- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT04934111
Bezpieczeństwo i immunogenność szczepionki LNP-nCOV saRNA-02 przeciwko SARS-CoV-2, czynnikowi wywołującemu COVID-19 (COVAC-Uganda)
Badanie kliniczne mające na celu ocenę bezpieczeństwa i immunogenności LNP-nCOV saRNA-02, samowzmacniającej się szczepionki zawierającej kwas rybonukleinowy (saRNA), w populacji SARS-CoV-2 seronegatywnej i seropozytywnej w Ugandzie
Przegląd badań
Szczegółowy opis
Kontekst Trwająca pandemia koronawirusa, zespół ciężkiej ostrej niewydolności oddechowej, koronawirus 2 (SARS-CoV-2), pojawiła się u ludzi w Chinach w okresie od października do listopada 2019 r., a choroba zakaźna koronawirusa 2019 (COVID-19) została zidentyfikowana w Chinach w grudniu 2019 r. .
Do końca stycznia 2021 roku SARS-CoV-2 zaraził z potwierdzoną diagnozą ponad 106 milionów ludzi na całym świecie, powodując ponad 2,3 miliona zgonów i ponad 59 milionów wyleczonych z infekcji. Daje to nominalny wskaźnik śmiertelności z powodu infekcji (IFR) ~ 2%, a około 10% zakażonych osób ma skutki zdrowotne trwające 6 miesięcy lub dłużej. Na dzień 8 marca 2021 r. Uganda zgłosiła 40 452 przypadków koronawirusa i 334 zgony. Za pośrednictwem COVAX Uganda zaczęła wprowadzać szczepionkę AstraZeneca (opartą na adenowirusach) od 10 marca 2021 r.
Rozwijająca się ocena jest taka, że jedynym sposobem na wyjście świata z pandemii COVID-19 jest zastosowanie skutecznej szczepionki. Szereg szczepionek zostało opracowanych i otrzymało zezwolenie na użycie w sytuacjach awaryjnych przez Amerykańską Agencję ds. Żywności i Leków i/lub Światową Organizację Zdrowia. Przykłady obejmują szczepionki oparte na informacyjnym kwasie rybonukleinowym (mRNA) firmy Pfizer-BioNTech i Moderna, które wykazały skuteczność na poziomie 95%; ChAdOx1 nCoV-19 firmy Oxford-AstraZeneca oraz szczepionki oparte na adenowirusach firmy Johnson and Johnson, które wykazały skuteczność odpowiednio na poziomie 70% i 66%. Problem wiąże się z potrzebną skalą i ramami czasowymi, w których należy opracować i wdrożyć szczepionki. Samowzmacniająca się szczepionka RNA (saRNA) zapewnia nowatorskie, wykonalne i wrażliwe na czas rozwiązanie, które może przyczynić się do rozwiązania problemu SARS-CoV-2, zarówno podczas obecnej pandemii, jak i trwających sezonowych epidemii.
Badania wykazały, że szczepienie oparte na kwasie nukleinowym może chronić przed infekcjami wirusowymi u naczelnych innych niż człowiek (NHP), dostarczając dowodu koncepcji, że szczepienie oparte na genach może indukować ochronne przeciwciała. Jednak szczepionki DNA wymagają wielokrotnych immunizacji z użyciem elektroporacji w celu wywołania znaczących odpowiedzi immunologicznych u ludzi. Niereplikujące się środki lecznicze oparte na mRNA zazwyczaj wymagają wysokich dawek RNA (100-600 µg). Wymóg wysokich dawek i związane z tym koszty sugerują, że niereplikujący się mRNA może mieć trudności z wytworzeniem potencjalnych setek milionów dawek wymaganych do szybkiej odpowiedzi na pandemię. W przeciwieństwie do tego eksperymenty na małych zwierzętach i naczelnych innych niż człowiek (NHP) sugerują, że saRNA indukuje znacznie wzmocnione odpowiedzi w porównaniu ze szczepionkami DNA dostarczanymi za pomocą elektroporacji lub mRNA. Rzeczywiście, pojedyncza immunizacja szczepionką saRNA wykazała ochronę przed wirusem Ebola w modelach zwierzęcych. Gdyby dawka ≤10 µg saRNA zapewniała ochronę przed COVID-19, zapewniłoby to krytyczne korzyści dla produkcji, w której można zsyntetyzować 100 000 dawek w objętości jednego litra reakcji. W przeciwieństwie do wektorów wirusowych, brak odporności przeciwwektorowej daje możliwość powtórnej immunizacji wieloma immunogenami kodowanymi przez RNA.
Szczepionka saRNA pierwszej generacji (LNP-nCoV-saRNA) jest już poddawana ocenie bezpieczeństwa u ludzi w ramach badania COVAC1 w Wielkiej Brytanii. Bezpieczeństwo szczepionki zawierającej saRNA pierwszej generacji zostało wstępnie ocenione u zdrowych, młodych osób dorosłych, tj. 15 uczestników w wieku 18-45 lat, którym podano jedną z trzech różnych dawek (0,1, 0,3 i 1 µg) we wstrzyknięciu do mięśnia, powoli przechodząc od od najniższego do najwyższego w okresie kilku tygodni. Do tej pory nie zgłoszono żadnych poważnych zdarzeń niepożądanych (SAE) związanych z tą szczepionką i niską częstość występowania zdarzeń stopnia 2. Dodatkowych 35 ochotników zostało losowo przydzielonych do każdej dawki. Do tej pory 105 zdrowych osób otrzymało dwie immunizacje w ramach każdej dawki, z kilkoma zdarzeniami stopnia 2. Wszyscy uczestnicy bezpiecznie otrzymali obie dawki. Wstępna ocena pierwszych 15 pacjentów wskazuje, że chociaż szczepionka wykazuje dobry profil bezpieczeństwa, poziomy serokonwersji (75% dla dawki 1 μg) i przeciwciał wiążących są niższe niż przewidywano na podstawie modeli przedklinicznych. Rzeczywiście, dane wygenerowane do tej pory sugerują, że odpowiedzi znajdują się na dolnym końcu krzywej dawka-odpowiedź. Rozpoczęto dodatkową fazę ekspansji w celu zbadania trzech wyższych dawek 2,5, 5 i 10 ug. Rozbieżność między ludzką odpowiedzią immunologiczną na szczepionkę a modelami przedklinicznymi sugeruje, że poziom ekspresji saRNA u ludzi jest mniej skuteczny niż w modelach małych zwierząt. Aktualne dane wskazują, że dawka 5 μg podana w tygodniu 0 i 4 indukuje akceptowalną odpowiedź immunologiczną u większości (83%) osób 4 tygodnie po drugim szczepieniu.
Badacze ulepszyli ten początkowy projekt (COVAC1) za pomocą zmodyfikowanego wektora, LNP-nCOV saRNA-02, który ma być zbadany w ramach tego badania klinicznego.
To badanie (COVAC Uganda) oceni innowacyjną szczepionkę saRNA (LNP-nCOV saRNA-02) zaprojektowaną w celu zwiększenia mocy szczepionki poprzez ochronę saRNA przed białkami komórkowymi, o których wiadomo, że zmniejszają ekspresję saRNA. Badacze przewidują, że profil bezpieczeństwa zmodyfikowanej szczepionki będzie bardzo podobny do szczepionki pierwszej generacji, która jest już poddawana próbom na ludziach. COVAC Uganda zastosuje te same kryteria oceny, co w badaniu COVAC1, zaprojektowanym w celu sprawdzenia, jak dobrze układ odpornościowy został aktywowany przy użyciu różnych poziomów dawek zmodyfikowanej szczepionki. COVAC Uganda zarejestruje również osoby seropozytywne SARS-CoV-2 w celu oceny odpowiedzi immunologicznej na podstawie historii serologicznej. Seronegatywni i seropozytywni uczestnicy w wieku 18-45 lat otrzymają jedną dawkę 5,0 μg w tygodniu 0 i 4. Seronegatywne definiuje się jako IgG ≤ 10 AU mL-1 lub IgM ≤ 10 AU mL-1, a seropozytywne jako IgG ≥ 10 AU mL-1 lub IgM ≥ 10 AU mL-1. Szczepionkę podaje się we wstrzyknięciu w mięsień ramienia. W pobliżu miejsca wstrzyknięcia mogą wystąpić łagodne skutki uboczne. Jak zaobserwowano w badaniu COVAC1, mogą wystąpić również bardziej ogólne skutki uboczne, takie jak ból głowy, temperatura i dreszcze. Uczestnicy zostaną poproszeni o zapisanie wszelkich objawów w dzienniczku szczepień. Aby zobaczyć, jak dobrze reaguje układ odpornościowy, uczestnicy będą musieli kilka razy oddać próbki krwi w ciągu pierwszych 6 tygodni; następnie co miesiąc przez kilka miesięcy; potem w 6 mies.
Badacze przewidują, że zmodyfikowana szczepionka będzie indukować wyższe poziomy przeciwciał neutralizujących niż szczepionka saRNA pierwszej generacji. Jednakże, jeśli którakolwiek z dawek nie wywoła odpowiedniej odpowiedzi immunologicznej, nie ma znanego powodu, dla którego uczestnikom, którzy otrzymali te dawki, nie można by zaoferować dalszej immunizacji przypominającej LNP-nCOV saRNA-02 w dawce, która okazała się być bezpieczny. Nie jest również znany powód, dla którego uczestnicy COVAC Uganda nie mogliby zostać uodpornieni innymi zatwierdzonymi szczepionkami SARS-CoV-2, w tym szczepionkami wektorowymi lub adiuwantowymi, gdyby wykazano, że są one bezpieczne i skuteczne.
Uzasadnienie badania Ta pandemia SARS-CoV-2 zainfekowała ponad 106 milionów ludzi i zabiła ponad 2,3 miliona ludzi. Jako nowy wirus odzwierzęcy nie występuje odporność zbiorowa, a jedyne szeroko dostępne do tej pory interwencje to dystans społeczny w celu zmniejszenia presji na łóżka do intensywnej terapii i systemy opieki zdrowotnej, ale nie jest to zrównoważone ze względów ekonomicznych. Trwają badania kliniczne leków przeciwwirusowych i innych terapii lekowych, ale interwencją, która najprawdopodobniej złagodzi długoterminowe medyczne, społeczne i ekonomiczne skutki pandemii, pozostają szczepienia całej populacji.
Pomimo wprowadzenia pomyślnie zatwierdzonych szczepionek przeciwko COVID-19, potrzebnych jest znacznie więcej kandydatów, aby dostarczyć 4,265 miliarda dawek pracownikom służby zdrowia na całym świecie, osobom dorosłym w wieku powyżej 65 lat i osobom o podwyższonym ryzyku (z chorobami współistniejącymi, takimi jak cukrzyca, choroby układu krążenia, rak , otyłość lub przewlekła choroba układu oddechowego), nie mówiąc już o dawkach dla młodszych lub zdrowszych kohort.
Ostatnie dowody sugerują, że odpowiedź immunologiczna na szczepionki informacyjnego RNA jest wzmocniona u osób wcześniej zakażonych SARS-CoV-2. Ta próba bada rolę serokonwersji na wpływ samoamplifikującego się kandydata na szczepionkę RNA i dostarczy informacji na temat możliwego zastosowania LNP-nCOV saRNA-02 jako kandydata na szczepionkę przypominającą COVID-19 dla osób wcześniej zakażonych.
Dane przedkliniczne sugerują, że szczepionka LNP-nCOV saRNA-02 kodująca stabilizowaną przed fuzją wersję S-glikoproteiny wywoła przeciwciała neutralizujące u większej liczby osobników niż naturalna infekcja (<50%), oraz że saRNA LNP-nCOV Szczepionka -02 może zapewnić zwiększoną immunogenność i/lub zmniejszenie dawki w porównaniu z konstruktem pierwszej generacji, jak również w przypadku osobników seropozytywnych.
Projekt badania Jest to badanie kliniczne fazy I, które będzie opierać się na doświadczeniu klinicznym ze szczepionką saRNA LNP nCoV, która jest obecnie oceniana w COVAC1 w Wielkiej Brytanii. Badanie zostanie przeprowadzone w grupie osób w wieku 18-45 lat w jednym ośrodku nadzorowanym przez Głównego/Naczelnego Badacza, poprzez przydzielenie 42 uczestników do dwóch grup w zależności od statusu serokonwersji.
Populacja badana Badanie zostanie przeprowadzone na zdrowych, młodych osobach dorosłych, ponieważ osoby te generują najsilniejsze odpowiedzi (18-45 lat). Uwzględnieni zostaną zarówno mężczyźni, jak i kobiety, a ośrodek badania będzie starał się zachować równe proporcje, chociaż priorytetem będzie zapewnienie terminowego udziału w badaniu.
Dawkowanie i podziw
Każdy z uczestników otrzyma jedną dawkę domięśniową 5 μg LNP-nCOV saRNA-02 do mięśnia naramiennego w Tygodniu 0 i Tygodniu 4, jak wskazano w poniższej tabeli:
Element badania Status serologiczny Droga Dawka Szczepienie 1 Szczepienie 2 Grupa serologiczna SARS-CoV-2 przeciwciała negatywne IM 5,0 ug LNP-CoV mod-saRNA-02 Tydzień 0
Wizyta 2 Tydzień 4
Wizyta 5 przeciwciał SARS-CoV-2 dodatnich IM 5,0 ug LNP-CoV mod-saRNA-02 Tydzień 0
Wizyta 2 Tydzień 4
Wizyta 5
Oceny bezpieczeństwa Szczepionki są związane z wieloma dobrze scharakteryzowanymi lokalnymi, ogólnoustrojowymi i laboratoryjnymi reakcjami określanymi jako oczekiwane zdarzenia niepożądane. Te zdarzenia niepożądane będą zbierane celowo.
Oceny miejscowe i ogólnoustrojowe będą przeprowadzane w dniu każdego wstrzyknięcia przed wstrzyknięciem i 60 minut po wstrzyknięciu. Uczestnicy powinni pozostać w klinice przez co najmniej godzinę po każdym wstrzyknięciu.
Uczestnicy otrzymają karty dzienniczka szczepień, aby pomóc w gromadzeniu i ocenie zdarzeń niepożądanych, które rozpoczynają się w ciągu 7 dni od wstrzyknięcia. Personel badawczy przejrzy listę zamówionych zdarzeń niepożądanych podczas ustrukturyzowanego wywiadu i zapisze je wraz z oceną w odpowiednim eCRF w bazie danych REDCap. Jeśli którekolwiek ze zdarzeń zgłoszonych podczas jednej z wizyt telefonicznych jest umiarkowanie ciężkie (stopień 2) lub gorsze, uczestnicy zostaną zaproszeni do kliniki w celu weryfikacji.
Krew (~10 ml) do rutynowych parametrów bezpieczeństwa będzie pobierana podczas wszystkich wizyt badawczych. Jeśli stężenie bilirubiny całkowitej jest podwyższone, personel badawczy poprosi o wynik bilirubiny sprzężonej w celu oceny nieprawidłowości i określenia wszelkich działań, które należy podjąć w odniesieniu do dalszych badań i przerwania harmonogramu szczepień.
Parametry życiowe (BP, HR, wysycenie tlenem i temperatura w jamie ustnej) będą mierzone podczas każdej wizyty w ramach badania.
Fizyczne badanie miejsca wstrzyknięcia i innych układów ciała, jeśli jest to wskazane, będzie przeprowadzane w dniu każdego szczepienia i 1 tydzień po nim. Podczas wszystkich innych wizyt kontrolnych przeprowadzane będą badania fizykalne ukierunkowane na objawy.
Typ studiów
Zapisy (Oczekiwany)
Faza
- Faza 1
Kontakty i lokalizacje
Kontakt w sprawie studiów
- Nazwa: Jonathan Kitonsa, MBchB, MPH
- Numer telefonu: +256774305403
- E-mail: Jonathan.Kitonsa@mrcuganda.org
Kopia zapasowa kontaktu do badania
- Nazwa: Benjamin Pierce, PhD
- Numer telefonu: 020 7594 6663
- E-mail: b.pierce@imperial.ac.uk
Lokalizacje studiów
-
-
-
Entebbe, Uganda, P.O.Box 49 Entebbe
- Rekrutacyjny
- MRC/UVRI & LSHTM Uganda Research Unit
-
Kontakt:
- Jonathan Kitonsa, MBchB, MPH
- Numer telefonu: +256774305403
- E-mail: Jonathan.Kitonsa@mrcuganda.org
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Zdrowe osoby dorosłe w wieku od 18 do 45 lat w dniu badania przesiewowego
- Przy podobnym ryzyku nabycia zakażenia SARS-CoV-2 jak w populacji ogólnej
- Chęć i możliwość wyrażenia świadomej zgody
- Kobieta w wieku rozrodczym, chętna do stosowania wysoce skutecznej metody antykoncepcji od badania przesiewowego do 18 tygodni po ostatnim wstrzyknięciu
- Jeśli mężczyzna i nie jest sterylizowany, chce uniknąć zapłodnienia partnerek przed badaniem przesiewowym do 18 tygodni po ostatnim wstrzyknięciu
- Gotowość do unikania wszystkich innych szczepionek od 4 tygodni przed pierwszym wstrzyknięciem do 22 tygodni po drugim wstrzyknięciu
- Chętny i zdolny do przestrzegania harmonogramu wizyt, wypełniania dzienników szczepień i dostarczania próbek
- Chęć udzielenia upoważnionym osobom bezpośredniego lub pośredniego dostępu do swojej dokumentacji medycznej związanej z badaniem i dokumentacji lekarza rodzinnego
Kryteria wyłączenia:
- Ciąża lub karmienie piersią
- Ma znaczącą historię kliniczną, objawy fizykalne w badaniu klinicznym podczas badań przesiewowych lub obecność choroby, która jest aktywna lub wymaga leczenia w celu jej kontrolowania, w tym choroby serca, układu oddechowego, hormonalnej, metabolicznej, autoimmunologicznej, wątrobowej, neurologicznej, onkologicznej, psychiatrycznej, immunosupresyjnej/ niedobór odporności lub inne zaburzenia, które zdaniem badacza nie są zgodne ze stanem zdrowia, zwiększają ryzyko ciężkiego przebiegu COVID-19, mogą zagrozić bezpieczeństwu ochotnika, uniemożliwić szczepienie lub zaburzyć interpretację odpowiedzi immunologicznej na szczepionkę. Dozwolone są osoby z łagodnymi/umiarkowanymi, dobrze kontrolowanymi chorobami współistniejącymi.
- Historia anafilaksji lub obrzęku naczynioruchowego
- Aktywna infekcja SARS-CoV-2 podczas rejestracji, na podstawie testu DNA-PCR
- Niezgodny wynik RDT
- Historia ciężkich lub wielokrotnych alergii na leki lub środki farmaceutyczne
Ciężka miejscowa lub ogólna reakcja na szczepienie w wywiadzie, zdefiniowana jako:
- miejscowe: rozległe, stwardniałe zaczerwienienie i obrzęk obejmujące większą część ramienia, nieustępujące w ciągu 72 godzin
- ogólne: gorączka ≥39,5°C w ciągu 48 godzin; skurcz oskrzeli; obrzęk krtani; upadek; drgawki lub encefalopatia w ciągu 72 godzin
- Otrzymał kiedykolwiek eksperymentalną szczepionkę przeciwko COVID-19
- Przyjmowanie jakichkolwiek środków immunosupresyjnych w ciągu 18 tygodni od badania przesiewowego jakąkolwiek drogą inną niż miejscowa
- Wykrywanie przeciwciał przeciwko wirusowemu zapaleniu wątroby typu C
- Wykrywanie przeciwciał przeciwko HIV
- Nieprawidłowości stopnia 1 i wyższego w rutynowych parametrach laboratoryjnych przy użyciu skali oceny toksyczności FDA w tabeli toksyczności dla zdrowych ochotników dorosłych i młodzieży włączonych do badań klinicznych szczepionek zapobiegawczych. https://www.fda.gov/media/73679/download
- Uczestnictwo w innym badaniu klinicznym z eksperymentalnym lekiem lub urządzeniem albo leczenie eksperymentalnym lekiem w ciągu 28 dni od badania przesiewowego.
- Otrzymał immunizację w ciągu 28 dni od badania przesiewowego
- Otrzymał autoryzowaną szczepionkę przeciwko COVID-19
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Zapobieganie
- Przydział: Nie dotyczy
- Model interwencyjny: Zadanie dla jednej grupy
- Maskowanie: Brak (otwarta etykieta)
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Ramię szczepionki LNP-nCOV saRNA-02
Wszyscy uczestnicy, którzy mają dowody wcześniejszego zakażenia SARS-CoV-2 oraz ci, którzy nie mają dowodów na wcześniejsze zakażenie, otrzymają szczepionkę LNP-nCOV saRNA-02.
Obie grupy otrzymają dawkę 5,0 μg w 0 i 4 tygodniu.
|
samowzmacniająca się szczepionka z kwasem rybonukleinowym (saRNA) kodująca glikoproteinę S SARS-CoV-2, czynnik sprawczy COVID-19
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Liczba uczestników z oczekiwanymi miejscowymi reakcjami w miejscu wstrzyknięcia
Ramy czasowe: 7 dni po każdym wstrzyknięciu
|
Liczba uczestników, u których oczekiwano miejscowych reakcji w miejscu wstrzyknięcia, które wystąpiły w ciągu 7 dni od podania szczepionki: ból, tkliwość, rumień, obrzęk
|
7 dni po każdym wstrzyknięciu
|
|
Liczba uczestników, u których oczekiwane reakcje ogólnoustrojowe wystąpiły w ciągu 7 dni od podania szczepionki
Ramy czasowe: 7 dni po każdym wstrzyknięciu
|
Liczba uczestników z oczekiwanymi reakcjami ogólnoustrojowymi, które wystąpiły w ciągu 7 dni od podania szczepionki: gorączka, zmęczenie, ból mięśni, ból głowy, dreszcze, ból stawów
|
7 dni po każdym wstrzyknięciu
|
|
Liczba uczestników z niepożądanymi działaniami niepożądanymi (AR) w całym badaniu
Ramy czasowe: 6 miesięcy
|
Liczba uczestników z niezamówionymi działaniami niepożądanymi (AR) w całym okresie badania (w tym poważne AR)
|
6 miesięcy
|
|
Liczba uczestników z poważnymi zdarzeniami niepożądanymi
Ramy czasowe: 6 miesięcy
|
Liczba uczestników z poważnymi zdarzeniami niepożądanymi
|
6 miesięcy
|
|
Liczba uczestników z niepożądanymi zdarzeniami niepożądanymi
Ramy czasowe: 6 miesięcy
|
Liczba uczestników z niepożądanymi zdarzeniami niepożądanymi w całym okresie badania
|
6 miesięcy
|
|
Miano przeciwciał neutralizujących w surowicy 2 tygodnie po drugim szczepieniu w teście neutralizacji opartym na pseudowirusie SARS-CoV-2
Ramy czasowe: od pierwszego dnia przez sześć miesięcy
|
Miano przeciwciał neutralizujących w surowicy 2 tygodnie po drugim szczepieniu w teście neutralizacji opartym na pseudowirusie SARS-CoV-2
|
od pierwszego dnia przez sześć miesięcy
|
|
Miano indukowanych szczepionką odpowiedzi surowiczych przeciwciał wiążących IgG na glikoproteinę S SARS-CoV-2 2 tygodnie po pierwszym i drugim szczepieniu
Ramy czasowe: od pierwszego dnia przez sześć miesięcy
|
Miano indukowanych szczepionką odpowiedzi surowiczych przeciwciał wiążących IgG na glikoproteinę S SARS-CoV-2 2 tygodnie po pierwszym i drugim szczepieniu
|
od pierwszego dnia przez sześć miesięcy
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Komórkowe odpowiedzi immunologiczne wywołane szczepionką mierzone metodą ELISpot komórek T i B u uczestników badania
Ramy czasowe: od pierwszego dnia przez sześć miesięcy
|
Komórkowe odpowiedzi immunologiczne wywołane szczepionką mierzone metodą ELISpot komórek T i B u uczestników badania
|
od pierwszego dnia przez sześć miesięcy
|
|
Komórkowe odpowiedzi immunologiczne wywołane szczepionką mierzone za pomocą cytometrii przepływowej i barwienia wewnątrzkomórkowych cytokin u uczestników badania
Ramy czasowe: od pierwszego dnia przez sześć miesięcy
|
Komórkowe odpowiedzi immunologiczne wywołane szczepionką mierzone za pomocą cytometrii przepływowej i barwienia wewnątrzkomórkowych cytokin u uczestników badania
|
od pierwszego dnia przez sześć miesięcy
|
|
Profil klasy i podklasy odpowiedzi przeciwciał
Ramy czasowe: od pierwszego dnia przez sześć miesięcy
|
Profil klasy i podklasy odpowiedzi przeciwciał
|
od pierwszego dnia przez sześć miesięcy
|
|
Laboratoryjne markery infekcji i odporności infekcyjnej
Ramy czasowe: przez 6 miesięcy próby
|
Laboratoryjne markery infekcji i odporności infekcyjnej
|
przez 6 miesięcy próby
|
|
Częstość występowania trombocytopenii dowolnego stopnia potwierdzona powtórnym badaniem, jeśli to możliwe
Ramy czasowe: Przez 6 miesięcy okresu próbnego
|
Częstość występowania trombocytopenii dowolnego stopnia potwierdzona powtórnym badaniem, jeśli to możliwe
|
Przez 6 miesięcy okresu próbnego
|
Współpracownicy i badacze
Śledczy
- Główny śledczy: Pontiano Kaleebu, PhD, MRC/UVRI & LSHTM Uganda Research Unit
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Liu L, Wei Q, Lin Q, Fang J, Wang H, Kwok H, Tang H, Nishiura K, Peng J, Tan Z, Wu T, Cheung KW, Chan KH, Alvarez X, Qin C, Lackner A, Perlman S, Yuen KY, Chen Z. Anti-spike IgG causes severe acute lung injury by skewing macrophage responses during acute SARS-CoV infection. JCI Insight. 2019 Feb 21;4(4):e123158. doi: 10.1172/jci.insight.123158. eCollection 2019 Feb 21.
- Wan Y, Shang J, Sun S, Tai W, Chen J, Geng Q, He L, Chen Y, Wu J, Shi Z, Zhou Y, Du L, Li F. Molecular Mechanism for Antibody-Dependent Enhancement of Coronavirus Entry. J Virol. 2020 Feb 14;94(5):e02015-19. doi: 10.1128/JVI.02015-19. Print 2020 Feb 14.
- Crank MC, Ruckwardt TJ, Chen M, Morabito KM, Phung E, Costner PJ, Holman LA, Hickman SP, Berkowitz NM, Gordon IJ, Yamshchikov GV, Gaudinski MR, Kumar A, Chang LA, Moin SM, Hill JP, DiPiazza AT, Schwartz RM, Kueltzo L, Cooper JW, Chen P, Stein JA, Carlton K, Gall JG, Nason MC, Kwong PD, Chen GL, Mascola JR, McLellan JS, Ledgerwood JE, Graham BS; VRC 317 Study Team. A proof of concept for structure-based vaccine design targeting RSV in humans. Science. 2019 Aug 2;365(6452):505-509. doi: 10.1126/science.aav9033.
- Hadinegoro SR, Arredondo-Garcia JL, Capeding MR, Deseda C, Chotpitayasunondh T, Dietze R, Muhammad Ismail HI, Reynales H, Limkittikul K, Rivera-Medina DM, Tran HN, Bouckenooghe A, Chansinghakul D, Cortes M, Fanouillere K, Forrat R, Frago C, Gailhardou S, Jackson N, Noriega F, Plennevaux E, Wartel TA, Zambrano B, Saville M; CYD-TDV Dengue Vaccine Working Group. Efficacy and Long-Term Safety of a Dengue Vaccine in Regions of Endemic Disease. N Engl J Med. 2015 Sep 24;373(13):1195-206. doi: 10.1056/NEJMoa1506223. Epub 2015 Jul 27.
- Herbert AS, Kuehne AI, Barth JF, Ortiz RA, Nichols DK, Zak SE, Stonier SW, Muhammad MA, Bakken RR, Prugar LI, Olinger GG, Groebner JL, Lee JS, Pratt WD, Custer M, Kamrud KI, Smith JF, Hart MK, Dye JM. Venezuelan equine encephalitis virus replicon particle vaccine protects nonhuman primates from intramuscular and aerosol challenge with ebolavirus. J Virol. 2013 May;87(9):4952-64. doi: 10.1128/JVI.03361-12. Epub 2013 Feb 13.
- Li W, Ye L, Carrion R Jr, Mohan GS, Nunneley J, Staples H, Ticer A, Patterson JL, Compans RW, Yang C. Characterization of Immune Responses Induced by Ebola Virus Glycoprotein (GP) and Truncated GP Isoform DNA Vaccines and Protection Against Lethal Ebola Virus Challenge in Mice. J Infect Dis. 2015 Oct 1;212 Suppl 2(Suppl 2):S398-403. doi: 10.1093/infdis/jiv186. Epub 2015 Apr 14.
- Cashman KA, Broderick KE, Wilkinson ER, Shaia CI, Bell TM, Shurtleff AC, Spik KW, Badger CV, Guttieri MC, Sardesai NY, Schmaljohn CS. Enhanced Efficacy of a Codon-Optimized DNA Vaccine Encoding the Glycoprotein Precursor Gene of Lassa Virus in a Guinea Pig Disease Model When Delivered by Dermal Electroporation. Vaccines (Basel). 2013 Jul 18;1(3):262-77. doi: 10.3390/vaccines1030262.
- Grant-Klein RJ, Altamura LA, Badger CV, Bounds CE, Van Deusen NM, Kwilas SA, Vu HA, Warfield KL, Hooper JW, Hannaman D, Dupuy LC, Schmaljohn CS. Codon-optimized filovirus DNA vaccines delivered by intramuscular electroporation protect cynomolgus macaques from lethal Ebola and Marburg virus challenges. Hum Vaccin Immunother. 2015;11(8):1991-2004. doi: 10.1080/21645515.2015.1039757.
- Shedlock DJ, Aviles J, Talbott KT, Wong G, Wu SJ, Villarreal DO, Myles DJ, Croyle MA, Yan J, Kobinger GP, Weiner DB. Induction of broad cytotoxic T cells by protective DNA vaccination against Marburg and Ebola. Mol Ther. 2013 Jul;21(7):1432-44. doi: 10.1038/mt.2013.61. Epub 2013 May 14.
- Grant-Klein RJ, Van Deusen NM, Badger CV, Hannaman D, Dupuy LC, Schmaljohn CS. A multiagent filovirus DNA vaccine delivered by intramuscular electroporation completely protects mice from ebola and Marburg virus challenge. Hum Vaccin Immunother. 2012 Nov 1;8(11):1703-6. doi: 10.4161/hv.21873. Epub 2012 Aug 24.
- Li L, Petrovsky N. Molecular mechanisms for enhanced DNA vaccine immunogenicity. Expert Rev Vaccines. 2016;15(3):313-29. doi: 10.1586/14760584.2016.1124762. Epub 2015 Dec 28.
- Alberer M, Gnad-Vogt U, Hong HS, Mehr KT, Backert L, Finak G, Gottardo R, Bica MA, Garofano A, Koch SD, Fotin-Mleczek M, Hoerr I, Clemens R, von Sonnenburg F. Safety and immunogenicity of a mRNA rabies vaccine in healthy adults: an open-label, non-randomised, prospective, first-in-human phase 1 clinical trial. Lancet. 2017 Sep 23;390(10101):1511-1520. doi: 10.1016/S0140-6736(17)31665-3. Epub 2017 Jul 25.
- Sahin U, Kariko K, Tureci O. mRNA-based therapeutics--developing a new class of drugs. Nat Rev Drug Discov. 2014 Oct;13(10):759-80. doi: 10.1038/nrd4278. Epub 2014 Sep 19.
- Feldman RA, Fuhr R, Smolenov I, Mick Ribeiro A, Panther L, Watson M, Senn JJ, Smith M, Almarsson Ӧ, Pujar HS, Laska ME, Thompson J, Zaks T, Ciaramella G. mRNA vaccines against H10N8 and H7N9 influenza viruses of pandemic potential are immunogenic and well tolerated in healthy adults in phase 1 randomized clinical trials. Vaccine. 2019 May 31;37(25):3326-3334. doi: 10.1016/j.vaccine.2019.04.074. Epub 2019 May 10.
- Kis Z, Shattock R, Shah N, Kontoravdi C. Emerging Technologies for Low-Cost, Rapid Vaccine Manufacture. Biotechnol J. 2019 Jan;14(1):e1800376. doi: 10.1002/biot.201800376. Epub 2018 Dec 10. Erratum In: Biotechnol J. 2019 Jul;14(7):1-2.
- Wrapp D, Wang N, Corbett KS, Goldsmith JA, Hsieh CL, Abiona O, Graham BS, McLellan JS. Cryo-EM structure of the 2019-nCoV spike in the prefusion conformation. Science. 2020 Mar 13;367(6483):1260-1263. doi: 10.1126/science.abb2507. Epub 2020 Feb 19.
- Ljungberg K, Liljestrom P. Self-replicating alphavirus RNA vaccines. Expert Rev Vaccines. 2015 Feb;14(2):177-94. doi: 10.1586/14760584.2015.965690. Epub 2014 Oct 1.
- Ulmer JB, Mansoura MK, Geall AJ. Vaccines 'on demand': science fiction or a future reality. Expert Opin Drug Discov. 2015 Feb;10(2):101-6. doi: 10.1517/17460441.2015.996128. Epub 2015 Jan 13.
- Brito LA, Kommareddy S, Maione D, Uematsu Y, Giovani C, Berlanda Scorza F, Otten GR, Yu D, Mandl CW, Mason PW, Dormitzer PR, Ulmer JB, Geall AJ. Self-amplifying mRNA vaccines. Adv Genet. 2015;89:179-233. doi: 10.1016/bs.adgen.2014.10.005. Epub 2014 Dec 4.
- Erwin-Cohen RA, Porter AI, Pittman PR, Rossi CA, DaSilva L. Human transcriptome response to immunization with live-attenuated Venezuelan equine encephalitis virus vaccine (TC-83): Analysis of whole blood. Hum Vaccin Immunother. 2017 Jan 2;13(1):169-179. doi: 10.1080/21645515.2016.1227900. Epub 2016 Nov 21.
- Bernstein DI, Reap EA, Katen K, Watson A, Smith K, Norberg P, Olmsted RA, Hoeper A, Morris J, Negri S, Maughan MF, Chulay JD. Randomized, double-blind, Phase 1 trial of an alphavirus replicon vaccine for cytomegalovirus in CMV seronegative adult volunteers. Vaccine. 2009 Dec 11;28(2):484-93. doi: 10.1016/j.vaccine.2009.09.135. Epub 2009 Oct 24.
- Lui PY, Wong LR, Ho TH, Au SWN, Chan CP, Kok KH, Jin DY. PACT Facilitates RNA-Induced Activation of MDA5 by Promoting MDA5 Oligomerization. J Immunol. 2017 Sep 1;199(5):1846-1855. doi: 10.4049/jimmunol.1601493. Epub 2017 Jul 31.
- Siu KL, Yeung ML, Kok KH, Yuen KS, Kew C, Lui PY, Chan CP, Tse H, Woo PC, Yuen KY, Jin DY. Middle east respiratory syndrome coronavirus 4a protein is a double-stranded RNA-binding protein that suppresses PACT-induced activation of RIG-I and MDA5 in the innate antiviral response. J Virol. 2014 May;88(9):4866-76. doi: 10.1128/JVI.03649-13. Epub 2014 Feb 12.
- Batool M, Shah M, Patra MC, Yesudhas D, Choi S. Structural insights into the Middle East respiratory syndrome coronavirus 4a protein and its dsRNA binding mechanism. Sci Rep. 2017 Sep 12;7(1):11362. doi: 10.1038/s41598-017-11736-6.
- Rabouw HH, Langereis MA, Knaap RC, Dalebout TJ, Canton J, Sola I, Enjuanes L, Bredenbeek PJ, Kikkert M, de Groot RJ, van Kuppeveld FJ. Middle East Respiratory Coronavirus Accessory Protein 4a Inhibits PKR-Mediated Antiviral Stress Responses. PLoS Pathog. 2016 Oct 26;12(10):e1005982. doi: 10.1371/journal.ppat.1005982. eCollection 2016 Oct.
- McKay PF, Hu K, Blakney AK, Samnuan K, Brown JC, Penn R, Zhou J, Bouton CR, Rogers P, Polra K, Lin PJC, Barbosa C, Tam YK, Barclay WS, Shattock RJ. Self-amplifying RNA SARS-CoV-2 lipid nanoparticle vaccine candidate induces high neutralizing antibody titers in mice. Nat Commun. 2020 Jul 9;11(1):3523. doi: 10.1038/s41467-020-17409-9.
- Slovin SF, Kehoe M, Durso R, Fernandez C, Olson W, Gao JP, Israel R, Scher HI, Morris S. A phase I dose escalation trial of vaccine replicon particles (VRP) expressing prostate-specific membrane antigen (PSMA) in subjects with prostate cancer. Vaccine. 2013 Jan 30;31(6):943-9. doi: 10.1016/j.vaccine.2012.11.096. Epub 2012 Dec 13.
- Demoulins T, Milona P, Englezou PC, Ebensen T, Schulze K, Suter R, Pichon C, Midoux P, Guzman CA, Ruggli N, McCullough KC. Polyethylenimine-based polyplex delivery of self-replicating RNA vaccines. Nanomedicine. 2016 Apr;12(3):711-722. doi: 10.1016/j.nano.2015.11.001. Epub 2015 Dec 1.
- Vogel AB, Lambert L, Kinnear E, Busse D, Erbar S, Reuter KC, Wicke L, Perkovic M, Beissert T, Haas H, Reece ST, Sahin U, Tregoning JS. Self-Amplifying RNA Vaccines Give Equivalent Protection against Influenza to mRNA Vaccines but at Much Lower Doses. Mol Ther. 2018 Feb 7;26(2):446-455. doi: 10.1016/j.ymthe.2017.11.017. Epub 2017 Dec 5.
- Hoy SM. Patisiran: First Global Approval. Drugs. 2018 Oct;78(15):1625-1631. doi: 10.1007/s40265-018-0983-6.
- NCT04283461. Safety and Immunogenicity Study of 2019-nCoV Vaccine (mRNA-1273) to Prevent SARS-CoV-2 Infection
- Lokugamage KG, Yoshikawa-Iwata N, Ito N, Watts DM, Wyde PR, Wang N, Newman P, Kent Tseng CT, Peters CJ, Makino S. Chimeric coronavirus-like particles carrying severe acute respiratory syndrome coronavirus (SCoV) S protein protect mice against challenge with SCoV. Vaccine. 2008 Feb 6;26(6):797-808. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.11.092. Epub 2007 Dec 26.
- Yasui F, Kai C, Kitabatake M, Inoue S, Yoneda M, Yokochi S, Kase R, Sekiguchi S, Morita K, Hishima T, Suzuki H, Karamatsu K, Yasutomi Y, Shida H, Kidokoro M, Mizuno K, Matsushima K, Kohara M. Prior immunization with severe acute respiratory syndrome (SARS)-associated coronavirus (SARS-CoV) nucleocapsid protein causes severe pneumonia in mice infected with SARS-CoV. J Immunol. 2008 Nov 1;181(9):6337-48. doi: 10.4049/jimmunol.181.9.6337.
- Bolles M, Deming D, Long K, Agnihothram S, Whitmore A, Ferris M, Funkhouser W, Gralinski L, Totura A, Heise M, Baric RS. A double-inactivated severe acute respiratory syndrome coronavirus vaccine provides incomplete protection in mice and induces increased eosinophilic proinflammatory pulmonary response upon challenge. J Virol. 2011 Dec;85(23):12201-15. doi: 10.1128/JVI.06048-11. Epub 2011 Sep 21.
- Tseng CT, Sbrana E, Iwata-Yoshikawa N, Newman PC, Garron T, Atmar RL, Peters CJ, Couch RB. Immunization with SARS coronavirus vaccines leads to pulmonary immunopathology on challenge with the SARS virus. PLoS One. 2012;7(4):e35421. doi: 10.1371/journal.pone.0035421. Epub 2012 Apr 20. Erratum In: PLoS One. 2012;7(8). doi:10.1371/annotation/2965cfae-b77d-4014-8b7b-236e01a35492.
- Castilow EM, Olson MR, Varga SM. Understanding respiratory syncytial virus (RSV) vaccine-enhanced disease. Immunol Res. 2007;39(1-3):225-39. doi: 10.1007/s12026-007-0071-6.
- Collins PL, Graham BS. Viral and host factors in human respiratory syncytial virus pathogenesis. J Virol. 2008 Mar;82(5):2040-55. doi: 10.1128/JVI.01625-07. Epub 2007 Oct 10. No abstract available.
- Deming D, Sheahan T, Heise M, Yount B, Davis N, Sims A, Suthar M, Harkema J, Whitmore A, Pickles R, West A, Donaldson E, Curtis K, Johnston R, Baric R. Vaccine efficacy in senescent mice challenged with recombinant SARS-CoV bearing epidemic and zoonotic spike variants. PLoS Med. 2006 Dec;3(12):e525. doi: 10.1371/journal.pmed.0030525. Erratum In: PLoS Med. 2007 Feb;4(2):e80.
- Takada A, Kawaoka Y. Antibody-dependent enhancement of viral infection: molecular mechanisms and in vivo implications. Rev Med Virol. 2003 Nov-Dec;13(6):387-98. doi: 10.1002/rmv.405.
- Mascola JR, Mathieson BJ, Zack PM, Walker MC, Halstead SB, Burke DS. Summary report: workshop on the potential risks of antibody-dependent enhancement in human HIV vaccine trials. AIDS Res Hum Retroviruses. 1993 Dec;9(12):1175-84. doi: 10.1089/aid.1993.9.1175.
- Jaume M, Yip MS, Cheung CY, Leung HL, Li PH, Kien F, Dutry I, Callendret B, Escriou N, Altmeyer R, Nal B, Daeron M, Bruzzone R, Peiris JS. Anti-severe acute respiratory syndrome coronavirus spike antibodies trigger infection of human immune cells via a pH- and cysteine protease-independent FcgammaR pathway. J Virol. 2011 Oct;85(20):10582-97. doi: 10.1128/JVI.00671-11. Epub 2011 Jul 20.
- Wang Q, Zhang L, Kuwahara K, Li L, Liu Z, Li T, Zhu H, Liu J, Xu Y, Xie J, Morioka H, Sakaguchi N, Qin C, Liu G. Immunodominant SARS Coronavirus Epitopes in Humans Elicited both Enhancing and Neutralizing Effects on Infection in Non-human Primates. ACS Infect Dis. 2016 May 13;2(5):361-76. doi: 10.1021/acsinfecdis.6b00006. Epub 2016 Apr 11. Erratum In: ACS Infect Dis. 2020 May 8;6(5):1284-1285.
- Yip MS, Leung HL, Li PH, Cheung CY, Dutry I, Li D, Daeron M, Bruzzone R, Peiris JS, Jaume M. Antibody-dependent enhancement of SARS coronavirus infection and its role in the pathogenesis of SARS. Hong Kong Med J. 2016 Jun;22(3 Suppl 4):25-31. No abstract available.
- Yang ZY, Werner HC, Kong WP, Leung K, Traggiai E, Lanzavecchia A, Nabel GJ. Evasion of antibody neutralization in emerging severe acute respiratory syndrome coronaviruses. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005 Jan 18;102(3):797-801. doi: 10.1073/pnas.0409065102. Epub 2005 Jan 10.
- Wang SF, Tseng SP, Yen CH, Yang JY, Tsao CH, Shen CW, Chen KH, Liu FT, Liu WT, Chen YM, Huang JC. Antibody-dependent SARS coronavirus infection is mediated by antibodies against spike proteins. Biochem Biophys Res Commun. 2014 Aug 22;451(2):208-14. doi: 10.1016/j.bbrc.2014.07.090. Epub 2014 Jul 26.
- Kam YW, Kien F, Roberts A, Cheung YC, Lamirande EW, Vogel L, Chu SL, Tse J, Guarner J, Zaki SR, Subbarao K, Peiris M, Nal B, Altmeyer R. Antibodies against trimeric S glycoprotein protect hamsters against SARS-CoV challenge despite their capacity to mediate FcgammaRII-dependent entry into B cells in vitro. Vaccine. 2007 Jan 8;25(4):729-40. doi: 10.1016/j.vaccine.2006.08.011. Epub 2006 Aug 22.
- Luo F, Liao FL, Wang H, Tang HB, Yang ZQ, Hou W. Evaluation of Antibody-Dependent Enhancement of SARS-CoV Infection in Rhesus Macaques Immunized with an Inactivated SARS-CoV Vaccine. Virol Sin. 2018 Apr;33(2):201-204. doi: 10.1007/s12250-018-0009-2. Epub 2018 Mar 14. No abstract available.
- McLellan JS, Chen M, Joyce MG, Sastry M, Stewart-Jones GB, Yang Y, Zhang B, Chen L, Srivatsan S, Zheng A, Zhou T, Graepel KW, Kumar A, Moin S, Boyington JC, Chuang GY, Soto C, Baxa U, Bakker AQ, Spits H, Beaumont T, Zheng Z, Xia N, Ko SY, Todd JP, Rao S, Graham BS, Kwong PD. Structure-based design of a fusion glycoprotein vaccine for respiratory syncytial virus. Science. 2013 Nov 1;342(6158):592-8. doi: 10.1126/science.1243283. Erratum In: Science. 2013 Nov 22;342(6161):931.
- Kentner AC, Miguelez M, James JS, Bielajew C. Behavioral and physiological effects of a single injection of rat interferon-alpha on male Sprague-Dawley rats: a long-term evaluation. Brain Res. 2006 Jun 20;1095(1):96-106. doi: 10.1016/j.brainres.2006.04.014. Epub 2006 May 18.
- Pepini T, Pulichino AM, Carsillo T, Carlson AL, Sari-Sarraf F, Ramsauer K, Debasitis JC, Maruggi G, Otten GR, Geall AJ, Yu D, Ulmer JB, Iavarone C. Induction of an IFN-Mediated Antiviral Response by a Self-Amplifying RNA Vaccine: Implications for Vaccine Design. J Immunol. 2017 May 15;198(10):4012-4024. doi: 10.4049/jimmunol.1601877. Epub 2017 Apr 17.
- Geall AJ, Verma A, Otten GR, Shaw CA, Hekele A, Banerjee K, Cu Y, Beard CW, Brito LA, Krucker T, O'Hagan DT, Singh M, Mason PW, Valiante NM, Dormitzer PR, Barnett SW, Rappuoli R, Ulmer JB, Mandl CW. Nonviral delivery of self-amplifying RNA vaccines. Proc Natl Acad Sci U S A. 2012 Sep 4;109(36):14604-9. doi: 10.1073/pnas.1209367109. Epub 2012 Aug 20.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Oczekiwany)
Ukończenie studiów (Oczekiwany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- COVAC Uganda
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Opis planu IPD
Ramy czasowe udostępniania IPD
Kryteria dostępu do udostępniania IPD
Typ informacji pomocniczych dotyczących udostępniania IPD
- Protokół badania
- Formularz świadomej zgody (ICF)
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .