Denna sida har översatts automatiskt och översättningens korrekthet kan inte garanteras. Vänligen se engelsk version för en källtext.

CRISPR/Cas9-modifierad mänsklig T-cell (PD-1 och ACE2 Knockout Engineered T-celler) för att inducera långvarig immunitet hos COVID-19-patienter

13 augusti 2021 uppdaterad av: Mahmoud Ramadan mohamed Elkazzaz
T-cellsutmattning kan begränsa långvarig immunitet hos COVID-19-patienter. T-celler kan förlora sin förmåga att bekämpa virus och tumörer när de har långvarig exponering för dessa fiender. Nya data tyder på att människor som upplever milda COVID-19-symtom visar molekylära tecknen på utmattade minnes-T-celler och därför kan ha en minskad förmåga att bekämpa återinfektion. Tvärtom kan människor som utvecklar allvarliga covid-19-symtom vara bättre skyddade från återinfektion. En nyligen genomförd studie rapporterade att 82,1 % av fallen av covid-19 visade lågt antal cirkulerande lymfocyter. Det har rapporterats att, i fallet med kroniska virus, orsakar kontinuerlig PD-1-expression utmattning av T-celler och försämrar förmågan att döda de infektiösa cellerna. Besvikelsen av patienter med COVID-19 kännetecknas av en minskad lymfocytprocent, med en liknande andel CD4+ och CD8+ T-celler. Mängden T-celler, mestadels CD8+ T-celler, som uppvisar höga uttryckshastigheter av sen aktivitetsmarkör CD25 och utmattningsmarkör PD-1 ökar. Därför kan SARS-CoV-2 göra förändringar genom att modifiera det förvärvade immunsystemet, inklusive B- och T-celler. Enligt experiment har uttrycket av PD-1, som en viktig faktor i induktion och upprätthållande av periferiell tolerans som bibehåller stabiliteten hos T-celler, visat sig ha en högre andel i olika celler hos COVID-19-patienter. I ett experiment utfört av Diao et al., på patienter med SARS-CoV-2, observerades att uttrycket av PD-1 på ytan av T-celler ökade signifikant; det visades också att under den SARS-CoV-2-inducerade sjukdomen var ytterligare uttryck av PD-1 och Tim-3 på T-cellerna direkt relaterade till sjukdomens svårighetsgrad; de faktorer som också ökade vid andra virusinfektioner. T-cellsutmattning"-fenomenet skulle kunna vändas relativt enkelt, till exempel när T-cellerna inte längre exponeras för viruset eller tumören. Men tyvärr, även om utmattade T-celler som återhämtats från kronisk infektion (REC-TEX) återfår viss funktion och egenskaper hos minnes-T-celler (TMEM), behåller de epigenetiska ärr som indikerar att kontrollen av genuttryck är "låst" till deras utmattningshistorik. När T-celler väl blir utmattade förblir de i grunden "anslutna" för att vara utmattade - så det kan vara svårt att få dem att bli effektiva virus- och cancerbekämpare igen", säger John Wherry, PhD, ordförande för avdelningen för systemfarmakologi och Translational Therapeutics och chef för Penn Institute of Immunology vid Perelman School of Medicine vid University of Pennsylvania. Dessutom kan COVID-19 infektera T-lymfocytceller och inducera apoptos och apoptotiska markörer. Lymfocytopeni hittades också i fall av luftvägssyndrom i Mellanöstern (MERS). MERS-CoV kan direkt infektera humana primära T-lymfocyter och inducera T-cellsapoptos genom yttre och inre apoptosvägar, men det kan inte replikera i T-lymfocyter. Det är dock oklart om SARS-CoV-2 också kan infektera T-celler, vilket resulterar i lymfocytopeni. En studie visade att T-celler uttrycker en mycket låg expressionsnivå av hACE2 på sin cellyta och T-cellinjer var betydligt mer känsliga för SARS-CoV-2-infektion jämfört med SARS-CoV. Med andra ord, dessa resultat säger oss att T-lymfocyter kan vara mer tillåtande för SARS-CoV-2-infektion. Därför är det troligt att S-proteinet i SARS-CoV-2 kan förmedla potent smittsamhet, även på celler som uttrycker lågt hACE2, vilket i sin tur skulle förklara varför överföringshastigheten för SARS-CoV-2 är så hög. Genom de senaste framstegen inom genomisk redigering kan T-celler nu framgångsrikt modifieras via CRISPR/Cas9-teknologi. Till exempel kan engagerande av (post-)transkriptionella mekanismer för att öka produktionen av T-cellscytokiner, ominriktning av T-cellsantigenspecificitet eller göra T-celler refraktiva för hämmande receptorsignalering förstärka T-cellseffektorfunktionen. Därför kan CRISPR/Cas9-medierad genomredigering ge nya strategier för att inducera långsiktig immunitet mot COVID-19. Immunterapier med autologa T-celler har blivit ett kraftfullt behandlingsalternativ för många sjukdomar som virusinfektion eller cancer. Dessa inkluderar adoptiv isolering och överföring av naturligt förekommande virus/tumörspecifika T-celler och överföring av T-lymfocyter som har modifierats genetiskt. Enligt utredaren kommer utmattade virusreaktiva CD8+ minnes T-celler att isoleras från patienter med mild infektion med hjälp av en modifierad antigenreaktiv T-cellsanrikningsanalys (ARTE). uttömda virusreaktiva CD8+ minne T-celler kommer att samlas in och både programmerad celldöd protein 1 (PDCD1) gen och ACE2 gen kommer att slås ut av CRISPR Cas9 i laboratoriet. Lymfocyterna kommer att selekteras och expanderas ex vivo och infunderas tillbaka till patienter.

Studieöversikt

Status

Har inte rekryterat ännu

Detaljerad beskrivning

Denna studie kommer att bedöma säkerheten hos PD-1 och ACE2 knockout-manipulerade T-celler som genetiskt modifierade minnes-T-celler som kan ge långsiktig immunitet mot COVID-19 genom att komma ihåg och döda viruset om det återinförs. Blodprover kommer också att samlas in för forskningsändamål. Detta är en dosökningsstudie av ex-vivo utslagna, expanderade och utvalda PD-1 och ACE2 knockout-T-celler från autologt ursprung. Patienterna tilldelas 1 av 3 behandlingsgrupper för att bestämma den maximala toleranta dosen. Efter att det lägre antalet cykler anses vara toleranta, kommer en arm med nästa högre antal cykler att vara öppen för nästa patienter. Biomarkörer och immunologiska markörer samlas in och analyseras också. Enligt utredaren kommer utmattade virusreaktiva CD8+ minnes T-celler att isoleras från patienter med mild infektion med hjälp av en modifierad antigenreaktiv T-cellsanrikningsanalys (ARTE). uttömda virusreaktiva CD8+ minnes-T-celler kommer att samlas in och programmerad celldödsprotein 1(PDCD1)-gen och ACE2-gen kommer att slås ut av CRISPR Cas9 i laboratoriet (PD-1 och ACE2 Knockout T-celler). Lymfocyterna kommer att selekteras och expanderas ex vivo och infunderas tillbaka till patienter. Totalt 2 x 10^7/kg PD-1 och ACE2 Knockout T-celler kommer att infunderas i en cykel. Varje cykel är uppdelad i tre administreringar, med 20% infunderad i den första administreringen, 30% i den andra och de återstående 50% i den tredje. Patienterna kommer att få totalt två behandlingscykler.

Studietyp

Interventionell

Inskrivning (Förväntat)

16

Fas

  • Fas 2
  • Fas 1

Kontakter och platser

Det här avsnittet innehåller kontaktuppgifter för dem som genomför studien och information om var denna studie genomförs.

Studiekontakt

Deltagandekriterier

Forskare letar efter personer som passar en viss beskrivning, så kallade behörighetskriterier. Några exempel på dessa kriterier är en persons allmänna hälsotillstånd eller tidigare behandlingar.

Urvalskriterier

Åldrar som är berättigade till studier

18 år till 70 år (Vuxen, Äldre vuxen)

Tar emot friska volontärer

Nej

Kön som är behöriga för studier

Allt

Beskrivning

Inklusionskriterier:

  • Patienter som nyligen tillfrisknat från mild covid-19-sjukdom (första, andra och tredje infektion).
  • Stora organ fungerar normalt.
  • Kvinnor i gravida åldrar bör vara under preventivmedel..
  • Vill och kan ge informerat samtycke

Exklusions kriterier

  • Blodburen infektionssjukdom, t.ex. hepatit B.:
  • Historik av obligatorisk vårdnad på grund av psykos eller annan psykologisk sjukdom som är olämplig för behandling som bedöms av behandlande läkare.
  • Med andra immunsjukdomar, eller kronisk användning av immunsuppressiva medel eller steroider.
  • Efterlevnad kan inte förväntas.
  • Andra tillstånd som kräver uteslutning bedöms av läkare

Studieplan

Det här avsnittet ger detaljer om studieplanen, inklusive hur studien är utformad och vad studien mäter.

Hur är studien utformad?

Designdetaljer

  • Primärt syfte: Behandling
  • Tilldelning: Icke-randomiserad
  • Interventionsmodell: Parallellt uppdrag
  • Maskning: Ingen (Open Label)

Vapen och interventioner

Deltagargrupp / Arm
Intervention / Behandling
Experimentell: A - Två cykler

Perifera blodlymfocyter kommer att samlas in och programmerad celldödsprotein 1(PDCD1) och ACE2-genen kommer att slås ut av CRISPR Cas9 i laboratoriet (PD-1/ACE2 Knockout T-celler). Lymfocyterna kommer att selekteras och expanderas ex vivo och infunderas tillbaka till patienter.

Totalt 1 x 10^7/kg PD-1 och ACE2 Knockout T-celler kommer att infunderas i en cykel. Varje cykel är uppdelad i tre administreringar, med 20% infunderad i den första administreringen, 30% i den andra och de återstående 50% i den tredje. Patienterna kommer att få totalt två behandlingscykler.

Autologa lymfocyter samlas in och både PDCD1- och ACE2-genen slås ut i laboratoriet. Celler selekteras och expanderas ex vivo. Celler infunderas tillbaka till patienterna för behandling
Experimentell: B- Två cykler

Perifera blodlymfocyter kommer att samlas in och programmerad celldödsprotein 1(PDCD1) och ACE2-genen kommer att slås ut av CRISPR Cas9 i laboratoriet (PD-1/ACE2 Knockout T-celler). Lymfocyterna kommer att selekteras och expanderas ex vivo och infunderas tillbaka till patienter.

Totalt 1 x 10^7/kg PD-1 och ACE2 Knockout T-celler kommer att infunderas i en cykel. Varje cykel är uppdelad i tre administreringar, med 20% infunderad i den första administreringen, 30% i den andra och de återstående 50% i den tredje. Patienterna kommer att få totalt två behandlingscykler.

Totalt 2 x 10^7/kg PD-1 och ACE2 Knockout T-celler kommer att infunderas i en cykel. Varje cykel är uppdelad i tre administreringar, med 20% infunderad i den första administreringen, 30% i den andra och de återstående 50% i den tredje. Patienterna kommer att få totalt två behandlingscykler.

Autologa lymfocyter samlas in och både PDCD1- och ACE2-genen slås ut i laboratoriet. Celler selekteras och expanderas ex vivo. Celler infunderas tillbaka till patienterna för behandling
Experimentell: C- Två cykler

Perifera blodlymfocyter kommer att samlas in och programmerad celldödsprotein 1(PDCD1) och ACE2-genen kommer att slås ut av CRISPR Cas9 i laboratoriet (PD-1/ACE2 Knockout T-celler). Lymfocyterna kommer att selekteras och expanderas ex vivo och infunderas tillbaka till patienter.

Totalt 4 x 10^7/kg PD-1 och ACE2 Knockout T-celler kommer att infunderas i en cykel. Varje cykel är uppdelad i tre administreringar, med 20% infunderad i den första administreringen, 30% i den andra och de återstående 50% i den tredje. Patienterna kommer att få totalt två behandlingscykler.

Autologa lymfocyter samlas in och både PDCD1- och ACE2-genen slås ut i laboratoriet. Celler selekteras och expanderas ex vivo. Celler infunderas tillbaka till patienterna för behandling

Vad mäter studien?

Primära resultatmått

Resultatmått
Tidsram
Antal deltagare med biverkningar och/eller dosbegränsande toxiciteter som ett mått på säkerhet och tolerabilitet för dos av PD-1 Knockout T-celler som använder gemensamma terminologikriterier för biverkningar (CTCAE v4.0) hos patienter
Tidsram: Dosupptrappning - Cirka 5 månader
Dosupptrappning - Cirka 5 månader

Sekundära resultatmått

Resultatmått
Åtgärdsbeskrivning
Tidsram
Antal patienter med övergripande respons på återinfektionen
Tidsram: 10 månader
10 månader
Alla orsakar dödlighet
Tidsram: Mätt från dag 0 till dag 180
Tiden från datumet för den första redigerade T-cellsinfusionen till datumet för återinfektion med COVID-19 eller död av någon anledning.
Mätt från dag 0 till dag 180
Andel patienter med uppreglerade inflammatoriska faktorer
Tidsram: 1 månad och 3 månader
Uppreglerade inflammatoriska faktorer kommer att mätas vid olika tidpunkter
1 månad och 3 månader
Serumnivåer av IL-6, TNF, TLR3, CRP, ESR och typ I interferon
Tidsram: 1 månad och 3 månader
Serumnivåer av IL-6, TNF, TLR3, CRP, ESR och typ I-interferon kommer att mätas vid olika tidpunkter
1 månad och 3 månader
Absoluta lymfocytantal (CD4, CD8 och CD25+FOXP3+ Regulatory T)
Tidsram: 1 månad och 3 månader
Absoluta lymfocytantal (CD4, CD8 och CD25+FOXP3+ Regulatory T) kommer att mätas vid olika tidpunkter
1 månad och 3 månader
Säkerhet-hematologi
Tidsram: Mätt från dag 0 till dag 180
vita blodkroppar (WBC) Differentiella cellantal bör utföras vid baslinjen, vid varje besök under PD-1 Knockout Engineered T Cells infusionsfasen och därefter enligt utredarens gottfinnande. Klinisk status och laboratorieparametrar ska följas med hjälp av individuella institutionella riktlinjer och bästa kliniska bedömning av ansvarig läkare, vilket kan innebära mer frekventa tester.
Mätt från dag 0 till dag 180

Samarbetspartners och utredare

Det är här du hittar personer och organisationer som är involverade i denna studie.

Utredare

  • Huvudutredare: Mahmoud R Elkazzaz, M.Sc of Biochemistry, Faculty of science Damietta university

Studieavstämningsdatum

Dessa datum spårar framstegen för inlämningar av studieposter och sammanfattande resultat till ClinicalTrials.gov. Studieposter och rapporterade resultat granskas av National Library of Medicine (NLM) för att säkerställa att de uppfyller specifika kvalitetskontrollstandarder innan de publiceras på den offentliga webbplatsen.

Studera stora datum

Studiestart (Förväntat)

1 augusti 2021

Primärt slutförande (Förväntat)

1 november 2022

Avslutad studie (Förväntat)

1 november 2022

Studieregistreringsdatum

Först inskickad

1 augusti 2021

Först inskickad som uppfyllde QC-kriterierna

2 augusti 2021

Första postat (Faktisk)

4 augusti 2021

Uppdateringar av studier

Senaste uppdatering publicerad (Faktisk)

16 augusti 2021

Senaste inskickade uppdateringen som uppfyllde QC-kriterierna

13 augusti 2021

Senast verifierad

1 augusti 2021

Mer information

Termer relaterade till denna studie

Läkemedels- och apparatinformation, studiedokument

Studerar en amerikansk FDA-reglerad läkemedelsprodukt

Nej

Studerar en amerikansk FDA-reglerad produktprodukt

Nej

Denna information hämtades direkt från webbplatsen clinicaltrials.gov utan några ändringar. Om du har några önskemål om att ändra, ta bort eller uppdatera dina studieuppgifter, vänligen kontakta register@clinicaltrials.gov. Så snart en ändring har implementerats på clinicaltrials.gov, kommer denna att uppdateras automatiskt även på vår webbplats .

Prenumerera