'EGFR et mutations de la sous-unité catalytique alpha du phosphatidylinositol-4,5-bisphosphate 3-kinase (PIK3CA) et du proto-oncogène B-Raf (BRAF) sont également associées à la résistance à l'EGFR-TKI, mais elles se produisent à de faibles fréquences. La résistance à ALK-TKI est plus complexe et implique diverses mutations résistantes.
La résistance aux ITK reste un problème majeur dans la prise en charge clinique du NSCLC. Les patients présentant une résistance acquise peuvent être traités avec des ITK de deuxième génération, bien qu'aucun ne soit encore approuvé par la FDA, ou par des stratégies de thérapie combinée. Par conséquent, la caractérisation moléculaire de la tumeur tout au long de la maladie est utile pour faire correspondre les nouveaux médicaments au profil génomique en évolution de la tumeur et guider des thérapies personnalisées efficaces. Cependant, l'échantillonnage tissulaire en série pour surveiller les signatures moléculaires de la tumeur est invasif, peu pratique et n'est pas une pratique clinique de routine. L'obtention de matériaux tissulaires suffisants pour le génotypage est également un obstacle majeur dans l'échantillonnage des tissus. Il est nécessaire de développer une technologie permettant une analyse en série non invasive des profils génomiques tumoraux.
L'ADN circulant acellulaire est un ADN fragmenté trouvé en circulation qui n'est pas associé à des cellules ou à des fragments de cellules. Lorsque les cellules tumorales meurent, elles libèrent l'ADN tumoral dans la circulation sanguine. L'ADN circulant acellulaire dérivé de tumeurs, connu sous le nom d'ADN tumoral circulant (ctDNA), porte des mutations présentes dans la tumeur et peut donc être distingué de l'ADN circulant acellulaire dérivé de cellules normales. Il a été démontré que la détection d'ADNct et sa concentration sont corrélées au stade tumoral et à la survie au cancer. De plus, l'ADNct dans le plasma peut être utilisé pour détecter les altérations génomiques dans les cancers solides, et il existe une forte concordance dans les mutations détectées entre les échantillons d'ADN appariés fixés au formol et inclus en paraffine (FFPE) et plasma.
Dans une étude sur la résistance acquise au blocage de l'EGFR chez des patients atteints de cancer colorectal, des échantillons de sérum répétés ont été prélevés à des intervalles de 4 semaines jusqu'à la progression de la maladie. En utilisant la modélisation mathématique, cette étude a eu les résultats importants suivants : des mutations résistantes étaient présentes dans une sous-population clonale au sein des tumeurs avant le début du traitement, il a fallu une période de temps assez constante (environ 5 à 6 mois) pour que le sous-clone se développe et repeupler la lésion, et les mutations résistantes circulantes pourraient être détectées plusieurs mois avant la preuve radiographique de la progression de la maladie. Cette étude fondamentale a démontré le potentiel de l'utilisation d'un test ctDNA pour suivre l'évolution et la sélection génomique dans les tumeurs de manière non invasive afin de faciliter les thérapies individualisées et donc de prolonger la rémission.
Les chercheurs ont démontré la détection plasmatique des mutations de l'EGFR chez des patients atteints d'un adénocarcinome pulmonaire de stade avancé portant des mutations de l'EGFR, en corrélation avec le pronostic des sujets sous EGFR-TKI. Une étude prospective avait utilisé la réaction en chaîne par polymérase en temps réel (RT-PCR) pour détecter les mutations de l'EGFR dans l'ADNct de patients atteints de NSCLC avancé. Parmi les patients qui étaient mutation EGFR + à l'inclusion (pré-traitement), ceux qui ont perdu la mutation EGFR au cycle 3 de traitement (chimiothérapie +/- erlotinib) ont eu une meilleure survie sans progression ; les survies médianes étaient de 7,2 contre 12,0 mois chez les patients qui présentaient une mutation EGFR (+,+) et (+,-) au départ et au cycle 3, respectivement.
D'autres études ont également démontré la faisabilité d'autres mutations oncogènes, en particulier la mutation KRAS.
Bien que ces études aient démontré la faisabilité de détecter des mutations tumorales dans l'ADNct, elles se sont limitées à l'examen d'un seul gène (par exemple, EGFR ou KRAS).
D'autres études avaient appliqué le séquençage de nouvelle génération chez des patients atteints de NSCLC. Le laboratoire de Max Diehn à l'Université de Stanford a développé une méthode pour quantifier l'ADNct par séquençage en profondeur de plus de 130 gènes. Chez 17 patients avec des échantillons appariés d'ADN plasmatique et de tissu tumoral, ils ont pu détecter toutes les mutations précédemment identifiées dans les tissus ainsi que de nombreuses variantes somatiques supplémentaires. Ils ont également constaté que les niveaux d'ADNct étaient fortement corrélés au volume de la tumeur. Leur étude a examiné plusieurs gènes, mais n'avait pas de composante prospective pour suivre les mutations de l'ADNct et corréler les mutations spécifiques avec les résultats du traitement.
Le test de l'ADNct chez les patients qui reçoivent une chimiothérapie n'a jamais été fait. Le profilage génomique peut identifier les mutations associées à la résistance et à la réponse à la chimiothérapie.
Les chercheurs proposent donc une étude longitudinale chez des patients atteints de NSCLC avancé traités par ITK ou chimiothérapie de première ligne pour prélever des échantillons sanguins en série de manière prospective et, à l'aide d'un séquençage de nouvelle génération d'ADNct, pour examiner les profils génomiques évolutifs. Cette étude vise à évaluer les utilités du test ctDNA dans l'identification de marqueurs génomiques pour prédire la réponse au traitement et la survie chez les patients atteints de NSCLC avancé.
Cette étude proposée examinera les utilités de l'ADNct dans l'identification de marqueurs génomiques pour le pronostic du NSCLC chez les patients traités par TKI de première ligne ou par chimiothérapie. Après le diagnostic, les patients seront suivis tous les 3 mois. Lors de chaque visite d'étude, des échantillons de plasma seront prélevés et, chaque fois que cela est cliniquement indiqué, des échantillons de tissus seront également obtenus. Le profilage génomique des tumeurs sera effectué dans l'échantillon de tissu FFPE et dans l'ADNct extrait des échantillons de plasma collectés de manière prospective. Les objectifs sont :
- Déterminer la concordance et la discordance des mutations somatiques trouvées dans l'ADNct et l'ADN des tissus tumoraux.
- Identifier les mutations de l'ADNct associées au pronostic (réponse au traitement et survie sans progression) chez les patients qui reçoivent (a) un traitement EGFR-TKI, (b) un traitement ALK-TKI ou (c) une chimiothérapie.
- Pour suivre l'évolution moléculaire en termes de (a) variation de la concentration totale d'ADNct dans le temps, (b) lorsque les mutations associées à la résistance/récurrence sont d'abord détectables dans le plasma, et (c) comment les fractions de mutation de la résistance associée les mutations varient dans le temps.
- Combiner les informations des objectifs 2 et 3 pour développer des modèles de prédiction du pronostic chez les patients qui reçoivent (a) un traitement EGFR-TKI, (b) un traitement ALK-TKI ou (c) une chimiothérapie.
Type d'étude
Inscription (Anticipé)
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
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Hong Kong, Hong Kong
- Recrutement
- University of Hong Kong Queen Mary Hospital
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
La description
Critère d'intégration:
- Les patients sont éligibles s'ils (1) reçoivent un diagnostic d'adénocarcinome primitif, (2) n'ont pas de cancers concomitants, (3) vont recevoir un ITK ou une chimiothérapie en tant que traitement de première intention, et (4) sont disposés à signer un consentement éclairé et inscrits dans l'étude avant le début du traitement.
Critère d'exclusion:
- Les patients ont d'autres cancers concomitants
- Les patients qui ne sont pas éligibles reçoivent un ITK ou une chimiothérapie comme traitement de première ligne
- Patients qui ne veulent ou ne peuvent pas signer un consentement éclairé
- Histologie autre que l'adénocarcinome
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
Intervention / Traitement |
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Patient recevant un ITK
Les patients reçoivent un diagnostic d'adénocarcinome primaire et n'ont pas de cancers concomitants et vont recevoir un ITK
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Séquençage du ctDNA dans le plasma
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Patient recevant ALK-TKI
Les patients reçoivent un diagnostic d'adénocarcinome primaire et n'ont pas de cancers concomitants et vont recevoir ALK-TKI
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Séquençage du ctDNA dans le plasma
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Patient recevant une chimiothérapie
Les patients reçoivent un diagnostic d'adénocarcinome primaire et n'ont pas de cancers concomitants et vont recevoir une chimiothérapie
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Séquençage du ctDNA dans le plasma
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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mutation ADNct
Délai: une moyenne d'un an
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Types de mutations de l'ADNct
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une moyenne d'un an
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Toute nouvelle mutation d'ADNct
Délai: une moyenne d'un an
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Types de nouvelles mutations d'ADNct
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une moyenne d'un an
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Niveaux d'ADNct [mesurés en nombre de copies]
Délai: une moyenne d'un an
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Quantité de mutations d'ADNct
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une moyenne d'un an
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Tout nouveau niveau d'ADNct [mesuré en nombre de copies]
Délai: une moyenne d'un an
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Quantité de nouveau type ctDNA
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une moyenne d'un an
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Collaborateurs
Publications et liens utiles
Publications générales
- Siegel R, Naishadham D, Jemal A. Cancer statistics, 2012. CA Cancer J Clin. 2012 Jan-Feb;62(1):10-29. doi: 10.3322/caac.20138. Epub 2012 Jan 4.
- Bettegowda C, Sausen M, Leary RJ, Kinde I, Wang Y, Agrawal N, Bartlett BR, Wang H, Luber B, Alani RM, Antonarakis ES, Azad NS, Bardelli A, Brem H, Cameron JL, Lee CC, Fecher LA, Gallia GL, Gibbs P, Le D, Giuntoli RL, Goggins M, Hogarty MD, Holdhoff M, Hong SM, Jiao Y, Juhl HH, Kim JJ, Siravegna G, Laheru DA, Lauricella C, Lim M, Lipson EJ, Marie SK, Netto GJ, Oliner KS, Olivi A, Olsson L, Riggins GJ, Sartore-Bianchi A, Schmidt K, Shih lM, Oba-Shinjo SM, Siena S, Theodorescu D, Tie J, Harkins TT, Veronese S, Wang TL, Weingart JD, Wolfgang CL, Wood LD, Xing D, Hruban RH, Wu J, Allen PJ, Schmidt CM, Choti MA, Velculescu VE, Kinzler KW, Vogelstein B, Papadopoulos N, Diaz LA Jr. Detection of circulating tumor DNA in early- and late-stage human malignancies. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra24. doi: 10.1126/scitranslmed.3007094.
- Maheswaran S, Sequist LV, Nagrath S, Ulkus L, Brannigan B, Collura CV, Inserra E, Diederichs S, Iafrate AJ, Bell DW, Digumarthy S, Muzikansky A, Irimia D, Settleman J, Tompkins RG, Lynch TJ, Toner M, Haber DA. Detection of mutations in EGFR in circulating lung-cancer cells. N Engl J Med. 2008 Jul 24;359(4):366-77. doi: 10.1056/NEJMoa0800668. Epub 2008 Jul 2.
- Gadgeel SM, Ramalingam SS, Kalemkerian GP. Treatment of lung cancer. Radiol Clin North Am. 2012 Sep;50(5):961-74. doi: 10.1016/j.rcl.2012.06.003.
- Nesbitt JC, Putnam JB Jr, Walsh GL, Roth JA, Mountain CF. Survival in early-stage non-small cell lung cancer. Ann Thorac Surg. 1995 Aug;60(2):466-72. doi: 10.1016/0003-4975(95)00169-l.
- Subramanian J, Govindan R. Lung cancer in never smokers: a review. J Clin Oncol. 2007 Feb 10;25(5):561-70. doi: 10.1200/JCO.2006.06.8015.
- Antonicelli A, Cafarotti S, Indini A, Galli A, Russo A, Cesario A, Lococo FM, Russo P, Mainini AF, Bonifati LG, Nosotti M, Santambrogio L, Margaritora S, Granone PM, Dutly AE. EGFR-targeted therapy for non-small cell lung cancer: focus on EGFR oncogenic mutation. Int J Med Sci. 2013;10(3):320-30. doi: 10.7150/ijms.4609. Epub 2013 Feb 11.
- Shaw AT, Engelman JA. ALK in lung cancer: past, present, and future. J Clin Oncol. 2013 Mar 10;31(8):1105-11. doi: 10.1200/JCO.2012.44.5353. Epub 2013 Feb 11.
- Cabezon-Gutierrez L, Khosravi-Shahi P, Diaz-Munoz-de-la-Espada VM, Carrion-Galindo JR, Erana-Tomas I, Castro-Otero M. ALK-mutated non-small-cell lung cancer: a new strategy for cancer treatment. Lung. 2012 Aug;190(4):381-8. doi: 10.1007/s00408-012-9391-y. Epub 2012 May 15.
- Mok TS, Wu YL, Thongprasert S, Yang CH, Chu DT, Saijo N, Sunpaweravong P, Han B, Margono B, Ichinose Y, Nishiwaki Y, Ohe Y, Yang JJ, Chewaskulyong B, Jiang H, Duffield EL, Watkins CL, Armour AA, Fukuoka M. Gefitinib or carboplatin-paclitaxel in pulmonary adenocarcinoma. N Engl J Med. 2009 Sep 3;361(10):947-57. doi: 10.1056/NEJMoa0810699. Epub 2009 Aug 19.
- Fukuoka M, Wu YL, Thongprasert S, Sunpaweravong P, Leong SS, Sriuranpong V, Chao TY, Nakagawa K, Chu DT, Saijo N, Duffield EL, Rukazenkov Y, Speake G, Jiang H, Armour AA, To KF, Yang JC, Mok TS. Biomarker analyses and final overall survival results from a phase III, randomized, open-label, first-line study of gefitinib versus carboplatin/paclitaxel in clinically selected patients with advanced non-small-cell lung cancer in Asia (IPASS). J Clin Oncol. 2011 Jul 20;29(21):2866-74. doi: 10.1200/JCO.2010.33.4235. Epub 2011 Jun 13.
- Lee CK, Brown C, Gralla RJ, Hirsh V, Thongprasert S, Tsai CM, Tan EH, Ho JC, Chu da T, Zaatar A, Osorio Sanchez JA, Vu VV, Au JS, Inoue A, Lee SM, Gebski V, Yang JC. Impact of EGFR inhibitor in non-small cell lung cancer on progression-free and overall survival: a meta-analysis. J Natl Cancer Inst. 2013 May 1;105(9):595-605. doi: 10.1093/jnci/djt072. Epub 2013 Apr 17.
- Gao G, Ren S, Li A, Xu J, Xu Q, Su C, Guo J, Deng Q, Zhou C. Epidermal growth factor receptor-tyrosine kinase inhibitor therapy is effective as first-line treatment of advanced non-small-cell lung cancer with mutated EGFR: A meta-analysis from six phase III randomized controlled trials. Int J Cancer. 2012 Sep 1;131(5):E822-9. doi: 10.1002/ijc.27396. Epub 2012 Jan 27.
- Shaw AT, Kim DW, Nakagawa K, Seto T, Crino L, Ahn MJ, De Pas T, Besse B, Solomon BJ, Blackhall F, Wu YL, Thomas M, O'Byrne KJ, Moro-Sibilot D, Camidge DR, Mok T, Hirsh V, Riely GJ, Iyer S, Tassell V, Polli A, Wilner KD, Janne PA. Crizotinib versus chemotherapy in advanced ALK-positive lung cancer. N Engl J Med. 2013 Jun 20;368(25):2385-94. doi: 10.1056/NEJMoa1214886. Epub 2013 Jun 1. Erratum In: N Engl J Med. 2015 Oct 15;373(16):1582.
- Hsu KH, Chen KC, Yang TY, Yeh YC, Chou TY, Chen HY, Tsai CR, Chen CY, Hsu CP, Hsia JY, Chuang CY, Tsai YH, Chen KY, Huang MS, Su WC, Chen YM, Hsiung CA, Chang GC, Chen CJ, Yang PC. Epidermal growth factor receptor mutation status in stage I lung adenocarcinoma with different image patterns. J Thorac Oncol. 2011 Jun;6(6):1066-72. doi: 10.1097/JTO.0b013e31821667b0.
- Shi Y, Au JS, Thongprasert S, Srinivasan S, Tsai CM, Khoa MT, Heeroma K, Itoh Y, Cornelio G, Yang PC. A prospective, molecular epidemiology study of EGFR mutations in Asian patients with advanced non-small-cell lung cancer of adenocarcinoma histology (PIONEER). J Thorac Oncol. 2014 Feb;9(2):154-62. doi: 10.1097/JTO.0000000000000033.
- Suda K, Mizuuchi H, Maehara Y, Mitsudomi T. Acquired resistance mechanisms to tyrosine kinase inhibitors in lung cancer with activating epidermal growth factor receptor mutation--diversity, ductility, and destiny. Cancer Metastasis Rev. 2012 Dec;31(3-4):807-14. doi: 10.1007/s10555-012-9391-7.
- Inukai M, Toyooka S, Ito S, Asano H, Ichihara S, Soh J, Suehisa H, Ouchida M, Aoe K, Aoe M, Kiura K, Shimizu N, Date H. Presence of epidermal growth factor receptor gene T790M mutation as a minor clone in non-small cell lung cancer. Cancer Res. 2006 Aug 15;66(16):7854-8. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-06-1951.
- Diaz LA Jr, Williams RT, Wu J, Kinde I, Hecht JR, Berlin J, Allen B, Bozic I, Reiter JG, Nowak MA, Kinzler KW, Oliner KS, Vogelstein B. The molecular evolution of acquired resistance to targeted EGFR blockade in colorectal cancers. Nature. 2012 Jun 28;486(7404):537-40. doi: 10.1038/nature11219.
- Arcila ME, Oxnard GR, Nafa K, Riely GJ, Solomon SB, Zakowski MF, Kris MG, Pao W, Miller VA, Ladanyi M. Rebiopsy of lung cancer patients with acquired resistance to EGFR inhibitors and enhanced detection of the T790M mutation using a locked nucleic acid-based assay. Clin Cancer Res. 2011 Mar 1;17(5):1169-80. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-10-2277. Epub 2011 Jan 19.
- Sequist LV, Waltman BA, Dias-Santagata D, Digumarthy S, Turke AB, Fidias P, Bergethon K, Shaw AT, Gettinger S, Cosper AK, Akhavanfard S, Heist RS, Temel J, Christensen JG, Wain JC, Lynch TJ, Vernovsky K, Mark EJ, Lanuti M, Iafrate AJ, Mino-Kenudson M, Engelman JA. Genotypic and histological evolution of lung cancers acquiring resistance to EGFR inhibitors. Sci Transl Med. 2011 Mar 23;3(75):75ra26. doi: 10.1126/scitranslmed.3002003.
- Ohashi K, Maruvka YE, Michor F, Pao W. Epidermal growth factor receptor tyrosine kinase inhibitor-resistant disease. J Clin Oncol. 2013 Mar 10;31(8):1070-80. doi: 10.1200/JCO.2012.43.3912. Epub 2013 Feb 11.
- Giroux S. Overcoming acquired resistance to kinase inhibition: the cases of EGFR, ALK and BRAF. Bioorg Med Chem Lett. 2013 Jan 15;23(2):394-401. doi: 10.1016/j.bmcl.2012.11.037. Epub 2012 Nov 21.
- Diaz LA Jr, Bardelli A. Liquid biopsies: genotyping circulating tumor DNA. J Clin Oncol. 2014 Feb 20;32(6):579-86. doi: 10.1200/JCO.2012.45.2011. Epub 2014 Jan 21.
- Perkins G, Yap TA, Pope L, Cassidy AM, Dukes JP, Riisnaes R, Massard C, Cassier PA, Miranda S, Clark J, Denholm KA, Thway K, Gonzalez De Castro D, Attard G, Molife LR, Kaye SB, Banerji U, de Bono JS. Multi-purpose utility of circulating plasma DNA testing in patients with advanced cancers. PLoS One. 2012;7(11):e47020. doi: 10.1371/journal.pone.0047020. Epub 2012 Nov 7.
- Dawson SJ, Tsui DW, Murtaza M, Biggs H, Rueda OM, Chin SF, Dunning MJ, Gale D, Forshew T, Mahler-Araujo B, Rajan S, Humphray S, Becq J, Halsall D, Wallis M, Bentley D, Caldas C, Rosenfeld N. Analysis of circulating tumor DNA to monitor metastatic breast cancer. N Engl J Med. 2013 Mar 28;368(13):1199-209. doi: 10.1056/NEJMoa1213261. Epub 2013 Mar 13.
- Murtaza M, Dawson SJ, Tsui DW, Gale D, Forshew T, Piskorz AM, Parkinson C, Chin SF, Kingsbury Z, Wong AS, Marass F, Humphray S, Hadfield J, Bentley D, Chin TM, Brenton JD, Caldas C, Rosenfeld N. Non-invasive analysis of acquired resistance to cancer therapy by sequencing of plasma DNA. Nature. 2013 May 2;497(7447):108-12. doi: 10.1038/nature12065. Epub 2013 Apr 7.
- Lam DC, Tam TC, Lau KM, Wong WM, Hui CK, Lam JC, Wang JK, Lui MM, Ho JC, Ip MS. Plasma EGFR Mutation Detection Associated With Survival Outcomes in Advanced-Stage Lung Cancer. Clin Lung Cancer. 2015 Nov;16(6):507-13. doi: 10.1016/j.cllc.2015.06.003. Epub 2015 Jun 24.
- Yam I, Lam DC, Chan K, Chung-Man Ho J, Ip M, Lam WK, Chan TK, Chan V. EGFR array: uses in the detection of plasma EGFR mutations in non-small cell lung cancer patients. J Thorac Oncol. 2012 Jul;7(7):1131-40. doi: 10.1097/JTO.0b013e3182558198.
- Freidin MB, Freydina DV, Leung M, Montero Fernandez A, Nicholson AG, Lim E. Circulating tumor DNA outperforms circulating tumor cells for KRAS mutation detection in thoracic malignancies. Clin Chem. 2015 Oct;61(10):1299-304. doi: 10.1373/clinchem.2015.242453. Epub 2015 Aug 13.
- Uchida J, Kato K, Kukita Y, Kumagai T, Nishino K, Daga H, Nagatomo I, Inoue T, Kimura M, Oba S, Ito Y, Takeda K, Imamura F. Diagnostic Accuracy of Noninvasive Genotyping of EGFR in Lung Cancer Patients by Deep Sequencing of Plasma Cell-Free DNA. Clin Chem. 2015 Sep;61(9):1191-6. doi: 10.1373/clinchem.2015.241414. Epub 2015 Jul 23.
- Mok T, Wu YL, Lee JS, Yu CJ, Sriuranpong V, Sandoval-Tan J, Ladrera G, Thongprasert S, Srimuninnimit V, Liao M, Zhu Y, Zhou C, Fuerte F, Margono B, Wen W, Tsai J, Truman M, Klughammer B, Shames DS, Wu L. Detection and Dynamic Changes of EGFR Mutations from Circulating Tumor DNA as a Predictor of Survival Outcomes in NSCLC Patients Treated with First-line Intercalated Erlotinib and Chemotherapy. Clin Cancer Res. 2015 Jul 15;21(14):3196-203. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-14-2594. Epub 2015 Mar 31.
- Newman AM, Bratman SV, To J, Wynne JF, Eclov NC, Modlin LA, Liu CL, Neal JW, Wakelee HA, Merritt RE, Shrager JB, Loo BW Jr, Alizadeh AA, Diehn M. An ultrasensitive method for quantitating circulating tumor DNA with broad patient coverage. Nat Med. 2014 May;20(5):548-54. doi: 10.1038/nm.3519. Epub 2014 Apr 6.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude
Achèvement primaire (ANTICIPÉ)
Achèvement de l'étude (ANTICIPÉ)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (RÉEL)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (RÉEL)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
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Termes liés à cette étude
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- HKU_UW_16_104
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