- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT06738173
Narzędzie diagnostyczne oparte na mikrobiomie do badań przesiewowych w kierunku raka jelita grubego (GUILTI) (GUILTI)
Narzędzie diagnostyczne oparte na mikrobiomie jelitowym do badań przesiewowych w kierunku raka jelita grubego
Rak jelita grubego (CRC) jest jednym z najczęstszych nowotworów i przyczyną zgonów z powodu nowotworów na całym świecie. Populacyjne programy badań przesiewowych dla populacji średniego ryzyka okazały się skuteczne w zmniejszaniu zarówno częstości występowania, jak i umieralności na CRC poprzez wczesne wykrywanie raka. Testy immunochemiczne w kale (FIT) nadal dają nieoptymalną skuteczność diagnostyczną, gdyż wykrywane są zarówno gruczolaki, jak i głównie niepotrzebne kolonoskopie. Identyfikacja nowych, nieinwazyjnych biomarkerów jest obecnie jednym z obszarów badań generujących największe wydatki w dziedzinie CRC. Wiele dowodów wskazuje, że zmiany w mikrobiomie jelitowym i wzbogacenie określonych taksonów (np. Fusobacterium jądro, Parvimonas micra i inne) biorą udział w patogenezie CRC. Co więcej, w ostatnich badaniach odkryto wspólne sygnatury drobnoustrojów, umożliwiające powtarzalne rozróżnienie pacjentów z CRC od zdrowych pacjentów z grupy kontrolnej. Celem tego badania obserwacyjnego jest opracowanie narzędzia diagnostycznego opartego na mikrobiomie jelitowym, umożliwiającego identyfikację CRC i zaawansowanych gruczolaków jelita grubego u pacjentów włączonych do badania krajowym programie badań przesiewowych w kierunku raka jelita grubego (CRC) (w wieku 50–69 lat), a wśród nich kierowanie się do wszystkich ośrodków zaangażowanych w to badanie w celu wykonania kolonoskopii przesiewowej z wynikiem pozytywnym FIT, obu płci. Głównym punktem końcowym badania jest opracowanie narzędzia diagnostycznego opartego na mikrobiomie jelitowym, służącego do identyfikacji CRC i zaawansowanych gruczolaków jelita grubego u pacjentów objętych krajowym programem badań przesiewowych w kierunku CRC, z wykorzystaniem zarówno metod statystycznych, jak i uczenia maszynowego. Drugorzędowe punkty końcowe to:
- Związek wyników klinicznych i kolonoskopii z wynikami FIT;
- Charakterystyka mikrobiomu jelitowego z ekologicznego, taksonomicznego, filogenetycznego i funkcjonalnego punktu widzenia;
- Powiązanie między sygnaturami mikrobiomów a wynikami klinicznymi i kolonoskopią za pomocą algorytmów statystycznych i uczenia maszynowego. Na początku włączeni pacjenci dostarczą próbkę kału w ciągu 2 tygodni od włączenia, po czym zostaną zarejestrowane dane demograficzne, kliniczne i laboratoryjne. Pacjenci zakwalifikowani do badania zostaną zakwalifikowani na kolonoskopię, zgodnie z praktyką kliniczną, w ciągu 4 tygodni od pozytywnego wyniku FIT, a histologia resekowanych zmian zostanie oceniona przez doświadczonych patologów zgodnie z klasyfikacją WHO i kryteriami wiedeńskimi. Dane kliniczne, endoskopowe i mikrobiologiczne zostaną połączone za pomocą algorytmów statystycznych i uczenia maszynowego w celu zidentyfikowania konkretnych biomarkerów drobnoustrojowych powiązanych z CRC i opracowania nowego narzędzia diagnostycznego opartego na systemie punktacji. Narzędzie to zostanie poddane walidacji, a jego skuteczność diagnostyczna zostanie porównana z tradycyjnymi metodami przesiewowymi.
Przegląd badań
Status
Warunki
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
Rak jelita grubego (CRC) jest trzecim najczęstszym nowotworem i drugą najczęstszą przyczyną zgonów z powodu nowotworów na świecie, z prawie 2 milionami nowych przypadków i milionem zgonów w 2020 roku. W ostatnich dziesięcioleciach populacyjne programy badań przesiewowych dla populacji średniego ryzyka stały się skuteczną strategią zmniejszania zarówno zapadalności, jak i śmiertelności na CRC poprzez wczesne wykrywanie raka. Badanie immunochemiczne kału (FIT), referencyjne narzędzie diagnostyczne w większości krajów, nadal zapewnia nieoptymalną skuteczność diagnostyczną, zarówno w przypadku pominiętych gruczolaków, jak i głównie niepotrzebnych kolonoskopii. Z tych powodów w ostatnich latach w dziedzinie CRC zdecydowanie zaleca się identyfikację nowych, nieinwazyjnych biomarkerów. Wiele dowodów wskazuje, że zmiany w mikrobiomie jelitowym i wzbogacenie określonych taksonów (np. Fusobacterium jądro, Parvimonas micra i inne) biorą udział w patogenezie CRC. Co więcej, ostatnie badania, w tym metaanalizy metagenomiczne przeprowadzone przez naszą grupę, odkryły wspólne sygnatury drobnoustrojów, które są w stanie w powtarzalny sposób rozróżnić pacjentów z CRC od zdrowych osób z grupy kontrolnej. W oparciu o te dowody międzynarodowe wytyczne zalecały ostatnio wykorzystanie biomarkerów opartych na mikrobiomie do badań przesiewowych CRC w praktyce klinicznej, ale takie badania nie są jeszcze dostępne.
Głównym celem jest opracowanie narzędzia diagnostycznego opartego na mikrobiomie jelitowym, umożliwiającego identyfikację CRC i zaawansowanych gruczolaków jelita grubego.
Cele drugorzędne to:
- Powiązanie FIT z wynikami klinicznymi i kolonoskopią
- Scharakteryzowanie mikrobiomu jelitowego włączonych pacjentów
- Powiązanie sygnatur mikrobiomów z wynikami klinicznymi i kolonoskopią. Jest to obserwacyjne, prospektywne, wieloośrodkowe badanie, w którym pacjenci zostaną wybrani spośród osób zapisanych do krajowego programu badań przesiewowych w kierunku raka jelita grubego (CRC) i spośród tych, którzy będą kierowani do wszystkich ośrodków biorących udział w tym badaniu w celu wykonania kolonoskopii przesiewowej. Do badania zostaną włączeni pacjenci spełniający wszystkie kryteria włączenia i żadne z kryteriów wykluczenia (szczegółowo opisane w odpowiedniej sekcji tej witryny internetowej). N=1202 pacjentów zostanie włączonych na podstawie obliczenia wielkości próby i uwzględnienia grupy walidacyjnej. Potrzebnych będzie N=911 pacjentów, a my dodamy 91 pacjentów, aby uwzględnić 10% potencjalnej grupy pacjentów, którzy porzucili badanie, oraz 200 pacjentów jako grupę walidacyjną (20% kohorty badania). Pacjenci włączeni do tej kohorty walidacyjnej będą mieli takie same kryteria wykluczenia i włączenia jak inni pacjenci i zostaną poddani tym samym procedurom badania. Na początku badania wszyscy włączeni pacjenci dostarczą próbkę kału (pobraną przy użyciu buforu do konserwacji genomu) w ciągu 2 tygodni od włączenia i będą przechowywane w temperaturze -80°C w każdym ośrodku klinicznym i otrzymają zanonimizowane identyfikatory. Ponadto rejestrowane będą dane demograficzne, kliniczne i laboratoryjne.
W przypadku wszystkich włączonych pacjentów lekarze będą rejestrować następujące dane:
- Znana historia CRC;
- Choroby współistniejące;
- Przyjmowanie narkotyków;
- Objawy ze strony przewodu pokarmowego i objawy alarmowe (niedokrwistość z niedoboru żelaza, hematochezja, niewyjaśniona utrata masy ciała, ból brzucha, nagła zmiana rytmu wypróżnień);
- Nawyki żywieniowe;
- Palenie i spożywanie alkoholu;
- BMI (wskaźnik masy ciała);
- Ilościowe dane FIT;
- Informacje o poprzednich FIT i/lub kolonoskopiach i/lub wirtualnych kolonoskopiach.
Wszyscy włączeni pacjenci zostaną poddani kolonoskopii w ciągu 4 tygodni od pozytywnego wyniku FIT, po kolonoskopii, po określeniu parametrów endoskopowych (rozmiar, umiejscowienie, kształt w oparciu o klasę paryską). i zebrana zostanie charakterystyka histopatologiczna wykrytych zmian. Zaawansowane gruczolaki jelita grubego będą definiowane jako gruczolaki większe lub równe 10 mm i/lub z zawartością kosmków większą lub równą 25% i/lub dysplazją dużego stopnia. Ponadto pacjenci, u których zdiagnozowano CRC, będą również poddawani całkowitemu badaniu -TK ciała w celu określenia stopnia zaawansowania choroby i zostanie skierowane na ścieżkę onkologiczną w praktyce klinicznej i pobrane zostaną następujące dane: obecność przerzutów do węzłów chłonnych i przerzutów do narządów, TNM (Tumor-Node-Metastasis). Faza rekrutacji potrwa 48 miesięcy. Na koniec fazy rekrutacji badacze przeprowadzą analizę mikrobiomu, a następnie połączą dane kliniczne, endoskopowe i mikrobiologiczne za pomocą metod statystycznych i uczenia maszynowego algorytmy do identyfikacji specyficznych biomarkerów drobnoustrojowych związanych z CRC i zaawansowanymi gruczolakami jelita grubego, aby opracować nowe narzędzie diagnostyczne oparte na systemie punktacji.
Wyniki badania są szczegółowo opisane w odpowiedniej sekcji tej witryny internetowej. Analiza mikrobiomu zostanie przeprowadzona przy użyciu technik sekwencjonowania typu shotgun. Co więcej, aby uzyskać panel gatunków drobnoustrojów związanych głównie z CRC i zaawansowanymi gruczolakami jelita grubego, badacze wykorzystają aplikacje do uczenia maszynowego, na przykład przy użyciu powszechnie przyjętych algorytmów Random Forest, a także podejścia metaanalityczne integrujące naszą dużą kohortę z wcześniej opublikowanymi kohorty metagenomiczne. Zdefiniowany panel gatunków drobnoustrojów związanych głównie z CRC i zaawansowanymi gruczolakami jelita grubego zapewni kompleksową ocenę ryzyka w oparciu o cechy mikrobiomu, z dwoma konkretnymi celami: poprawą dokładności testowania narzędzia diagnostycznego FIT i zapewnieniem łatwej interpretacji przez klinicystów.Wszystkie zebrane dane kliniczne zostaną statystycznie połączone w celu uszeregowania cech drobnoustrojów od najbardziej do najmniej powiązanych.
Rankingi te zostaną wykorzystane do oceny profilu mikrobiomu nowego osobnika oraz do podania liczby znalezionych gatunków określonych w poprzednim panelu, a zatem powiązanych z CRC i zaawansowanymi gruczolakami jelita grubego. Powiązania między zidentyfikowanymi gatunkami i twórcami zainteresowania zostaną oszacowane za pomocą solidnych metod analizy statystycznej, takich jak częściowa korelacja lub modelowanie liniowe. Następnie powiązania zostaną uszeregowane i porównane pod względem markerów tego samego gatunku, dając każdemu gatunkowi punktację priorytetową. Szczególna uwaga zostanie poświęcona identyfikacji potencjalnych markerów zakłócających, o których wiadomo, że są powiązane z różnicami w składzie mikrobiomu, na przykład wiekiem, które zamiast tego powinny być stosowane jako współzmienne w modelowaniu statystycznym. Oprócz modelowania statystycznego, powiązania między gatunkami i markerami będą również oceniane za pomocą podejść ML, w szczególności tych zapewniających oceny ważności cech dla cech wejściowych (w naszym przypadku gatunku), które można wykorzystać do uszeregowania gatunku według różnych markerów ( np. Losowy las, LASSO itp.). Zmienne ciągłe będą podawane jako średnia ± odchylenie standardowe lub jako mediana i rozstęp międzykwartylowy (IQR), a zmienne kategoryczne podsumowano jako częstotliwość i procent. Porównania zmiennych będą dokonywane za pomocą testu t (lub testu Manna-Whitneya/Kruskala-Wallisa), testu chi-kwadrat lub dokładnego testu Fishera, zależnie od potrzeb. Za wskazanie istotności statystycznej zostanie uznana wartość p <0,05. Zostaną wykonane modele regresji logistycznej w celu zidentyfikowania obecności zmiennych niezależnie powiązanych z wynikami. Zmienne uwzględnione w modelach wybrano w drodze etapowej selekcji modelu, kierując się znaczeniem klinicznym. Wszystkie analizy statystyczne przeprowadzono przy użyciu programu SPSS v. 28.0 dla komputerów Macintosh (SPSS Inc., Chicago, USA).
Badacze zastosują platformę uczenia maszynowego (ML) opartą na pakiecie Pythona scikit-learn, stosując podejście krzyżowej walidacji ze 100 iteracjami ładowania początkowego i losowym podziałem 80/20 na części szkoleniowe i testowe. Algorytmy klasyfikacji i regresji ML zostaną przeszkolone zarówno w zakresie względnej liczebności taksonomicznej na poziomie gatunku mikrobiomu, jak i profili potencjału funkcjonalnego. Liczebność taksonomiczna na poziomie gatunku zostanie oszacowana za pomocą MetaPhlAn 4 (przy użyciu najnowszych dostępnych baz danych, obecnie nazwanych 22 października) i znormalizowana przy użyciu transformacji arcsin-sqrt dla danych o składzie. Profile potencjału funkcjonalnego zostaną oszacowane przy użyciu najnowszej wersji HUMANN 4, a badacze rozważą zarówno szacunki liczebności rodzin pojedynczych genów drobnoustrojów, jak i szlaków metabolicznych. Częściowe korelacje między gatunkami i markerami zostaną obliczone przy użyciu indeksu Spearmana, aby uniknąć błędów systematycznych wynikających z wartości odstających, i skorygowane o współzmienne, takie jak płeć, wiek i wskaźnik masy ciała, o których wiadomo, że mają wpływ na skład mikrobiomu. Częściowe wartości korelacji zostaną skorygowane przy użyciu procedury Benjaminiego-Hochberga dla współczynnika fałszywych odkryć.
Typ studiów
Zapisy (Szacowany)
Kontakty i lokalizacje
Kontakt w sprawie studiów
- Nazwa: Gianluca Ianiro, MD, PhD
- Numer telefonu: 0630159539
- E-mail: gianluca.ianiro@unicatt.it
Kopia zapasowa kontaktu do badania
- Nazwa: Serena Porcari, MD, PhD
- Numer telefonu: 0630159539
- E-mail: serena.porcari@guest.policlinicogemelli.it
Lokalizacje studiów
-
-
RM
-
Rome, RM, Włochy, 00168
- Rekrutacyjny
- Catholic University of the Sacred Heart
-
Kontakt:
- Gianluca Ianiro, MD,PhD
- Numer telefonu: 0630159539
- E-mail: gianluca.ianiro@unicatt.it
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
- Dorosły
- Starszy dorosły
Akceptuje zdrowych ochotników
Metoda próbkowania
Badana populacja
Opis
Kryteria włączenia:
- Pacjenci biorący udział w krajowym programie badań przesiewowych w kierunku CRC (50-69 lat)
- Pozytywny wpływ na FIT;
- Umiejętność wyrażenia pisemnej świadomej zgody i przestrzegania procedur badania.
Kryteria wykluczenia:
- Pacjenci niekwalifikujący się do kolonoskopii;
- Inne schorzenia onkologiczne;
- Współistniejące ciężkie choroby współistniejące lub choroby organiczne przewodu pokarmowego (np. choroba uchyłkowa, choroba zapalna jelit);
- Antybiotyki lub probiotyki w ciągu 4 tygodni przed zapisem;
- Przewlekła terapia (>12 tygodni) inhibitorami pompy protonowej.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
Kohorty i interwencje
Grupa / Kohorta |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Grupy/kohorty
Kohorta badania składa się z pacjentów włączonych do krajowego programu badań przesiewowych w kierunku raka jelita grubego (CRC). Uczestnicy zostaną wybrani spośród osób zapisanych do krajowego programu badań przesiewowych w kierunku raka jelita grubego (CRC) i spośród tych, którzy skierują się do wszystkich ośrodków zaangażowanych w to badanie w celu wykonania kolonoskopii przesiewowej. Pacjenci spełniający wszystkie kryteria włączenia i żadne z kryteriów wykluczenia nie będą brani pod uwagę w tym badaniu. Do badania zostanie włączonych N=1202 pacjentów, na podstawie obliczeń wielkości próby i uwzględnienia grupy walidacyjnej. Potrzebnych będzie N=911 pacjentów, a my dodamy 91 pacjentów, aby uwzględnić 10% potencjalnej grupy pacjentów, którzy porzucili badanie, oraz 200 pacjentów jako grupę walidacyjną (20% kohorty badania). |
Badanie mikrobiomu jelitowego w celu scharakteryzowania mikrobiomu jelitowego pacjenta
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Narzędzie diagnostyczne oparte na mikrobiomie jelitowym do wykrywania CRC i zaawansowanego gruczolaka jelita grubego
Ramy czasowe: 60 miesięcy
|
Odkrycie sygnatury mikrobiologicznej jelit umożliwiającej przewidywanie rozpoznania raka jelita grubego i zaawansowanych gruczolaków jelita grubego
|
60 miesięcy
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Korelacja między wynikami klinicznymi i endoskopowymi z FIT
Ramy czasowe: 60 miesięcy
|
Korelacja wyników klinicznych i kolonoskopii z wynikami badań immunochemicznych kału
|
60 miesięcy
|
|
Charakterystyka mikrobiomu próbek kału
Ramy czasowe: 60 miesięcy
|
Charakterystyka mikrobiomu jelitowego z ekologicznego, taksonomicznego, filogenetycznego i funkcjonalnego punktu widzenia
|
60 miesięcy
|
|
Korelacja między sygnaturami mikrobiomów a wynikami klinicznymi i endoskopowymi
Ramy czasowe: 60 miesięcy
|
Korelacja między sygnaturami mikrobiomów a wynikami klinicznymi i kolonoskopią za pomocą algorytmów statystycznych i uczenia maszynowego
|
60 miesięcy
|
Współpracownicy i badacze
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Kaminski MF, Thomas-Gibson S, Bugajski M, Bretthauer M, Rees CJ, Dekker E, Hoff G, Jover R, Suchanek S, Ferlitsch M, Anderson J, Roesch T, Hultcranz R, Racz I, Kuipers EJ, Garborg K, East JE, Rupinski M, Seip B, Bennett C, Senore C, Minozzi S, Bisschops R, Domagk D, Valori R, Spada C, Hassan C, Dinis-Ribeiro M, Rutter MD. Performance measures for lower gastrointestinal endoscopy: a European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE) Quality Improvement Initiative. Endoscopy. 2017 Apr;49(4):378-397. doi: 10.1055/s-0043-103411. Epub 2017 Mar 7.
- Gupta S, Halm EA, Rockey DC, Hammons M, Koch M, Carter E, Valdez L, Tong L, Ahn C, Kashner M, Argenbright K, Tiro J, Geng Z, Pruitt S, Skinner CS. Comparative effectiveness of fecal immunochemical test outreach, colonoscopy outreach, and usual care for boosting colorectal cancer screening among the underserved: a randomized clinical trial. JAMA Intern Med. 2013 Oct 14;173(18):1725-32. doi: 10.1001/jamainternmed.2013.9294.
- Sung H, Ferlay J, Siegel RL, Laversanne M, Soerjomataram I, Jemal A, Bray F. Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN Estimates of Incidence and Mortality Worldwide for 36 Cancers in 185 Countries. CA Cancer J Clin. 2021 May;71(3):209-249. doi: 10.3322/caac.21660. Epub 2021 Feb 4.
- Ladabaum U, Dominitz JA, Kahi C, Schoen RE. Strategies for Colorectal Cancer Screening. Gastroenterology. 2020 Jan;158(2):418-432. doi: 10.1053/j.gastro.2019.06.043. Epub 2019 Aug 5.
- Thomas AM, Manghi P, Asnicar F, Pasolli E, Armanini F, Zolfo M, Beghini F, Manara S, Karcher N, Pozzi C, Gandini S, Serrano D, Tarallo S, Francavilla A, Gallo G, Trompetto M, Ferrero G, Mizutani S, Shiroma H, Shiba S, Shibata T, Yachida S, Yamada T, Wirbel J, Schrotz-King P, Ulrich CM, Brenner H, Arumugam M, Bork P, Zeller G, Cordero F, Dias-Neto E, Setubal JC, Tett A, Pardini B, Rescigno M, Waldron L, Naccarati A, Segata N. Author Correction: Metagenomic analysis of colorectal cancer datasets identifies cross-cohort microbial diagnostic signatures and a link with choline degradation. Nat Med. 2019 Dec;25(12):1948. doi: 10.1038/s41591-019-0663-4.
- Schlemper RJ, Riddell RH, Kato Y, Borchard F, Cooper HS, Dawsey SM, Dixon MF, Fenoglio-Preiser CM, Flejou JF, Geboes K, Hattori T, Hirota T, Itabashi M, Iwafuchi M, Iwashita A, Kim YI, Kirchner T, Klimpfinger M, Koike M, Lauwers GY, Lewin KJ, Oberhuber G, Offner F, Price AB, Rubio CA, Shimizu M, Shimoda T, Sipponen P, Solcia E, Stolte M, Watanabe H, Yamabe H. The Vienna classification of gastrointestinal epithelial neoplasia. Gut. 2000 Aug;47(2):251-5. doi: 10.1136/gut.47.2.251.
- Pasolli E, Asnicar F, Manara S, Zolfo M, Karcher N, Armanini F, Beghini F, Manghi P, Tett A, Ghensi P, Collado MC, Rice BL, DuLong C, Morgan XC, Golden CD, Quince C, Huttenhower C, Segata N. Extensive Unexplored Human Microbiome Diversity Revealed by Over 150,000 Genomes from Metagenomes Spanning Age, Geography, and Lifestyle. Cell. 2019 Jan 24;176(3):649-662.e20. doi: 10.1016/j.cell.2019.01.001. Epub 2019 Jan 17.
- Blanco-Miguez A, Beghini F, Cumbo F, McIver LJ, Thompson KN, Zolfo M, Manghi P, Dubois L, Huang KD, Thomas AM, Nickols WA, Piccinno G, Piperni E, Puncochar M, Valles-Colomer M, Tett A, Giordano F, Davies R, Wolf J, Berry SE, Spector TD, Franzosa EA, Pasolli E, Asnicar F, Huttenhower C, Segata N. Extending and improving metagenomic taxonomic profiling with uncharacterized species using MetaPhlAn 4. Nat Biotechnol. 2023 Nov;41(11):1633-1644. doi: 10.1038/s41587-023-01688-w. Epub 2023 Feb 23.
- Beghini F, McIver LJ, Blanco-Miguez A, Dubois L, Asnicar F, Maharjan S, Mailyan A, Manghi P, Scholz M, Thomas AM, Valles-Colomer M, Weingart G, Zhang Y, Zolfo M, Huttenhower C, Franzosa EA, Segata N. Integrating taxonomic, functional, and strain-level profiling of diverse microbial communities with bioBakery 3. Elife. 2021 May 4;10:e65088. doi: 10.7554/eLife.65088.
- Zeller G, Tap J, Voigt AY, Sunagawa S, Kultima JR, Costea PI, Amiot A, Bohm J, Brunetti F, Habermann N, Hercog R, Koch M, Luciani A, Mende DR, Schneider MA, Schrotz-King P, Tournigand C, Tran Van Nhieu J, Yamada T, Zimmermann J, Benes V, Kloor M, Ulrich CM, von Knebel Doeberitz M, Sobhani I, Bork P. Potential of fecal microbiota for early-stage detection of colorectal cancer. Mol Syst Biol. 2014 Nov 28;10(11):766. doi: 10.15252/msb.20145645.
- Wong CC, Yu J. Gut microbiota in colorectal cancer development and therapy. Nat Rev Clin Oncol. 2023 Jul;20(7):429-452. doi: 10.1038/s41571-023-00766-x. Epub 2023 May 11.
- Chan FKL, Wong MCS, Chan AT, East JE, Chiu HM, Makharia GK, Weller D, Ooi CJ, Limsrivilai J, Saito Y, Hang DV, Emery JD, Makmun D, Wu K, Ali RAR, Ng SC. Joint Asian Pacific Association of Gastroenterology (APAGE)-Asian Pacific Society of Digestive Endoscopy (APSDE) clinical practice guidelines on the use of non-invasive biomarkers for diagnosis of colorectal neoplasia. Gut. 2023 Jul;72(7):1240-1254. doi: 10.1136/gutjnl-2023-329429. Epub 2023 Apr 5.
- Morikawa T, Kato J, Yamaji Y, Wada R, Mitsushima T, Shiratori Y. A comparison of the immunochemical fecal occult blood test and total colonoscopy in the asymptomatic population. Gastroenterology. 2005 Aug;129(2):422-8. doi: 10.1016/j.gastro.2005.05.056.
- Thomas AM, Manghi P, Asnicar F, Pasolli E, Armanini F, Zolfo M, Beghini F, Manara S, Karcher N, Pozzi C, Gandini S, Serrano D, Tarallo S, Francavilla A, Gallo G, Trompetto M, Ferrero G, Mizutani S, Shiroma H, Shiba S, Shibata T, Yachida S, Yamada T, Wirbel J, Schrotz-King P, Ulrich CM, Brenner H, Arumugam M, Bork P, Zeller G, Cordero F, Dias-Neto E, Setubal JC, Tett A, Pardini B, Rescigno M, Waldron L, Naccarati A, Segata N. Metagenomic analysis of colorectal cancer datasets identifies cross-cohort microbial diagnostic signatures and a link with choline degradation. Nat Med. 2019 Apr;25(4):667-678. doi: 10.1038/s41591-019-0405-7. Epub 2019 Apr 1.
- Quintero E, Castells A, Bujanda L, Cubiella J, Salas D, Lanas A, Andreu M, Carballo F, Morillas JD, Hernandez C, Jover R, Montalvo I, Arenas J, Laredo E, Hernandez V, Iglesias F, Cid E, Zubizarreta R, Sala T, Ponce M, Andres M, Teruel G, Peris A, Roncales MP, Polo-Tomas M, Bessa X, Ferrer-Armengou O, Grau J, Serradesanferm A, Ono A, Cruzado J, Perez-Riquelme F, Alonso-Abreu I, de la Vega-Prieto M, Reyes-Melian JM, Cacho G, Diaz-Tasende J, Herreros-de-Tejada A, Poves C, Santander C, Gonzalez-Navarro A; COLONPREV Study Investigators. Colonoscopy versus fecal immunochemical testing in colorectal-cancer screening. N Engl J Med. 2012 Feb 23;366(8):697-706. doi: 10.1056/NEJMoa1108895.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Szacowany)
Ukończenie studiów (Szacowany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- 7085
- 30203 (Inny numer grantu/finansowania: AIRC Foundation for Cancer Research)
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Opis planu IPD
Ramy czasowe udostępniania IPD
Kryteria dostępu do udostępniania IPD
Typ informacji pomocniczych dotyczących udostępniania IPD
- PROTOKÓŁ BADANIA
- SOK ROŚLINNY
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .