- ICH GCP
- 미국 임상 시험 레지스트리
- 임상시험 NCT04934111
COVID-19의 원인 물질인 SARS-CoV-2에 대한 LNP-nCOV saRNA-02 백신의 안전성 및 면역원성 (COVAC-Uganda)
SARS-CoV-2 혈청 음성 및 양성 우간다 인구에서 자가 증폭 리보핵산(saRNA) 백신인 LNP-nCOV saRNA-02의 안전성과 면역원성을 평가하기 위한 임상 시험
연구 개요
상세 설명
배경 진행 중인 대유행 코로나바이러스, 중증급성호흡기증후군 코로나바이러스 2(SARS-CoV-2)는 2019년 10월에서 11월 사이에 중국에서 인간에게 나타났고, 2019년 12월 중국에서 코로나바이러스 전염병 2019(COVID-19)가 확인되었습니다. .
2021년 1월 말까지 SARS-CoV-2는 전 세계적으로 1억 600만 명 이상의 확진 진단을 받았고, 그 결과 230만 명 이상이 사망하고 5900만 명 이상이 감염에서 회복되었습니다. 이것은 ~2%의 명목 감염 사망률(IFR)을 산출하고, 감염된 사람들의 약 10%가 6개월 이상 지속되는 건강 영향을 남겼습니다. 2021년 3월 8일 현재 우간다는 40,452건의 코로나바이러스 사례와 334건의 사망을 보고했습니다. COVAX를 통해 우간다는 2021년 3월 10일부터 AstraZeneca 백신(아데노바이러스 기반)을 출시하기 시작했습니다.
개발 중인 평가는 전 세계가 COVID-19 대유행에서 벗어날 수 있는 유일한 방법은 효과적인 백신의 배치를 통해서라는 것입니다. 다수의 백신이 개발되어 미국 식품의약국 및/또는 세계보건기구로부터 긴급 사용 승인을 받았습니다. 예를 들면 Pfizer-BioNTech 및 Moderna의 메신저 리보핵산(mRNA) 기반 백신이 포함되며 둘 다 95%의 효능을 보였습니다. Oxford-AstraZeneca의 ChAdOx1 nCoV-19와 Johnson and Johnson의 아데노바이러스 기반 백신은 각각 70%와 66%의 효능을 입증했습니다. 문제는 필요한 규모와 백신을 개발하고 배포해야 하는 기간과 함께 발생합니다. 자체 증폭 RNA(saRNA) 백신은 현재 팬데믹 또는 진행 중인 계절성 전염병 동안 SARS-CoV-2 문제를 해결하는 데 기여할 수 있는 새롭고 실현 가능하며 시간에 민감한 솔루션을 제공합니다.
연구는 핵산 기반 백신이 비인간 영장류(NHP) 연구에서 바이러스 감염으로부터 보호할 수 있음을 입증했으며, 유전자 기반 백신이 보호 항체를 유도할 수 있다는 개념의 증거를 제공합니다. 그러나 DNA 백신은 인간에서 중요한 면역 반응을 유도하기 위해 전기 천공법을 사용하여 여러 번 면역화해야 합니다. 비복제 mRNA 기반 치료제는 일반적으로 고용량의 RNA(100~600µg)가 필요합니다. 고용량에 대한 요구 사항 및 관련 비용은 비복제 mRNA가 전염병에 신속하게 대응하는 데 필요한 잠재적인 수억 개의 용량을 생산하는 데 어려움을 겪을 수 있음을 시사합니다. 대조적으로, 작은 동물 및 비인간 영장류(NHP) 실험은 saRNA가 전기천공 또는 mRNA로 전달된 DNA 백신과 비교하여 상당히 향상된 반응을 유도함을 시사한다. 실제로, saRNA 백신을 사용한 단일 면역화는 동물 모델에서 에볼라 바이러스에 대한 보호를 보여주었습니다. ≤10µg 용량의 saRNA가 COVID-19로부터 보호를 제공한다면 이는 1리터 반응 부피에서 100,000용량을 합성할 수 있는 제조에 중요한 이점을 제공할 것입니다. 바이러스 벡터와 대조적으로, 항 벡터 면역의 결여는 다중 RNA 암호화 면역원으로 반복 면역화를 위한 기회를 제공합니다.
1세대 saRNA 백신(LNP-nCoV-saRNA)은 이미 영국의 COVAC1 시험에서 인간에 대한 안전성 평가를 받고 있습니다. 이 1세대 saRNA 백신의 안전성은 처음에 건강한 젊은 성인, 즉 18-45세의 15명의 참가자를 대상으로 세 가지 다른 용량(0.1, 0.3 및 1µg) 중 하나를 근육에 주입하여 평가했습니다. 몇 주 동안 최저에서 최고까지. 현재까지 이 백신과 관련된 심각한 부작용(SAE)이 보고되지 않았으며 2등급 사건의 빈도도 낮습니다. 추가로 35명의 지원자가 각 용량에 대해 무작위 배정되었습니다. 지금까지 105명의 건강한 피험자가 각 용량에 걸쳐 2회 예방접종을 받았으며 2등급 사례는 거의 없었습니다. 모든 참가자는 안전하게 두 용량을 모두 받았습니다. 처음 15명의 피험자에 대한 초기 평가는 백신이 우수한 안전성 프로필을 보여주지만 혈청전환 수준(1ug 용량의 경우 75%)과 결합 항체가 전임상 모델에서 예상한 것보다 낮은 것으로 나타났습니다. 실제로 현재까지 생성된 데이터는 반응이 용량 반응 곡선의 하단에 있음을 시사합니다. 2.5, 5 및 10ug의 세 가지 더 높은 용량을 탐색하기 위해 추가 확장 단계가 시작되었습니다. 백신에 대한 인간 면역 반응과 전임상 모델 사이의 단절은 인간에서의 saRNA 발현 수준이 작은 동물 모델에서보다 덜 효과적이라는 것을 암시합니다. 현재 데이터는 0주와 4주에 투여된 5ug 용량이 2차 백신 접종 4주 후 대부분(83%)의 개인에게 허용 가능한 면역 반응을 유도함을 나타냅니다.
연구자들은 이 임상 시험에서 조사할 변형된 벡터인 LNP-nCOV saRNA-02를 사용하여 이 초기 디자인(COVAC1)을 개선했습니다.
이 연구(COVAC Uganda)는 saRNA 발현을 감소시키는 것으로 알려진 세포 단백질로부터 saRNA를 차폐함으로써 백신 효능을 증가시키도록 설계된 혁신적인 saRNA 백신(LNP-nCOV saRNA-02)을 평가할 것입니다. 연구자들은 수정된 백신의 안전성 프로필이 이미 인체 실험을 진행 중인 1세대 백신과 매우 유사할 것으로 예상합니다. COVAC Uganda는 변형된 백신의 다양한 용량 수준을 사용하여 면역 체계가 얼마나 잘 활성화되었는지 확인하기 위해 설계된 COVAC1 연구와 동일한 평가 기준을 사용할 것입니다. COVAC Uganda는 또한 SARS-CoV-2 혈청 양성 반응을 보이는 개인을 등록하여 혈청학적 이력을 기반으로 면역 반응을 평가할 것입니다. 18-45세의 혈청 음성 및 혈청 양성 참가자는 0주 및 4주에 5.0ug의 1회 용량을 투여받습니다. 혈청 음성은 IgG ≤ 10 AU mL-1 또는 IgM ≤ 10 AU mL-1로 정의되고 혈청 양성은 IgG ≥ 10 AU mL-1 또는 IgM ≥ 10 AU mL-1로 정의됩니다. 백신은 상완 근육에 주사하여 투여합니다. 주사 부위 근처에 경미한 부작용이 있을 수 있습니다. COVAC1에서 관찰된 바와 같이 두통, 발열 및 오한과 같은 보다 일반적인 부작용도 있을 수 있습니다. 참가자는 백신 일지에 증상을 기록해야 합니다. 면역 체계가 얼마나 잘 반응하는지 확인하기 위해 참가자는 처음 6주 동안 혈액 샘플을 여러 번 제공해야 합니다. 그런 다음 몇 달 동안 매달; 그러다가 6개월.
연구자들은 수정된 백신이 1세대 saRNA 백신보다 더 높은 수준의 중화 항체를 유도할 것이라고 예측합니다. 그러나 어떤 용량도 적절한 면역 반응을 유도하지 못하는 경우, 해당 용량을 받은 참여자에게 LNP-nCOV saRNA-02로 추가 면역을 제공할 수 없는 이유는 알려져 있지 않습니다. 안전한. 또한 COVAC Uganda 참가자가 벡터화 또는 보조 백신을 포함하여 승인된 다른 SARS-CoV-2 백신으로 안전하고 효과적인 것으로 입증된 경우 예방접종을 받을 수 없는 이유는 알려져 있지 않습니다.
연구 근거 이 SARS-CoV-2 전염병은 1억 6백만 명 이상을 감염시켰고 230만 명 이상을 죽였습니다. 새로운 동물원성 바이러스로서 집단 면역이 존재하지 않으며 현재까지 널리 사용 가능한 유일한 개입은 중환자실과 의료 시스템에 대한 압력을 줄이기 위한 사회적 거리두기이지만 이는 경제적 이유로 지속 가능하지 않습니다. 항바이러스제 및 기타 약물 요법에 대한 임상 시험이 진행 중이지만 대유행의 장기적인 의학적, 사회적 및 경제적 영향을 완화할 가능성이 가장 높은 개입은 여전히 인구 전반에 걸친 예방접종입니다.
성공적으로 승인된 COVID-19 백신이 출시되고 있음에도 불구하고 전 세계 의료 종사자, 65세 이상의 성인 및 고위험군(당뇨병, 심혈관 질환, 암 , 비만 또는 만성 호흡기 질환), 더 젊거나 건강한 코호트를 위한 용량은 말할 것도 없습니다.
최근 증거에 따르면 이전에 SARS-CoV-2에 감염된 개인의 경우 메신저 RNA 백신에 대한 면역 반응이 강화되었습니다. 이 시험은 자가 증폭 RNA 백신 후보의 영향에 대한 혈청전환의 역할을 조사하고, 이전에 감염된 개인을 위한 COVID-19 부스터 후보로서 LNP-nCOV saRNA-02의 적용 가능성에 대해 알려줄 것입니다.
전임상 데이터는 S-당단백질의 융합 전 안정화 버전을 암호화하는 LNP-nCOV saRNA-02 백신이 자연 감염보다 더 높은 비율의 개인(<50%)에서 중화 항체를 유도할 것이며 LNP-nCOV saRNA는 -02 백신은 1세대 구축물에 비해 증가된 면역원성 및/또는 용량 감소를 제공할 수 있으며 혈청 반응 양성인 개인에게도 제공할 수 있습니다.
연구 설계 이것은 현재 영국 COVAC1에서 평가 중인 LNP nCoV saRNA 백신을 사용한 임상 경험을 기반으로 하는 1상 임상 연구입니다. 임상시험은 혈청전환 상태에 따라 42명의 참가자를 두 그룹으로 할당하여 수석/주임 조사관이 감독하는 단일 센터에서 18-45세를 대상으로 수행됩니다.
피험자 모집단 이 개인이 가장 강력한 반응을 생성하기 때문에(18-45세) 건강한 젊은 성인에서 연구를 수행할 것입니다. 남성과 여성 참가자가 모두 포함되며 시험 사이트는 동등한 비율을 유지하려고 시도하지만 우선 순위는 시험에 대한 적시 발생을 보장하는 것입니다.
복용량과 감탄
참가자는 아래 표에 표시된 대로 0주와 4주에 삼각근에 LNP-nCOV saRNA-02 5ug의 IM 용량을 각각 1회 투여합니다.
연구 구성 요소 혈청학적 상태 경로 용량 백신접종 1 백신접종 2 혈청학적 그룹 SARS-CoV-2 음성 항체 IM 5.0ug LNP-CoV mod-saRNA-02 0주
방문 2주 4
방문 5 SARS-CoV-2 양성 항체 IM 5.0 ug LNP-CoV mod-saRNA-02 0주
방문 2주 4
방문 5
안전성 평가 백신은 요청된 유해 사례라고 하는 잘 특성화된 여러 국소, 전신 및 검사실 반응과 관련이 있습니다. 이러한 부작용은 의도적으로 수집됩니다.
국소 및 전신 평가는 각 주사 당일 주사 전과 주사 후 60분에 실시됩니다. 참가자는 각 주사 후 최소 1시간 동안 병원에 있어야 합니다.
참가자에게는 주사 후 7일 이내에 시작되는 부작용의 수집 및 등급 평가를 돕기 위해 백신 다이어리 카드가 제공됩니다. 연구 직원은 구조화된 인터뷰에서 요청된 부작용 목록을 검토하고 REDCap 데이터베이스의 적절한 eCRF에 등급과 함께 기록합니다. 전화 방문 중 하나에서 보고된 이벤트가 중등도(2등급) 또는 더 나쁜 경우 참가자는 검토를 위해 클리닉에 초대됩니다.
일상적인 안전 매개변수를 위한 혈액(~10mL)은 모든 연구 방문에서 수집됩니다. 총 빌리루빈이 상승하면 연구 직원은 이상 등급을 매기고 추가 조사 및 백신 일정 중단과 관련하여 취해야 할 조치를 결정하기 위해 결합 빌리루빈에 대한 결과를 요청합니다.
활력 징후(BP, HR, 산소 포화도 및 구강 온도)는 모든 연구 방문에서 측정될 것입니다.
주사 부위 및 필요한 경우 다른 신체 시스템의 신체 검사는 각 백신 접종 당일과 그 후 1주일에 수행됩니다. 증상에 따른 신체 검사는 다른 모든 후속 방문에서 수행됩니다.
연구 유형
등록 (예상)
단계
- 1단계
연락처 및 위치
연구 연락처
- 이름: Jonathan Kitonsa, MBchB, MPH
- 전화번호: +256774305403
- 이메일: Jonathan.Kitonsa@mrcuganda.org
연구 연락처 백업
- 이름: Benjamin Pierce, PhD
- 전화번호: 020 7594 6663
- 이메일: b.pierce@imperial.ac.uk
연구 장소
-
-
-
Entebbe, 우간다, P.O.Box 49 Entebbe
- 모병
- MRC/UVRI & LSHTM Uganda Research Unit
-
연락하다:
- Jonathan Kitonsa, MBchB, MPH
- 전화번호: +256774305403
- 이메일: Jonathan.Kitonsa@mrcuganda.org
-
-
참여기준
자격 기준
공부할 수 있는 나이
건강한 자원 봉사자를 받아들입니다
연구 대상 성별
설명
포함 기준:
- 검진 당일 만 18~45세 이하의 건강한 성인
- 일반 인구와 유사한 SARS-CoV-2 감염 위험
- 정보에 입각한 동의를 제공할 의지와 능력
- 여성이고 가임기인 경우, 스크리닝부터 마지막 주사 후 18주까지 매우 효과적인 피임 방법을 사용할 의향이 있습니다.
- 수컷이고 불임 수술을 하지 않은 경우, 마지막 주사 후 18주까지 스크리닝에서 여성 파트너를 임신시키지 않을 의사가 있음
- 1차 접종 전 4주 이내부터 2차 접종 후 22주까지 다른 모든 백신을 피하고자 하는 자
- 방문 일정을 준수하고, 백신 일지를 작성하고, 샘플을 제공할 의지와 능력이 있는 자
- 권한이 있는 사람에게 자신의 임상시험 관련 의료 기록 및 GP 기록에 직간접적으로 액세스 권한을 부여할 의향이 있습니다.
제외 기준:
- 임신 또는 수유
- 중요한 임상 병력, 스크리닝 중 임상 검사에서 신체적 소견이 있거나 심장, 호흡기, 내분비, 대사, 자가면역, 간, 신경, 종양, 정신, 면역억제/ 면역결핍 또는 연구자가 건강 상태와 양립할 수 없다고 생각하는 기타 장애, 중증 COVID-19의 위험 증가, 지원자의 안전을 위태롭게 할 수 있는 것, 예방접종을 배제하거나 백신에 대한 면역 반응의 해석을 위태롭게 할 수 있는 것. 경증/중등도, 잘 조절되는 동반 질환이 있는 개인은 허용됩니다.
- 아나필락시스 또는 혈관 부종의 병력
- 등록 시 활성 SARS-CoV-2 감염, DNA-PCR 테스트 기반
- 일치하지 않는 RDT 결과
- 약물 또는 약제에 대한 중증 또는 다중 알레르기 병력
다음과 같이 정의되는 예방접종에 대한 심각한 국소적 또는 일반적인 반응의 병력:
- 국소: 대부분의 팔을 포함하는 광범위하고 경직된 발적 및 부기, 72시간 이내에 해결되지 않음
- 일반: 48시간 이내에 발열 ≥39.5 °C; 기관지 경련; 후두 부종; 무너지다; 72시간 이내 경련 또는 뇌병증
- COVID-19에 대한 실험적 백신을 받은 적이 있습니다.
- 국소 이외의 경로로 스크리닝한 지 18주 이내에 면역억제제 투여
- C형 간염에 대한 항체 검출
- HIV에 대한 항체 검출
- 예방 백신 임상 시험에 등록된 건강한 성인 및 청소년 지원자를 위한 FDA 독성 표 독성 등급 척도를 사용하여 일상적인 실험실 매개변수의 등급 1 이상 이상. https://www.fda.gov/media/73679/download
- 조사 약물 또는 장치로 다른 임상 시험에 참여하거나 스크리닝 후 28일 이내에 조사 약물로 치료를 받음.
- 선별검사 후 28일 이내에 예방접종을 받은 자
- 승인된 COVID-19 백신을 맞았습니다.
공부 계획
연구는 어떻게 설계됩니까?
디자인 세부사항
- 주 목적: 방지
- 할당: 해당 없음
- 중재 모델: 단일 그룹 할당
- 마스킹: 없음(오픈 라벨)
무기와 개입
참가자 그룹 / 팔 |
개입 / 치료 |
|---|---|
|
실험적: LNP-nCOV saRNA-02 백신 암
이전에 SARS-CoV-2에 감염된 증거가 있는 참가자와 이전 감염 증거가 없는 참가자는 모두 LNP-nCOV saRNA-02 백신을 받습니다.
두 그룹 모두 0주와 4주에 5.0ug의 용량을 투여합니다.
|
COVID-19의 원인 물질인 SARS-CoV-2의 S 당단백질을 암호화하는 자가 증폭 리보핵산(saRNA) 백신
|
연구는 무엇을 측정합니까?
주요 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
요청된 국소 주사 부위 반응이 있는 참가자 수
기간: 매 주사 후 7일
|
백신 투여 후 7일 이내에 시작되는 요청된 국소 주사 부위 반응이 있는 참가자 수: 통증, 압통, 홍반, 부종
|
매 주사 후 7일
|
|
백신 투여 후 7일 이내에 전신 반응이 시작된 참가자 수
기간: 매 주사 후 7일
|
백신 투여 후 7일 이내에 시작하여 요청된 전신 반응이 나타난 참가자 수: 발열, 피로, 근육통, 두통, 오한, 관절통
|
매 주사 후 7일
|
|
연구 전반에 걸쳐 원치 않는 부작용(AR)이 발생한 참가자 수
기간: 6 개월
|
연구 기간 동안 원치 않는 부작용(AR)이 발생한 참가자 수(심각한 부작용 포함)
|
6 개월
|
|
심각한 부작용이 있는 참가자 수
기간: 6 개월
|
심각한 부작용이 있는 참가자 수
|
6 개월
|
|
요청하지 않은 부작용이 있는 참가자 수
기간: 6 개월
|
연구 기간 동안 원치 않는 부작용이 발생한 참가자 수
|
6 개월
|
|
SARS-CoV-2 슈도바이러스 기반 중화 분석에서 2차 접종 2주 후 혈청 중화항체 역가
기간: 1일차부터 6개월까지
|
SARS-CoV-2 슈도바이러스 기반 중화 분석에서 2차 접종 2주 후 혈청 중화항체 역가
|
1일차부터 6개월까지
|
|
1차 및 2차 백신 접종 2주 후 SARS-CoV-2 S 당단백질에 대한 백신 유도 혈청 IgG 결합 항체 반응 역가
기간: 1일차부터 6개월까지
|
1차 및 2차 백신 접종 2주 후 SARS-CoV-2 S 당단백질에 대한 백신 유도 혈청 IgG 결합 항체 반응 역가
|
1일차부터 6개월까지
|
2차 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
연구 참가자의 T 세포 및 B 세포 ELISpot으로 측정한 세포 매개 백신 유도 면역 반응
기간: 1일차부터 6개월까지
|
연구 참가자의 T 세포 및 B 세포 ELISpot으로 측정한 세포 매개 백신 유도 면역 반응
|
1일차부터 6개월까지
|
|
연구 참가자의 유세포 분석법 및 세포내 사이토카인 염색으로 측정한 세포 매개 백신 유도 면역 반응
기간: 1일차부터 6개월까지
|
연구 참가자의 유세포 분석법 및 세포내 사이토카인 염색으로 측정한 세포 매개 백신 유도 면역 반응
|
1일차부터 6개월까지
|
|
항체 반응의 부류 및 하위 부류의 프로필
기간: 1일차부터 6개월까지
|
항체 반응의 부류 및 하위 부류의 프로필
|
1일차부터 6개월까지
|
|
감염 및 감염 유발 면역의 실험실 마커
기간: 6개월의 재판을 통해
|
감염 및 감염 유발 면역의 실험실 마커
|
6개월의 재판을 통해
|
|
가능한 경우 반복 검사에서 확인된 모든 등급의 혈소판 감소증 발병률
기간: 6개월간의 재판을 통해
|
가능한 경우 반복 검사에서 확인된 모든 등급의 혈소판 감소증 발병률
|
6개월간의 재판을 통해
|
공동 작업자 및 조사자
수사관
- 수석 연구원: Pontiano Kaleebu, PhD, MRC/UVRI & LSHTM Uganda Research Unit
간행물 및 유용한 링크
일반 간행물
- Liu L, Wei Q, Lin Q, Fang J, Wang H, Kwok H, Tang H, Nishiura K, Peng J, Tan Z, Wu T, Cheung KW, Chan KH, Alvarez X, Qin C, Lackner A, Perlman S, Yuen KY, Chen Z. Anti-spike IgG causes severe acute lung injury by skewing macrophage responses during acute SARS-CoV infection. JCI Insight. 2019 Feb 21;4(4):e123158. doi: 10.1172/jci.insight.123158. eCollection 2019 Feb 21.
- Wan Y, Shang J, Sun S, Tai W, Chen J, Geng Q, He L, Chen Y, Wu J, Shi Z, Zhou Y, Du L, Li F. Molecular Mechanism for Antibody-Dependent Enhancement of Coronavirus Entry. J Virol. 2020 Feb 14;94(5):e02015-19. doi: 10.1128/JVI.02015-19. Print 2020 Feb 14.
- Crank MC, Ruckwardt TJ, Chen M, Morabito KM, Phung E, Costner PJ, Holman LA, Hickman SP, Berkowitz NM, Gordon IJ, Yamshchikov GV, Gaudinski MR, Kumar A, Chang LA, Moin SM, Hill JP, DiPiazza AT, Schwartz RM, Kueltzo L, Cooper JW, Chen P, Stein JA, Carlton K, Gall JG, Nason MC, Kwong PD, Chen GL, Mascola JR, McLellan JS, Ledgerwood JE, Graham BS; VRC 317 Study Team. A proof of concept for structure-based vaccine design targeting RSV in humans. Science. 2019 Aug 2;365(6452):505-509. doi: 10.1126/science.aav9033.
- Hadinegoro SR, Arredondo-Garcia JL, Capeding MR, Deseda C, Chotpitayasunondh T, Dietze R, Muhammad Ismail HI, Reynales H, Limkittikul K, Rivera-Medina DM, Tran HN, Bouckenooghe A, Chansinghakul D, Cortes M, Fanouillere K, Forrat R, Frago C, Gailhardou S, Jackson N, Noriega F, Plennevaux E, Wartel TA, Zambrano B, Saville M; CYD-TDV Dengue Vaccine Working Group. Efficacy and Long-Term Safety of a Dengue Vaccine in Regions of Endemic Disease. N Engl J Med. 2015 Sep 24;373(13):1195-206. doi: 10.1056/NEJMoa1506223. Epub 2015 Jul 27.
- Herbert AS, Kuehne AI, Barth JF, Ortiz RA, Nichols DK, Zak SE, Stonier SW, Muhammad MA, Bakken RR, Prugar LI, Olinger GG, Groebner JL, Lee JS, Pratt WD, Custer M, Kamrud KI, Smith JF, Hart MK, Dye JM. Venezuelan equine encephalitis virus replicon particle vaccine protects nonhuman primates from intramuscular and aerosol challenge with ebolavirus. J Virol. 2013 May;87(9):4952-64. doi: 10.1128/JVI.03361-12. Epub 2013 Feb 13.
- Li W, Ye L, Carrion R Jr, Mohan GS, Nunneley J, Staples H, Ticer A, Patterson JL, Compans RW, Yang C. Characterization of Immune Responses Induced by Ebola Virus Glycoprotein (GP) and Truncated GP Isoform DNA Vaccines and Protection Against Lethal Ebola Virus Challenge in Mice. J Infect Dis. 2015 Oct 1;212 Suppl 2(Suppl 2):S398-403. doi: 10.1093/infdis/jiv186. Epub 2015 Apr 14.
- Cashman KA, Broderick KE, Wilkinson ER, Shaia CI, Bell TM, Shurtleff AC, Spik KW, Badger CV, Guttieri MC, Sardesai NY, Schmaljohn CS. Enhanced Efficacy of a Codon-Optimized DNA Vaccine Encoding the Glycoprotein Precursor Gene of Lassa Virus in a Guinea Pig Disease Model When Delivered by Dermal Electroporation. Vaccines (Basel). 2013 Jul 18;1(3):262-77. doi: 10.3390/vaccines1030262.
- Grant-Klein RJ, Altamura LA, Badger CV, Bounds CE, Van Deusen NM, Kwilas SA, Vu HA, Warfield KL, Hooper JW, Hannaman D, Dupuy LC, Schmaljohn CS. Codon-optimized filovirus DNA vaccines delivered by intramuscular electroporation protect cynomolgus macaques from lethal Ebola and Marburg virus challenges. Hum Vaccin Immunother. 2015;11(8):1991-2004. doi: 10.1080/21645515.2015.1039757.
- Shedlock DJ, Aviles J, Talbott KT, Wong G, Wu SJ, Villarreal DO, Myles DJ, Croyle MA, Yan J, Kobinger GP, Weiner DB. Induction of broad cytotoxic T cells by protective DNA vaccination against Marburg and Ebola. Mol Ther. 2013 Jul;21(7):1432-44. doi: 10.1038/mt.2013.61. Epub 2013 May 14.
- Grant-Klein RJ, Van Deusen NM, Badger CV, Hannaman D, Dupuy LC, Schmaljohn CS. A multiagent filovirus DNA vaccine delivered by intramuscular electroporation completely protects mice from ebola and Marburg virus challenge. Hum Vaccin Immunother. 2012 Nov 1;8(11):1703-6. doi: 10.4161/hv.21873. Epub 2012 Aug 24.
- Li L, Petrovsky N. Molecular mechanisms for enhanced DNA vaccine immunogenicity. Expert Rev Vaccines. 2016;15(3):313-29. doi: 10.1586/14760584.2016.1124762. Epub 2015 Dec 28.
- Alberer M, Gnad-Vogt U, Hong HS, Mehr KT, Backert L, Finak G, Gottardo R, Bica MA, Garofano A, Koch SD, Fotin-Mleczek M, Hoerr I, Clemens R, von Sonnenburg F. Safety and immunogenicity of a mRNA rabies vaccine in healthy adults: an open-label, non-randomised, prospective, first-in-human phase 1 clinical trial. Lancet. 2017 Sep 23;390(10101):1511-1520. doi: 10.1016/S0140-6736(17)31665-3. Epub 2017 Jul 25.
- Sahin U, Kariko K, Tureci O. mRNA-based therapeutics--developing a new class of drugs. Nat Rev Drug Discov. 2014 Oct;13(10):759-80. doi: 10.1038/nrd4278. Epub 2014 Sep 19.
- Feldman RA, Fuhr R, Smolenov I, Mick Ribeiro A, Panther L, Watson M, Senn JJ, Smith M, Almarsson Ӧ, Pujar HS, Laska ME, Thompson J, Zaks T, Ciaramella G. mRNA vaccines against H10N8 and H7N9 influenza viruses of pandemic potential are immunogenic and well tolerated in healthy adults in phase 1 randomized clinical trials. Vaccine. 2019 May 31;37(25):3326-3334. doi: 10.1016/j.vaccine.2019.04.074. Epub 2019 May 10.
- Kis Z, Shattock R, Shah N, Kontoravdi C. Emerging Technologies for Low-Cost, Rapid Vaccine Manufacture. Biotechnol J. 2019 Jan;14(1):e1800376. doi: 10.1002/biot.201800376. Epub 2018 Dec 10. Erratum In: Biotechnol J. 2019 Jul;14(7):1-2.
- Wrapp D, Wang N, Corbett KS, Goldsmith JA, Hsieh CL, Abiona O, Graham BS, McLellan JS. Cryo-EM structure of the 2019-nCoV spike in the prefusion conformation. Science. 2020 Mar 13;367(6483):1260-1263. doi: 10.1126/science.abb2507. Epub 2020 Feb 19.
- Ljungberg K, Liljestrom P. Self-replicating alphavirus RNA vaccines. Expert Rev Vaccines. 2015 Feb;14(2):177-94. doi: 10.1586/14760584.2015.965690. Epub 2014 Oct 1.
- Ulmer JB, Mansoura MK, Geall AJ. Vaccines 'on demand': science fiction or a future reality. Expert Opin Drug Discov. 2015 Feb;10(2):101-6. doi: 10.1517/17460441.2015.996128. Epub 2015 Jan 13.
- Brito LA, Kommareddy S, Maione D, Uematsu Y, Giovani C, Berlanda Scorza F, Otten GR, Yu D, Mandl CW, Mason PW, Dormitzer PR, Ulmer JB, Geall AJ. Self-amplifying mRNA vaccines. Adv Genet. 2015;89:179-233. doi: 10.1016/bs.adgen.2014.10.005. Epub 2014 Dec 4.
- Erwin-Cohen RA, Porter AI, Pittman PR, Rossi CA, DaSilva L. Human transcriptome response to immunization with live-attenuated Venezuelan equine encephalitis virus vaccine (TC-83): Analysis of whole blood. Hum Vaccin Immunother. 2017 Jan 2;13(1):169-179. doi: 10.1080/21645515.2016.1227900. Epub 2016 Nov 21.
- Bernstein DI, Reap EA, Katen K, Watson A, Smith K, Norberg P, Olmsted RA, Hoeper A, Morris J, Negri S, Maughan MF, Chulay JD. Randomized, double-blind, Phase 1 trial of an alphavirus replicon vaccine for cytomegalovirus in CMV seronegative adult volunteers. Vaccine. 2009 Dec 11;28(2):484-93. doi: 10.1016/j.vaccine.2009.09.135. Epub 2009 Oct 24.
- Lui PY, Wong LR, Ho TH, Au SWN, Chan CP, Kok KH, Jin DY. PACT Facilitates RNA-Induced Activation of MDA5 by Promoting MDA5 Oligomerization. J Immunol. 2017 Sep 1;199(5):1846-1855. doi: 10.4049/jimmunol.1601493. Epub 2017 Jul 31.
- Siu KL, Yeung ML, Kok KH, Yuen KS, Kew C, Lui PY, Chan CP, Tse H, Woo PC, Yuen KY, Jin DY. Middle east respiratory syndrome coronavirus 4a protein is a double-stranded RNA-binding protein that suppresses PACT-induced activation of RIG-I and MDA5 in the innate antiviral response. J Virol. 2014 May;88(9):4866-76. doi: 10.1128/JVI.03649-13. Epub 2014 Feb 12.
- Batool M, Shah M, Patra MC, Yesudhas D, Choi S. Structural insights into the Middle East respiratory syndrome coronavirus 4a protein and its dsRNA binding mechanism. Sci Rep. 2017 Sep 12;7(1):11362. doi: 10.1038/s41598-017-11736-6.
- Rabouw HH, Langereis MA, Knaap RC, Dalebout TJ, Canton J, Sola I, Enjuanes L, Bredenbeek PJ, Kikkert M, de Groot RJ, van Kuppeveld FJ. Middle East Respiratory Coronavirus Accessory Protein 4a Inhibits PKR-Mediated Antiviral Stress Responses. PLoS Pathog. 2016 Oct 26;12(10):e1005982. doi: 10.1371/journal.ppat.1005982. eCollection 2016 Oct.
- McKay PF, Hu K, Blakney AK, Samnuan K, Brown JC, Penn R, Zhou J, Bouton CR, Rogers P, Polra K, Lin PJC, Barbosa C, Tam YK, Barclay WS, Shattock RJ. Self-amplifying RNA SARS-CoV-2 lipid nanoparticle vaccine candidate induces high neutralizing antibody titers in mice. Nat Commun. 2020 Jul 9;11(1):3523. doi: 10.1038/s41467-020-17409-9.
- Slovin SF, Kehoe M, Durso R, Fernandez C, Olson W, Gao JP, Israel R, Scher HI, Morris S. A phase I dose escalation trial of vaccine replicon particles (VRP) expressing prostate-specific membrane antigen (PSMA) in subjects with prostate cancer. Vaccine. 2013 Jan 30;31(6):943-9. doi: 10.1016/j.vaccine.2012.11.096. Epub 2012 Dec 13.
- Demoulins T, Milona P, Englezou PC, Ebensen T, Schulze K, Suter R, Pichon C, Midoux P, Guzman CA, Ruggli N, McCullough KC. Polyethylenimine-based polyplex delivery of self-replicating RNA vaccines. Nanomedicine. 2016 Apr;12(3):711-722. doi: 10.1016/j.nano.2015.11.001. Epub 2015 Dec 1.
- Vogel AB, Lambert L, Kinnear E, Busse D, Erbar S, Reuter KC, Wicke L, Perkovic M, Beissert T, Haas H, Reece ST, Sahin U, Tregoning JS. Self-Amplifying RNA Vaccines Give Equivalent Protection against Influenza to mRNA Vaccines but at Much Lower Doses. Mol Ther. 2018 Feb 7;26(2):446-455. doi: 10.1016/j.ymthe.2017.11.017. Epub 2017 Dec 5.
- Hoy SM. Patisiran: First Global Approval. Drugs. 2018 Oct;78(15):1625-1631. doi: 10.1007/s40265-018-0983-6.
- NCT04283461. Safety and Immunogenicity Study of 2019-nCoV Vaccine (mRNA-1273) to Prevent SARS-CoV-2 Infection
- Lokugamage KG, Yoshikawa-Iwata N, Ito N, Watts DM, Wyde PR, Wang N, Newman P, Kent Tseng CT, Peters CJ, Makino S. Chimeric coronavirus-like particles carrying severe acute respiratory syndrome coronavirus (SCoV) S protein protect mice against challenge with SCoV. Vaccine. 2008 Feb 6;26(6):797-808. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.11.092. Epub 2007 Dec 26.
- Yasui F, Kai C, Kitabatake M, Inoue S, Yoneda M, Yokochi S, Kase R, Sekiguchi S, Morita K, Hishima T, Suzuki H, Karamatsu K, Yasutomi Y, Shida H, Kidokoro M, Mizuno K, Matsushima K, Kohara M. Prior immunization with severe acute respiratory syndrome (SARS)-associated coronavirus (SARS-CoV) nucleocapsid protein causes severe pneumonia in mice infected with SARS-CoV. J Immunol. 2008 Nov 1;181(9):6337-48. doi: 10.4049/jimmunol.181.9.6337.
- Bolles M, Deming D, Long K, Agnihothram S, Whitmore A, Ferris M, Funkhouser W, Gralinski L, Totura A, Heise M, Baric RS. A double-inactivated severe acute respiratory syndrome coronavirus vaccine provides incomplete protection in mice and induces increased eosinophilic proinflammatory pulmonary response upon challenge. J Virol. 2011 Dec;85(23):12201-15. doi: 10.1128/JVI.06048-11. Epub 2011 Sep 21.
- Tseng CT, Sbrana E, Iwata-Yoshikawa N, Newman PC, Garron T, Atmar RL, Peters CJ, Couch RB. Immunization with SARS coronavirus vaccines leads to pulmonary immunopathology on challenge with the SARS virus. PLoS One. 2012;7(4):e35421. doi: 10.1371/journal.pone.0035421. Epub 2012 Apr 20. Erratum In: PLoS One. 2012;7(8). doi:10.1371/annotation/2965cfae-b77d-4014-8b7b-236e01a35492.
- Castilow EM, Olson MR, Varga SM. Understanding respiratory syncytial virus (RSV) vaccine-enhanced disease. Immunol Res. 2007;39(1-3):225-39. doi: 10.1007/s12026-007-0071-6.
- Collins PL, Graham BS. Viral and host factors in human respiratory syncytial virus pathogenesis. J Virol. 2008 Mar;82(5):2040-55. doi: 10.1128/JVI.01625-07. Epub 2007 Oct 10. No abstract available.
- Deming D, Sheahan T, Heise M, Yount B, Davis N, Sims A, Suthar M, Harkema J, Whitmore A, Pickles R, West A, Donaldson E, Curtis K, Johnston R, Baric R. Vaccine efficacy in senescent mice challenged with recombinant SARS-CoV bearing epidemic and zoonotic spike variants. PLoS Med. 2006 Dec;3(12):e525. doi: 10.1371/journal.pmed.0030525. Erratum In: PLoS Med. 2007 Feb;4(2):e80.
- Takada A, Kawaoka Y. Antibody-dependent enhancement of viral infection: molecular mechanisms and in vivo implications. Rev Med Virol. 2003 Nov-Dec;13(6):387-98. doi: 10.1002/rmv.405.
- Mascola JR, Mathieson BJ, Zack PM, Walker MC, Halstead SB, Burke DS. Summary report: workshop on the potential risks of antibody-dependent enhancement in human HIV vaccine trials. AIDS Res Hum Retroviruses. 1993 Dec;9(12):1175-84. doi: 10.1089/aid.1993.9.1175.
- Jaume M, Yip MS, Cheung CY, Leung HL, Li PH, Kien F, Dutry I, Callendret B, Escriou N, Altmeyer R, Nal B, Daeron M, Bruzzone R, Peiris JS. Anti-severe acute respiratory syndrome coronavirus spike antibodies trigger infection of human immune cells via a pH- and cysteine protease-independent FcgammaR pathway. J Virol. 2011 Oct;85(20):10582-97. doi: 10.1128/JVI.00671-11. Epub 2011 Jul 20.
- Wang Q, Zhang L, Kuwahara K, Li L, Liu Z, Li T, Zhu H, Liu J, Xu Y, Xie J, Morioka H, Sakaguchi N, Qin C, Liu G. Immunodominant SARS Coronavirus Epitopes in Humans Elicited both Enhancing and Neutralizing Effects on Infection in Non-human Primates. ACS Infect Dis. 2016 May 13;2(5):361-76. doi: 10.1021/acsinfecdis.6b00006. Epub 2016 Apr 11. Erratum In: ACS Infect Dis. 2020 May 8;6(5):1284-1285.
- Yip MS, Leung HL, Li PH, Cheung CY, Dutry I, Li D, Daeron M, Bruzzone R, Peiris JS, Jaume M. Antibody-dependent enhancement of SARS coronavirus infection and its role in the pathogenesis of SARS. Hong Kong Med J. 2016 Jun;22(3 Suppl 4):25-31. No abstract available.
- Yang ZY, Werner HC, Kong WP, Leung K, Traggiai E, Lanzavecchia A, Nabel GJ. Evasion of antibody neutralization in emerging severe acute respiratory syndrome coronaviruses. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005 Jan 18;102(3):797-801. doi: 10.1073/pnas.0409065102. Epub 2005 Jan 10.
- Wang SF, Tseng SP, Yen CH, Yang JY, Tsao CH, Shen CW, Chen KH, Liu FT, Liu WT, Chen YM, Huang JC. Antibody-dependent SARS coronavirus infection is mediated by antibodies against spike proteins. Biochem Biophys Res Commun. 2014 Aug 22;451(2):208-14. doi: 10.1016/j.bbrc.2014.07.090. Epub 2014 Jul 26.
- Kam YW, Kien F, Roberts A, Cheung YC, Lamirande EW, Vogel L, Chu SL, Tse J, Guarner J, Zaki SR, Subbarao K, Peiris M, Nal B, Altmeyer R. Antibodies against trimeric S glycoprotein protect hamsters against SARS-CoV challenge despite their capacity to mediate FcgammaRII-dependent entry into B cells in vitro. Vaccine. 2007 Jan 8;25(4):729-40. doi: 10.1016/j.vaccine.2006.08.011. Epub 2006 Aug 22.
- Luo F, Liao FL, Wang H, Tang HB, Yang ZQ, Hou W. Evaluation of Antibody-Dependent Enhancement of SARS-CoV Infection in Rhesus Macaques Immunized with an Inactivated SARS-CoV Vaccine. Virol Sin. 2018 Apr;33(2):201-204. doi: 10.1007/s12250-018-0009-2. Epub 2018 Mar 14. No abstract available.
- McLellan JS, Chen M, Joyce MG, Sastry M, Stewart-Jones GB, Yang Y, Zhang B, Chen L, Srivatsan S, Zheng A, Zhou T, Graepel KW, Kumar A, Moin S, Boyington JC, Chuang GY, Soto C, Baxa U, Bakker AQ, Spits H, Beaumont T, Zheng Z, Xia N, Ko SY, Todd JP, Rao S, Graham BS, Kwong PD. Structure-based design of a fusion glycoprotein vaccine for respiratory syncytial virus. Science. 2013 Nov 1;342(6158):592-8. doi: 10.1126/science.1243283. Erratum In: Science. 2013 Nov 22;342(6161):931.
- Kentner AC, Miguelez M, James JS, Bielajew C. Behavioral and physiological effects of a single injection of rat interferon-alpha on male Sprague-Dawley rats: a long-term evaluation. Brain Res. 2006 Jun 20;1095(1):96-106. doi: 10.1016/j.brainres.2006.04.014. Epub 2006 May 18.
- Pepini T, Pulichino AM, Carsillo T, Carlson AL, Sari-Sarraf F, Ramsauer K, Debasitis JC, Maruggi G, Otten GR, Geall AJ, Yu D, Ulmer JB, Iavarone C. Induction of an IFN-Mediated Antiviral Response by a Self-Amplifying RNA Vaccine: Implications for Vaccine Design. J Immunol. 2017 May 15;198(10):4012-4024. doi: 10.4049/jimmunol.1601877. Epub 2017 Apr 17.
- Geall AJ, Verma A, Otten GR, Shaw CA, Hekele A, Banerjee K, Cu Y, Beard CW, Brito LA, Krucker T, O'Hagan DT, Singh M, Mason PW, Valiante NM, Dormitzer PR, Barnett SW, Rappuoli R, Ulmer JB, Mandl CW. Nonviral delivery of self-amplifying RNA vaccines. Proc Natl Acad Sci U S A. 2012 Sep 4;109(36):14604-9. doi: 10.1073/pnas.1209367109. Epub 2012 Aug 20.
연구 기록 날짜
연구 주요 날짜
연구 시작 (실제)
기본 완료 (예상)
연구 완료 (예상)
연구 등록 날짜
최초 제출
QC 기준을 충족하는 최초 제출
처음 게시됨 (실제)
연구 기록 업데이트
마지막 업데이트 게시됨 (실제)
QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출
마지막으로 확인됨
추가 정보
이 연구와 관련된 용어
추가 관련 MeSH 약관
기타 연구 ID 번호
- COVAC Uganda
개별 참가자 데이터(IPD) 계획
개별 참가자 데이터(IPD)를 공유할 계획입니까?
IPD 계획 설명
IPD 공유 기간
IPD 공유 액세스 기준
IPD 공유 지원 정보 유형
- 연구 프로토콜
- 정보에 입각한 동의서(ICF)
약물 및 장치 정보, 연구 문서
미국 FDA 규제 의약품 연구
미국 FDA 규제 기기 제품 연구
이 정보는 변경 없이 clinicaltrials.gov 웹사이트에서 직접 가져온 것입니다. 귀하의 연구 세부 정보를 변경, 제거 또는 업데이트하도록 요청하는 경우 register@clinicaltrials.gov. 문의하십시오. 변경 사항이 clinicaltrials.gov에 구현되는 즉시 저희 웹사이트에도 자동으로 업데이트됩니다. .