Denne siden ble automatisk oversatt og nøyaktigheten av oversettelsen er ikke garantert. Vennligst referer til engelsk versjon for en kildetekst.

CRISPR/Cas9-modifisert human T-celle (PD-1 og ACE2 Knockout Engineered T-celler) for å indusere langsiktig immunitet hos COVID-19-pasienter

13. august 2021 oppdatert av: Mahmoud Ramadan mohamed Elkazzaz
Utmattelse av T-celler kan begrense langvarig immunitet hos COVID-19-pasienter. T-celler kan miste evnen til å bekjempe virus og svulster når de har langvarig eksponering for disse fiendene. Nye data tyder på at personer som opplever milde COVID-19-symptomer viser molekylære tegn på utmattede minne-T-celler og derfor kan ha redusert evne til å bekjempe reinfeksjon. Tvert imot kan personer som utvikler alvorlige covid-19-symptomer være bedre beskyttet mot reinfeksjon. En fersk studie rapporterte at 82,1 % av COVID-19-tilfellene viste lavt antall sirkulerende lymfocytter. Det har blitt rapportert at i tilfelle av kroniske virus forårsaker kontinuerlig PD-1-ekspresjon T-celleutmattelse og svekker evnen til å drepe de smittsomme cellene. Bekjempelsen av pasienter med COVID-19 er preget av en redusert lymfocyttprosent, med en tilsvarende andel CD4+ og CD8+ T-celler. Mengden av T-celler, for det meste CD8+ T-celler, som presenterer høye ekspresjonshastigheter av sen aktivitetsmarkør CD25 og utmattelsesmarkør PD-1 øker. Derfor er SARS-CoV-2 i stand til å gjøre endringer ved å modifisere det ervervede immunsystemet, inkludert B- og T-celler. I følge eksperimenter har PD-1s uttrykk, som en viktig faktor i induksjon og vedlikehold av periferiell toleranse som holder stabiliteten til T-celler, funnet å ha en høyere prosentandel i forskjellige celler hos COVID-19-pasienter. I et eksperiment utført av Diao et al., på pasienter med SARS-CoV-2, ble det observert at ekspresjonen av PD-1 på overflaten av T-celler ble økt betydelig; det ble også vist at under den SARS-CoV-2-induserte sykdommen, var ytterligere uttrykk av PD-1 og Tim-3 på T-cellene direkte relatert til sykdommens alvorlighetsgrad; faktorene som også ble økt ved andre virusinfeksjoner. T-celleutmattelse"-fenomenet kan reverseres relativt enkelt, for eksempel når T-cellene ikke lenger eksponeres for viruset eller svulsten. Men dessverre, selv om utmattede T-celler gjenvunnet fra kronisk infeksjon (REC-TEX) gjenvinner en viss funksjon og funksjoner til minne-T-celler (TMEM), beholder de epigenetiske arr som indikerer at kontrollen av genuttrykk er "låst inne" til deres utmattelseshistorie. Når T-celler først blir utmattet, forblir de fundamentalt "kablet" til å bli utmattet - og det kan derfor være vanskelig å få dem til å bli effektive virus- og kreftbekjempere igjen," sa John Wherry, PhD, leder av avdelingen for systemfarmakologi og Translational Therapeutics og direktør for Penn Institute of Immunology ved Perelman School of Medicine ved University of Pennsylvania. Videre kan COVID-19 infisere T-lymfocyttceller og indusere apoptose og apoptotiske markører. Lymfocytopeni ble også funnet i tilfeller av Midtøsten respiratorisk syndrom (MERS). MERS-CoV kan direkte infisere humane primære T-lymfocytter og indusere T-celleapoptose gjennom ytre og indre apoptoseveier, men det kan ikke replikere i T-lymfocytter. Det er imidlertid uklart om SARS-CoV-2 også kan infisere T-celler, noe som resulterer i lymfocytopeni. En studie viste at T-celler uttrykker et svært lavt ekspresjonsnivå av hACE2 på celleoverflaten og T-cellelinjer var betydelig mer følsomme for SARS-CoV-2-infeksjon sammenlignet med SARS-CoV. Med andre ord, disse resultatene forteller oss at T-lymfocytter kan være mer tillatelige for SARS-CoV-2-infeksjon. Derfor er det plausibelt at S-proteinet til SARS-CoV-2 kan formidle potent smitteevne, selv på celler som uttrykker lav hACE2, noe som igjen vil forklare hvorfor overføringshastigheten til SARS-CoV-2 er så høy. Gjennom nyere fremskritt innen genomisk redigering kan T-celler nå modifiseres med suksess via CRISPR/Cas9-teknologi. For eksempel kan det å engasjere (post-)transkripsjonelle mekanismer for å forbedre T-cellecytokinproduksjon, retargeting av T-celleantigenspesifisitet eller gjøre T-celler refraktive til hemmende reseptorsignalering øke T-celleeffektorfunksjonen. Derfor kan CRISPR/Cas9-mediert genomredigering gi nye strategier for å indusere langsiktig immunitet mot COVID-19. Immunterapier med autologe T-celler har blitt et kraftig behandlingsalternativ for mange sykdommer som virusinfeksjon eller kreft. Disse inkluderer adoptiv isolasjon og overføring av naturlig forekommende virus/tumorspesifikke T-celler og overføring av T-lymfocytter som har blitt genetisk modifisert. I følge etterforskeren vil utmattede virusreaktive CD8+-minne-T-celler isoleres fra pasienter med mild infeksjon ved bruk av en modifisert antigenreaktiv T-celleanrikningsanalyse (ARTE). utmattede virusreaktive CD8+ minne T-celler vil bli samlet inn og både programmert celledødsprotein 1(PDCD1)-gen og ACE2-gen vil bli slått ut av CRISPR Cas9 i laboratoriet. Lymfocyttene vil bli selektert og utvidet ex vivo og infundert tilbake til pasienter.

Studieoversikt

Status

Har ikke rekruttert ennå

Detaljert beskrivelse

Denne studien vil vurdere sikkerheten til PD-1 og ACE2 knockout-konstruerte T-celler som genetisk modifiserte minne-T-celler som er i stand til å gi langsiktig immunitet mot COVID-19 ved å huske og drepe viruset hvis det gjeninnføres. Det vil også bli tatt blodprøver til forskningsformål. Dette er en dose-eskaleringsstudie av ex-vivo utslåtte, utvidede og utvalgte PD-1 og ACE2 knockout-T-celler fra autolog opprinnelse. Pasienter tildeles 1 av 3 behandlingsgrupper for å bestemme maksimal tolerant dose. Etter at det lave antallet sykluser anses som tolerante, vil en arm med det neste høyere antallet sykluser være åpen for neste pasient. Biomarkører og immunologiske markører blir også samlet inn og analysert. I følge etterforskeren vil utmattede virusreaktive CD8+-minne-T-celler isoleres fra pasienter med mild infeksjon ved bruk av en modifisert antigenreaktiv T-celleanrikningsanalyse (ARTE). utmattede virusreaktive CD8+ minne T-celler vil bli samlet inn og programmert celledødsprotein 1(PDCD1)-gen og ACE2-gen vil bli slått ut av CRISPR Cas9 i laboratoriet (PD-1 og ACE2 Knockout T-celler). Lymfocyttene vil bli selektert og utvidet ex vivo og infundert tilbake til pasienter. Totalt 2 x 10^7/kg PD-1 og ACE2 Knockout T-celler vil bli infundert i én syklus. Hver syklus er delt inn i tre administrasjoner, med 20 % infundert i den første administrasjonen, 30 % i den andre, og de resterende 50 % i den tredje. Pasientene vil få totalt to behandlingssykluser.

Studietype

Intervensjonell

Registrering (Forventet)

16

Fase

  • Fase 2
  • Fase 1

Kontakter og plasseringer

Denne delen inneholder kontaktinformasjon for de som utfører studien, og informasjon om hvor denne studien blir utført.

Studiekontakt

Deltakelseskriterier

Forskere ser etter personer som passer til en bestemt beskrivelse, kalt kvalifikasjonskriterier. Noen eksempler på disse kriteriene er en persons generelle helsetilstand eller tidligere behandlinger.

Kvalifikasjonskriterier

Alder som er kvalifisert for studier

18 år til 70 år (Voksen, Eldre voksen)

Tar imot friske frivillige

Nei

Kjønn som er kvalifisert for studier

Alle

Beskrivelse

Inklusjonskriterier:

  • Pasienter som nylig ble friske etter mild COVID-19 sykdom (første, andre og tredje infeksjon).
  • Store organer fungerer normalt.
  • Kvinner i gravide aldre bør være under prevensjon..
  • Villig og i stand til å gi informert samtykke

Eksklusjonskriterier

  • Blodbåren infeksjonssykdom, f.eks. hepatitt B.:
  • Historie med obligatorisk varetekt på grunn av psykose eller annen psykisk sykdom som er upassende for behandling som vurderes av behandlende lege.
  • Med andre immunsykdommer, eller kronisk bruk av immundempende midler eller steroider.
  • Overholdelse kan ikke forventes.
  • Andre forhold som krever eksklusjon vurdert av legen

Studieplan

Denne delen gir detaljer om studieplanen, inkludert hvordan studien er utformet og hva studien måler.

Hvordan er studiet utformet?

Designdetaljer

  • Primært formål: Behandling
  • Tildeling: Ikke-randomisert
  • Intervensjonsmodell: Parallell tildeling
  • Masking: Ingen (Open Label)

Våpen og intervensjoner

Deltakergruppe / Arm
Intervensjon / Behandling
Eksperimentell: A - To sykluser

Lymfocytter fra perifert blod vil bli samlet inn og programmert celledødsprotein 1(PDCD1) og ACE2-genet vil bli slått ut av CRISPR Cas9 i laboratoriet (PD-1/ACE2 Knockout T-celler). Lymfocyttene vil bli selektert og utvidet ex vivo og infundert tilbake til pasienter.

Totalt 1 x 10^7/kg PD-1 og ACE2 Knockout T-celler vil bli infundert i en syklus. Hver syklus er delt inn i tre administrasjoner, med 20 % infundert i den første administrasjonen, 30 % i den andre, og de resterende 50 % i den tredje. Pasientene vil få totalt to behandlingssykluser.

Autologe lymfocytter samles inn og både PDCD1- og ACE2-genet slås ut i laboratoriet. Celler selekteres og utvides ex vivo. Celler infunderes tilbake til pasientene for behandling
Eksperimentell: B- To sykluser

Lymfocytter fra perifert blod vil bli samlet inn og programmert celledødsprotein 1(PDCD1) og ACE2-genet vil bli slått ut av CRISPR Cas9 i laboratoriet (PD-1/ACE2 Knockout T-celler). Lymfocyttene vil bli selektert og utvidet ex vivo og infundert tilbake til pasienter.

Totalt 1 x 10^7/kg PD-1 og ACE2 Knockout T-celler vil bli infundert i en syklus. Hver syklus er delt inn i tre administrasjoner, med 20 % infundert i den første administrasjonen, 30 % i den andre, og de resterende 50 % i den tredje. Pasientene vil få totalt to behandlingssykluser.

Totalt 2 x 10^7/kg PD-1 og ACE2 Knockout T-celler vil bli infundert i en syklus. Hver syklus er delt inn i tre administrasjoner, med 20 % infundert i den første administrasjonen, 30 % i den andre, og de resterende 50 % i den tredje. Pasientene vil få totalt to behandlingssykluser.

Autologe lymfocytter samles inn og både PDCD1- og ACE2-genet slås ut i laboratoriet. Celler selekteres og utvides ex vivo. Celler infunderes tilbake til pasientene for behandling
Eksperimentell: C- To sykluser

Lymfocytter fra perifert blod vil bli samlet inn og programmert celledødsprotein 1(PDCD1) og ACE2-genet vil bli slått ut av CRISPR Cas9 i laboratoriet (PD-1/ACE2 Knockout T-celler). Lymfocyttene vil bli selektert og utvidet ex vivo og infundert tilbake til pasienter.

Totalt 4 x 10^7/kg PD-1 og ACE2 Knockout T-celler vil bli infundert i en syklus. Hver syklus er delt inn i tre administrasjoner, med 20 % infundert i den første administrasjonen, 30 % i den andre, og de resterende 50 % i den tredje. Pasientene vil få totalt to behandlingssykluser.

Autologe lymfocytter samles inn og både PDCD1- og ACE2-genet slås ut i laboratoriet. Celler selekteres og utvides ex vivo. Celler infunderes tilbake til pasientene for behandling

Hva måler studien?

Primære resultatmål

Resultatmål
Tidsramme
Antall deltakere med uønskede hendelser og/eller dosebegrensende toksisiteter som et mål på sikkerhet og tolerabilitet av dose av PD-1 Knockout T-celler ved bruk av vanlige terminologikriterier for bivirkninger (CTCAE v4.0) hos pasienter
Tidsramme: Doseeskalering - Omtrent 5 måneder
Doseeskalering - Omtrent 5 måneder

Sekundære resultatmål

Resultatmål
Tiltaksbeskrivelse
Tidsramme
Antall pasienter med generell respons på reinfeksjonen
Tidsramme: 10 måneder
10 måneder
Alle forårsaker dødelighet
Tidsramme: Målt fra dag 0 til og med dag 180
Tiden fra datoen for første redigerte T-celleinfusjon til datoen for reinfeksjon med COVID-19 eller død på grunn av en hvilken som helst årsak.
Målt fra dag 0 til og med dag 180
Andel pasienter med oppregulerte inflammatoriske faktorer
Tidsramme: 1 måned og 3 måneder
Oppregulerte inflammatoriske faktorer vil bli målt på forskjellige tidspunkt
1 måned og 3 måneder
Serumnivåer av IL-6, TNF, TLR3, CRP, ESR og type I interferon
Tidsramme: 1 måned og 3 måneder
Serumnivåer av IL-6, TNF, TLR3, CRP, ESR og Type I interferon vil bli målt på forskjellige tidspunkter
1 måned og 3 måneder
Absolutt antall lymfocytter (CD4, CD8 og CD25+FOXP3+ Regulatory T)
Tidsramme: 1 måned og 3 måneder
Absolutt antall lymfocytter (CD4, CD8 og CD25+FOXP3+ Regulatory T) vil bli målt på forskjellige tidspunkter
1 måned og 3 måneder
Sikkerhet-hematologi
Tidsramme: Målt fra dag 0 til og med dag 180
hvite blodlegemer (WBC) Differensialcelletall bør utføres ved baseline, ved hvert besøk under PD-1 Knockout Engineered T Cells infusjonsfasen og deretter etter etterforskers skjønn. Klinisk status og laboratorieparametere skal følges ved bruk av individuelle institusjonelle retningslinjer og beste kliniske skjønn fra ansvarlig lege, noe som kan innebære hyppigere testing.
Målt fra dag 0 til og med dag 180

Samarbeidspartnere og etterforskere

Det er her du vil finne personer og organisasjoner som er involvert i denne studien.

Etterforskere

  • Hovedetterforsker: Mahmoud R Elkazzaz, M.Sc of Biochemistry, Faculty of science Damietta university

Studierekorddatoer

Disse datoene sporer fremdriften for innsending av studieposter og sammendragsresultater til ClinicalTrials.gov. Studieposter og rapporterte resultater gjennomgås av National Library of Medicine (NLM) for å sikre at de oppfyller spesifikke kvalitetskontrollstandarder før de legges ut på det offentlige nettstedet.

Studer hoveddatoer

Studiestart (Forventet)

1. august 2021

Primær fullføring (Forventet)

1. november 2022

Studiet fullført (Forventet)

1. november 2022

Datoer for studieregistrering

Først innsendt

1. august 2021

Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene

2. august 2021

Først lagt ut (Faktiske)

4. august 2021

Oppdateringer av studieposter

Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)

16. august 2021

Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene

13. august 2021

Sist bekreftet

1. august 2021

Mer informasjon

Begreper knyttet til denne studien

Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter

Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt

Nei

Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt

Nei

Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .

Kliniske studier på COVID-19 luftveisinfeksjon

Kliniske studier på PD-1 og ACE2 Knockout T-celler

3
Abonnere