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新型コロナウイルス感染症患者の長期免疫を誘導するための CRISPR/Cas9 改変ヒト T 細胞 (PD-1 および ACE2 ノックアウト改変 T 細胞)

2021年8月13日 更新者:Mahmoud Ramadan mohamed Elkazzaz
T細胞の枯渇により、新型コロナウイルス感染症患者の長期的な免疫力が制限される可能性がある。 T細胞は、ウイルスや腫瘍に長時間さらされると、ウイルスや腫瘍と戦う能力を失う可能性があります。 新しいデータは、軽度の新型コロナウイルス感染症の症状を経験している人は、消耗したメモリーT細胞の分子的兆候を示しており、したがって再感染と戦う能力が低下している可能性があることを示唆している。 逆に、重度の新型コロナウイルス感染症の症状を発症した人は、再感染からよりよく保護される可能性があります。 最近の研究では、COVID-19 症例の 82.1% で循環リンパ球数が少ないことが報告されました。 慢性ウイルスの場合、継続的な PD-1 発現により T 細胞が枯渇し、感染細胞を殺す能力が損なわれることが報告されています。 新型コロナウイルス感染症患者の衰弱は、リンパ球の割合が減少しており、CD4+ および CD8+ T 細胞の割合も同様であることが特徴です。 後期活性マーカー CD25 と消耗マーカー PD-1 の高い発現率を示す T 細胞、主に CD8+ T 細胞の量が増加します。 したがって、SARS-CoV-2 は、B 細胞や T 細胞を含む獲得免疫系を改変することで変化を起こすことができます。 実験によると、PD-1の発現は、T細胞の安定性を維持する周縁寛容の誘導と維持における重要な因子として、新型コロナウイルス感染症患者のさまざまな細胞で高い割合で発現していることが判明した。 DiaoらがSARS-CoV-2患者に対して行った実験では、T細胞表面のPD-1の発現が大幅に増加していることが観察された。また、SARS-CoV-2によって引き起こされる病気の間、T細胞上のPD-1とTim-3の追加発現が病気の重症度と直接関係していることも示された。他のウイルス感染症でも増加する要因。 「T細胞枯渇」現象は、たとえばT細胞がウイルスや腫瘍にさらされなくなった場合など、比較的簡単に逆転する可能性があります。 しかし、残念なことに、慢性感染から回復した疲弊した T 細胞 (REC-TEX) は、メモリー T 細胞 (TMEM) の機能と特徴をいくらか取り戻しますが、エピジェネティックな傷跡を残しており、遺伝子発現の制御がその疲弊の歴史に「閉じ込められている」ことを示しています。 T細胞は一度枯渇すると、基本的に枯渇するように「組み込まれている」ため、再び効果的にウイルスやがんと闘えるようにするのは難しいかもしれない」とシステム薬理学部門長のジョン・ウェリー博士は述べた。トランスレーショナル・セラピューティクス、ペンシルベニア大学ペレルマン医科大学ペン免疫研究所所長。 さらに、新型コロナウイルス感染症(COVID-19)はTリンパ球細胞に感染し、アポトーシスやアポトーシスマーカーを誘導する可能性があります。 リンパ球減少症は中東呼吸器症候群(MERS)の症例でも見られました。 MERS-CoVはヒト原発性Tリンパ球に直接感染し、外因性および内因性アポトーシス経路を通じてT細胞アポトーシスを誘導できますが、Tリンパ球内では複製できません。 ただし、SARS-CoV-2がT細胞にも感染してリンパ球減少症を引き起こすかどうかは不明です。 ある研究では、T細胞はその細胞表面で発現するhACE2の発現レベルが非常に低く、T細胞株はSARS-CoVと比較してSARS-CoV-2感染に対して有意に感受性が高いことが示された。 言い換えれば、これらの結果は、T リンパ球が SARS-CoV-2 感染に対してより寛容である可能性があることを示しています。 したがって、SARS-CoV-2のSタンパク質は、hACE2の発現が低い細胞に対しても強力な感染力を媒介する可能性があり、それがSARS-CoV-2の感染率が非常に高い理由を説明することになる。 ゲノム編集の最近の進歩により、CRISPR/Cas9 テクノロジーを介して T 細胞を正常に改変できるようになりました。 例えば、T細胞サイトカイン産生を増強するための転写(後)機構の関与、T細胞抗原特異性の再標的化、または抑制性受容体シグナル伝達に対してT細胞を不応性にすることにより、T細胞エフェクター機能を増強することができる。 したがって、CRISPR/Cas9を介したゲノム編集は、新型コロナウイルス感染症(COVID-19)に対する長期免疫を誘導するための新たな戦略を提供する可能性がある。自己T細胞を用いた免疫療法は、ウイルス感染症やがんなどの多くの疾患に対する強力な治療選択肢となっている。 これらには、天然に存在するウイルス/腫瘍特異的 T 細胞の養子単離と移入、および遺伝子組み換えされた T リンパ球の移入が含まれます。 研究者によると、改良型抗原反応性T細胞濃縮(ARTE)アッセイを用いて、軽度の感染症患者から枯渇したウイルス反応性CD8+メモリーT細胞が分離される予定だという。 枯渇したウイルス反応性CD8+メモリーT細胞が収集され、実験室でプログラム細胞死タンパク質1(PDCD1)遺伝子とACE2遺伝子の両方がCRISPR Cas9によってノックアウトされます。 リンパ球は生体外で選択および増殖され、患者に注入されます。

調査の概要

状態

まだ募集していません

詳細な説明

この研究では、ウイルスが再導入された場合にウイルスを記憶して殺すことにより、新型コロナウイルス感染症に対する長期免疫を提供できる遺伝子改変メモリーT細胞として、PD-1およびACE2ノックアウト改変T細胞の安全性を評価する。 研究目的で血液サンプルも収集されます。 これは、自家由来の PD-1 および ACE2 ノックアウト T 細胞を ex vivo でノックアウト、増殖、選択した用量漸増研究です。 患者は、最大耐用量を決定するために 3 つの治療グループのうちの 1 つに割り当てられます。 低いサイクル数が耐性があるとみなされた後、次に高いサイクル数のアームが次の患者に開放されます。 バイオマーカーや免疫学的マーカーも収集され、分析されます。 研究者によると、改良型抗原反応性T細胞濃縮(ARTE)アッセイを用いて、軽度の感染症患者から枯渇したウイルス反応性CD8+メモリーT細胞が分離される予定だという。 枯渇したウイルス反応性CD8+メモリーT細胞が収集され、実験室でプログラム細胞死タンパク質1(PDCD1)遺伝子とACE2遺伝子がCRISPR Cas9によってノックアウトされます(PD-1およびACE2ノックアウトT細胞)。 リンパ球は生体外で選択および増殖され、患者に注入されます。 合計 2 x 10^7/kg の PD-1 および ACE2 ノックアウト T 細胞が 1 サイクルで注入されます。 各サイクルは 3 回の投与に分割され、最初の投与で 20%、2 回目の投与で 30%、3 回目の投与で残りの 50% が注入されます。 患者は合計 2 サイクルの治療を受けます。

研究の種類

介入

入学 (予想される)

16

段階

  • フェーズ2
  • フェーズ 1

連絡先と場所

このセクションには、調査を実施する担当者の連絡先の詳細と、この調査が実施されている場所に関する情報が記載されています。

研究連絡先

参加基準

研究者は、適格基準と呼ばれる特定の説明に適合する人を探します。これらの基準のいくつかの例は、人の一般的な健康状態または以前の治療です。

適格基準

就学可能な年齢

18年~70年 (大人、高齢者)

健康ボランティアの受け入れ

いいえ

受講資格のある性別

全て

説明

包含基準:

  • 軽度の COVID-19 疾患 (1 回目、2 回目、および 3 回目の感染) から最近回復した患者。
  • 主要な臓器は正常に機能します。
  • 妊娠中の年齢の女性は避妊する必要があります。
  • インフォームド・コンセントを提供する意欲と能力がある

除外基準

  • 血液由来の感染症、例: B型肝炎。:
  • 精神病またはその他の精神疾患のため、治療医師が治療に不適切と判断したための強制拘留歴。
  • 他の免疫疾患、または免疫抑制剤やステロイドの慢性使用。
  • コンプライアンスは期待できません。
  • 医師が除外を必要と判断したその他の症状

研究計画

このセクションでは、研究がどのように設計され、研究が何を測定しているかなど、研究計画の詳細を提供します。

研究はどのように設計されていますか?

デザインの詳細

  • 主な目的:処理
  • 割り当て:非ランダム化
  • 介入モデル:並列代入
  • マスキング:なし(オープンラベル)

武器と介入

参加者グループ / アーム
介入・治療
実験的:A - 2 サイクル

末梢血リンパ球が収集され、プログラム細胞死タンパク質 1 (PDCD1) と ACE2 遺伝子が実験室で CRISPR Cas9 によってノックアウトされます (PD-1/ACE2 ノックアウト T 細胞)。 リンパ球は生体外で選択および増殖され、患者に注入されます。

合計 1 x 10^7/kg の PD-1 および ACE2 ノックアウト T 細胞が 1 サイクルで注入されます。 各サイクルは 3 回の投与に分割され、最初の投与で 20%、2 回目の投与で 30%、3 回目の投与で残りの 50% が注入されます。 患者は合計 2 サイクルの治療を受けます。

自己リンパ球が収集され、実験室で PDCD1 遺伝子と ACE2 遺伝子の両方がノックアウトされます。 細胞は生体外で選択され、増殖されます。 細胞は治療のために患者に注入されます
実験的:B- 2 サイクル

末梢血リンパ球が収集され、プログラム細胞死タンパク質 1 (PDCD1) と ACE2 遺伝子が実験室で CRISPR Cas9 によってノックアウトされます (PD-1/ACE2 ノックアウト T 細胞)。 リンパ球は生体外で選択および増殖され、患者に注入されます。

合計 1 x 10^7/kg の PD-1 および ACE2 ノックアウト T 細胞が 1 サイクルで注入されます。 各サイクルは 3 回の投与に分割され、最初の投与で 20%、2 回目の投与で 30%、3 回目の投与で残りの 50% が注入されます。 患者は合計 2 サイクルの治療を受けます。

合計 2 x 10^7/kg の PD-1 および ACE2 ノックアウト T 細胞が 1 サイクルで注入されます。 各サイクルは 3 回の投与に分割され、最初の投与で 20%、2 回目の投与で 30%、3 回目の投与で残りの 50% が注入されます。 患者は合計 2 サイクルの治療を受けます。

自己リンパ球が収集され、実験室で PDCD1 遺伝子と ACE2 遺伝子の両方がノックアウトされます。 細胞は生体外で選択され、増殖されます。 細胞は治療のために患者に注入されます
実験的:C- 2 サイクル

末梢血リンパ球が収集され、プログラム細胞死タンパク質 1 (PDCD1) と ACE2 遺伝子が実験室で CRISPR Cas9 によってノックアウトされます (PD-1/ACE2 ノックアウト T 細胞)。 リンパ球は生体外で選択および増殖され、患者に注入されます。

合計 4 x 10^7/kg の PD-1 および ACE2 ノックアウト T 細胞が 1 サイクルで注入されます。 各サイクルは 3 回の投与に分割され、最初の投与で 20%、2 回目の投与で 30%、3 回目の投与で残りの 50% が注入されます。 患者は合計 2 サイクルの治療を受けます。

自己リンパ球が収集され、実験室で PDCD1 遺伝子と ACE2 遺伝子の両方がノックアウトされます。 細胞は生体外で選択され、増殖されます。 細胞は治療のために患者に注入されます

この研究は何を測定していますか?

主要な結果の測定

結果測定
時間枠
患者における有害事象の共通用語基準(CTCAE v4.0)を使用したPD-1ノックアウトT細胞の用量の安全性および忍容性の尺度としての、有害事象および/または用量制限毒性を有する参加者の数
時間枠:用量漸増 - 約 5 か月
用量漸増 - 約 5 か月

二次結果の測定

結果測定
メジャーの説明
時間枠
再感染に対して全体的な奏効を示した患者の数
時間枠:10ヶ月
10ヶ月
すべての原因による死亡率
時間枠:0日目から180日目まで測定
最初に編集された T 細胞注入の日から、COVID-19 の再感染または何らかの理由による死亡の日までの時間。
0日目から180日目まで測定
炎症因子が上方制御されている患者の割合
時間枠:1ヶ月と3ヶ月
上方制御された炎症因子はさまざまな時点で測定されます
1ヶ月と3ヶ月
IL-6、TNF、TLR3、CRP、ESR、I型インターフェロンの血清レベル
時間枠:1ヶ月と3ヶ月
IL-6、TNF、TLR3、CRP、ESRおよびI型インターフェロンの血清レベルは、異なる時点で測定されます。
1ヶ月と3ヶ月
リンパ球絶対数 (CD4、CD8、CD25+FOXP3+ 制御性 T)
時間枠:1ヶ月と3ヶ月
リンパ球絶対数 (CD4、CD8、CD25+FOXP3+ 制御性 T) を異なる時点で測定します。
1ヶ月と3ヶ月
安全性 - 血液学
時間枠:0日目から180日目まで測定
白血球(WBC) 分別細胞数測定は、ベースライン時、PD-1 ノックアウト改変 T 細胞注入期の各来院時、およびその後は研究者の裁量で実施する必要があります。 臨床状態と検査パラメータは、個別の施設のガイドラインと担当医師の最良の臨床判断を使用して追跡する必要があり、より頻繁な検査が必要になる場合があります。
0日目から180日目まで測定

協力者と研究者

ここでは、この調査に関係する人々や組織を見つけることができます。

捜査官

  • 主任研究者:Mahmoud R Elkazzaz, M.Sc of Biochemistry、Faculty of science Damietta university

研究記録日

これらの日付は、ClinicalTrials.gov への研究記録と要約結果の提出の進捗状況を追跡します。研究記録と報告された結果は、国立医学図書館 (NLM) によって審査され、公開 Web サイトに掲載される前に、特定の品質管理基準を満たしていることが確認されます。

主要日程の研究

研究開始 (予想される)

2021年8月1日

一次修了 (予想される)

2022年11月1日

研究の完了 (予想される)

2022年11月1日

試験登録日

最初に提出

2021年8月1日

QC基準を満たした最初の提出物

2021年8月2日

最初の投稿 (実際)

2021年8月4日

学習記録の更新

投稿された最後の更新 (実際)

2021年8月16日

QC基準を満たした最後の更新が送信されました

2021年8月13日

最終確認日

2021年8月1日

詳しくは

本研究に関する用語

医薬品およびデバイス情報、研究文書

米国FDA規制医薬品の研究

いいえ

米国FDA規制機器製品の研究

いいえ

この情報は、Web サイト clinicaltrials.gov から変更なしで直接取得したものです。研究の詳細を変更、削除、または更新するリクエストがある場合は、register@clinicaltrials.gov。 までご連絡ください。 clinicaltrials.gov に変更が加えられるとすぐに、ウェブサイトでも自動的に更新されます。

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