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Anabole Wirkung von Whey und Casein nach Krafttraining bei Jung und Alt

9. April 2018 aktualisiert von: Havard Hamarsland, Norwegian School of Sport Sciences

Wirkungen von Whey- und Casein-Supplementierung auf akute anabole Reaktionen im Muskel nach Krafttraining bei jungen und älteren Menschen

Ziel dieser Studie ist es, die akuten anabolen Wirkungen von nativem Whey, Whey Protein Concentrate 80 (WPC-80) und Milch nach einem Krafttraining bei Jung und Alt zu untersuchen. Die Forscher gehen davon aus, dass native Molke die Muskelproteinsynthese und die intrazelluläre anabole Signalübertragung stärker stimuliert als WPC-80 und dass WPC-80 einen stärkeren Stimulus als Milch gibt.

Studienübersicht

Detaillierte Beschreibung

Die Steigerung oder Aufrechterhaltung der Muskelmasse ist von großer Bedeutung für Bevölkerungsgruppen, die von Sportlern bis hin zu Patienten und älteren Menschen reichen. Widerstandstraining und Proteinaufnahme sind zwei der wirksamsten Stimulatoren der Muskelproteinsynthese. Sowohl die physikalischen Eigenschaften von Proteinen (z. unterschiedliche Verdauungsraten von Whey und Casein) und die Aminosäurezusammensetzung beeinflussen das Potenzial eines bestimmten Proteins, die Muskelproteinsynthese zu stimulieren. Angesichts seiner überlegenen Fähigkeit, die Leucinkonzentration im Blut schnell auf ein hohes Niveau zu erhöhen, wird Molke oft als die wirksamste Proteinquelle zur Stimulierung der Muskelproteinsynthese angesehen. Natives Molkenprotein wird durch Filtration von Rohmilch hergestellt. Folglich hat native Molke andere Eigenschaften als WPC-80, das Erhitzung und Ansäuerung ausgesetzt ist. Aufgrund der direkten Filtration von Rohmilch ist native Molke im Vergleich zu WPC-80 ein intakteres Protein. Von besonderem Interesse sind die höheren Anteile der stark anabolen Aminosäure Leucin in nativer Molke.

Die höheren Leucinspiegel können für ältere Menschen von großem Interesse sein, da einige Studien bei älteren Menschen eine anabole Resistenz gegen die Auswirkungen von Proteinzufuhr und Krafttraining gezeigt haben. Durch Erhöhen des Leucinspiegels könnte man diese anabole Resistenz bei älteren Menschen überwinden.

Das Ziel dieser doppelblinden, randomisierten, partiellen Cross-Over-Studie ist es, die akute fraktionierte Proteinsynthese und die intrazelluläre Signalantwort mit einem Krafttraining und der Einnahme von 20 Gramm Protein aus nativem Whey, 80 oder Wheyproteinkonzentrat zu vergleichen Milch, bei jungen und alten Menschen. Darüber hinaus werden die Forscher den fraktionierten Proteinabbau, Marker des Proteinabbaus und Aminosäurekonzentrationen im Blut untersuchen.

Die Forscher gehen davon aus, dass natives Whey eine stärkere anabole Reaktion hervorrufen wird als Wheyproteinkonzentrat 80 und dass Wheyproteinkonzentrat 80 eine stärkere anabole Reaktion hervorrufen wird als Milch.

Studientyp

Interventionell

Einschreibung (Tatsächlich)

43

Phase

  • Unzutreffend

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienorte

      • Oslo, Norwegen, 0863
        • Norwegian School of Sport Sciences

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

18 Jahre und älter (Erwachsene, Älterer Erwachsener)

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Ja

Studienberechtigte Geschlechter

Alle

Beschreibung

Einschlusskriterien:

  • Gesund in dem Sinne, dass sie Schulungen und Tests durchführen können
  • Kann die norwegische Sprache schriftlich und mündlich verstehen
  • Zwischen 18 und 45 oder über 70 Jahre alt

Ausschlusskriterien:

  • Krankheiten oder Verletzungen, die einer Teilnahme entgegenstehen
  • Einnahme von Nahrungsergänzungsmitteln (z. Proteine, Vitamine und Kreatin)
  • Laktoseintoleranz
  • Allergie gegen Milch
  • Allergie gegen Lokalanästhetika (Xylocain)

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

  • Hauptzweck: Grundlegende Wissenschaft
  • Zuteilung: Zufällig
  • Interventionsmodell: Crossover-Aufgabe
  • Maskierung: Verdreifachen

Waffen und Interventionen

Teilnehmergruppe / Arm
Intervention / Behandlung
Placebo-Komparator: Milch
Die Teilnehmer führten ein Krafttraining durch und nahmen 20 g Milchprotein zu sich
Experimental: Molkeneiweißkonzentrat 80
Die Teilnehmer führten ein Krafttraining durch und nahmen 20 g Molkenproteinkonzentrat 80 zu sich
Experimental: Native Molke
Die Teilnehmer führten ein Krafttraining durch und nahmen 20 g natives Whey zu sich

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Synthetische Rate für gemischte Muskelfraktionen
Zeitfenster: Drei bis eine Stunde vor einem Krafttraining und Proteinkonsum
Eine kontinuierliche Infusion eines stabilen Isotops (Phe D5) wird verwendet, um den Einbau des Tracers in den Muskel zu messen (Biopsien von M. vastus lateralis).
Drei bis eine Stunde vor einem Krafttraining und Proteinkonsum
Synthetische Rate für gemischte Muskelfraktionen
Zeitfenster: Ein bis fünf Stunden nach einem Krafttraining und Proteinkonsum
Eine kontinuierliche Infusion eines stabilen Isotops (Phe D5) wird verwendet, um den Einbau des Tracers in den Muskel zu messen (Biopsien von M. vastus lateralis).
Ein bis fünf Stunden nach einem Krafttraining und Proteinkonsum
Synthetische Rate für gemischte Muskelfraktionen
Zeitfenster: 3 bis 5 Stunden nach Krafttraining und Proteinaufnahme
Zwei Tracerbolusse (phe13C6 und phe15N) wurden verwendet, um den Einbau des Tracers in den Muskel zu messen (Biopsien von M. vastus lateralis).
3 bis 5 Stunden nach Krafttraining und Proteinaufnahme
Gemischte Muskelfraktionsabbaurate
Zeitfenster: 3 bis 5 Stunden nach Krafttraining und Proteinaufnahme
Zwei Tracerbolusse (phe13C6 und phe15N) wurden verwendet, um die Verdünnung des Tracers im Muskel zu messen (Biopsien von M. vastus lateralis).
3 bis 5 Stunden nach Krafttraining und Proteinaufnahme

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Verhältnis von phosphoryliertem zu gesamtem ribosomalem Protein S6-Kinase beta-1 (P70S6K) Veränderung gegenüber dem Ausgangswert
Zeitfenster: 30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Biopsien von m. Vastus Lateralis wurde durch Western Blot analysiert
30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Veränderung der Phosphorylierung von phosphoryliertem zu totalem eukaryontischem Elongationsfaktor 2 (eEF-2) gegenüber dem Ausgangswert
Zeitfenster: 30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Biopsien von m. Vastus Lateralis wurde durch Western Blot analysiert
30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Veränderung der Phosphorylierung von phosphoryliertem zum gesamten eukaryotischen Translationsinitiationsfaktor 4E-Bindungsprotein 1 (4EBP-1) gegenüber dem Ausgangswert
Zeitfenster: 30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Biopsien von m. Vastus Lateralis wurde durch Western Blot analysiert
30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Änderung der intrazellulären Translokation von Forkhead Box O3 (FOXO3a) gegenüber dem Ausgangswert
Zeitfenster: 30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Biopsien von m. Vastus Lateralis wurde durch Western Blot analysiert
30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Veränderung der intrazellulären Translokation des Muskel-RING-Finger-Protein-1 (Murf-1) gegenüber dem Ausgangswert
Zeitfenster: 30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Biopsien von m. Vastus Lateralis wurde durch Western Blot analysiert
30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Änderung der intrazellulären Translokation von Arogin1 gegenüber dem Ausgangswert
Zeitfenster: 30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Biopsien von m. Vastus Lateralis wurde durch Western Blot analysiert
30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Ubiquitin
Zeitfenster: 30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Biopsien von m. Vastus Lateralis wurde durch Western Blot analysiert
30 min vor, 1, 2,5 und 5 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Aminosäurekonzentration im Plasma
Zeitfenster: 180 und 60 min vor und 45, 60, 75, 120, 160, 180, 200, 220 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
180 und 60 min vor und 45, 60, 75, 120, 160, 180, 200, 220 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
Veränderung der Muskelkrafterzeugungskapazität gegenüber der Grundlinie
Zeitfenster: 15 min vor, 15 und 300 min danach und 24 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Gemessen als einseitige isometrische Kniestreckungskraft (Nm) bei 90° im Hüft- und Kniegelenk.
15 min vor, 15 und 300 min danach und 24 Stunden nach dem Training und der Proteinzufuhr
Plasmaglukose
Zeitfenster: 180 und 60 min vor und 45, 60, 75, 120, 160, 180, 200, 220 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
180 und 60 min vor und 45, 60, 75, 120, 160, 180, 200, 220 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
Plasma-Insulin
Zeitfenster: 180 und 60 min vor und 45, 60, 75, 120, 160, 180, 200, 220 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
180 und 60 min vor und 45, 60, 75, 120, 160, 180, 200, 220 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
Serum-Harnstoff
Zeitfenster: 180 und 60 min vor sowie 60, 10, 180 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
180 und 60 min vor sowie 60, 10, 180 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
Harnsäure im Serum
Zeitfenster: 180 und 60 min vor sowie 60, 10, 180 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
180 und 60 min vor sowie 60, 10, 180 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
Serum-Kreatinkinase
Zeitfenster: 180 und 60 min vor sowie 60, 10, 180 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
180 und 60 min vor sowie 60, 10, 180 und 300 min nach dem Training und der Proteinzufuhr
Veränderung der Boten-Ribonukleinsäure (mRNA) des ATP-bindenden Kassettentransporters (ABCA1)
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der ABCA1-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinzufuhr
5 Stunden nach Training und Proteinzufuhr
Veränderung der BRCA1-A-Komplex-Untereinheit Abraxas (ABRA1) mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der ABRA1-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der Alpha-Actin (ACTA1)-mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der ACTA1-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Änderung der mRNA des C-C-Motiv-Chemokins 2 (CCL2).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der CCL2-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Änderung der mRNA des C-C-Motiv-Chemokins 3 (CCL3).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der CCL3-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Änderung der mRNA des C-C-Motiv-Chemokins 5 (CCL5).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der CCL5-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Änderung der mRNA des C-C-Motiv-Chemokins 8 (CCL8).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der CCL8-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der Thrombozyten-Glykoprotein-4 (CD36)-mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der CD36-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA der Cholesterin-25-hydroxylase (CH25H).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der CH25H-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des Granulozyten-Kolonie-stimulierenden Faktors (CSF3).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der CSF3-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Änderung der mRNA des C-X-C-Motiv-Chemokins 16 (CXCL16).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der CXCL16-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Änderung in F-Box only Protein 32 (FBXO32) mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der FBXO32-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des wachstumsregulierten Alpha-Proteins (CXCL1).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der CXCL1-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der Matrix-Metalloproteinase-9 (MMP9)-mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der MMP9-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des Forkhead-Box-Proteins O1 (FOXO1).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der FOXO1-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der Forkhead-Box-Protein-O3 (FOXO3A)-mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der FOXO3A-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des Hepatozytenwachstumsfaktors (HGF).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der HGF-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des insulinähnlichen Wachstumsfaktors I (IGF1).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der IGF1-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA von Interleukin-10 (IL10).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der IL10-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA von Interleukin-17D (IL17D).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der IL17D-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA von Interleukin-1B (IL1B).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der IL1B-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des Interleukin-1-Rezeptor-Antagonist-Proteins (IL1RN).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der IL1RN-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA von Interleukin-6 (IL6).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der IL6-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA von Interleukin-8 (IL8).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der IL8-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des Transkriptionsfaktors jun-B (JUNB).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der JUNB-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Änderung der mRNA des Kit-Liganden (KITLG).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der KITLG-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA von Myostatin (MSTN).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der MSTN-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der Myosin-1 (MYH1) mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der MYH1-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der Myosin-2 (MYH2) mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der MYH2-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der Myosin-7 (MYH7) mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der MYH7-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des Oxysterolrezeptors LXR-alpha (NR1H3).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der NR1H3-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Änderung der Kernrezeptor-Unterfamilie 4, Gruppe A, Mitglied 3 (NR4A3) mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der NR4A3-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der Peroxisom-Proliferator-aktivierten Rezeptor-Gamma-Coaktivator-1-alpha (PPARGC1A)-mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der PPARGC1A-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA der Prostaglandin-G/H-Synthase 2 (PTGS2).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der PTGS2-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des protonengekoppelten Aminosäuretransporters 1 (SLC36A1).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der SLC36A1-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Änderung der mRNA des natriumgekoppelten neutralen Aminosäuretransporters 2 (SLC38A2).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der SLC38A2-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des 4F2-Zelloberflächenantigens der schweren Kette (SLC3A2).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der SLC3A2-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Änderung der mRNA der kleinen Untereinheit 1 des Transporters für große neutrale Aminosäuren (SLC7A5).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der SLC7A5-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des Toll-like-Rezeptors 2 (TLR2).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der TLR2-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der mRNA des Tumornekrosefaktors (TNF).
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der TNF-mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der E3-Ubiquitin-Protein-Ligase TRIM63 (TRIM63) mRNA
Zeitfenster: 1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
1 Stunde nach Training und Proteinaufnahme
Veränderung der E3-Ubiquitin-Protein-Ligase TRIM63 (TRIM63) mRNA
Zeitfenster: 5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme
5 Stunden nach Training und Proteinaufnahme

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Publikationen und hilfreiche Links

Die Bereitstellung dieser Publikationen erfolgt freiwillig durch die für die Eingabe von Informationen über die Studie verantwortliche Person. Diese können sich auf alles beziehen, was mit dem Studium zu tun hat.

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn

1. August 2014

Primärer Abschluss (Tatsächlich)

1. April 2015

Studienabschluss (Tatsächlich)

1. Mai 2017

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

10. November 2016

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

16. November 2016

Zuerst gepostet (Schätzen)

21. November 2016

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Tatsächlich)

10. April 2018

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

9. April 2018

Zuletzt verifiziert

1. April 2018

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Andere Studien-ID-Nummern

  • Tine acute

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UNENTSCHIEDEN

Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .

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