- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT03090815
DNA tumoral circulante (ctDNA) como ferramenta de prognóstico em pacientes com adenocarcinoma pulmonar avançado
O câncer de pulmão é a principal causa de morte por câncer nos EUA e em todo o mundo. Os cânceres de pulmão são amplamente divididos histologicamente em câncer de pulmão de pequenas células (CPPC) e câncer de pulmão de células não pequenas (NSCLC). Cerca de 25% dos pacientes com NSCLC têm doença em estágio I ou II. A modalidade primária de tratamento é a ressecção cirúrgica,2 e as taxas de sobrevida em 5 anos são de 65% para o estágio I e 41% para o estágio II da doença. No entanto, mais de 70% dos pacientes com NSCLC apresentam doença em estágio III ou IV. Pacientes com doença em estágio III são mais comumente tratados com quimiorradiação, e a taxa de sobrevida em 5 anos é de 26%. Quimioterapia e terapia direcionada são frequentemente usadas para doença em estágio IV, que tem uma taxa de sobrevida em 5 anos de 4%.
O inibidor de tirosina quinase (TKI) é uma terapia direcionada contra moléculas específicas em vias críticas de sinalização celular envolvidas na carcinogênese pulmonar. Os TKIs aprovados pela FDA atualmente disponíveis para NSCLC avançado incluem afatinibe, gefitinibe e erlotinibe que inibem a sinalização do receptor do fator de crescimento epidérmico (EGFR) 6 e crizotinibe que inibe a sinalização da quinase do linfoma anaplásico (ALK). No entanto, apenas os tumores que carregam as mutações oncogênicas correspondentes (por exemplo, mutações sensibilizantes do EGFR) responderiam bem a esses TKIs. Metanálises de ensaios clínicos avaliando a eficácia de gefitinibe e erlotinibe demonstraram que pacientes com NSCLC com mutação EGFR positiva têm menor risco de progressão da doença quando tratados com EGFR-TKI em comparação com aqueles tratados com quimioterapia (HR = 0,43, Intervalo de confiança de 95%, IC=0,38-0,49). O EGFR-TKI, no entanto, não confere benefícios aos pacientes que são EGFR do tipo selvagem (HR = 1,06, IC 95% = 0,94-1,19). Um estudo de fase III com crizotinibe também demonstrou a superioridade do crizotinibe à quimioterapia padrão em pacientes com CPNPC ALK-positivo (HR = 0,49; IC 95% = 0,37-0,64).
Em Hong Kong, como em outras partes da Ásia, como na China e em Taiwan, além da maioria dos pacientes com câncer de pulmão serem fumantes, há também uma proeminência de não fumantes no câncer de pulmão. Em comparação com os caucasianos, há também uma incidência relativamente maior de mutação EGFR em adenocarcinomas pulmonares. A prevalência da mutação EGFR na população asiática com adenocarcinomas pulmonares pode atingir até 60% em comparação com no máximo 30% na população caucasiana. Esses tumores mutantes de EGFR demonstrarão melhor resposta ao medicamento EGFR-TKI, aumentando a taxa de resposta para quase 70% em comparação com 30% com quimioterapia convencional para câncer de pulmão. Mesmo com esta resposta notável, no entanto, o EGFR-TKI acabará falhando no câncer de pulmão mutante do EGFR. Há uma necessidade iminente de procurar novos alvos terapêuticos ou agentes que possam superar essa resistência adquirida a drogas anticancerígenas e explorar vias alternativas de sinalização molecular que possam interagir ou melhorar as vias de sinalização do EGFR para modular a resposta terapêutica no câncer de pulmão.
Visão geral do estudo
Status
Condições
Intervenção / Tratamento
Descrição detalhada
Embora os EGFR e ALK-TKIs possam atingir uma taxa de resposta de até 70%, todos os pacientes tratados com TKIs invariavelmente desenvolvem resistência à terapia. A sobrevida mediana livre de progressão é de 10 a 16 meses. O mecanismo mais comum de resistência adquirida aos TKIs é a seleção clonal induzida por terapia de uma subpopulação menor de células cancerígenas resistentes que estavam presentes no tumor original. O surgimento da mutação EGFR T790M ocorre em cerca de 50-70% dos pacientes com resistência adquirida aos EGFR-TKIs. Outras mutações do EGFR e mutações na subunidade catalítica fosfatidilinositol-4,5-bifosfato 3-quinase alfa (PIK3CA) e B-Raf Proto-Oncogene (BRAF) também estão associadas à resistência ao EGFR-TKI, mas ocorrem em baixas frequências. A resistência ao ALK-TKI é mais complexa e envolve várias mutações resistentes.
A resistência ao TKI continua sendo um grande problema no manejo clínico do NSCLC. Pacientes com resistência adquirida podem ser tratados com TKIs de segunda geração, embora nenhum seja aprovado pela FDA ainda, ou por estratégias de terapia combinada. Portanto, a caracterização molecular do tumor ao longo do curso da doença é útil para combinar novos medicamentos com o perfil genômico em evolução do tumor e orientar terapias personalizadas eficazes. No entanto, a amostragem seriada de tecidos para monitorar as assinaturas moleculares do tumor é invasiva, impraticável e não é uma prática clínica de rotina. A obtenção de materiais de tecido suficientes para genotipagem também é um grande obstáculo na amostragem de tecidos. Existe a necessidade de desenvolver uma tecnologia que permita a análise seriada não invasiva dos perfis genômicos tumorais.
DNA circulante livre de células é DNA fragmentado encontrado em circulação que não está associado a células ou fragmentos celulares. Quando as células tumorais morrem, elas liberam o DNA tumoral na corrente sanguínea. O DNA circulante livre de células derivado de tumores, conhecido como DNA tumoral circulante (ctDNA), carrega mutações presentes no tumor e, portanto, pode ser distinguido do DNA circulante livre de células derivado de células normais. Foi demonstrado que a detecção de ctDNA e sua concentração se correlacionam com o estágio do tumor e a sobrevida do câncer. Além disso, o ctDNA no plasma pode ser usado para detectar alterações genômicas em cânceres sólidos, e que há uma alta concordância nas mutações detectadas entre amostras de DNA pareadas fixadas em formalina e embebidas em parafina (FFPE) e amostras de DNA de plasma.
Em um estudo de resistência adquirida ao bloqueio de EGFR em pacientes com câncer colorretal, amostras repetidas de soro foram coletadas em intervalos de 4 semanas até a progressão da doença. Usando modelagem matemática, este estudo teve as seguintes descobertas importantes: mutações resistentes estavam presentes em uma subpopulação clonal dentro dos tumores antes do início do tratamento, levou um período de tempo bastante consistente (cerca de 5-6 meses) para o subclone se expandir e repovoar a lesão, e mutações resistentes circulantes podem ser detectadas vários meses antes da evidência radiográfica da progressão da doença. Este estudo seminal demonstrou o potencial de usar um teste de ctDNA para rastrear a evolução genômica e a seleção em tumores de maneira não invasiva, a fim de facilitar terapias individualizadas e, portanto, prolongar a remissão.
Os investigadores demonstraram a detecção plasmática de mutações de EGFR em pacientes com estágio avançado de adenocarcinoma pulmonar apresentando mutações de EGFR, correlacionando-se com o prognóstico de indivíduos em EGFR-TKI. Um estudo prospectivo usou reação em cadeia da polimerase em tempo real (RT-PCR) para detectar mutações EGFR no ctDNA de pacientes com NSCLC avançado. Entre os pacientes que apresentavam mutação EGFR + no início do estudo (pré-tratamento), aqueles que perderam a mutação EGFR no ciclo 3 do tratamento (quimioterapia +/- erlotinibe) tiveram melhor sobrevida livre de progressão; a sobrevida mediana foi de 7,2 vs. 12,0 meses em pacientes com mutação EGFR (+,+) e (+,-) no início e no ciclo 3, respectivamente.
Outros estudos também demonstraram a viabilidade de outras mutações oncogênicas, especialmente a mutação KRAS.
Embora esses estudos tenham demonstrado a viabilidade de detectar mutações tumorais no ctDNA, eles se limitaram a examinar um único gene (por exemplo, EGFR ou KRAS).
Outros estudos aplicaram o sequenciamento de próxima geração em pacientes com NSCLC. O laboratório de Max Diehn na Universidade de Stanford desenvolveu um método para quantificar o ctDNA por sequenciamento profundo de mais de 130 genes. Em 17 pacientes com DNA plasmático pareado e amostras de tecido tumoral, eles foram capazes de detectar todas as mutações previamente identificadas no tecido, além de muitas variantes somáticas adicionais. Eles também descobriram que os níveis de ctDNA estão altamente correlacionados com o volume do tumor. Seu estudo examinou vários genes, mas não teve um componente prospectivo para rastrear mutações do ctDNA e correlacionar mutações específicas com o resultado do tratamento.
O teste de ctDNA em pacientes que recebem quimioterapia nunca foi feito. O perfil genômico pode identificar mutações associadas à resistência e resposta à quimioterapia.
Os pesquisadores, portanto, propõem um estudo longitudinal em pacientes com NSCLC avançado tratados com TKI de primeira linha ou quimioterapia para coletar amostras de sangue em série prospectivamente e, usando sequenciamento de próxima geração de ctDNA, para examinar os perfis genômicos evolutivos. Este estudo tem como objetivo avaliar a utilidade do teste de ctDNA na identificação de marcadores genômicos para predizer a resposta ao tratamento e sobrevida em pacientes com NSCLC avançado.
Este estudo proposto examinará as utilidades do ctDNA na identificação de marcadores genômicos para prognóstico de NSCLC em pacientes tratados com TKI de primeira linha ou quimioterapia. Após o diagnóstico, os pacientes serão acompanhados em intervalos de 3 meses. A cada visita do estudo, serão coletadas amostras de plasma e, sempre que clinicamente indicado, também serão obtidas amostras de tecido. O perfil genômico dos tumores será feito na amostra de tecido FFPE e no ctDNA extraído das amostras de plasma coletadas prospectivamente. Os objetivos são:
- Determinar a concordância e discordância de mutações somáticas encontradas no ctDNA e no DNA do tecido tumoral.
- Identificar mutações no ctDNA associadas ao prognóstico (resposta ao tratamento e sobrevida livre de progressão) em pacientes que recebem (a) tratamento com EGFR-TKI, (b) tratamento com ALK-TKI ou (c) quimioterapia.
- Para rastrear o curso do tempo molecular em termos de (a) variação da concentração total de ctDNA ao longo do tempo, (b) quando as mutações associadas à resistência/recorrência são detectadas pela primeira vez no plasma e (c) como as frações de mutação das mutações associadas à resistência mutações variam ao longo do tempo.
- Combinar informações dos Objetivos 2 e 3 para desenvolver modelos de previsão para prognóstico em pacientes que recebem (a) tratamento com EGFR-TKI, (b) tratamento com ALK-TKI ou (c) quimioterapia.
Tipo de estudo
Inscrição (Antecipado)
Contactos e Locais
Locais de estudo
-
-
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Hong Kong, Hong Kong
- Recrutamento
- University of Hong Kong Queen Mary Hospital
-
-
Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Gêneros Elegíveis para o Estudo
Método de amostragem
População do estudo
Descrição
Critério de inclusão:
- Os pacientes são elegíveis se (1) forem diagnosticados com adenocarcinoma primário, (2) não tiverem cânceres concomitantes, (3) receberem TKI ou quimioterapia como terapia de primeira linha e (4) estiverem dispostos a assinar consentimento informado e inscritos no estudo antes do início do tratamento.
Critério de exclusão:
- Os pacientes têm outros tipos de câncer concomitantes
- Os pacientes que não são elegíveis recebem TKI ou quimioterapia como terapia de primeira linha
- Pacientes que não desejam ou não podem assinar o consentimento informado
- Histologia diferente de adenocarcinoma
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
Coortes e Intervenções
Grupo / Coorte |
Intervenção / Tratamento |
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Paciente recebendo TKI
Os pacientes são diagnosticados com adenocarcinoma primário e não têm cânceres concomitantes e vão receber TKI
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Sequenciamento de ctDNA no plasma
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Paciente recebendo ALK-TKI
Os pacientes são diagnosticados com adenocarcinoma primário e não têm cânceres concomitantes e receberão ALK-TKI
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Sequenciamento de ctDNA no plasma
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Paciente recebendo quimioterapia
Os pacientes são diagnosticados com adenocarcinoma primário e não têm cânceres concomitantes e vão receber quimioterapia
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Sequenciamento de ctDNA no plasma
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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mutação do ctDNA
Prazo: em média um ano
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Tipos de mutações do ctDNA
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em média um ano
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Quaisquer novas mutações de ctDNA
Prazo: em média um ano
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Tipos de novas mutações do ctDNA
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em média um ano
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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níveis de ctDNA [medidos como número de cópias]
Prazo: em média um ano
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Quantidade de mutações do ctDNA
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em média um ano
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Quaisquer novos níveis de ctDNA [medidos como número de cópias]
Prazo: em média um ano
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Quantidade de novo tipo de ctDNA
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em média um ano
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Siegel R, Naishadham D, Jemal A. Cancer statistics, 2012. CA Cancer J Clin. 2012 Jan-Feb;62(1):10-29. doi: 10.3322/caac.20138. Epub 2012 Jan 4.
- Bettegowda C, Sausen M, Leary RJ, Kinde I, Wang Y, Agrawal N, Bartlett BR, Wang H, Luber B, Alani RM, Antonarakis ES, Azad NS, Bardelli A, Brem H, Cameron JL, Lee CC, Fecher LA, Gallia GL, Gibbs P, Le D, Giuntoli RL, Goggins M, Hogarty MD, Holdhoff M, Hong SM, Jiao Y, Juhl HH, Kim JJ, Siravegna G, Laheru DA, Lauricella C, Lim M, Lipson EJ, Marie SK, Netto GJ, Oliner KS, Olivi A, Olsson L, Riggins GJ, Sartore-Bianchi A, Schmidt K, Shih lM, Oba-Shinjo SM, Siena S, Theodorescu D, Tie J, Harkins TT, Veronese S, Wang TL, Weingart JD, Wolfgang CL, Wood LD, Xing D, Hruban RH, Wu J, Allen PJ, Schmidt CM, Choti MA, Velculescu VE, Kinzler KW, Vogelstein B, Papadopoulos N, Diaz LA Jr. Detection of circulating tumor DNA in early- and late-stage human malignancies. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra24. doi: 10.1126/scitranslmed.3007094.
- Maheswaran S, Sequist LV, Nagrath S, Ulkus L, Brannigan B, Collura CV, Inserra E, Diederichs S, Iafrate AJ, Bell DW, Digumarthy S, Muzikansky A, Irimia D, Settleman J, Tompkins RG, Lynch TJ, Toner M, Haber DA. Detection of mutations in EGFR in circulating lung-cancer cells. N Engl J Med. 2008 Jul 24;359(4):366-77. doi: 10.1056/NEJMoa0800668. Epub 2008 Jul 2.
- Gadgeel SM, Ramalingam SS, Kalemkerian GP. Treatment of lung cancer. Radiol Clin North Am. 2012 Sep;50(5):961-74. doi: 10.1016/j.rcl.2012.06.003.
- Nesbitt JC, Putnam JB Jr, Walsh GL, Roth JA, Mountain CF. Survival in early-stage non-small cell lung cancer. Ann Thorac Surg. 1995 Aug;60(2):466-72. doi: 10.1016/0003-4975(95)00169-l.
- Subramanian J, Govindan R. Lung cancer in never smokers: a review. J Clin Oncol. 2007 Feb 10;25(5):561-70. doi: 10.1200/JCO.2006.06.8015.
- Antonicelli A, Cafarotti S, Indini A, Galli A, Russo A, Cesario A, Lococo FM, Russo P, Mainini AF, Bonifati LG, Nosotti M, Santambrogio L, Margaritora S, Granone PM, Dutly AE. EGFR-targeted therapy for non-small cell lung cancer: focus on EGFR oncogenic mutation. Int J Med Sci. 2013;10(3):320-30. doi: 10.7150/ijms.4609. Epub 2013 Feb 11.
- Shaw AT, Engelman JA. ALK in lung cancer: past, present, and future. J Clin Oncol. 2013 Mar 10;31(8):1105-11. doi: 10.1200/JCO.2012.44.5353. Epub 2013 Feb 11.
- Cabezon-Gutierrez L, Khosravi-Shahi P, Diaz-Munoz-de-la-Espada VM, Carrion-Galindo JR, Erana-Tomas I, Castro-Otero M. ALK-mutated non-small-cell lung cancer: a new strategy for cancer treatment. Lung. 2012 Aug;190(4):381-8. doi: 10.1007/s00408-012-9391-y. Epub 2012 May 15.
- Mok TS, Wu YL, Thongprasert S, Yang CH, Chu DT, Saijo N, Sunpaweravong P, Han B, Margono B, Ichinose Y, Nishiwaki Y, Ohe Y, Yang JJ, Chewaskulyong B, Jiang H, Duffield EL, Watkins CL, Armour AA, Fukuoka M. Gefitinib or carboplatin-paclitaxel in pulmonary adenocarcinoma. N Engl J Med. 2009 Sep 3;361(10):947-57. doi: 10.1056/NEJMoa0810699. Epub 2009 Aug 19.
- Fukuoka M, Wu YL, Thongprasert S, Sunpaweravong P, Leong SS, Sriuranpong V, Chao TY, Nakagawa K, Chu DT, Saijo N, Duffield EL, Rukazenkov Y, Speake G, Jiang H, Armour AA, To KF, Yang JC, Mok TS. Biomarker analyses and final overall survival results from a phase III, randomized, open-label, first-line study of gefitinib versus carboplatin/paclitaxel in clinically selected patients with advanced non-small-cell lung cancer in Asia (IPASS). J Clin Oncol. 2011 Jul 20;29(21):2866-74. doi: 10.1200/JCO.2010.33.4235. Epub 2011 Jun 13.
- Lee CK, Brown C, Gralla RJ, Hirsh V, Thongprasert S, Tsai CM, Tan EH, Ho JC, Chu da T, Zaatar A, Osorio Sanchez JA, Vu VV, Au JS, Inoue A, Lee SM, Gebski V, Yang JC. Impact of EGFR inhibitor in non-small cell lung cancer on progression-free and overall survival: a meta-analysis. J Natl Cancer Inst. 2013 May 1;105(9):595-605. doi: 10.1093/jnci/djt072. Epub 2013 Apr 17.
- Gao G, Ren S, Li A, Xu J, Xu Q, Su C, Guo J, Deng Q, Zhou C. Epidermal growth factor receptor-tyrosine kinase inhibitor therapy is effective as first-line treatment of advanced non-small-cell lung cancer with mutated EGFR: A meta-analysis from six phase III randomized controlled trials. Int J Cancer. 2012 Sep 1;131(5):E822-9. doi: 10.1002/ijc.27396. Epub 2012 Jan 27.
- Shaw AT, Kim DW, Nakagawa K, Seto T, Crino L, Ahn MJ, De Pas T, Besse B, Solomon BJ, Blackhall F, Wu YL, Thomas M, O'Byrne KJ, Moro-Sibilot D, Camidge DR, Mok T, Hirsh V, Riely GJ, Iyer S, Tassell V, Polli A, Wilner KD, Janne PA. Crizotinib versus chemotherapy in advanced ALK-positive lung cancer. N Engl J Med. 2013 Jun 20;368(25):2385-94. doi: 10.1056/NEJMoa1214886. Epub 2013 Jun 1. Erratum In: N Engl J Med. 2015 Oct 15;373(16):1582.
- Hsu KH, Chen KC, Yang TY, Yeh YC, Chou TY, Chen HY, Tsai CR, Chen CY, Hsu CP, Hsia JY, Chuang CY, Tsai YH, Chen KY, Huang MS, Su WC, Chen YM, Hsiung CA, Chang GC, Chen CJ, Yang PC. Epidermal growth factor receptor mutation status in stage I lung adenocarcinoma with different image patterns. J Thorac Oncol. 2011 Jun;6(6):1066-72. doi: 10.1097/JTO.0b013e31821667b0.
- Shi Y, Au JS, Thongprasert S, Srinivasan S, Tsai CM, Khoa MT, Heeroma K, Itoh Y, Cornelio G, Yang PC. A prospective, molecular epidemiology study of EGFR mutations in Asian patients with advanced non-small-cell lung cancer of adenocarcinoma histology (PIONEER). J Thorac Oncol. 2014 Feb;9(2):154-62. doi: 10.1097/JTO.0000000000000033.
- Suda K, Mizuuchi H, Maehara Y, Mitsudomi T. Acquired resistance mechanisms to tyrosine kinase inhibitors in lung cancer with activating epidermal growth factor receptor mutation--diversity, ductility, and destiny. Cancer Metastasis Rev. 2012 Dec;31(3-4):807-14. doi: 10.1007/s10555-012-9391-7.
- Inukai M, Toyooka S, Ito S, Asano H, Ichihara S, Soh J, Suehisa H, Ouchida M, Aoe K, Aoe M, Kiura K, Shimizu N, Date H. Presence of epidermal growth factor receptor gene T790M mutation as a minor clone in non-small cell lung cancer. Cancer Res. 2006 Aug 15;66(16):7854-8. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-06-1951.
- Diaz LA Jr, Williams RT, Wu J, Kinde I, Hecht JR, Berlin J, Allen B, Bozic I, Reiter JG, Nowak MA, Kinzler KW, Oliner KS, Vogelstein B. The molecular evolution of acquired resistance to targeted EGFR blockade in colorectal cancers. Nature. 2012 Jun 28;486(7404):537-40. doi: 10.1038/nature11219.
- Arcila ME, Oxnard GR, Nafa K, Riely GJ, Solomon SB, Zakowski MF, Kris MG, Pao W, Miller VA, Ladanyi M. Rebiopsy of lung cancer patients with acquired resistance to EGFR inhibitors and enhanced detection of the T790M mutation using a locked nucleic acid-based assay. Clin Cancer Res. 2011 Mar 1;17(5):1169-80. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-10-2277. Epub 2011 Jan 19.
- Sequist LV, Waltman BA, Dias-Santagata D, Digumarthy S, Turke AB, Fidias P, Bergethon K, Shaw AT, Gettinger S, Cosper AK, Akhavanfard S, Heist RS, Temel J, Christensen JG, Wain JC, Lynch TJ, Vernovsky K, Mark EJ, Lanuti M, Iafrate AJ, Mino-Kenudson M, Engelman JA. Genotypic and histological evolution of lung cancers acquiring resistance to EGFR inhibitors. Sci Transl Med. 2011 Mar 23;3(75):75ra26. doi: 10.1126/scitranslmed.3002003.
- Ohashi K, Maruvka YE, Michor F, Pao W. Epidermal growth factor receptor tyrosine kinase inhibitor-resistant disease. J Clin Oncol. 2013 Mar 10;31(8):1070-80. doi: 10.1200/JCO.2012.43.3912. Epub 2013 Feb 11.
- Giroux S. Overcoming acquired resistance to kinase inhibition: the cases of EGFR, ALK and BRAF. Bioorg Med Chem Lett. 2013 Jan 15;23(2):394-401. doi: 10.1016/j.bmcl.2012.11.037. Epub 2012 Nov 21.
- Diaz LA Jr, Bardelli A. Liquid biopsies: genotyping circulating tumor DNA. J Clin Oncol. 2014 Feb 20;32(6):579-86. doi: 10.1200/JCO.2012.45.2011. Epub 2014 Jan 21.
- Perkins G, Yap TA, Pope L, Cassidy AM, Dukes JP, Riisnaes R, Massard C, Cassier PA, Miranda S, Clark J, Denholm KA, Thway K, Gonzalez De Castro D, Attard G, Molife LR, Kaye SB, Banerji U, de Bono JS. Multi-purpose utility of circulating plasma DNA testing in patients with advanced cancers. PLoS One. 2012;7(11):e47020. doi: 10.1371/journal.pone.0047020. Epub 2012 Nov 7.
- Dawson SJ, Tsui DW, Murtaza M, Biggs H, Rueda OM, Chin SF, Dunning MJ, Gale D, Forshew T, Mahler-Araujo B, Rajan S, Humphray S, Becq J, Halsall D, Wallis M, Bentley D, Caldas C, Rosenfeld N. Analysis of circulating tumor DNA to monitor metastatic breast cancer. N Engl J Med. 2013 Mar 28;368(13):1199-209. doi: 10.1056/NEJMoa1213261. Epub 2013 Mar 13.
- Murtaza M, Dawson SJ, Tsui DW, Gale D, Forshew T, Piskorz AM, Parkinson C, Chin SF, Kingsbury Z, Wong AS, Marass F, Humphray S, Hadfield J, Bentley D, Chin TM, Brenton JD, Caldas C, Rosenfeld N. Non-invasive analysis of acquired resistance to cancer therapy by sequencing of plasma DNA. Nature. 2013 May 2;497(7447):108-12. doi: 10.1038/nature12065. Epub 2013 Apr 7.
- Lam DC, Tam TC, Lau KM, Wong WM, Hui CK, Lam JC, Wang JK, Lui MM, Ho JC, Ip MS. Plasma EGFR Mutation Detection Associated With Survival Outcomes in Advanced-Stage Lung Cancer. Clin Lung Cancer. 2015 Nov;16(6):507-13. doi: 10.1016/j.cllc.2015.06.003. Epub 2015 Jun 24.
- Yam I, Lam DC, Chan K, Chung-Man Ho J, Ip M, Lam WK, Chan TK, Chan V. EGFR array: uses in the detection of plasma EGFR mutations in non-small cell lung cancer patients. J Thorac Oncol. 2012 Jul;7(7):1131-40. doi: 10.1097/JTO.0b013e3182558198.
- Freidin MB, Freydina DV, Leung M, Montero Fernandez A, Nicholson AG, Lim E. Circulating tumor DNA outperforms circulating tumor cells for KRAS mutation detection in thoracic malignancies. Clin Chem. 2015 Oct;61(10):1299-304. doi: 10.1373/clinchem.2015.242453. Epub 2015 Aug 13.
- Uchida J, Kato K, Kukita Y, Kumagai T, Nishino K, Daga H, Nagatomo I, Inoue T, Kimura M, Oba S, Ito Y, Takeda K, Imamura F. Diagnostic Accuracy of Noninvasive Genotyping of EGFR in Lung Cancer Patients by Deep Sequencing of Plasma Cell-Free DNA. Clin Chem. 2015 Sep;61(9):1191-6. doi: 10.1373/clinchem.2015.241414. Epub 2015 Jul 23.
- Mok T, Wu YL, Lee JS, Yu CJ, Sriuranpong V, Sandoval-Tan J, Ladrera G, Thongprasert S, Srimuninnimit V, Liao M, Zhu Y, Zhou C, Fuerte F, Margono B, Wen W, Tsai J, Truman M, Klughammer B, Shames DS, Wu L. Detection and Dynamic Changes of EGFR Mutations from Circulating Tumor DNA as a Predictor of Survival Outcomes in NSCLC Patients Treated with First-line Intercalated Erlotinib and Chemotherapy. Clin Cancer Res. 2015 Jul 15;21(14):3196-203. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-14-2594. Epub 2015 Mar 31.
- Newman AM, Bratman SV, To J, Wynne JF, Eclov NC, Modlin LA, Liu CL, Neal JW, Wakelee HA, Merritt RE, Shrager JB, Loo BW Jr, Alizadeh AA, Diehn M. An ultrasensitive method for quantitating circulating tumor DNA with broad patient coverage. Nat Med. 2014 May;20(5):548-54. doi: 10.1038/nm.3519. Epub 2014 Apr 6.
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo
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Conclusão do estudo (ANTECIPADO)
Datas de inscrição no estudo
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