- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT05671614
Skelettmuskelregeneration bei Überlebenden einer kritischen Krankheit: Wie lässt sich der Ausfall von Satellitenzellen verhindern? (SATELLITE)
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Detaillierte Beschreibung
Hintergrund:
Muskelschwäche ist eine häufige Komplikation bei Patienten, die eine schwere kritische Krankheit oder ein Trauma überlebt haben. Eine veränderte Muskelkraft und Funktionsfähigkeit verschlechtert die Leistungsfähigkeit und Lebensqualität der Patienten erheblich. Eine spezifische Behandlung existiert nicht und die Pathogenese ist noch nicht vollständig geklärt. Akute Sepsis oder ausgedehnte Entzündungsreaktionen sind die Hauptrisikofaktoren für die Entwicklung einer Muskelschwäche bei kritisch kranken Patienten. Jüngste Studien haben gezeigt, dass Muskelschwäche durch den Verlust der Fähigkeit von Skelettmuskelzellen verursacht werden kann, auf die Verletzung zu reagieren und sich zu regenerieren. Satellitenzellen der Skelettmuskulatur, die unterhalb der Basallamina einzelner Muskelfasern lokalisiert sind, sind für die Muskelregeneration verantwortlich. Nach der Muskelschädigung werden Satellitenzellen aus dem Ruhezustand (G0-Phase) aktiviert und treten in den Zellzyklus ein (G1-Phase). Anschließend proliferieren sie und differenzieren sich zu den Myoblasten, die dann verschmelzen und mehrkernige zylindrische Myotuben bilden. Die Zellen verschmelzen dann zu den Myofibrillen und verbinden sich mit den nicht beschädigten Muskelfasern. Einige Satellitenzellen kehren in den G0-Zustand zurück, um den Pool ruhender Skelettmuskelzellen wieder aufzufüllen. Als Reaktion auf die Schädigung von Satellitenzellen werden die mitochondriale Biogenese und die Synthese neuer myofibrillärer Proteine aktiviert, um die neue Muskelmasse aufzubauen, die neue intrazelluläre Inhalte enthält. Daher spielen Satellitenzellen eine entscheidende Rolle für die Muskelfaserregeneration. An Tiermodellen durchgeführte Pilotstudien (z. B. Labormäuse, die die akute Sepsis entwickelten) zeigten eine Verringerung des Mitochondriengehalts und der DNA, eine erhöhte Produktion reaktiver Sauerstoffspezies und Veränderungen der oxidativen Phosphorylierung. Die Anomalien im bioenergetischen Profil von Satellitenzellen gelten als Ursache für deren verminderte Regenerationsfähigkeit. Der genaue Mechanismus ist jedoch noch nicht vollständig aufgeklärt. Veränderungen in der mitochondrialen Struktur und Dynamik von Satellitenzellen bei kritisch kranken Patienten sind ebenfalls unbekannt. In den letzten Jahren wurde die Assoziation von mitochondrialen Funktionen mit mitochondrialer Dynamik bei verschiedenen pathologischen Zuständen und Krankheiten untersucht. Abhängig von äußeren Einflüssen und metabolischen Anforderungen unterliegen Mitochondrien dramatischen Formänderungen, die einen sehr signifikanten Einfluss auf den Zellstoffwechsel haben können. Der ausgewogene Prozess der mitochondrialen Spaltung und Fusion spielt eine Schlüsselrolle bei der mitochondrialen Biogenese und der Entfernung beschädigter Mitochondrien. Der Prozess ist absolut notwendig für das richtige Wachstum und die Funktion des Muskelgewebes. Die mitochondriale Dynamik und Morphologie kann unter pathologischen Umständen verändert werden: Unter mildem Stress und Hunger kann sich die mitochondriale Morphologie von kleinen Kugeln oder kurzen Stäbchen zu langen Tubuli mit einer erhöhten Kapazität für oxidative Phosphorylierung ändern. Andererseits führt akuter schwerer Stress zu einer Mitochondrienspaltung und einer fehlerhaften oxidativen Phosphorylierung. Mehrere an Tiermodellen durchgeführte Studien haben gezeigt, dass Proteine, die für den Prozess der mitochondrialen Fusion und Spaltung verantwortlich sind, absolut entscheidend für das ordnungsgemäße Wachstum und die Funktion von Skelettmuskelzellen sind. Daher spielen Veränderungen in der mitochondrialen Dynamik oft eine entscheidende Rolle bei der Dysfunktion der Skelettmuskulatur und wurden kürzlich ausführlich bei mehreren Myopathien untersucht.
In diesem Projekt möchten die Forscher die kausalen Zusammenhänge zwischen der Mitochondrienfunktion und ihrer Form in Satellitenzellen untersuchen, die von kritisch kranken Patienten in der akuten, protrahierten und post-intensivmedizinischen Phase der kritischen Erkrankung gewonnen wurden.
Hypothesen und Ziele des Projekts:
Vor diesem Hintergrund stellen die Forscher die Hypothese auf, dass eine kritische Erkrankung Satellitenzellen in der Skelettmuskulatur schädigt, die später die strukturelle und funktionelle Erholung der Skelettmuskulatur beeinträchtigt und zu anhaltender Schwäche und fehlgeschlagenen funktionellen Ergebnissen beiträgt.
Erstens, strukturell und funktional (inkl. bioenergetische) Eigenschaften von Satellitenzellen werden in der akuten, protrahierten und Post-Intensiv-Phase bei kritisch kranken Patienten mit Kontrollpersonen verglichen. Zweitens werden die Forscher die Hypothese testen, dass strukturelle und/oder funktionelle Veränderungen von Satellitenzellen bei Überlebenden einer kritischen Krankheit mit der Gesamtmuskelmasse und -kraft korrelieren. Drittens werden die Faktoren untersucht, die die Bioenergetik und die mitochondriale Morphologie von Satellitenzellen beeinflussen (z. B. extrazelluläres Entzündungsmilieu, auf der Intensivstation übliche Medikamente sowie Ernährungs- und anabole Faktoren).
Design:
Prospektive Kohortenstudie mit explorativen physiologischen Endpunkten.
Studienfächer:
Kritisch kranke Patienten: erhalten eine mechanische Beatmung, die innerhalb von 72 Stunden nach der Aufnahme aufgenommen werden muss und die wahrscheinlich 7 Tage oder mehr Aufenthalt auf der Intensivstation benötigen; plötzlicher Krankheitsbeginn, der rechtzeitig feststellbar ist (z. B. Trauma, Schlaganfall, plötzlicher Herzstillstand etc.).
Kontrollpersonen: Orthopädische Patienten mit elektivem Hüftgelenkersatz mit sehr gutem bis sehr gutem Leistungszustand, nur begrenzt auf Gelenkschmerzen (ECOG 0).
Einwilligungsverfahren:
Alle urteilsfähigen Patienten werden gebeten, eine prospektive schriftliche Einverständniserklärung abzugeben. Für nicht urteilsfähige Patienten findet ein aufgeschobenes Einwilligungsverfahren statt. In diesem Fall überprüft und bestätigt ein unabhängiger Arzt, dass der Patient nicht urteilsfähig ist und alle Kriterien für die Aufnahme in die Studie erfüllt. Die nächsten Angehörigen des Patienten werden so bald wie möglich mit Hilfe einer Informationsbroschüre über die Studie informiert. Der Patient wird gebeten, eine Einverständniserklärung abzugeben und zu unterzeichnen, sobald er/sie die Fähigkeit dazu wiedererlangt. Im Falle einer Verweigerung der Einwilligung werden die Patientendaten nicht in der Per-Protocol-Analyse verwendet.
Methoden:
Die zu verwendenden allgemeinen methodischen Ansätze sind wie folgt. Zeitpunkte: Geeignete Patienten werden zu Studienbeginn, nach 7 Tagen und nach 6 Monaten durch klinische Tests, Stoffwechseltests und Muskelbiopsien beurteilt. Kurz gesagt, am Tag 0 wird die Muskelmasse mit diagnostischem Ultraschall (einer Messung der Querschnittsfläche des Rektusmuskels) beurteilt und eine Biopsie des Musculus vastus lateralis wird mit einer Bergström-Nadel durchgeführt. Es werden Basisblutproben entnommen, Plasma wird abgetrennt und bei -80° C für die spätere Analyse von Zytokinen und Hormonspiegeln eingefroren. Täglich werden Urinproben gesammelt, mit Toluol übergossen und in einer Tiefkühlanlage zur späteren Bestimmung des Stickstoffgehalts und des 3-Methylhistidinspiegels (zur Berechnung der Muskelabbaurate und der Stickstoffbilanz) gelagert. Am 7. Tag werden alle oben genannten Verfahren erneut durchgeführt. Darüber hinaus wird jedes Mal, wenn der Patient das Bewusstsein wiedererlangt, auch die Muskelkraft nach dem Score des Medical Research Council (MRC) bewertet (standardisiertes Testen der Muskelkraft [0-5] an 12 Muskelgruppen an allen 4 Gliedmaßen, was den Score 0-60 ergibt ( 60 was auf normale Muskelkraft hindeutet)). Bei der Entlassung aus der Intensivstation werden die Patienten und Angehörigen gebeten, Kontaktdaten für die Nachsorge von 6 Monaten anzugeben. Am Tag 180 werden alle Prozeduren wiederholt. Darüber hinaus wird die Insulinsensitivität nach nächtlichem Fasten durch hyperinsulinämische euglykämische Klemme an den Tagen 7 und 180 gemessen.
Klinische Ergebnisse: werden durch objektive validierte Tests wie den SF-36-Fragebogen zur Bewertung der Lebensqualität, den Medical Research Council Score der Muskelkraft und den 6-Minuten-Gehtest zur Messung der aeroben Leistung bewertet.
Metabolische Eigenschaften: werden auf Ganzkörperebene durch hyperinsulinämische euglykämische Klammern und auf Gewebeebene durch Vastus-lateralis-Biopsien beurteilt. Insulinsensitivität und Substratoxidation werden nach Fasten über Nacht durch hyperinsulinämische euglykämische Klemme gemessen.
Laborverfahren: Mitochondrienforschung: Muskelgewebebiopsien werden aus dem Vastus lateralis-Muskel mit der Bergström-Nadelbiopsietechnik durchgeführt. Die Probe aus jeder Biopsie wird in drei Teile getrennt (jeweils 25–100 mg). Ein Teil wird sofort in mit flüssigem Stickstoff gekühltem Isopentan für die spätere Analyse der Muskelfasertypisierung und immunhistochemischen Analyse eingefroren. Der zweite Teil wird zur Herstellung von Homogenaten und zur Messung der hochauflösenden Respirometrie in das Atmungsmedium auf Eis gegeben, das es ermöglicht, die Funktion einzelner Atmungskomplexe im zytosolischen Kontext zu bestimmen und grundlegende funktionelle Stoffwechselindizes zu messen. Hauptsächlich werden die ATP-Produktion, die mitochondriale Entkopplung, die Kapazität der Elektronentransportkette und die Atmung in Verbindung mit einzelnen Komplexen bewertet. Der dritte Teil dient der Isolierung und Kultur von Skelettmuskelzellen. Zunächst werden Satellitenzellen aus Biopsien mittels FACS oder Magnetic Beads isoliert. Die Satellitenzellen werden kultiviert und globale mitochondriale Indizes werden durch Messung der Sauerstoffverbrauchsrate bewertet. Dies wird mit einem extrazellulären Flussanalysator oder einer hochauflösenden Respirometrie verarbeitet, die eine Messung der Sauerstoffverbrauchsrate und der Laktatproduktion in Echtzeit ermöglicht. Dies ermöglicht die Bestimmung der ATP-Produktion in lebenden Zellen, der Entkopplung der inneren Mitochondrienmembran, der maximalen Atmungskapazität der Atmungskette, der Glykolysekapazität und der Fettsäureoxidation oder der Atmung in Verbindung mit einzelnen Komplexen der Atmungskette. Gleichzeitig werden reaktive Sauerstoffspezies und das mitochondriale Membranpotential gemessen. Darüber hinaus werden Form und Größe der Mitochondrien, die Dichte des mitochondrialen Netzwerks und die dynamische Anordnung dieser miteinander verbundenen Organellen mittels konfokaler Laser-Scanning-Mikroskopie in Live-Cell-Imaging analysiert. Alle Parameter werden in der akuten, protrahierten und Post-Intensiv-Phase einer kritischen Erkrankung untersucht.
Studientyp
Einschreibung (Geschätzt)
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Adéla Krajčová, MD, PhD
- Telefonnummer: 00420774732499
- E-Mail: adela.krajcova@lf3.cuni.cz
Studienorte
-
-
Czech Republic
-
Prague, Czech Republic, Tschechien
- Rekrutierung
- Charles University
-
Kontakt:
- Adéla Krajčová, MD, PhD
-
Hauptermittler:
- Adéla Krajčová, MD, PhD
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Probenahmeverfahren
Studienpopulation
Beschreibung
Zulassungskriterien für die Gruppe der kritisch kranken Patienten:
Einschlusskriterien:
- Kritisch kranke Patienten, die eine mechanische Beatmung erhalten, die innerhalb von 72 Stunden nach der Aufnahme aufgenommen werden müssen und die wahrscheinlich 7 Tage oder mehr Aufenthalt auf der Intensivstation benötigen
- Plötzlicher Krankheitsbeginn, der zeitlich feststellbar ist (z. B. Trauma, Schlaganfall, plötzlicher Herzstillstand etc.)
- Einverständniserklärung, unterzeichnet vom Patienten oder Patientenvertreter
Ausschlusskriterien:
- Es ist unwahrscheinlich, dass er 6 Monate überlebt
- Prämorbider Downslope-Funktionsverlauf oder schlechter Leistungsstatus (ECOG Gr. 3 oder schlechter) oder Ausgangsfunktionsstatus unbekannt
- Blutungsstörung (INR≥1,5 oder PLT<, die Muskelbiopsien ausschließen würde)
- Bekannte mitochondriale Erkrankung
- Endokrine Krise als Aufnahmegrund
- Schwangere Frau
Auswahlkriterien für eine Kontrollgruppe:
Elektive Hüftoperationspatienten mit sehr gutem bis sehr gutem Leistungsstatus, nur begrenzt auf Gelenkschmerzen (ECOG 0)
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Beobachtungsmodelle: Kohorte
- Zeitperspektiven: Interessent
Kohorten und Interventionen
Gruppe / Kohorte |
|---|
|
Schwerstkranke Patienten
Kritisch kranke Patienten mit plötzlichem Krankheitsbeginn, die mechanisch beatmet werden, die innerhalb von 72 Stunden nach der Aufnahme aufgenommen werden müssen und die voraussichtlich 7 Tage oder länger auf der Intensivstation bleiben müssen.
|
|
Freiwillige mit einem sehr guten bis sehr guten Leistungsstatus
Elektive Hüftoperationspatienten mit sehr gutem bis sehr gutem Leistungsstatus, nur begrenzt auf Gelenkschmerzen (ECOG 0)
|
Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
|
Lebensqualität gemäß 36-Item Short Form Health Survey (SF-36)
Zeitfenster: am Tag 180
|
Eine Reihe von Maßnahmen zur Lebensqualität.
Ein Fragebogen enthält Fragen zu: körperlicher Funktionsfähigkeit, körperlichen Schmerzen, Rolleneinschränkungen aufgrund körperlicher Gesundheitsprobleme, Rolleneinschränkungen aufgrund persönlicher oder emotionaler Probleme, emotionalem Wohlbefinden, sozialer Funktionsfähigkeit, Energie/Müdigkeit und allgemeiner Gesundheitswahrnehmung.
Die minimale und maximale Punktzahl beträgt 0 und 100.
Eine höhere Punktzahl definiert einen günstigeren Gesundheitszustand.
|
am Tag 180
|
|
Veränderungen der Muskelmasse zwischen Baseline, Tag 7 und Tag 180
Zeitfenster: Änderungen zwischen den Tagen 0, 7 und 180
|
Durch Messung der Querschnittsfläche des Musculus rectus femoris durch diagnostischen Ultraschall.
|
Änderungen zwischen den Tagen 0, 7 und 180
|
|
Eine Messung der Muskelkraft durch den Medical Research Council Score
Zeitfenster: an Tag 180 (eventuell an Tag 7, wenn der Patient bei Bewusstsein ist)
|
Ein standardisierter Test der Muskelkraft [0-5] an 12 Muskelgruppen an allen 4 Gliedmaßen unter Verwendung des Medical Research Council Score, der eine Punktzahl von mindestens 0 bis maximal 60 ergibt.
Eine höhere Punktzahl definiert einen günstigeren Gesundheitszustand, 60 Punkte sprechen für eine normale Muskelkraft.
|
an Tag 180 (eventuell an Tag 7, wenn der Patient bei Bewusstsein ist)
|
|
Veränderungen der mitochondrialen Funktion von Satellitenzellen zwischen Baseline, Tag 7 und Tag 180
Zeitfenster: Änderungen zwischen den Tagen 0, 7 und 180
|
Mitochondriale Funktionsparameter werden mit dem extrazellulären XF24 Seahorse Analyzer oder hochauflösender Respirometrie bewertet, die eine kontinuierliche Echtzeitmessung des Sauerstoffverbrauchs in lebenden Zellen zu Beginn und nach Zugabe verschiedener Substrate, Entkoppler und Inhibitoren der Atmungskette ermöglicht.
Dies ermöglicht die Abschätzung von Parametern wie ATP-Produktion, maximale Atmungskapazität, Atmung in Baseline usw.
Die Techniken messen die Sauerstoffverbrauchsrate lebender Zellen in pmol/min.
|
Änderungen zwischen den Tagen 0, 7 und 180
|
|
Veränderungen der mitochondrialen Struktur von Satellitenzellen zwischen Baseline, Tag 7 und Tag 180
Zeitfenster: Änderungen zwischen den Tagen 0, 7 und 180
|
Eine mitochondriale Struktur und Architektur ihres Netzwerks (mitochondriale Dichte und eine Länge ihrer Äste usw.) wird nach Anfärbung der Mitochondrien durch fluoreszierende Sonden und Bildgebung mit konfokaler Laser-Scanning-Mikroskopie bewertet.
Die Länge/Dichte wird in Mikron/Mikron 2 gemessen.
|
Änderungen zwischen den Tagen 0, 7 und 180
|
Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
|
Stickstoffbilanz gemessen in g/m2 Körperoberfläche
Zeitfenster: an den ersten 7 Tagen
|
Aus gesammelten Urinproben wird eine Bestimmung des Stickstoffgehalts und des 3-Methylhistidinspiegels durchgeführt (zur Berechnung der Muskelabbaurate und Stickstoffbilanz).
|
an den ersten 7 Tagen
|
|
6-Minuten-Gehtest zur Messung der aeroben Leistungsfähigkeit
Zeitfenster: am Tag 180
|
6-minütiger Belastungstest (Gehtest) zur Beurteilung der aeroben Kapazität und Ausdauer.
|
am Tag 180
|
|
Veränderungen der Insulinsensitivität zwischen Tag 7 und 180
Zeitfenster: Änderungen zwischen Tag 7 und 180
|
Dieser Parameter wird nach nächtlichem Fasten mittels hyperinsulinämischer euglykämischer Klemme gemessen.
|
Änderungen zwischen Tag 7 und 180
|
|
Aufenthaltsdauer auf der Intensivstation in Tagen
Zeitfenster: am Tag 28
|
Mehrere Tage auf der Intensivstation.
|
am Tag 28
|
|
Anzahl der beatmungsfreien Tage
Zeitfenster: am Tag 28
|
Mehrere beatmungsfreie Tage auf der Intensivstation.
|
am Tag 28
|
Mitarbeiter und Ermittler
Mitarbeiter
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Puthucheary ZA, Rawal J, McPhail M, Connolly B, Ratnayake G, Chan P, Hopkinson NS, Phadke R, Dew T, Sidhu PS, Velloso C, Seymour J, Agley CC, Selby A, Limb M, Edwards LM, Smith K, Rowlerson A, Rennie MJ, Moxham J, Harridge SD, Hart N, Montgomery HE. Acute skeletal muscle wasting in critical illness. JAMA. 2013 Oct 16;310(15):1591-600. doi: 10.1001/jama.2013.278481. Erratum In: JAMA. 2014 Feb 12;311(6):625. Padhke, Rahul [corrected to Phadke, Rahul].
- Desai SV, Law TJ, Needham DM. Long-term complications of critical care. Crit Care Med. 2011 Feb;39(2):371-9. doi: 10.1097/CCM.0b013e3181fd66e5.
- Hermans G, Van den Berghe G. Clinical review: intensive care unit acquired weakness. Crit Care. 2015 Aug 5;19(1):274. doi: 10.1186/s13054-015-0993-7.
- Horn J, Hermans G. Intensive care unit-acquired weakness. Handb Clin Neurol. 2017;141:531-543. doi: 10.1016/B978-0-444-63599-0.00029-6.
- Powers SK, Lynch GS, Murphy KT, Reid MB, Zijdewind I. Disease-Induced Skeletal Muscle Atrophy and Fatigue. Med Sci Sports Exerc. 2016 Nov;48(11):2307-2319. doi: 10.1249/MSS.0000000000000975.
- Dos Santos C, Hussain SN, Mathur S, Picard M, Herridge M, Correa J, Bain A, Guo Y, Advani A, Advani SL, Tomlinson G, Katzberg H, Streutker CJ, Cameron JI, Schols A, Gosker HR, Batt J; MEND ICU Group; RECOVER Program Investigators; Canadian Critical Care Translational Biology Group. Mechanisms of Chronic Muscle Wasting and Dysfunction after an Intensive Care Unit Stay. A Pilot Study. Am J Respir Crit Care Med. 2016 Oct 1;194(7):821-830. doi: 10.1164/rccm.201512-2344OC.
- Zammit PS, Relaix F, Nagata Y, Ruiz AP, Collins CA, Partridge TA, Beauchamp JR. Pax7 and myogenic progression in skeletal muscle satellite cells. J Cell Sci. 2006 May 1;119(Pt 9):1824-32. doi: 10.1242/jcs.02908. Epub 2006 Apr 11.
- Schultz E, McCormick KM. Skeletal muscle satellite cells. Rev Physiol Biochem Pharmacol. 1994;123:213-57. doi: 10.1007/BFb0030904.
- Monge C, DiStasio N, Rossi T, Sebastien M, Sakai H, Kalman B, Boudou T, Tajbakhsh S, Marty I, Bigot A, Mouly V, Picart C. Quiescence of human muscle stem cells is favored by culture on natural biopolymeric films. Stem Cell Res Ther. 2017 May 2;8(1):104. doi: 10.1186/s13287-017-0556-8.
- Bentzinger CF, Wang YX, Rudnicki MA. Building muscle: molecular regulation of myogenesis. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2012 Feb 1;4(2):a008342. doi: 10.1101/cshperspect.a008342.
- Yin H, Price F, Rudnicki MA. Satellite cells and the muscle stem cell niche. Physiol Rev. 2013 Jan;93(1):23-67. doi: 10.1152/physrev.00043.2011.
- Sin J, Andres AM, Taylor DJ, Weston T, Hiraumi Y, Stotland A, Kim BJ, Huang C, Doran KS, Gottlieb RA. Mitophagy is required for mitochondrial biogenesis and myogenic differentiation of C2C12 myoblasts. Autophagy. 2016;12(2):369-80. doi: 10.1080/15548627.2015.1115172.
- Pham AH, McCaffery JM, Chan DC. Mouse lines with photo-activatable mitochondria to study mitochondrial dynamics. Genesis. 2012 Nov;50(11):833-43. doi: 10.1002/dvg.22050. Epub 2012 Aug 11.
- Wagatsuma A, Sakuma K. Mitochondria as a potential regulator of myogenesis. ScientificWorldJournal. 2013;2013:593267. doi: 10.1155/2013/593267. Epub 2013 Feb 3.
- Chen H, Vermulst M, Wang YE, Chomyn A, Prolla TA, McCaffery JM, Chan DC. Mitochondrial fusion is required for mtDNA stability in skeletal muscle and tolerance of mtDNA mutations. Cell. 2010 Apr 16;141(2):280-9. doi: 10.1016/j.cell.2010.02.026.
- Mohiuddin M, Lee NH, Moon JY, Han WM, Anderson SE, Choi JJ, Shin E, Nakhai SA, Tran T, Aliya B, Kim DY, Gerold A, Hansen LM, Taylor WR, Jang YC. Critical Limb Ischemia Induces Remodeling of Skeletal Muscle Motor Unit, Myonuclear-, and Mitochondrial-Domains. Sci Rep. 2019 Jul 2;9(1):9551. doi: 10.1038/s41598-019-45923-4.
- Krajcova A, Ziak J, Jiroutkova K, Patkova J, Elkalaf M, Dzupa V, Trnka J, Duska F. Normalizing glutamine concentration causes mitochondrial uncoupling in an in vitro model of human skeletal muscle. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2015 Feb;39(2):180-9. doi: 10.1177/0148607113513801. Epub 2013 Nov 29.
- Jiroutkova K, Krajcova A, Ziak J, Fric M, Gojda J, Dzupa V, Kalous M, Tumova J, Trnka J, Duska F. Mitochondrial Function in an In Vitro Model of Skeletal Muscle of Patients With Protracted Critical Illness and Intensive Care Unit-Acquired Weakness. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2017 Sep;41(7):1213-1221. doi: 10.1177/0148607116657649. Epub 2016 Jun 29.
- Krajcova A, Lovsletten NG, Waldauf P, Fric V, Elkalaf M, Urban T, Andel M, Trnka J, Thoresen GH, Duska F. Effects of Propofol on Cellular Bioenergetics in Human Skeletal Muscle Cells. Crit Care Med. 2018 Mar;46(3):e206-e212. doi: 10.1097/CCM.0000000000002875.
- Urban T, Waldauf P, Krajcova A, Jiroutkova K, Halacova M, Dzupa V, Janousek L, Pokorna E, Duska F. Kinetic characteristics of propofol-induced inhibition of electron-transfer chain and fatty acid oxidation in human and rodent skeletal and cardiac muscles. PLoS One. 2019 Oct 4;14(10):e0217254. doi: 10.1371/journal.pone.0217254. eCollection 2019.
- Aguer C, Foretz M, Lantier L, Hebrard S, Viollet B, Mercier J, Kitzmann M. Increased FAT/CD36 cycling and lipid accumulation in myotubes derived from obese type 2 diabetic patients. PLoS One. 2011;6(12):e28981. doi: 10.1371/journal.pone.0028981. Epub 2011 Dec 16.
- Kuznetsov AV, Kehrer I, Kozlov AV, Haller M, Redl H, Hermann M, Grimm M, Troppmair J. Mitochondrial ROS production under cellular stress: comparison of different detection methods. Anal Bioanal Chem. 2011 Jun;400(8):2383-90. doi: 10.1007/s00216-011-4764-2. Epub 2011 Feb 20.
- Ziak J, Krajcova A, Jiroutkova K, Nemcova V, Dzupa V, Duska F. Assessing the function of mitochondria in cytosolic context in human skeletal muscle: adopting high-resolution respirometry to homogenate of needle biopsy tissue samples. Mitochondrion. 2015 Mar;21:106-12. doi: 10.1016/j.mito.2015.02.002. Epub 2015 Feb 17.
- Jiroutkova K, Krajcova A, Ziak J, Fric M, Waldauf P, Dzupa V, Gojda J, Nemcova-Furstova V, Kovar J, Elkalaf M, Trnka J, Duska F. Mitochondrial function in skeletal muscle of patients with protracted critical illness and ICU-acquired weakness. Crit Care. 2015 Dec 24;19:448. doi: 10.1186/s13054-015-1160-x.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Geschätzt)
Studienabschluss (Geschätzt)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Mehr Informationen
Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie
Schlüsselwörter
Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
Andere Studien-ID-Nummern
- NU21J-06-00078
Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)
Planen Sie, individuelle Teilnehmerdaten (IPD) zu teilen?
Beschreibung des IPD-Plans
Art der unterstützenden IPD-Freigabeinformationen
- STUDIENPROTOKOLL
- ICF
Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .