- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT04934111
Segurança e imunogenicidade da vacina LNP-nCOV saRNA-02 contra SARS-CoV-2, o agente causador da COVID-19 (COVAC-Uganda)
Um ensaio clínico para avaliar a segurança e a imunogenicidade da vacina LNP-nCOV saRNA-02, uma vacina autoamplificadora de ácido ribonucleico (saRNA), na população de Uganda soronegativa e soropositiva para SARS-CoV-2
Visão geral do estudo
Status
Condições
Intervenção / Tratamento
Descrição detalhada
Histórico O coronavírus pandêmico em andamento, síndrome respiratória aguda grave coronavírus 2 (SARS-CoV-2) surgiu em humanos na China em algum momento entre outubro a novembro de 2019, e a doença infecciosa por coronavírus 2019 (COVID-19) foi identificada na China em dezembro de 2019 .
Até o final de janeiro de 2021, o SARS-CoV-2 havia infectado com diagnóstico confirmado mais de 106 milhões de pessoas em todo o mundo, resultando em mais de 2,3 milhões de mortes e mais de 59 milhões de pessoas recuperadas da infecção. Isso gera uma taxa nominal de mortalidade por infecção (IFR) de aproximadamente 2%, e cerca de 10% das pessoas infectadas ficaram com efeitos na saúde com duração de 6 meses ou mais. Em 8 de março de 2021, Uganda havia relatado 40.452 casos de coronavírus e 334 mortes. Por meio da COVAX, Uganda começou a distribuir a vacina AstraZeneca (à base de adenovírus) a partir de 10 de março de 2021.
A avaliação em desenvolvimento é que a única maneira de o mundo sair da pandemia de COVID-19 é por meio da implantação de uma vacina eficaz. Várias vacinas foram desenvolvidas e receberam autorização de uso emergencial da Food and Drug Administration dos Estados Unidos e/ou da Organização Mundial da Saúde. Os exemplos incluem as vacinas baseadas em ácido ribonucléico (mRNA) mensageiro da Pfizer-BioNTech e da Moderna, que demonstraram eficácia de 95%; Vacinas à base de adenovírus ChAdOx1 nCoV-19 da Oxford-AstraZeneca e Johnson e Johnson que demonstraram eficácia de 70% e 66%, respectivamente. O problema vem com a escala necessária e o prazo em que as vacinas precisam ser desenvolvidas e implantadas. Uma vacina de RNA auto-amplificadora (saRNA) fornece uma solução nova, viável e sensível ao tempo para contribuir para resolver o problema de SARS-CoV-2, seja durante a pandemia atual ou para epidemias sazonais em andamento.
Estudos demonstraram que a vacinação baseada em ácido nucleico pode proteger contra infecções virais em estudos de primatas não humanos (NHP), fornecendo prova de conceito de que a vacinação baseada em genes pode induzir anticorpos protetores. No entanto, as vacinas de DNA requerem imunizações múltiplas com o uso de eletroporação para induzir respostas imunes significativas em humanos. A terapêutica baseada em mRNA não replicante normalmente requer altas doses de RNA (100-600 µg). A exigência de altas doses e o custo associado sugerem que o mRNA não replicante pode ter dificuldades para produzir as centenas de milhões de doses necessárias para responder rapidamente a uma pandemia. Em contraste, experimentos com pequenos animais e primatas não humanos (NHP) sugerem que saRNA induz respostas significativamente aumentadas em comparação com vacinas de DNA entregues com eletroporação ou mRNA. De fato, uma única imunização com uma vacina de saRNA mostrou proteção contra o vírus Ebola em modelos animais. Se uma dose ≤10 µg de saRNA fornecer proteção contra COVID-19, isso forneceria vantagens críticas para a fabricação, onde 100.000 doses podem ser sintetizadas em um volume de reação de um litro. Em contraste com os vetores virais, a falta de imunidade anti-vetor fornece a oportunidade para imunizações repetidas com múltiplos imunógenos codificados por RNA.
A vacina saRNA de primeira geração (LNP-nCoV-saRNA) já está passando por avaliação de segurança em humanos no estudo COVAC1 no Reino Unido. A segurança desta vacina saRNA de primeira geração foi avaliada inicialmente em adultos jovens saudáveis, ou seja, 15 participantes com idades entre 18 e 45 anos, recebendo uma das três doses diferentes (0,1, 0,3 e 1 µg) por injeção no músculo, passando lentamente da do mais baixo ao mais alto durante um período de várias semanas. Até o momento, não foram relatados eventos adversos graves (SAEs) associados a esta vacina e uma baixa frequência de eventos de Grau 2. Um adicional de 35 voluntários foram randomizados em cada dose. Até o momento, 105 indivíduos saudáveis receberam duas imunizações em cada dose, com poucos eventos de Grau 2. Todos os participantes receberam com segurança ambas as doses. A avaliação inicial dos primeiros 15 indivíduos indica que, embora a vacina apresente um bom perfil de segurança, os níveis de soroconversão (75% para a dose de 1 µg) e anticorpo de ligação são menores do que o previsto nos modelos pré-clínicos. De fato, os dados gerados até o momento sugerem que as respostas estão na extremidade inferior de uma curva de resposta à dose. Uma fase de expansão adicional foi iniciada para explorar três doses mais altas 2,5, 5 e 10ug. A desconexão entre a resposta imune humana à vacina e os modelos pré-clínicos sugere que o nível de expressão de saRNA em humanos é menos eficaz do que em pequenos modelos animais. Os dados atuais indicam que a dose de 5ug administrada em 0 e 4 semanas induz uma resposta imune aceitável para a maioria (83%) dos indivíduos 4 semanas após a 2ª vacinação.
Os investigadores melhoraram este projeto inicial (COVAC1) com o vetor modificado, LNP-nCOV saRNA-02, que será investigado neste ensaio clínico.
Este estudo (COVAC Uganda) avaliará uma vacina inovadora de saRNA (LNP-nCOV saRNA-02) projetada para aumentar a potência da vacina protegendo o saRNA de proteínas celulares conhecidas por reduzir a expressão de saRNA. Os investigadores antecipam que o perfil de segurança da vacina modificada seja altamente semelhante à vacina de primeira geração já submetida a testes em humanos. O COVAC Uganda usará os mesmos critérios de avaliação do estudo COVAC1 projetado para verificar o quão bem o sistema imunológico foi ativado usando diferentes níveis de dose da vacina modificada. O COVAC Uganda também inscreverá indivíduos soropositivos para SARS-CoV-2 para avaliar a resposta imune com base no histórico sorológico. Os participantes soronegativos e soropositivos com idades entre 18 e 45 anos receberão uma dose de 5,0 ug nas semanas 0 e 4 semanas. Soronegativo é definido como IgG ≤ 10 AU mL-1 ou IgM ≤ 10 AU mL-1, e soropositivo é definido como IgG ≥ 10 AU mL-1 ou IgM ≥ 10 AU mL-1. A vacina é administrada por injeção no músculo da parte superior do braço. É provável que ocorram efeitos colaterais leves perto do local da injeção. Conforme observado no COVAC1, também pode haver efeitos colaterais mais gerais, como dor de cabeça, febre e calafrios. Os participantes serão solicitados a registrar quaisquer sintomas em um diário de vacinação. Para ver como o sistema imunológico está respondendo, os participantes precisarão fornecer amostras de sangue várias vezes durante as primeiras 6 semanas; depois mensalmente por alguns meses; então aos 6 meses.
Os investigadores prevêem que a vacina modificada induzirá níveis mais altos de anticorpos neutralizantes do que a vacina saRNA de primeira geração. No entanto, se alguma das doses não induzir uma resposta imune adequada, não há razão conhecida para que os participantes que receberam essas doses não possam receber uma imunização de reforço adicional com LNP-nCOV saRNA-02 em uma dose que demonstrou ser seguro. Também não há razão conhecida para que os participantes do COVAC Uganda não possam ser imunizados com outras vacinas SARS-CoV-2 aprovadas, incluindo vacinas vetorizadas ou com adjuvantes, caso se mostrem seguras e eficazes.
Justificativa do estudo Esta pandemia de SARS-CoV-2 infectou mais de 106 milhões de pessoas e matou mais de 2,3 milhões de pessoas. Como um novo vírus zoonótico, não há imunidade de rebanho e as únicas intervenções amplamente disponíveis até o momento são o distanciamento social para reduzir a pressão sobre os leitos de terapia intensiva e os sistemas de saúde, mas isso não é sustentável por razões econômicas. Ensaios clínicos de antivirais e outras terapias medicamentosas estão em andamento, mas a intervenção com maior probabilidade de mitigar o impacto médico, social e econômico de longo prazo da pandemia continua sendo a imunização em toda a população.
Apesar do lançamento de vacinas COVID-19 aprovadas com sucesso, são necessários substancialmente mais candidatos para fornecer 4,265 bilhões de doses para profissionais de saúde do mundo, adultos com mais de 65 anos e pessoas com maior risco (com comorbidades como diabetes, doenças cardiovasculares, câncer , obesidade ou doença respiratória crônica), muito menos doses para coortes mais jovens ou saudáveis.
Evidências recentes sugerem que as respostas imunes às vacinas de RNA mensageiro são aprimoradas para indivíduos previamente infectados por SARS-CoV-2. Este estudo investiga o papel da soroconversão no impacto de uma candidata a vacina de RNA de autoamplificação e informará sobre a possível aplicação de LNP-nCOV saRNA-02 como candidato a reforço de COVID-19 para indivíduos previamente infectados.
Dados pré-clínicos sugerem que a vacina LNP-nCOV saRNA-02 que codifica uma versão estabilizada por pré-fusão da S-glicoproteína provocará anticorpos neutralizantes em uma proporção maior de indivíduos do que a infecção natural (<50%), e que o LNP-nCOV saRNA A vacina -02 pode fornecer maior imunogenicidade e/ou redução da dose em relação ao construto de primeira geração, bem como para indivíduos soropositivos.
Desenho do estudo Este é um estudo clínico de fase I que se baseará na experiência clínica usando a vacina LNP nCoV saRNA atualmente sob avaliação no COVAC1 no Reino Unido. O estudo será realizado em pessoas de 18 a 45 anos em um único centro supervisionado pelo Chefe/Investigador Principal, alocando 42 participantes em dois grupos, com base no status de soroconversão.
População Indivíduo O estudo será conduzido em adultos jovens saudáveis, pois esses indivíduos geram as respostas mais robustas (18-45 anos). Tanto os participantes do sexo masculino quanto feminino serão incluídos e o local do ensaio tentará manter uma proporção igual, embora a prioridade seja garantir o acréscimo oportuno para o ensaio.
Dosagem e Admiração
Cada participante receberá uma dose IM de 5 ug de LNP-nCOV saRNA-02, no músculo deltóide na Semana 0 e na Semana 4, conforme indicado na tabela abaixo:
Componente do estudo Status sorológico Via Dose Vacinação 1 Vacinação 2 Grupo sorológico Anticorpos negativos SARS-CoV-2 IM 5,0 ug LNP-CoV mod-saRNA-02 Semana 0
Visita 2 Semana 4
Visite 5 anticorpos SARS-CoV-2 positivos IM 5,0 ug LNP-CoV mod-saRNA-02 Semana 0
Visita 2 Semana 4
Visita 5
Avaliações de segurança As vacinas estão associadas a várias reações bem caracterizadas locais, sistêmicas e laboratoriais, denominadas eventos adversos solicitados. Esses eventos adversos serão coletados intencionalmente.
As avaliações locais e sistêmicas ocorrerão no dia de cada injeção antes da injeção e 60 minutos após a injeção. Os participantes devem permanecer na clínica por pelo menos uma hora após cada injeção.
Os participantes receberão cartões diários de vacinas para auxiliar na coleta e classificação de eventos adversos que começam dentro de 7 dias após a injeção. A equipe do estudo examinará a lista de eventos adversos solicitados em uma entrevista estruturada e os registrará junto com a nota no eCRF apropriado no banco de dados do REDCap. Se algum dos eventos relatados em uma das visitas telefônicas for moderadamente grave (grau 2) ou pior, os participantes serão convidados à clínica para revisão.
Sangue (~10 mL) para parâmetros de segurança de rotina será coletado em todas as visitas do estudo. Se a bilirrubina total estiver elevada, a equipe do estudo solicitará um resultado para bilirrubina conjugada para classificar a anormalidade e determinar qualquer ação a ser tomada com relação a uma investigação mais aprofundada e interrupção do calendário vacinal.
Os sinais vitais (PA, FC, saturação de oxigênio e temperatura oral) serão medidos em todas as visitas do estudo.
Exames físicos do local da injeção e de outros sistemas corporais, se indicado, serão realizados no dia de cada vacinação e 1 semana após. Exames físicos direcionados aos sintomas serão realizados em todas as outras visitas de acompanhamento.
Tipo de estudo
Inscrição (Antecipado)
Estágio
- Fase 1
Contactos e Locais
Contato de estudo
- Nome: Jonathan Kitonsa, MBchB, MPH
- Número de telefone: +256774305403
- E-mail: Jonathan.Kitonsa@mrcuganda.org
Estude backup de contato
- Nome: Benjamin Pierce, PhD
- Número de telefone: 020 7594 6663
- E-mail: b.pierce@imperial.ac.uk
Locais de estudo
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-
Entebbe, Uganda, P.O.Box 49 Entebbe
- Recrutamento
- MRC/UVRI & LSHTM Uganda Research Unit
-
Contato:
- Jonathan Kitonsa, MBchB, MPH
- Número de telefone: +256774305403
- E-mail: Jonathan.Kitonsa@mrcuganda.org
-
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Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Gêneros Elegíveis para o Estudo
Descrição
Critério de inclusão:
- Adultos saudáveis de 18 a 45 anos de idade no dia da triagem
- Com risco semelhante de adquirir infecção por SARS-CoV-2 à população em geral
- Disposto e capaz de fornecer consentimento informado
- Se for do sexo feminino e com potencial para engravidar, deseja usar um método contraceptivo altamente eficaz desde a triagem até 18 semanas após a última injeção
- Se for homem e não esterilizado, disposto a evitar engravidar parceiras desde a triagem até 18 semanas após a última injeção
- Disposto a evitar todas as outras vacinas de 4 semanas antes da primeira injeção até 22 semanas após a segunda injeção
- Disposto e capaz de cumprir o cronograma de visitas, preencher diários de vacinas e fornecer amostras
- Disposto a conceder às pessoas autorizadas acesso ao seu prontuário médico relacionado ao estudo e registros de GP, direta ou indiretamente
Critério de exclusão:
- Grávida ou lactante
- Tem história clínica significativa, achado físico no exame clínico durante a triagem ou presença de doença ativa ou que requer tratamento para controlá-la, incluindo cardíaca, respiratória, endócrina, metabólica, autoimune, hepática, neurológica, oncológica, psiquiátrica, imunossupressora/ imunodeficiência ou outros distúrbios que, na opinião do investigador, não são compatíveis com o estado saudável, aumentam o risco de COVID-19 grave, podem comprometer a segurança do voluntário, impedir a vacinação ou comprometer a interpretação da resposta imune à vacina. Indivíduos com comorbidades leves/moderadas e bem controladas são permitidos.
- História de anafilaxia ou angioedema
- Infecção ativa por SARS-CoV-2 na inscrição, com base no teste de DNA-PCR
- Resultado RDT discordante
- História de alergias graves ou múltiplas a drogas ou agentes farmacêuticos
História de reação local ou geral grave à vacinação definida como:
- local: vermelhidão endurecida e extensa e inchaço envolvendo a maior parte do braço, não desaparecendo em 72 horas
- geral: febre ≥39,5 °C em 48 horas; broncoespasmo; edema laríngeo; colapso; convulsões ou encefalopatia dentro de 72 horas
- Já recebeu uma vacina experimental contra a COVID-19
- Recebimento de quaisquer agentes imunossupressores dentro de 18 semanas após a triagem por qualquer via que não seja tópica
- Detecção de anticorpos para hepatite C
- Detecção de anticorpos para o HIV
- Anormalidades de Grau 1 e acima nos parâmetros laboratoriais de rotina usando a tabela de toxicidade da FDA Escala de Grau de Toxicidade para Adultos e Adolescentes Saudáveis Voluntários Inscritos em Estudos Clínicos de Vacinas Preventivas. https://www.fda.gov/media/73679/download
- Participar de outro ensaio clínico com um medicamento ou dispositivo experimental, ou tratado com um medicamento experimental dentro de 28 dias após a triagem.
- Recebeu uma imunização dentro de 28 dias após a triagem
- Recebeu uma vacina COVID-19 autorizada
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Prevenção
- Alocação: N / D
- Modelo Intervencional: Atribuição de grupo único
- Mascaramento: Nenhum (rótulo aberto)
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
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Experimental: Braço da vacina LNP-nCOV saRNA-02
Os participantes que têm evidência de infecção anterior com SARS-CoV-2 e aqueles sem evidência de infecção anterior receberão a vacina LNP-nCOV saRNA-02.
Ambos os grupos receberão uma dose de 5,0ug nas semanas 0 e 4 semanas.
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uma vacina autoamplificadora de ácido ribonucleico (saRNA) que codifica a glicoproteína S do SARS-CoV-2, o agente causador do COVID-19
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Número de participantes com reações locais solicitadas no local da injeção
Prazo: 7 dias após cada injeção
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Número de participantes com reações locais solicitadas no local da injeção, começando dentro de 7 dias após a administração da vacina: dor, sensibilidade, eritema, inchaço
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7 dias após cada injeção
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Número de participantes com reações sistêmicas solicitadas iniciadas até 7 dias após a administração da vacina
Prazo: 7 dias após cada injeção
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Número de participantes com reações sistêmicas solicitadas começando dentro de 7 dias após a administração da vacina: pirexia, fadiga, mialgia, dor de cabeça, calafrios, artralgia
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7 dias após cada injeção
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Número de participantes com reações adversas não solicitadas (ARs) ao longo do estudo
Prazo: 6 meses
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Número de participantes com reações adversas (ARs) não solicitadas durante o período do estudo (incluindo RAs graves)
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6 meses
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Número de participantes com eventos adversos graves
Prazo: 6 meses
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Número de participantes com eventos adversos graves
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6 meses
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Número de participantes com eventos adversos não solicitados
Prazo: 6 meses
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Número de participantes com eventos adversos não solicitados durante o período do estudo
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6 meses
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O título de anticorpos neutralizantes séricos 2 semanas após a segunda vacinação no ensaio de neutralização baseado em pseudovírus SARS-CoV-2
Prazo: do dia 1, até seis meses
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O título de anticorpos neutralizantes séricos 2 semanas após a segunda vacinação no ensaio de neutralização baseado em pseudovírus SARS-CoV-2
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do dia 1, até seis meses
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O título de respostas de anticorpo de ligação de IgG sérica induzida por vacina à glicoproteína SARS-CoV-2 S 2 semanas após a primeira e a segunda vacinação
Prazo: do dia 1, até seis meses
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O título de respostas de anticorpo de ligação de IgG sérica induzida por vacina à glicoproteína SARS-CoV-2 S 2 semanas após a primeira e a segunda vacinação
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do dia 1, até seis meses
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Respostas imunes induzidas por vacinas mediadas por células medidas por ELISpot de células T e B em participantes do estudo
Prazo: do dia 1, até seis meses
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Respostas imunes induzidas por vacinas mediadas por células medidas por ELISpot de células T e B em participantes do estudo
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do dia 1, até seis meses
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Respostas imunes induzidas por vacinas mediadas por células medidas por citometria de fluxo e coloração de citocinas intracelulares em participantes do estudo
Prazo: do dia 1, até seis meses
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Respostas imunes induzidas por vacinas mediadas por células medidas por citometria de fluxo e coloração de citocinas intracelulares em participantes do estudo
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do dia 1, até seis meses
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O perfil de classe e subclasse de resposta de anticorpos
Prazo: do dia 1, até seis meses
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O perfil de classe e subclasse de resposta de anticorpos
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do dia 1, até seis meses
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Marcadores laboratoriais de infecção e imunidade induzida por infecção
Prazo: durante os 6 meses do julgamento
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Marcadores laboratoriais de infecção e imunidade induzida por infecção
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durante os 6 meses do julgamento
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Incidência de trombocitopenia de qualquer grau confirmada na repetição do teste, se possível
Prazo: Através de 6 meses do julgamento
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Incidência de trombocitopenia de qualquer grau confirmada na repetição do teste, se possível
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Através de 6 meses do julgamento
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Pontiano Kaleebu, PhD, MRC/UVRI & LSHTM Uganda Research Unit
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Liu L, Wei Q, Lin Q, Fang J, Wang H, Kwok H, Tang H, Nishiura K, Peng J, Tan Z, Wu T, Cheung KW, Chan KH, Alvarez X, Qin C, Lackner A, Perlman S, Yuen KY, Chen Z. Anti-spike IgG causes severe acute lung injury by skewing macrophage responses during acute SARS-CoV infection. JCI Insight. 2019 Feb 21;4(4):e123158. doi: 10.1172/jci.insight.123158. eCollection 2019 Feb 21.
- Wan Y, Shang J, Sun S, Tai W, Chen J, Geng Q, He L, Chen Y, Wu J, Shi Z, Zhou Y, Du L, Li F. Molecular Mechanism for Antibody-Dependent Enhancement of Coronavirus Entry. J Virol. 2020 Feb 14;94(5):e02015-19. doi: 10.1128/JVI.02015-19. Print 2020 Feb 14.
- Crank MC, Ruckwardt TJ, Chen M, Morabito KM, Phung E, Costner PJ, Holman LA, Hickman SP, Berkowitz NM, Gordon IJ, Yamshchikov GV, Gaudinski MR, Kumar A, Chang LA, Moin SM, Hill JP, DiPiazza AT, Schwartz RM, Kueltzo L, Cooper JW, Chen P, Stein JA, Carlton K, Gall JG, Nason MC, Kwong PD, Chen GL, Mascola JR, McLellan JS, Ledgerwood JE, Graham BS; VRC 317 Study Team. A proof of concept for structure-based vaccine design targeting RSV in humans. Science. 2019 Aug 2;365(6452):505-509. doi: 10.1126/science.aav9033.
- Hadinegoro SR, Arredondo-Garcia JL, Capeding MR, Deseda C, Chotpitayasunondh T, Dietze R, Muhammad Ismail HI, Reynales H, Limkittikul K, Rivera-Medina DM, Tran HN, Bouckenooghe A, Chansinghakul D, Cortes M, Fanouillere K, Forrat R, Frago C, Gailhardou S, Jackson N, Noriega F, Plennevaux E, Wartel TA, Zambrano B, Saville M; CYD-TDV Dengue Vaccine Working Group. Efficacy and Long-Term Safety of a Dengue Vaccine in Regions of Endemic Disease. N Engl J Med. 2015 Sep 24;373(13):1195-206. doi: 10.1056/NEJMoa1506223. Epub 2015 Jul 27.
- Herbert AS, Kuehne AI, Barth JF, Ortiz RA, Nichols DK, Zak SE, Stonier SW, Muhammad MA, Bakken RR, Prugar LI, Olinger GG, Groebner JL, Lee JS, Pratt WD, Custer M, Kamrud KI, Smith JF, Hart MK, Dye JM. Venezuelan equine encephalitis virus replicon particle vaccine protects nonhuman primates from intramuscular and aerosol challenge with ebolavirus. J Virol. 2013 May;87(9):4952-64. doi: 10.1128/JVI.03361-12. Epub 2013 Feb 13.
- Li W, Ye L, Carrion R Jr, Mohan GS, Nunneley J, Staples H, Ticer A, Patterson JL, Compans RW, Yang C. Characterization of Immune Responses Induced by Ebola Virus Glycoprotein (GP) and Truncated GP Isoform DNA Vaccines and Protection Against Lethal Ebola Virus Challenge in Mice. J Infect Dis. 2015 Oct 1;212 Suppl 2(Suppl 2):S398-403. doi: 10.1093/infdis/jiv186. Epub 2015 Apr 14.
- Cashman KA, Broderick KE, Wilkinson ER, Shaia CI, Bell TM, Shurtleff AC, Spik KW, Badger CV, Guttieri MC, Sardesai NY, Schmaljohn CS. Enhanced Efficacy of a Codon-Optimized DNA Vaccine Encoding the Glycoprotein Precursor Gene of Lassa Virus in a Guinea Pig Disease Model When Delivered by Dermal Electroporation. Vaccines (Basel). 2013 Jul 18;1(3):262-77. doi: 10.3390/vaccines1030262.
- Grant-Klein RJ, Altamura LA, Badger CV, Bounds CE, Van Deusen NM, Kwilas SA, Vu HA, Warfield KL, Hooper JW, Hannaman D, Dupuy LC, Schmaljohn CS. Codon-optimized filovirus DNA vaccines delivered by intramuscular electroporation protect cynomolgus macaques from lethal Ebola and Marburg virus challenges. Hum Vaccin Immunother. 2015;11(8):1991-2004. doi: 10.1080/21645515.2015.1039757.
- Shedlock DJ, Aviles J, Talbott KT, Wong G, Wu SJ, Villarreal DO, Myles DJ, Croyle MA, Yan J, Kobinger GP, Weiner DB. Induction of broad cytotoxic T cells by protective DNA vaccination against Marburg and Ebola. Mol Ther. 2013 Jul;21(7):1432-44. doi: 10.1038/mt.2013.61. Epub 2013 May 14.
- Grant-Klein RJ, Van Deusen NM, Badger CV, Hannaman D, Dupuy LC, Schmaljohn CS. A multiagent filovirus DNA vaccine delivered by intramuscular electroporation completely protects mice from ebola and Marburg virus challenge. Hum Vaccin Immunother. 2012 Nov 1;8(11):1703-6. doi: 10.4161/hv.21873. Epub 2012 Aug 24.
- Li L, Petrovsky N. Molecular mechanisms for enhanced DNA vaccine immunogenicity. Expert Rev Vaccines. 2016;15(3):313-29. doi: 10.1586/14760584.2016.1124762. Epub 2015 Dec 28.
- Alberer M, Gnad-Vogt U, Hong HS, Mehr KT, Backert L, Finak G, Gottardo R, Bica MA, Garofano A, Koch SD, Fotin-Mleczek M, Hoerr I, Clemens R, von Sonnenburg F. Safety and immunogenicity of a mRNA rabies vaccine in healthy adults: an open-label, non-randomised, prospective, first-in-human phase 1 clinical trial. Lancet. 2017 Sep 23;390(10101):1511-1520. doi: 10.1016/S0140-6736(17)31665-3. Epub 2017 Jul 25.
- Sahin U, Kariko K, Tureci O. mRNA-based therapeutics--developing a new class of drugs. Nat Rev Drug Discov. 2014 Oct;13(10):759-80. doi: 10.1038/nrd4278. Epub 2014 Sep 19.
- Feldman RA, Fuhr R, Smolenov I, Mick Ribeiro A, Panther L, Watson M, Senn JJ, Smith M, Almarsson Ӧ, Pujar HS, Laska ME, Thompson J, Zaks T, Ciaramella G. mRNA vaccines against H10N8 and H7N9 influenza viruses of pandemic potential are immunogenic and well tolerated in healthy adults in phase 1 randomized clinical trials. Vaccine. 2019 May 31;37(25):3326-3334. doi: 10.1016/j.vaccine.2019.04.074. Epub 2019 May 10.
- Kis Z, Shattock R, Shah N, Kontoravdi C. Emerging Technologies for Low-Cost, Rapid Vaccine Manufacture. Biotechnol J. 2019 Jan;14(1):e1800376. doi: 10.1002/biot.201800376. Epub 2018 Dec 10. Erratum In: Biotechnol J. 2019 Jul;14(7):1-2.
- Wrapp D, Wang N, Corbett KS, Goldsmith JA, Hsieh CL, Abiona O, Graham BS, McLellan JS. Cryo-EM structure of the 2019-nCoV spike in the prefusion conformation. Science. 2020 Mar 13;367(6483):1260-1263. doi: 10.1126/science.abb2507. Epub 2020 Feb 19.
- Ljungberg K, Liljestrom P. Self-replicating alphavirus RNA vaccines. Expert Rev Vaccines. 2015 Feb;14(2):177-94. doi: 10.1586/14760584.2015.965690. Epub 2014 Oct 1.
- Ulmer JB, Mansoura MK, Geall AJ. Vaccines 'on demand': science fiction or a future reality. Expert Opin Drug Discov. 2015 Feb;10(2):101-6. doi: 10.1517/17460441.2015.996128. Epub 2015 Jan 13.
- Brito LA, Kommareddy S, Maione D, Uematsu Y, Giovani C, Berlanda Scorza F, Otten GR, Yu D, Mandl CW, Mason PW, Dormitzer PR, Ulmer JB, Geall AJ. Self-amplifying mRNA vaccines. Adv Genet. 2015;89:179-233. doi: 10.1016/bs.adgen.2014.10.005. Epub 2014 Dec 4.
- Erwin-Cohen RA, Porter AI, Pittman PR, Rossi CA, DaSilva L. Human transcriptome response to immunization with live-attenuated Venezuelan equine encephalitis virus vaccine (TC-83): Analysis of whole blood. Hum Vaccin Immunother. 2017 Jan 2;13(1):169-179. doi: 10.1080/21645515.2016.1227900. Epub 2016 Nov 21.
- Bernstein DI, Reap EA, Katen K, Watson A, Smith K, Norberg P, Olmsted RA, Hoeper A, Morris J, Negri S, Maughan MF, Chulay JD. Randomized, double-blind, Phase 1 trial of an alphavirus replicon vaccine for cytomegalovirus in CMV seronegative adult volunteers. Vaccine. 2009 Dec 11;28(2):484-93. doi: 10.1016/j.vaccine.2009.09.135. Epub 2009 Oct 24.
- Lui PY, Wong LR, Ho TH, Au SWN, Chan CP, Kok KH, Jin DY. PACT Facilitates RNA-Induced Activation of MDA5 by Promoting MDA5 Oligomerization. J Immunol. 2017 Sep 1;199(5):1846-1855. doi: 10.4049/jimmunol.1601493. Epub 2017 Jul 31.
- Siu KL, Yeung ML, Kok KH, Yuen KS, Kew C, Lui PY, Chan CP, Tse H, Woo PC, Yuen KY, Jin DY. Middle east respiratory syndrome coronavirus 4a protein is a double-stranded RNA-binding protein that suppresses PACT-induced activation of RIG-I and MDA5 in the innate antiviral response. J Virol. 2014 May;88(9):4866-76. doi: 10.1128/JVI.03649-13. Epub 2014 Feb 12.
- Batool M, Shah M, Patra MC, Yesudhas D, Choi S. Structural insights into the Middle East respiratory syndrome coronavirus 4a protein and its dsRNA binding mechanism. Sci Rep. 2017 Sep 12;7(1):11362. doi: 10.1038/s41598-017-11736-6.
- Rabouw HH, Langereis MA, Knaap RC, Dalebout TJ, Canton J, Sola I, Enjuanes L, Bredenbeek PJ, Kikkert M, de Groot RJ, van Kuppeveld FJ. Middle East Respiratory Coronavirus Accessory Protein 4a Inhibits PKR-Mediated Antiviral Stress Responses. PLoS Pathog. 2016 Oct 26;12(10):e1005982. doi: 10.1371/journal.ppat.1005982. eCollection 2016 Oct.
- McKay PF, Hu K, Blakney AK, Samnuan K, Brown JC, Penn R, Zhou J, Bouton CR, Rogers P, Polra K, Lin PJC, Barbosa C, Tam YK, Barclay WS, Shattock RJ. Self-amplifying RNA SARS-CoV-2 lipid nanoparticle vaccine candidate induces high neutralizing antibody titers in mice. Nat Commun. 2020 Jul 9;11(1):3523. doi: 10.1038/s41467-020-17409-9.
- Slovin SF, Kehoe M, Durso R, Fernandez C, Olson W, Gao JP, Israel R, Scher HI, Morris S. A phase I dose escalation trial of vaccine replicon particles (VRP) expressing prostate-specific membrane antigen (PSMA) in subjects with prostate cancer. Vaccine. 2013 Jan 30;31(6):943-9. doi: 10.1016/j.vaccine.2012.11.096. Epub 2012 Dec 13.
- Demoulins T, Milona P, Englezou PC, Ebensen T, Schulze K, Suter R, Pichon C, Midoux P, Guzman CA, Ruggli N, McCullough KC. Polyethylenimine-based polyplex delivery of self-replicating RNA vaccines. Nanomedicine. 2016 Apr;12(3):711-722. doi: 10.1016/j.nano.2015.11.001. Epub 2015 Dec 1.
- Vogel AB, Lambert L, Kinnear E, Busse D, Erbar S, Reuter KC, Wicke L, Perkovic M, Beissert T, Haas H, Reece ST, Sahin U, Tregoning JS. Self-Amplifying RNA Vaccines Give Equivalent Protection against Influenza to mRNA Vaccines but at Much Lower Doses. Mol Ther. 2018 Feb 7;26(2):446-455. doi: 10.1016/j.ymthe.2017.11.017. Epub 2017 Dec 5.
- Hoy SM. Patisiran: First Global Approval. Drugs. 2018 Oct;78(15):1625-1631. doi: 10.1007/s40265-018-0983-6.
- NCT04283461. Safety and Immunogenicity Study of 2019-nCoV Vaccine (mRNA-1273) to Prevent SARS-CoV-2 Infection
- Lokugamage KG, Yoshikawa-Iwata N, Ito N, Watts DM, Wyde PR, Wang N, Newman P, Kent Tseng CT, Peters CJ, Makino S. Chimeric coronavirus-like particles carrying severe acute respiratory syndrome coronavirus (SCoV) S protein protect mice against challenge with SCoV. Vaccine. 2008 Feb 6;26(6):797-808. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.11.092. Epub 2007 Dec 26.
- Yasui F, Kai C, Kitabatake M, Inoue S, Yoneda M, Yokochi S, Kase R, Sekiguchi S, Morita K, Hishima T, Suzuki H, Karamatsu K, Yasutomi Y, Shida H, Kidokoro M, Mizuno K, Matsushima K, Kohara M. Prior immunization with severe acute respiratory syndrome (SARS)-associated coronavirus (SARS-CoV) nucleocapsid protein causes severe pneumonia in mice infected with SARS-CoV. J Immunol. 2008 Nov 1;181(9):6337-48. doi: 10.4049/jimmunol.181.9.6337.
- Bolles M, Deming D, Long K, Agnihothram S, Whitmore A, Ferris M, Funkhouser W, Gralinski L, Totura A, Heise M, Baric RS. A double-inactivated severe acute respiratory syndrome coronavirus vaccine provides incomplete protection in mice and induces increased eosinophilic proinflammatory pulmonary response upon challenge. J Virol. 2011 Dec;85(23):12201-15. doi: 10.1128/JVI.06048-11. Epub 2011 Sep 21.
- Tseng CT, Sbrana E, Iwata-Yoshikawa N, Newman PC, Garron T, Atmar RL, Peters CJ, Couch RB. Immunization with SARS coronavirus vaccines leads to pulmonary immunopathology on challenge with the SARS virus. PLoS One. 2012;7(4):e35421. doi: 10.1371/journal.pone.0035421. Epub 2012 Apr 20. Erratum In: PLoS One. 2012;7(8). doi:10.1371/annotation/2965cfae-b77d-4014-8b7b-236e01a35492.
- Castilow EM, Olson MR, Varga SM. Understanding respiratory syncytial virus (RSV) vaccine-enhanced disease. Immunol Res. 2007;39(1-3):225-39. doi: 10.1007/s12026-007-0071-6.
- Collins PL, Graham BS. Viral and host factors in human respiratory syncytial virus pathogenesis. J Virol. 2008 Mar;82(5):2040-55. doi: 10.1128/JVI.01625-07. Epub 2007 Oct 10. No abstract available.
- Deming D, Sheahan T, Heise M, Yount B, Davis N, Sims A, Suthar M, Harkema J, Whitmore A, Pickles R, West A, Donaldson E, Curtis K, Johnston R, Baric R. Vaccine efficacy in senescent mice challenged with recombinant SARS-CoV bearing epidemic and zoonotic spike variants. PLoS Med. 2006 Dec;3(12):e525. doi: 10.1371/journal.pmed.0030525. Erratum In: PLoS Med. 2007 Feb;4(2):e80.
- Takada A, Kawaoka Y. Antibody-dependent enhancement of viral infection: molecular mechanisms and in vivo implications. Rev Med Virol. 2003 Nov-Dec;13(6):387-98. doi: 10.1002/rmv.405.
- Mascola JR, Mathieson BJ, Zack PM, Walker MC, Halstead SB, Burke DS. Summary report: workshop on the potential risks of antibody-dependent enhancement in human HIV vaccine trials. AIDS Res Hum Retroviruses. 1993 Dec;9(12):1175-84. doi: 10.1089/aid.1993.9.1175.
- Jaume M, Yip MS, Cheung CY, Leung HL, Li PH, Kien F, Dutry I, Callendret B, Escriou N, Altmeyer R, Nal B, Daeron M, Bruzzone R, Peiris JS. Anti-severe acute respiratory syndrome coronavirus spike antibodies trigger infection of human immune cells via a pH- and cysteine protease-independent FcgammaR pathway. J Virol. 2011 Oct;85(20):10582-97. doi: 10.1128/JVI.00671-11. Epub 2011 Jul 20.
- Wang Q, Zhang L, Kuwahara K, Li L, Liu Z, Li T, Zhu H, Liu J, Xu Y, Xie J, Morioka H, Sakaguchi N, Qin C, Liu G. Immunodominant SARS Coronavirus Epitopes in Humans Elicited both Enhancing and Neutralizing Effects on Infection in Non-human Primates. ACS Infect Dis. 2016 May 13;2(5):361-76. doi: 10.1021/acsinfecdis.6b00006. Epub 2016 Apr 11. Erratum In: ACS Infect Dis. 2020 May 8;6(5):1284-1285.
- Yip MS, Leung HL, Li PH, Cheung CY, Dutry I, Li D, Daeron M, Bruzzone R, Peiris JS, Jaume M. Antibody-dependent enhancement of SARS coronavirus infection and its role in the pathogenesis of SARS. Hong Kong Med J. 2016 Jun;22(3 Suppl 4):25-31. No abstract available.
- Yang ZY, Werner HC, Kong WP, Leung K, Traggiai E, Lanzavecchia A, Nabel GJ. Evasion of antibody neutralization in emerging severe acute respiratory syndrome coronaviruses. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005 Jan 18;102(3):797-801. doi: 10.1073/pnas.0409065102. Epub 2005 Jan 10.
- Wang SF, Tseng SP, Yen CH, Yang JY, Tsao CH, Shen CW, Chen KH, Liu FT, Liu WT, Chen YM, Huang JC. Antibody-dependent SARS coronavirus infection is mediated by antibodies against spike proteins. Biochem Biophys Res Commun. 2014 Aug 22;451(2):208-14. doi: 10.1016/j.bbrc.2014.07.090. Epub 2014 Jul 26.
- Kam YW, Kien F, Roberts A, Cheung YC, Lamirande EW, Vogel L, Chu SL, Tse J, Guarner J, Zaki SR, Subbarao K, Peiris M, Nal B, Altmeyer R. Antibodies against trimeric S glycoprotein protect hamsters against SARS-CoV challenge despite their capacity to mediate FcgammaRII-dependent entry into B cells in vitro. Vaccine. 2007 Jan 8;25(4):729-40. doi: 10.1016/j.vaccine.2006.08.011. Epub 2006 Aug 22.
- Luo F, Liao FL, Wang H, Tang HB, Yang ZQ, Hou W. Evaluation of Antibody-Dependent Enhancement of SARS-CoV Infection in Rhesus Macaques Immunized with an Inactivated SARS-CoV Vaccine. Virol Sin. 2018 Apr;33(2):201-204. doi: 10.1007/s12250-018-0009-2. Epub 2018 Mar 14. No abstract available.
- McLellan JS, Chen M, Joyce MG, Sastry M, Stewart-Jones GB, Yang Y, Zhang B, Chen L, Srivatsan S, Zheng A, Zhou T, Graepel KW, Kumar A, Moin S, Boyington JC, Chuang GY, Soto C, Baxa U, Bakker AQ, Spits H, Beaumont T, Zheng Z, Xia N, Ko SY, Todd JP, Rao S, Graham BS, Kwong PD. Structure-based design of a fusion glycoprotein vaccine for respiratory syncytial virus. Science. 2013 Nov 1;342(6158):592-8. doi: 10.1126/science.1243283. Erratum In: Science. 2013 Nov 22;342(6161):931.
- Kentner AC, Miguelez M, James JS, Bielajew C. Behavioral and physiological effects of a single injection of rat interferon-alpha on male Sprague-Dawley rats: a long-term evaluation. Brain Res. 2006 Jun 20;1095(1):96-106. doi: 10.1016/j.brainres.2006.04.014. Epub 2006 May 18.
- Pepini T, Pulichino AM, Carsillo T, Carlson AL, Sari-Sarraf F, Ramsauer K, Debasitis JC, Maruggi G, Otten GR, Geall AJ, Yu D, Ulmer JB, Iavarone C. Induction of an IFN-Mediated Antiviral Response by a Self-Amplifying RNA Vaccine: Implications for Vaccine Design. J Immunol. 2017 May 15;198(10):4012-4024. doi: 10.4049/jimmunol.1601877. Epub 2017 Apr 17.
- Geall AJ, Verma A, Otten GR, Shaw CA, Hekele A, Banerjee K, Cu Y, Beard CW, Brito LA, Krucker T, O'Hagan DT, Singh M, Mason PW, Valiante NM, Dormitzer PR, Barnett SW, Rappuoli R, Ulmer JB, Mandl CW. Nonviral delivery of self-amplifying RNA vaccines. Proc Natl Acad Sci U S A. 2012 Sep 4;109(36):14604-9. doi: 10.1073/pnas.1209367109. Epub 2012 Aug 20.
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