- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT06142279
Utvikling og kvalifisering av metoder for å analysere slimhinneimmunresponsen på COVID-19 (MUCOVID)
Pandemien knyttet til SARS-CoV-2-koronaviruset har rammet over 760 millioner individer over hele verden, noe som har resultert i mer enn 6,9 millioner dødsfall. Frankrike har også blitt hardt rammet, med over 39,8 millioner infeksjoner og 167 000 dødsfall.
SARS-CoV-2 forårsaker først og fremst en øvre luftveisinfeksjon som overføres gjennom luften. Når det når lungene, fører det til en alvorlig akutt luftveissykdom kalt COVID-19. Kroppens respons på dette virale angrepet skjer først og fremst på nivået av luftveisslimhinnen.
Denne slimhinneresponsen er kompleks og involverer ulike aktivitetsnivåer. Slimhinneimmunitet er derfor avgjørende for en adekvat og langsiktig immunrespons mot virale luftveisinfeksjoner, inkludert SARS-CoV-2-infeksjon.
Infeksjon med SARS-CoV-2 utløser en humoral immunrespons med produksjon av antistoffer i blodet (serumantistoffer) og antistoffer i de øvre luftveiene (slimhinneantistoffer). Det induserer også en cellulær immunrespons ved å aktivere spesifikke blod T-lymfocytter.
Tester som brukes for å måle den humorale blodresponsen mot SARS-CoV-2 og deres nøytraliserende kapasitet er nå godt identifisert, i likhet med tester for å vurdere den cellulære T-lymfocyttresponsen i serum. Imidlertid brukes ikke tester for måling av slimhinneimmunresponser rutinemessig.
Vår studie tar sikte på å utvikle og kvalifisere metoder for å analysere slimhinneimmunitet rettet mot SARS-CoV-2. Disse metodene vil være avgjørende for en mer presis analyse av kroppens slimhinnerespons på dette viruset.
Når disse analysemetodene er validert, vil de muliggjøre studiet av slimhinneresponser på infeksjon, så vel som slimhinneresponser indusert av vaksinasjon mot SARS-CoV-2, spesielt i sammenheng med fremtidig bruk av nasal vaksine.
Studieoversikt
Status
Intervensjon / Behandling
Detaljert beskrivelse
SARS-CoV-2 er i utgangspunktet ansvarlig for en luftbåren infeksjon i de øvre luftveiene som, når de når lungene, forårsaker en alvorlig akutt luftveissykdom kjent som COVID-19.
Organismens respons på denne virale aggresjonen er i utgangspunktet rettet mot luftveisslimhinnen.
Denne slimhinneresponsen er kompleks, med ulike aktivitetsnivåer som interagerer: mekanisk aktivitet, med sekresjon av slim som fungerer som en barriere for smittestoffet; fysisk-kjemisk aktivitet, med produksjon av enzymer og cytokiner som bidrar til nedbrytning av virale partikler; og spesifikk humoral immunaktivitet, med produksjon av sekretoriske IgA-type immunoglobuliner på slimhinnenivå, med nøytraliserende aktivitet som blokkerer viral inntreden i vertscellen.
Disse medfødte og adaptive immunmekanismene, sammen med deres humorale og cellulære komponenter, spiller en viktig rolle i slimhinnebarrierefunksjonen. Slimhinneimmunitet er derfor avgjørende for en tilstrekkelig, tidlig og langsiktig immunrespons mot luftveisvirusinfeksjoner.
SARS-CoV-2 er et innkapslet virus med et spiralformet kapsid og et genom som består av omtrent 30 000 nukleotider. Dette genomet koder for flere proteiner som er essensielle for viriondannelse, inkludert S-proteinet for Spike og N-proteinet for nukleokapsid.
Det virale S-proteinet binder seg til vertscellens angiotensin-konverterende enzym 2 (ACE2). ACE2 fungerer dermed som en viral reseptor som medierer viral inntreden i cellen og utløser en immunrespons i verten. Dette protein S er hovedmålet for den nøytraliserende antistoffresponsen. Mutasjoner i protein S har vært ansvarlige for fremveksten av varianter av SARS-CoV-2 med forskjellige fenotyper som påvirker overføring og mottakelighet for antistoff.
N-proteinet er et svært immunogent glykoprotein også involvert i viral replikasjon og i moduleringen av cellulære signalveier. Under virionmontering binder N-proteinet seg til viralt RNA og fører til dannelsen av det spiralformede nukleokapsidet. Dette N-proteinet er svært konservert i alle SARS-CoV-2-varianter og kan derfor være et interessant mål i det universelle forsvaret mot dette viruset.
Ved en luftveisinfeksjon utløser stimulering av slimhinneimmunsystemet på den ene siden en humoral respons med frigjøring av sekretoriske immunglobuliner, hovedsakelig sekretorisk IgA. Hovedrollen til IgA er å forhindre at viruset sprer seg gjennom hele kroppen.
På den annen side vil luftveisinfeksjon også utløse en mukosal cellulær respons primært mediert av T-lymfocytter.
Infeksjon med SARS-CoV-2 utløser en immunrespons som involverer antistoffproduksjon i blodet (serumantistoffer), stimulering av blodlymfocytter og antistoffproduksjon i øvre luftveier (slimhinneantistoffer). Den kvantitative anti-SARS-CoV-2 humorale responsen i blodet (serumantistoffer) har blitt vurdert ved forskjellige tester. Foreløpig er den imidlertid hovedsakelig avhengig av tester av EIA-type, med blodnivåer av anti-S IgG (rettet mot Spike-proteinet) og anti-N IgG (rettet mot nukleokapsidproteinet). Kvalitativ analyse av denne responsen er basert på disse antistoffenes evne til å ha nøytraliserende aktivitet (nøytraliserende antistoffer).
Anti-SARS-CoV-2 T-lymfocyttcellulær respons ser også ut til å være viktig for å kontrollere infeksjon. Den raskeste testen for å vurdere denne T-lymfocyttresponsen er ELISPOT IFN-γ
Når det gjelder den slimhinnehumorale responsen, har flere studier dokumentert tilstedeværelsen av virusspesifikke anti-S IgA-antistoffer (rettet mot Spike-proteinet) i nasofaryngeale sekreter eller spytt fra infiserte individer. Til dags dato er det ingen rutinemessig brukt test for å måle slimhinneantistoffer mot SARS-CoV-2, spesielt sekretorisk anti-S IgA, og for å analysere deres nøytraliserende aktivitet.
Vår studie vil dermed gjøre oss i stand til å utvikle og kvalifisere metoder for å analysere slimhinneimmunitet mot SARS-CoV-2. Disse metodene vil være avgjørende for å analysere slimhinnerespons på dette viruset.
Når disse analysemetodene er validert, vil de gjøre det mulig å studere slimhinneresponsen på infeksjon, men også slimhinneresponsen indusert av vaksinasjon mot SARS-CoV-2, spesielt ved bruk av nasale vaksiner.
Vaksinene som for tiden brukes til å bekjempe SARS-CoV-2 induserer faktisk serumnøytraliserende aktivitet mot protein S (Spike). Deres intramuskulære administrasjonsvei vil indusere systemisk immunitet, og gi beskyttelse mot alvorlige former for infeksjonen. Ikke desto mindre er slimhinneimmunitet indusert av nåværende vaksiner fortsatt lav. Utviklingen av en nasalt administrert vaksine er en interessant vei, siden den ville gi mer fullstendig beskyttelse, spesielt ved å kontrollere virusreplikasjon i de øvre luftveiene, og dermed indusere øvre luftveier, og derved indusere flokkimmunitet og redusere overføring av viruset.
Studietype
Registrering (Antatt)
Fase
- Ikke aktuelt
Kontakter og plasseringer
Studiekontakt
- Navn: Zoha MAAKAROUN-VERMESSE, MD-PHD
- Telefonnummer: 0247476972
- E-post: z.maakaroun-vermesse@chu-tours.fr
Studer Kontakt Backup
- Navn: Valérie Gissot, MD-PHD
- Telefonnummer: 0247476972
- E-post: valerie.gissot@univ-tours.fr
Studiesteder
-
-
-
Tours, Frankrike, 37044
- CHRU de Tours
-
Ta kontakt med:
- Zoha MAAKAROUN-VERMESSE, MD-PHD
- Telefonnummer: Investigator 0247476972
- E-post: Z.MAAKAROUN-VERMESSE@chu-tours.fr
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
- Voksen
- Eldre voksen
Tar imot friske frivillige
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
- ≥18 år gammel
- Deltaker tilknyttet trygdeordning
- Deltaker som er villig til å delta i studien og har gitt samtykke
- Deltaker ved god helse eller med stabil kronisk tilstand i mer enn 6 måneder
Ekskluderingskriterier:
- Kontraindikasjon for nasofaryngeal prøvetaking
- Gravide eller ammende kvinner
- Deltakere som nyter godt av et rettslig beskyttelsestiltak som referert til i artiklene L1121-5 til L1121-8 i folkehelsekoden (vergemål, forvalterskap, etc.)
- Deltaker med en akutt tilstand som ikke er relatert til SARS-CoV-2-infeksjon
- Deltaker med en ustabil kronisk tilstand
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: Helsetjenesteforskning
- Tildeling: Ikke-randomisert
- Intervensjonsmodell: Parallell tildeling
- Masking: Ingen (Open Label)
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Annen: COVID+
deltaker med en positiv SARS-CoV-2 PCR-test
|
Ved baseline vil det bli tatt nese-, spytt- og blodprøver for deltakerne.
Ved baseline vil denne PCR SARS-CoV-2 bli tatt for deltakerne.
|
|
Annen: COVID -
deltaker med en negativ SARS-CoV-2 PCR-test
|
Ved baseline vil det bli tatt nese-, spytt- og blodprøver for deltakerne.
Ved baseline vil denne PCR SARS-CoV-2 bli tatt for deltakerne.
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
For å studere den anti-Spike slimhinnehumorale immunresponsen ved å måle sekretorisk IgA i nasale sekreter
Tidsramme: Grunnlinje - dag 0
|
Nivået av sekretorisk IgA (immunoglobulin A) i nasale sekreter, uttrykt i pikogram per milliliter ekvivalent.
|
Grunnlinje - dag 0
|
|
Analyse av den nøytraliserende kapasiteten til anti-Spike IgA i nasale sekreter
Tidsramme: Grunnlinje - dag 0
|
Nøytraliseringskapasiteten til sekretorisk nasal IgA vurdert i nøytraliseringstiter (PRNT 50).
|
Grunnlinje - dag 0
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Bestemmelse av sekretorisk anti-Spike IgA i spyttsekreter
Tidsramme: Grunnlinje - dag 0
|
Sekretoriske IgA-nivåer i spytt uttrykt i pikogram per milliliter Eq
|
Grunnlinje - dag 0
|
|
Analyse av den nøytraliserende kapasiteten til anti-Spike IgA i spyttsekreter
Tidsramme: Grunnlinje - dag 0
|
Spytt-IgA-nøytraliserende kapasitet vurdert ved nøytraliserende titer (PRNT 50)
|
Grunnlinje - dag 0
|
|
Bestemmelse av serum anti-Spike IgG
Tidsramme: Grunnlinje - dag 0
|
Blod anti-S IgG (immunoglobulin G) nivåer uttrykt i bindende antistoffenheter per milliliter (BAU/ml)
|
Grunnlinje - dag 0
|
|
Analyse av den nøytraliserende kapasiteten til serum anti-Spike IgG
Tidsramme: Grunnlinje - dag 0
|
Blod IgG nøytraliserende kapasitet vurdert ved nøytraliserende titer (PRNT 50)
|
Grunnlinje - dag 0
|
|
Analyser serum anti-N IgG
Tidsramme: Grunnlinje - dag 0
|
Blod anti-N IgG nivåer uttrykt som en indeks
|
Grunnlinje - dag 0
|
|
Studer den systemiske cellulære immunresponsen ved å måle interferon-gamma-produksjon
Tidsramme: Grunnlinje - dag 0
|
T-celle-reaktivitet uttrykt i antall flekkdannende enheter per 106 perifere blodmononukleære celler (SFU: Spotforming Unit)
|
Grunnlinje - dag 0
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Sponsor
Etterforskere
- Hovedetterforsker: Zoha MAAKAROUN-VERMESSE, MD-PHD, CHRU de Tours
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Haute autorité de santé. Aspect immunologiques et virologiques de l'infection par le SARS-CoV-2 ; Rapport HAS 25 Novembre 2020
- Alu A, Chen L, Lei H, Wei Y, Tian X, Wei X. Intranasal COVID-19 vaccines: From bench to bed. EBioMedicine. 2022 Feb;76:103841. doi: 10.1016/j.ebiom.2022.103841. Epub 2022 Jan 24.
- Y. Jouan · M. Si-Tahar · A. Guillon. Immunité de la muqueuse respiratoire : physiologie et implications en réanimation. Méd. Intensive Réa 2017 ; 26 :11-20
- Smith N, Goncalves P, Charbit B, Grzelak L, Beretta M, Planchais C, Bruel T, Rouilly V, Bondet V, Hadjadj J, Yatim N, Pere H, Merkling SH, Ghozlane A, Kerneis S, Rieux-Laucat F, Terrier B, Schwartz O, Mouquet H, Duffy D, Di Santo JP. Distinct systemic and mucosal immune responses during acute SARS-CoV-2 infection. Nat Immunol. 2021 Nov;22(11):1428-1439. doi: 10.1038/s41590-021-01028-7. Epub 2021 Sep 1.
- Chavda VP, Vora LK, Pandya AK, Patravale VB. Intranasal vaccines for SARS-CoV-2: From challenges to potential in COVID-19 management. Drug Discov Today. 2021 Nov;26(11):2619-2636. doi: 10.1016/j.drudis.2021.07.021. Epub 2021 Jul 29.
- Denis F, Alain S, Hantz S, Lagrange P. [Antiviral vaccination and respiratory mucosal immunity: still disappointing results from a seductive idea]. Presse Med. 2005 Oct 8;34(17):1245-53. doi: 10.1016/s0755-4982(05)84165-x. French.
- Russell MW, Mestecky J. Mucosal immunity: The missing link in comprehending SARS-CoV-2 infection and transmission. Front Immunol. 2022 Aug 17;13:957107. doi: 10.3389/fimmu.2022.957107. eCollection 2022.
- Tang J, Zeng C, Cox TM, Li C, Son YM, Cheon IS, Wu Y, Behl S, Taylor JJ, Chakaraborty R, Johnson AJ, Shiavo DN, Utz JP, Reisenauer JS, Midthun DE, Mullon JJ, Edell ES, Alameh MG, Borish L, Teague WG, Kaplan MH, Weissman D, Kern R, Hu H, Vassallo R, Liu SL, Sun J. Respiratory mucosal immunity against SARS-CoV-2 after mRNA vaccination. Sci Immunol. 2022 Oct 28;7(76):eadd4853. doi: 10.1126/sciimmunol.add4853. Epub 2022 Oct 21.
- Yaugel-Novoa M, Bourlet T, Paul S. Role of the humoral immune response during COVID-19: guilty or not guilty? Mucosal Immunol. 2022 Jun;15(6):1170-1180. doi: 10.1038/s41385-022-00569-w. Epub 2022 Oct 4.
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Antatt)
Primær fullføring (Antatt)
Studiet fullført (Antatt)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Antatt)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Antatt)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
Andre studie-ID-numre
- DR230062-MUCOVID
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .