- ICH GCP
- Register voor klinische proeven in de VS.
- Klinische proef NCT03090815
Circulerend tumor-DNA (ctDNA) als prognostisch hulpmiddel bij patiënten met gevorderd longadenocarcinoom
Longkanker is de belangrijkste doodsoorzaak door kanker in de VS en de rest van de wereld. Longkankers worden histologisch grofweg verdeeld in kleincellige longkanker (SCLC) en niet-kleincellige longkanker (NSCLC). Ongeveer 25% van de patiënten met NSCLC heeft stadium I of II van de ziekte. De primaire behandelingsmodaliteit is chirurgische resectie, 2 en 5-jaars overlevingspercentages zijn 65% voor stadium I en 41% voor stadium II ziekte. Meer dan 70% van de patiënten met NSCLC presenteert zich echter met stadium III of IV van de ziekte. Patiënten met stadium III-ziekte worden meestal behandeld met chemoradiatie en de overlevingskans na 5 jaar is 26%. Chemotherapie en gerichte therapie worden vaak gebruikt voor stadium IV-ziekte, die een 5-jaars overlevingspercentage van 4% heeft.
Tyrosinekinaseremmer (TKI) is een gerichte therapie tegen specifieke moleculen in kritieke celsignaleringsroutes die betrokken zijn bij longcarcinogenese. De momenteel beschikbare door de FDA goedgekeurde TKI's voor geavanceerde NSCLC omvatten afatinib, gefitinib en erlotinib die epidermale groeifactorreceptor (EGFR) signalering 6 remmen en crizotinib die anaplastische lymfoomkinase (ALK) signalering remt. Alleen tumoren die de overeenkomstige oncogene mutaties dragen (bijvoorbeeld sensibiliserende EGFR-mutaties) zouden echter goed reageren op deze TKI's. Meta-analyses van klinische onderzoeken die de werkzaamheid van gefitinib en erlotinib evalueerden, hebben aangetoond dat NSCLC-patiënten die EGFR-mutatiepositief zijn een lager risico op ziekteprogressie hebben wanneer ze worden behandeld met een EGFR-TKI in vergelijking met degenen die worden behandeld met chemotherapie (HR = 0,43, 95% betrouwbaarheidsinterval, BI=0,38-0,49). EGFR-TKI heeft echter geen voordelen voor patiënten die EGFR wildtype zijn (HR = 1,06, 95% CI=0,94-1,19). Een fase III-onderzoek met crizotinib heeft ook aangetoond dat crizotinib superieur is aan standaardchemotherapie bij ALK-positieve NSCLC-patiënten (HR = 0,49; 95%-BI=0,37-0,64).
In Hong Kong, net als in andere delen van Azië, zoals in China en Taiwan, is er, behalve dat de meerderheid van de longkankerpatiënten rokers zijn, ook een prominente plaats voor niet-rokers bij longkanker. In vergelijking met blanken is er ook een relatief hogere incidentie van EGFR-mutatie bij longadenocarcinomen. De prevalentie van EGFR-mutatie in de Aziatische populatie met longadenocarcinomen kan oplopen tot 60% vergeleken met maximaal 30% in de blanke populatie. Deze EGFR-gemuteerde tumoren zullen een betere respons vertonen op het medicijn EGFR-TKI, waardoor het responspercentage wordt verhoogd tot bijna 70% in vergelijking met 30% met conventionele chemotherapie voor longkanker. Maar zelfs met deze opmerkelijke respons zal EGFR-TKI uiteindelijk falen bij EGFR-gemuteerde longkanker. Er is een dringende behoefte om te zoeken naar nieuwere therapeutische doelen of middelen die deze verworven resistentie tegen geneesmiddelen tegen kanker kunnen overwinnen en om alternatieve moleculaire signaalroutes te onderzoeken die kunnen interageren of EGFR-signaalroutes kunnen versterken om de therapeutische respons bij longkanker te moduleren.
Studie Overzicht
Toestand
Conditie
Interventie / Behandeling
Gedetailleerde beschrijving
Hoewel EGFR- en ALK-TKI's een responspercentage van wel 70% kunnen bereiken, ontwikkelen alle patiënten die met TKI's worden behandeld steevast weerstand tegen de therapie. De mediane progressievrije overleving is 10-16 maanden. Het meest voorkomende mechanisme van verworven resistentie tegen TKI's is de therapie-geïnduceerde klonale selectie van een kleine subpopulatie van resistente kankercellen die aanwezig waren in de oorspronkelijke tumor. De opkomst van de EGFR-mutatie T790M komt voor bij ongeveer 50-70% van de patiënten met verworven resistentie tegen EGFR-TKI's. Andere EGFR-mutaties en mutaties in fosfatidylinositol-4,5-bisfosfaat 3-kinase katalytische subeenheid alfa (PIK3CA) en B-Raf Proto-Oncogen (BRAF) worden ook in verband gebracht met EGFR-TKI-resistentie, maar ze komen met lage frequenties voor. Resistentie tegen ALK-TKI is complexer en omvat verschillende resistente mutaties.
TKI-resistentie blijft een groot probleem bij de klinische behandeling van NSCLC. Patiënten met verworven resistentie kunnen worden behandeld met TKI's van de tweede generatie, hoewel er nog geen door de FDA zijn goedgekeurd, of met combinatietherapiestrategieën. Daarom is moleculaire karakterisering van de tumor tijdens het ziekteverloop nuttig om nieuwe geneesmiddelen af te stemmen op het evoluerende genomische profiel van de tumor en om effectieve gepersonaliseerde therapieën te begeleiden. Seriële weefselbemonstering om de moleculaire handtekeningen van de tumor te controleren, is echter invasief, onpraktisch en geen routinematige klinische praktijk. Het verkrijgen van voldoende weefselmateriaal voor genotypering is ook een grote hindernis bij weefselbemonstering. Er is behoefte aan het ontwikkelen van een technologie die niet-invasieve seriële analyse van de genomische tumorprofielen mogelijk maakt.
Celvrij circulerend DNA is gefragmenteerd DNA dat in de bloedsomloop wordt aangetroffen en dat niet is geassocieerd met cellen of celfragmenten. Wanneer tumorcellen afsterven, geven ze tumor-DNA vrij in de bloedbaan. Het celvrij circulerend DNA dat is afgeleid van tumoren, bekend als circulerend tumor-DNA (ctDNA), bevat mutaties die aanwezig zijn in de tumor en kan daarom worden onderscheiden van celvrij circulerend DNA dat is afgeleid van normale cellen. Het is aangetoond dat de detectie van ctDNA en de concentratie ervan correleren met het tumorstadium en de overleving van kanker. Bovendien kan ctDNA in plasma worden gebruikt om genomische veranderingen in solide kankers te detecteren, en dat er een hoge overeenstemming is in gedetecteerde mutaties tussen gepaarde in formaline gefixeerde in paraffine ingebedde (FFPE) en plasma-DNA-monsters.
In een onderzoek naar verworven resistentie tegen EGFR-blokkade bij patiënten met colorectale kanker, werden herhaalde serummonsters verzameld met tussenpozen van 4 weken tot ziekteprogressie. Met behulp van wiskundige modellering had deze studie de volgende belangrijke bevindingen: er waren resistente mutaties aanwezig in een klonale subpopulatie binnen de tumoren voordat de behandeling werd gestart, het duurde een redelijk consistente periode (ongeveer 5-6 maanden) voordat de subkloon zich uitbreidde en de laesie opnieuw bevolken, en circulerende resistente mutaties konden enkele maanden vóór radiografisch bewijs van ziekteprogressie worden gedetecteerd. Deze baanbrekende studie toonde het potentieel aan van het gebruik van een ctDNA-test om genomische evolutie en selectie in tumoren op een niet-invasieve manier te volgen om geïndividualiseerde therapieën te vergemakkelijken en zo remissie te verlengen.
De onderzoekers hebben plasmadetectie van EGFR-mutaties aangetoond bij patiënten met longadenocarcinoom in een gevorderd stadium die EGFR-mutaties dragen, wat correleert met de prognose van proefpersonen op EGFR-TKI. Eén prospectieve studie had real-time polymerasekettingreactie (RT-PCR) gebruikt om EGFR-mutaties in ctDNA van patiënten met gevorderde NSCLC te detecteren. Van de patiënten die EGFR-mutatie + hadden bij baseline (vóór de behandeling), hadden degenen die de EGFR-mutatie verloren in cyclus 3 van de behandeling (chemotherapie +/- erlotinib) een betere progressievrije overleving; de mediane overleving was 7,2 vs. 12,0 maanden bij patiënten die EGFR-mutatie (+,+) en (+,-) hadden bij respectievelijk baseline en cyclus 3.
Andere studies hebben ook de haalbaarheid aangetoond van andere oncogene mutaties, met name de KRAS-mutatie.
Hoewel deze onderzoeken de haalbaarheid aantoonden van het detecteren van tumormutaties in ctDNA, waren ze beperkt tot het onderzoeken van een enkel gen (bijv. EGFR of KRAS).
Andere studies hadden sequencing van de volgende generatie toegepast bij patiënten met NSCLC. Het laboratorium van Max Diehn aan de Stanford University heeft een methode ontwikkeld om ctDNA te kwantificeren door diepe sequencing van >130 genen. Bij 17 patiënten met gepaarde plasma-DNA- en tumorweefselmonsters konden ze alle mutaties detecteren die eerder in weefsel waren geïdentificeerd, plus vele andere somatische varianten. Ze ontdekten ook dat de niveaus van ctDNA sterk gecorreleerd waren met het tumorvolume. Hun studie onderzocht meerdere genen, maar had geen prospectieve component om ctDNA-mutaties te volgen en specifieke mutaties te correleren met het behandelresultaat.
Het testen van ctDNA bij patiënten die chemotherapie krijgen is nog nooit gedaan. Genomische profilering kan mutaties identificeren die verband houden met resistentie tegen en respons op chemotherapie.
De onderzoekers stellen daarom een longitudinaal onderzoek voor bij patiënten met gevorderde NSCLC die behandeld zijn met eerstelijns TKI of chemotherapie om seriële bloedmonsters prospectief te verzamelen en, met behulp van de volgende generatie sequencing van ctDNA, om de evolutionaire genomische profielen te onderzoeken. Deze studie heeft tot doel de bruikbaarheid van de ctDNA-test te evalueren bij het identificeren van genomische markers om behandelingsrespons en overleving te voorspellen bij patiënten met gevorderde NSCLC.
Deze voorgestelde studie zal de bruikbaarheid van ctDNA onderzoeken bij het identificeren van genomische markers voor NSCLC-prognose bij patiënten die worden behandeld met eerstelijns TKI of chemotherapie. Na de diagnose worden patiënten gevolgd met tussenpozen van 3 maanden. Bij elk studiebezoek worden plasmamonsters afgenomen en, indien klinisch geïndiceerd, ook weefselmonsters. Genomische profilering van tumoren zal worden uitgevoerd in het FFPE-weefselmonster en in ctDNA dat is geëxtraheerd uit de prospectief verzamelde plasmamonsters. De doelstellingen zijn:
- Concordantie en discordantie bepalen van somatische mutaties gevonden in ctDNA en tumorweefsel-DNA.
- Om mutaties in ctDNA te identificeren die verband houden met de prognose (behandelingsrespons en progressievrije overleving) bij patiënten die (a) EGFR-TKI-behandeling, (b) ALK-TKI-behandeling of (c) chemotherapie ondergaan.
- Om het moleculaire tijdsverloop te volgen in termen van (a) variatie van de totale ctDNA-concentratie in de loop van de tijd, (b) wanneer de mutaties geassocieerd met resistentie/recidief voor het eerst detecteerbaar zijn in plasma, en (c) hoe de mutatiefracties van de resistentie-geassocieerde mutaties variëren in de tijd.
- Informatie uit doel 2 en 3 combineren om voorspellingsmodellen te ontwikkelen voor prognose bij patiënten die (a) EGFR-TKI-behandeling, (b) ALK-TKI-behandeling of (c) chemotherapie krijgen.
Studietype
Inschrijving (Verwacht)
Contacten en locaties
Studie Locaties
-
-
-
Hong Kong, Hongkong
- Werving
- University of Hong Kong Queen Mary Hospital
-
-
Deelname Criteria
Geschiktheidscriteria
Leeftijden die in aanmerking komen voor studie
Accepteert gezonde vrijwilligers
Geslachten die in aanmerking komen voor studie
Bemonsteringsmethode
Studie Bevolking
Beschrijving
Inclusiecriteria:
- Patiënten komen in aanmerking als ze (1) gediagnosticeerd zijn met primair adenocarcinoom, (2) geen gelijktijdige kankers hebben, (3) TKI of chemo als eerstelijnsbehandeling zullen krijgen, en (4) bereid zijn geïnformeerde toestemming te ondertekenen en zich hebben ingeschreven in het onderzoek voordat de behandeling begint.
Uitsluitingscriteria:
- Patiënten hebben andere gelijktijdige kankers
- Patiënten die niet in aanmerking komen krijgen TKI of chemo als eerstelijnsbehandeling
- Patiënten die geen geïnformeerde toestemming willen of kunnen ondertekenen
- Histologie anders dan adenocarcinoom
Studie plan
Hoe is de studie opgezet?
Ontwerpdetails
Cohorten en interventies
Groep / Cohort |
Interventie / Behandeling |
|---|---|
|
Patiënt ontvangt TKI
Patiënten worden gediagnosticeerd met primair adenocarcinoom en hebben geen gelijktijdige kankers en zullen een TKI krijgen
|
Sequentiebepaling van ctDNA in plasma
|
|
Patiënt krijgt ALK-TKI
Patiënten worden gediagnosticeerd met primair adenocarcinoom en hebben geen gelijktijdige kankers en gaan ALK-TKI krijgen
|
Sequentiebepaling van ctDNA in plasma
|
|
Patiënt krijgt chemotherapie
Patiënten worden gediagnosticeerd met primair adenocarcinoom en hebben geen gelijktijdige kankers en krijgen chemotherapie
|
Sequentiebepaling van ctDNA in plasma
|
Wat meet het onderzoek?
Primaire uitkomstmaten
Uitkomstmaat |
Maatregel Beschrijving |
Tijdsspanne |
|---|---|---|
|
ctDNA-mutatie
Tijdsspanne: gemiddeld een jaar
|
Soorten ctDNA-mutaties
|
gemiddeld een jaar
|
|
Eventuele nieuwe ctDNA-mutaties
Tijdsspanne: gemiddeld een jaar
|
Soorten nieuwe ctDNA-mutaties
|
gemiddeld een jaar
|
Secundaire uitkomstmaten
Uitkomstmaat |
Maatregel Beschrijving |
Tijdsspanne |
|---|---|---|
|
ctDNA-niveaus [gemeten als aantal kopieën]
Tijdsspanne: gemiddeld een jaar
|
Aantal ctDNA-mutaties
|
gemiddeld een jaar
|
|
Eventuele nieuwe ctDNA-niveaus [gemeten als kopienummer]
Tijdsspanne: gemiddeld een jaar
|
Hoeveelheid nieuw type ctDNA
|
gemiddeld een jaar
|
Medewerkers en onderzoekers
Sponsor
Medewerkers
Publicaties en nuttige links
Algemene publicaties
- Siegel R, Naishadham D, Jemal A. Cancer statistics, 2012. CA Cancer J Clin. 2012 Jan-Feb;62(1):10-29. doi: 10.3322/caac.20138. Epub 2012 Jan 4.
- Bettegowda C, Sausen M, Leary RJ, Kinde I, Wang Y, Agrawal N, Bartlett BR, Wang H, Luber B, Alani RM, Antonarakis ES, Azad NS, Bardelli A, Brem H, Cameron JL, Lee CC, Fecher LA, Gallia GL, Gibbs P, Le D, Giuntoli RL, Goggins M, Hogarty MD, Holdhoff M, Hong SM, Jiao Y, Juhl HH, Kim JJ, Siravegna G, Laheru DA, Lauricella C, Lim M, Lipson EJ, Marie SK, Netto GJ, Oliner KS, Olivi A, Olsson L, Riggins GJ, Sartore-Bianchi A, Schmidt K, Shih lM, Oba-Shinjo SM, Siena S, Theodorescu D, Tie J, Harkins TT, Veronese S, Wang TL, Weingart JD, Wolfgang CL, Wood LD, Xing D, Hruban RH, Wu J, Allen PJ, Schmidt CM, Choti MA, Velculescu VE, Kinzler KW, Vogelstein B, Papadopoulos N, Diaz LA Jr. Detection of circulating tumor DNA in early- and late-stage human malignancies. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra24. doi: 10.1126/scitranslmed.3007094.
- Maheswaran S, Sequist LV, Nagrath S, Ulkus L, Brannigan B, Collura CV, Inserra E, Diederichs S, Iafrate AJ, Bell DW, Digumarthy S, Muzikansky A, Irimia D, Settleman J, Tompkins RG, Lynch TJ, Toner M, Haber DA. Detection of mutations in EGFR in circulating lung-cancer cells. N Engl J Med. 2008 Jul 24;359(4):366-77. doi: 10.1056/NEJMoa0800668. Epub 2008 Jul 2.
- Gadgeel SM, Ramalingam SS, Kalemkerian GP. Treatment of lung cancer. Radiol Clin North Am. 2012 Sep;50(5):961-74. doi: 10.1016/j.rcl.2012.06.003.
- Nesbitt JC, Putnam JB Jr, Walsh GL, Roth JA, Mountain CF. Survival in early-stage non-small cell lung cancer. Ann Thorac Surg. 1995 Aug;60(2):466-72. doi: 10.1016/0003-4975(95)00169-l.
- Subramanian J, Govindan R. Lung cancer in never smokers: a review. J Clin Oncol. 2007 Feb 10;25(5):561-70. doi: 10.1200/JCO.2006.06.8015.
- Antonicelli A, Cafarotti S, Indini A, Galli A, Russo A, Cesario A, Lococo FM, Russo P, Mainini AF, Bonifati LG, Nosotti M, Santambrogio L, Margaritora S, Granone PM, Dutly AE. EGFR-targeted therapy for non-small cell lung cancer: focus on EGFR oncogenic mutation. Int J Med Sci. 2013;10(3):320-30. doi: 10.7150/ijms.4609. Epub 2013 Feb 11.
- Shaw AT, Engelman JA. ALK in lung cancer: past, present, and future. J Clin Oncol. 2013 Mar 10;31(8):1105-11. doi: 10.1200/JCO.2012.44.5353. Epub 2013 Feb 11.
- Cabezon-Gutierrez L, Khosravi-Shahi P, Diaz-Munoz-de-la-Espada VM, Carrion-Galindo JR, Erana-Tomas I, Castro-Otero M. ALK-mutated non-small-cell lung cancer: a new strategy for cancer treatment. Lung. 2012 Aug;190(4):381-8. doi: 10.1007/s00408-012-9391-y. Epub 2012 May 15.
- Mok TS, Wu YL, Thongprasert S, Yang CH, Chu DT, Saijo N, Sunpaweravong P, Han B, Margono B, Ichinose Y, Nishiwaki Y, Ohe Y, Yang JJ, Chewaskulyong B, Jiang H, Duffield EL, Watkins CL, Armour AA, Fukuoka M. Gefitinib or carboplatin-paclitaxel in pulmonary adenocarcinoma. N Engl J Med. 2009 Sep 3;361(10):947-57. doi: 10.1056/NEJMoa0810699. Epub 2009 Aug 19.
- Fukuoka M, Wu YL, Thongprasert S, Sunpaweravong P, Leong SS, Sriuranpong V, Chao TY, Nakagawa K, Chu DT, Saijo N, Duffield EL, Rukazenkov Y, Speake G, Jiang H, Armour AA, To KF, Yang JC, Mok TS. Biomarker analyses and final overall survival results from a phase III, randomized, open-label, first-line study of gefitinib versus carboplatin/paclitaxel in clinically selected patients with advanced non-small-cell lung cancer in Asia (IPASS). J Clin Oncol. 2011 Jul 20;29(21):2866-74. doi: 10.1200/JCO.2010.33.4235. Epub 2011 Jun 13.
- Lee CK, Brown C, Gralla RJ, Hirsh V, Thongprasert S, Tsai CM, Tan EH, Ho JC, Chu da T, Zaatar A, Osorio Sanchez JA, Vu VV, Au JS, Inoue A, Lee SM, Gebski V, Yang JC. Impact of EGFR inhibitor in non-small cell lung cancer on progression-free and overall survival: a meta-analysis. J Natl Cancer Inst. 2013 May 1;105(9):595-605. doi: 10.1093/jnci/djt072. Epub 2013 Apr 17.
- Gao G, Ren S, Li A, Xu J, Xu Q, Su C, Guo J, Deng Q, Zhou C. Epidermal growth factor receptor-tyrosine kinase inhibitor therapy is effective as first-line treatment of advanced non-small-cell lung cancer with mutated EGFR: A meta-analysis from six phase III randomized controlled trials. Int J Cancer. 2012 Sep 1;131(5):E822-9. doi: 10.1002/ijc.27396. Epub 2012 Jan 27.
- Shaw AT, Kim DW, Nakagawa K, Seto T, Crino L, Ahn MJ, De Pas T, Besse B, Solomon BJ, Blackhall F, Wu YL, Thomas M, O'Byrne KJ, Moro-Sibilot D, Camidge DR, Mok T, Hirsh V, Riely GJ, Iyer S, Tassell V, Polli A, Wilner KD, Janne PA. Crizotinib versus chemotherapy in advanced ALK-positive lung cancer. N Engl J Med. 2013 Jun 20;368(25):2385-94. doi: 10.1056/NEJMoa1214886. Epub 2013 Jun 1. Erratum In: N Engl J Med. 2015 Oct 15;373(16):1582.
- Hsu KH, Chen KC, Yang TY, Yeh YC, Chou TY, Chen HY, Tsai CR, Chen CY, Hsu CP, Hsia JY, Chuang CY, Tsai YH, Chen KY, Huang MS, Su WC, Chen YM, Hsiung CA, Chang GC, Chen CJ, Yang PC. Epidermal growth factor receptor mutation status in stage I lung adenocarcinoma with different image patterns. J Thorac Oncol. 2011 Jun;6(6):1066-72. doi: 10.1097/JTO.0b013e31821667b0.
- Shi Y, Au JS, Thongprasert S, Srinivasan S, Tsai CM, Khoa MT, Heeroma K, Itoh Y, Cornelio G, Yang PC. A prospective, molecular epidemiology study of EGFR mutations in Asian patients with advanced non-small-cell lung cancer of adenocarcinoma histology (PIONEER). J Thorac Oncol. 2014 Feb;9(2):154-62. doi: 10.1097/JTO.0000000000000033.
- Suda K, Mizuuchi H, Maehara Y, Mitsudomi T. Acquired resistance mechanisms to tyrosine kinase inhibitors in lung cancer with activating epidermal growth factor receptor mutation--diversity, ductility, and destiny. Cancer Metastasis Rev. 2012 Dec;31(3-4):807-14. doi: 10.1007/s10555-012-9391-7.
- Inukai M, Toyooka S, Ito S, Asano H, Ichihara S, Soh J, Suehisa H, Ouchida M, Aoe K, Aoe M, Kiura K, Shimizu N, Date H. Presence of epidermal growth factor receptor gene T790M mutation as a minor clone in non-small cell lung cancer. Cancer Res. 2006 Aug 15;66(16):7854-8. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-06-1951.
- Diaz LA Jr, Williams RT, Wu J, Kinde I, Hecht JR, Berlin J, Allen B, Bozic I, Reiter JG, Nowak MA, Kinzler KW, Oliner KS, Vogelstein B. The molecular evolution of acquired resistance to targeted EGFR blockade in colorectal cancers. Nature. 2012 Jun 28;486(7404):537-40. doi: 10.1038/nature11219.
- Arcila ME, Oxnard GR, Nafa K, Riely GJ, Solomon SB, Zakowski MF, Kris MG, Pao W, Miller VA, Ladanyi M. Rebiopsy of lung cancer patients with acquired resistance to EGFR inhibitors and enhanced detection of the T790M mutation using a locked nucleic acid-based assay. Clin Cancer Res. 2011 Mar 1;17(5):1169-80. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-10-2277. Epub 2011 Jan 19.
- Sequist LV, Waltman BA, Dias-Santagata D, Digumarthy S, Turke AB, Fidias P, Bergethon K, Shaw AT, Gettinger S, Cosper AK, Akhavanfard S, Heist RS, Temel J, Christensen JG, Wain JC, Lynch TJ, Vernovsky K, Mark EJ, Lanuti M, Iafrate AJ, Mino-Kenudson M, Engelman JA. Genotypic and histological evolution of lung cancers acquiring resistance to EGFR inhibitors. Sci Transl Med. 2011 Mar 23;3(75):75ra26. doi: 10.1126/scitranslmed.3002003.
- Ohashi K, Maruvka YE, Michor F, Pao W. Epidermal growth factor receptor tyrosine kinase inhibitor-resistant disease. J Clin Oncol. 2013 Mar 10;31(8):1070-80. doi: 10.1200/JCO.2012.43.3912. Epub 2013 Feb 11.
- Giroux S. Overcoming acquired resistance to kinase inhibition: the cases of EGFR, ALK and BRAF. Bioorg Med Chem Lett. 2013 Jan 15;23(2):394-401. doi: 10.1016/j.bmcl.2012.11.037. Epub 2012 Nov 21.
- Diaz LA Jr, Bardelli A. Liquid biopsies: genotyping circulating tumor DNA. J Clin Oncol. 2014 Feb 20;32(6):579-86. doi: 10.1200/JCO.2012.45.2011. Epub 2014 Jan 21.
- Perkins G, Yap TA, Pope L, Cassidy AM, Dukes JP, Riisnaes R, Massard C, Cassier PA, Miranda S, Clark J, Denholm KA, Thway K, Gonzalez De Castro D, Attard G, Molife LR, Kaye SB, Banerji U, de Bono JS. Multi-purpose utility of circulating plasma DNA testing in patients with advanced cancers. PLoS One. 2012;7(11):e47020. doi: 10.1371/journal.pone.0047020. Epub 2012 Nov 7.
- Dawson SJ, Tsui DW, Murtaza M, Biggs H, Rueda OM, Chin SF, Dunning MJ, Gale D, Forshew T, Mahler-Araujo B, Rajan S, Humphray S, Becq J, Halsall D, Wallis M, Bentley D, Caldas C, Rosenfeld N. Analysis of circulating tumor DNA to monitor metastatic breast cancer. N Engl J Med. 2013 Mar 28;368(13):1199-209. doi: 10.1056/NEJMoa1213261. Epub 2013 Mar 13.
- Murtaza M, Dawson SJ, Tsui DW, Gale D, Forshew T, Piskorz AM, Parkinson C, Chin SF, Kingsbury Z, Wong AS, Marass F, Humphray S, Hadfield J, Bentley D, Chin TM, Brenton JD, Caldas C, Rosenfeld N. Non-invasive analysis of acquired resistance to cancer therapy by sequencing of plasma DNA. Nature. 2013 May 2;497(7447):108-12. doi: 10.1038/nature12065. Epub 2013 Apr 7.
- Lam DC, Tam TC, Lau KM, Wong WM, Hui CK, Lam JC, Wang JK, Lui MM, Ho JC, Ip MS. Plasma EGFR Mutation Detection Associated With Survival Outcomes in Advanced-Stage Lung Cancer. Clin Lung Cancer. 2015 Nov;16(6):507-13. doi: 10.1016/j.cllc.2015.06.003. Epub 2015 Jun 24.
- Yam I, Lam DC, Chan K, Chung-Man Ho J, Ip M, Lam WK, Chan TK, Chan V. EGFR array: uses in the detection of plasma EGFR mutations in non-small cell lung cancer patients. J Thorac Oncol. 2012 Jul;7(7):1131-40. doi: 10.1097/JTO.0b013e3182558198.
- Freidin MB, Freydina DV, Leung M, Montero Fernandez A, Nicholson AG, Lim E. Circulating tumor DNA outperforms circulating tumor cells for KRAS mutation detection in thoracic malignancies. Clin Chem. 2015 Oct;61(10):1299-304. doi: 10.1373/clinchem.2015.242453. Epub 2015 Aug 13.
- Uchida J, Kato K, Kukita Y, Kumagai T, Nishino K, Daga H, Nagatomo I, Inoue T, Kimura M, Oba S, Ito Y, Takeda K, Imamura F. Diagnostic Accuracy of Noninvasive Genotyping of EGFR in Lung Cancer Patients by Deep Sequencing of Plasma Cell-Free DNA. Clin Chem. 2015 Sep;61(9):1191-6. doi: 10.1373/clinchem.2015.241414. Epub 2015 Jul 23.
- Mok T, Wu YL, Lee JS, Yu CJ, Sriuranpong V, Sandoval-Tan J, Ladrera G, Thongprasert S, Srimuninnimit V, Liao M, Zhu Y, Zhou C, Fuerte F, Margono B, Wen W, Tsai J, Truman M, Klughammer B, Shames DS, Wu L. Detection and Dynamic Changes of EGFR Mutations from Circulating Tumor DNA as a Predictor of Survival Outcomes in NSCLC Patients Treated with First-line Intercalated Erlotinib and Chemotherapy. Clin Cancer Res. 2015 Jul 15;21(14):3196-203. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-14-2594. Epub 2015 Mar 31.
- Newman AM, Bratman SV, To J, Wynne JF, Eclov NC, Modlin LA, Liu CL, Neal JW, Wakelee HA, Merritt RE, Shrager JB, Loo BW Jr, Alizadeh AA, Diehn M. An ultrasensitive method for quantitating circulating tumor DNA with broad patient coverage. Nat Med. 2014 May;20(5):548-54. doi: 10.1038/nm.3519. Epub 2014 Apr 6.
Studie record data
Bestudeer belangrijke data
Studie start
Primaire voltooiing (VERWACHT)
Studie voltooiing (VERWACHT)
Studieregistratiedata
Eerst ingediend
Eerst ingediend dat voldeed aan de QC-criteria
Eerst geplaatst (WERKELIJK)
Updates van studierecords
Laatste update geplaatst (WERKELIJK)
Laatste update ingediend die voldeed aan QC-criteria
Laatst geverifieerd
Meer informatie
Termen gerelateerd aan deze studie
Trefwoorden
Aanvullende relevante MeSH-voorwaarden
Andere studie-ID-nummers
- HKU_UW_16_104
Deze informatie is zonder wijzigingen rechtstreeks van de website clinicaltrials.gov gehaald. Als u verzoeken heeft om uw onderzoeksgegevens te wijzigen, te verwijderen of bij te werken, neem dan contact op met register@clinicaltrials.gov. Zodra er een wijziging wordt doorgevoerd op clinicaltrials.gov, wordt deze ook automatisch bijgewerkt op onze website .