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- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT06142279
Développement et qualification de méthodes d'analyse de la réponse immunitaire muqueuse au COVID-19 (MUCOVID)
La pandémie associée au coronavirus SARS-CoV-2 a touché plus de 760 millions de personnes dans le monde, entraînant plus de 6,9 millions de décès. La France a également été fortement touchée, avec plus de 39,8 millions d'infections et 167 000 décès.
Le SRAS-CoV-2 provoque principalement une infection des voies respiratoires supérieures transmise par voie aérienne. Lorsqu’elle atteint les poumons, elle entraîne une maladie respiratoire aiguë grave appelée COVID-19. La réponse de l'organisme à cette agression virale se produit essentiellement au niveau de la muqueuse respiratoire.
Cette réponse muqueuse est complexe et implique différents niveaux d'activité. L’immunité muqueuse est donc essentielle pour une réponse immunitaire adéquate et à long terme contre les infections respiratoires virales, y compris l’infection par le SRAS-CoV-2.
L'infection par le SRAS-CoV-2 déclenche une réponse immunitaire humorale avec production d'anticorps dans le sang (anticorps sériques) et d'anticorps dans les voies respiratoires supérieures (anticorps muqueux). Il induit également une réponse immunitaire cellulaire en activant des lymphocytes T sanguins spécifiques.
Les tests permettant de mesurer la réponse humorale du sang contre le SARS-CoV-2 et leur capacité neutralisante sont désormais bien identifiés, tout comme les tests permettant d'évaluer la réponse des lymphocytes T cellulaires sériques. Cependant, les tests permettant de mesurer les réponses immunitaires des muqueuses ne sont pas systématiquement utilisés.
Notre étude vise à développer et qualifier des méthodes d’analyse de l’immunité muqueuse dirigée contre le SARS-CoV-2. Ces méthodes seront essentielles pour une analyse plus précise de la réponse muqueuse de l’organisme à ce virus.
Une fois validées, ces méthodes analytiques permettront d’étudier les réponses muqueuses à l’infection, ainsi que les réponses muqueuses induites par la vaccination contre le SARS-CoV-2, notamment dans le cadre de l’utilisation future d’un vaccin nasal.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Le SRAS-CoV-2 est initialement responsable d’une infection aéroportée des voies respiratoires supérieures qui, en atteignant les poumons, provoque une maladie respiratoire aiguë sévère connue sous le nom de COVID-19.
La réponse de l'organisme à cette agression virale s'adresse dans un premier temps à la muqueuse respiratoire.
Cette réponse muqueuse est complexe, avec différents niveaux d'activité en interaction : une activité mécanique, avec la sécrétion de mucus qui fait barrière à l'agent infectieux ; activité physico-chimique, avec la production d'enzymes et de cytokines qui contribuent à la dégradation des particules virales ; et une activité immunitaire humorale spécifique, avec la production d'immunoglobulines sécrétoires de type IgA au niveau de la muqueuse, avec une activité neutralisante qui bloque l'entrée du virus dans la cellule hôte.
Ces mécanismes immunitaires innés et adaptatifs, ainsi que leurs composants humoraux et cellulaires, jouent un rôle essentiel dans la fonction de barrière muqueuse. L’immunité muqueuse est donc essentielle pour une réponse immunitaire adéquate, précoce et à long terme contre les infections virales respiratoires.
Le SRAS-CoV-2 est un virus enveloppé doté d’une capside hélicoïdale et d’un génome composé d’environ 30 000 nucléotides. Ce génome code pour plusieurs protéines essentielles à la formation des virions, dont la protéine S pour Spike et la protéine N pour la nucléocapside.
La protéine virale S se lie à l'enzyme de conversion de l'angiotensine 2 (ACE2) de la cellule hôte. ACE2 agit ainsi comme un récepteur viral négociant l’entrée du virus dans la cellule et déclenchant une réponse immunitaire chez l’hôte. Cette protéine S est la cible principale de la réponse anticorps neutralisante. Les mutations de la protéine S ont été responsables de l’émergence de variantes du SRAS-CoV-2 avec différents phénotypes affectant la transmission et la sensibilité aux anticorps.
La protéine N est une glycoprotéine hautement immunogène également impliquée dans la réplication virale et dans la modulation des voies de signalisation cellulaire. Lors de l'assemblage du virion, la protéine N se lie à l'ARN viral et conduit à la formation de la nucléocapside hélicoïdale. Cette protéine N est hautement conservée dans tous les variants du SARS-CoV-2 et pourrait donc constituer une cible intéressante dans la défense universelle contre ce virus.
En cas d'infection respiratoire, la stimulation du système immunitaire muqueux déclenche d'une part, une réponse humorale avec libération d'immunoglobulines sécrétoires, principalement des IgA sécrétoires. Le rôle principal des IgA est d’empêcher le virus de se propager dans tout l’organisme.
D’un autre côté, l’infection respiratoire déclenchera également une réponse cellulaire muqueuse principalement médiée par les lymphocytes T.
L'infection par le SRAS-CoV-2 déclenche une réponse immunitaire impliquant la production d'anticorps dans le sang (anticorps sériques), la stimulation des lymphocytes sanguins et la production d'anticorps dans les voies respiratoires supérieures (anticorps muqueux). La réponse humorale quantitative anti-SARS-CoV-2 dans le sang (anticorps sériques) a été évaluée par différents tests. Mais pour l’heure, elle s’appuie principalement sur des tests de type EIA, avec des taux sanguins d’IgG anti-S (dirigées contre la protéine Spike) et d’IgG anti-N (dirigées contre la protéine nucléocapside). L'analyse qualitative de cette réponse repose sur la capacité de ces anticorps à avoir une activité neutralisante (anticorps neutralisants).
La réponse cellulaire des lymphocytes T anti-SARS-CoV-2 semble également être importante dans le contrôle de l’infection. Le test le plus rapide pour évaluer cette réponse des lymphocytes T est l'ELISPOT IFN-γ.
Quant à la réponse humorale muqueuse, plusieurs études ont documenté la présence d’anticorps anti-S IgA spécifiques du virus (dirigés contre la protéine Spike) dans les sécrétions nasopharyngées ou la salive des individus infectés. À ce jour, il n’existe pas de test utilisé en routine pour mesurer les anticorps muqueux dirigés contre le SARS-CoV-2, notamment les IgA anti-S sécrétoires, et pour analyser leur activité neutralisante.
Notre étude nous permettra ainsi de développer et de qualifier des méthodes d’analyse de l’immunité muqueuse contre le SARS-CoV-2. Ces méthodes seront essentielles pour analyser la réponse muqueuse à ce virus.
Une fois ces méthodes analytiques validées, elles permettront d’étudier la réponse muqueuse à l’infection mais aussi la réponse muqueuse induite par la vaccination contre le SARS-CoV-2, notamment lors de l’utilisation de vaccins nasaux.
En effet, les vaccins actuellement utilisés pour lutter contre le SARS-CoV-2 induisent une activité neutralisante du sérum contre la protéine S (Spike). Leur voie d'administration intramusculaire induira une immunité systémique, offrant une protection contre les formes graves de l'infection. Néanmoins, l’immunité muqueuse induite par les vaccins actuels reste faible. Le développement d’un vaccin administré par voie nasale est une piste intéressante, car il offrirait une protection plus complète, notamment en contrôlant la réplication du virus dans les voies respiratoires supérieures, induisant ainsi les voies respiratoires supérieures, induisant ainsi une immunité collective et réduisant la transmission du virus.
Type d'étude
Inscription (Estimé)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Zoha MAAKAROUN-VERMESSE, MD-PHD
- Numéro de téléphone: 0247476972
- E-mail: z.maakaroun-vermesse@chu-tours.fr
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Valérie Gissot, MD-PHD
- Numéro de téléphone: 0247476972
- E-mail: valerie.gissot@univ-tours.fr
Lieux d'étude
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Tours, France, 37044
- CHRU de Tours
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Contact:
- Zoha MAAKAROUN-VERMESSE, MD-PHD
- Numéro de téléphone: Investigator 0247476972
- E-mail: Z.MAAKAROUN-VERMESSE@chu-tours.fr
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
- Adulte
- Adulte plus âgé
Accepte les volontaires sains
La description
Critère d'intégration:
- ≥18 ans
- Participant affilié à un régime de sécurité sociale
- Participant disposé à participer à l'étude et ayant donné son consentement
- Participant en bonne santé ou avec une maladie chronique stable depuis plus de 6 mois
Critère d'exclusion:
- Contre-indication au prélèvement nasopharyngé
- Femmes enceintes ou allaitantes
- Les participants bénéficiant d'une mesure de protection juridique mentionnée aux articles L1121-5 à L1121-8 du Code de la santé publique (tutelle, curatelle, etc.)
- Participant souffrant d’une maladie aiguë sans rapport avec l’infection par le SRAS-CoV-2
- Participant avec une maladie chronique instable
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Recherche sur les services de santé
- Répartition: Non randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation parallèle
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Autre: COVID+
participant avec un test PCR SARS-CoV-2 positif
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Au départ, des prélèvements nasaux, salivaires et sanguins seront effectués pour les participants.
Au départ, ce PCR SARS-CoV-2 sera réalisé pour les participants.
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Autre: COVID -
participant avec un test PCR SARS-CoV-2 négatif
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Au départ, des prélèvements nasaux, salivaires et sanguins seront effectués pour les participants.
Au départ, ce PCR SARS-CoV-2 sera réalisé pour les participants.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Étudier la réponse immunitaire humorale muqueuse anti-Spike en mesurant les IgA sécrétoires dans les sécrétions nasales
Délai: Référence - Jour 0
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Le niveau d'IgA sécrétoire (immunoglobuline A) dans les sécrétions nasales, exprimé en picogrammes par équivalent millilitre.
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Référence - Jour 0
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Analyse du pouvoir neutralisant des IgA anti-Spike dans les sécrétions nasales
Délai: Référence - Jour 0
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La capacité neutralisante des IgA nasales sécrétoires est évaluée en titre de neutralisation (PRNT 50).
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Référence - Jour 0
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Détermination des IgA sécrétoires anti-Spike dans les sécrétions salivaires
Délai: Référence - Jour 0
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Niveaux d'IgA sécrétoires dans la salive exprimés en picogrammes par millilitre Eq
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Référence - Jour 0
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Analyse du pouvoir neutralisant des IgA anti-Spike dans les sécrétions salivaires
Délai: Référence - Jour 0
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Capacité neutralisante des IgA salivaires évaluée par titre neutralisant (PRNT 50)
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Référence - Jour 0
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Détermination des IgG sériques anti-Spike
Délai: Référence - Jour 0
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Taux sanguins d'IgG anti-S (immunoglobuline G) exprimés en unités d'anticorps de liaison par millilitre (BAU/ml)
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Référence - Jour 0
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Analyse du pouvoir neutralisant des IgG anti-Spike sériques
Délai: Référence - Jour 0
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Capacité neutralisante des IgG sanguines évaluée par le titre neutralisant (PRNT 50)
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Référence - Jour 0
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Dosage sérum anti-N IgG
Délai: Référence - Jour 0
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Taux sanguins d'IgG anti-N exprimés sous forme d'indice
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Référence - Jour 0
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Étudier la réponse immunitaire cellulaire systémique en mesurant la production d’interféron gamma
Délai: Référence - Jour 0
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Réactivité des lymphocytes T exprimée en nombre d'unités formant des taches pour 106 cellules mononucléées du sang périphérique (SFU : Spot Forming Unit)
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Référence - Jour 0
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Zoha MAAKAROUN-VERMESSE, MD-PHD, CHRU de Tours
Publications et liens utiles
Publications générales
- Haute autorité de santé. Aspect immunologiques et virologiques de l'infection par le SARS-CoV-2 ; Rapport HAS 25 Novembre 2020
- Alu A, Chen L, Lei H, Wei Y, Tian X, Wei X. Intranasal COVID-19 vaccines: From bench to bed. EBioMedicine. 2022 Feb;76:103841. doi: 10.1016/j.ebiom.2022.103841. Epub 2022 Jan 24.
- Y. Jouan · M. Si-Tahar · A. Guillon. Immunité de la muqueuse respiratoire : physiologie et implications en réanimation. Méd. Intensive Réa 2017 ; 26 :11-20
- Smith N, Goncalves P, Charbit B, Grzelak L, Beretta M, Planchais C, Bruel T, Rouilly V, Bondet V, Hadjadj J, Yatim N, Pere H, Merkling SH, Ghozlane A, Kerneis S, Rieux-Laucat F, Terrier B, Schwartz O, Mouquet H, Duffy D, Di Santo JP. Distinct systemic and mucosal immune responses during acute SARS-CoV-2 infection. Nat Immunol. 2021 Nov;22(11):1428-1439. doi: 10.1038/s41590-021-01028-7. Epub 2021 Sep 1.
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- Denis F, Alain S, Hantz S, Lagrange P. [Antiviral vaccination and respiratory mucosal immunity: still disappointing results from a seductive idea]. Presse Med. 2005 Oct 8;34(17):1245-53. doi: 10.1016/s0755-4982(05)84165-x. French.
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- Tang J, Zeng C, Cox TM, Li C, Son YM, Cheon IS, Wu Y, Behl S, Taylor JJ, Chakaraborty R, Johnson AJ, Shiavo DN, Utz JP, Reisenauer JS, Midthun DE, Mullon JJ, Edell ES, Alameh MG, Borish L, Teague WG, Kaplan MH, Weissman D, Kern R, Hu H, Vassallo R, Liu SL, Sun J. Respiratory mucosal immunity against SARS-CoV-2 after mRNA vaccination. Sci Immunol. 2022 Oct 28;7(76):eadd4853. doi: 10.1126/sciimmunol.add4853. Epub 2022 Oct 21.
- Yaugel-Novoa M, Bourlet T, Paul S. Role of the humoral immune response during COVID-19: guilty or not guilty? Mucosal Immunol. 2022 Jun;15(6):1170-1180. doi: 10.1038/s41385-022-00569-w. Epub 2022 Oct 4.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Estimé)
Achèvement primaire (Estimé)
Achèvement de l'étude (Estimé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Estimé)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Estimé)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
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Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
- DR230062-MUCOVID
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