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Cellule T humaine modifiée par CRISPR/Cas9 (cellules T conçues par knock-out PD-1 et ACE2) pour induire une immunité à long terme chez les patients COVID-19

13 août 2021 mis à jour par: Mahmoud Ramadan mohamed Elkazzaz
L'épuisement des lymphocytes T peut limiter l'immunité à long terme chez les patients atteints de COVID-19. Les lymphocytes T peuvent perdre leur capacité à combattre les virus et les tumeurs lorsqu'ils sont exposés de manière prolongée à ces ennemis. De nouvelles données suggèrent que les personnes qui présentent de légers symptômes de COVID-19 présentent les signes moléculaires de cellules T mémoire épuisées et pourraient donc avoir une capacité réduite à lutter contre la réinfection. Au contraire, les personnes qui développent des symptômes graves de COVID-19 peuvent être mieux protégées contre la réinfection. Une étude récente a rapporté que 82,1 % des cas de COVID-19 affichaient un faible nombre de lymphocytes circulants . Il a été rapporté que, dans le cas de virus chroniques, l'expression continue de PD-1 provoque l'épuisement des lymphocytes T et altère la capacité de tuer les cellules infectieuses . L'ébauche des patients atteints de COVID-19 se caractérise par une diminution du pourcentage de lymphocytes, avec une proportion similaire de lymphocytes T CD4+ et CD8+. La quantité de lymphocytes T, principalement des lymphocytes T CD8+, présentant des taux d'expression élevés du marqueur d'activité tardive CD25 et du marqueur d'épuisement PD-1 augmente. Par conséquent, le SRAS-CoV-2 est capable d'apporter des changements en modifiant le système immunitaire acquis, y compris les cellules B et T. Selon des expériences, l'expression de PD-1, en tant que facteur important dans l'induction et le maintien de la tolérance circonférentielle maintenant la stabilité des lymphocytes T, s'est avérée avoir un pourcentage plus élevé dans différentes cellules de patients COVID-19. Dans une expérience menée par Diao et al., sur des patients atteints du SRAS-CoV-2, il a été observé que l'expression de PD-1 à la surface des lymphocytes T était augmentée de manière significative ; il a également été montré que pendant la maladie induite par le SRAS-CoV-2, des expressions supplémentaires de PD-1 et Tim-3 sur les lymphocytes T étaient directement liées à la gravité de la maladie ; les facteurs qui ont également été augmentés dans d'autres infections virales. Le phénomène d'épuisement des lymphocytes T pourrait être inversé relativement facilement, par exemple lorsque les lymphocytes T ne sont plus exposés au virus ou à la tumeur. Mais malheureusement, bien que les lymphocytes T épuisés récupérés d'une infection chronique (REC-TEX) retrouvent certaines fonctions et caractéristiques des lymphocytes T mémoire (TMEM), ils conservent des cicatrices épigénétiques indiquant que le contrôle de l'expression des gènes est "verrouillé" à leur historique d'épuisement. Une fois que les lymphocytes T sont épuisés, ils restent fondamentalement « câblés » pour être épuisés, il peut donc être difficile de les faire redevenir des combattants efficaces contre les virus et le cancer », a déclaré John Wherry, PhD, président du département de pharmacologie des systèmes et Translational Therapeutics et directeur du Penn Institute of Immunology de la Perelman School of Medicine de l'Université de Pennsylvanie. De plus, le COVID-19 peut infecter les lymphocytes T et induire l'apoptose et des marqueurs apoptotiques. Une lymphocytopénie a également été trouvée dans les cas de syndrome respiratoire du Moyen-Orient (MERS). Le MERS-CoV peut infecter directement les lymphocytes T primaires humains et induire l'apoptose des lymphocytes T par des voies d'apoptose extrinsèques et intrinsèques, mais il ne peut pas se répliquer dans les lymphocytes T. Cependant, on ne sait pas si le SRAS-CoV-2 peut également infecter les cellules T, entraînant une lymphocytopénie. Une étude a montré que les cellules T expriment un très faible niveau d'expression de hACE2 sur sa surface cellulaire et que les lignées de cellules T étaient significativement plus sensibles à l'infection par le SRAS-CoV-2 par rapport au SRAS-CoV. En d'autres termes, ces résultats nous indiquent que les lymphocytes T pourraient être plus permissifs à l'infection par le SRAS-CoV-2. Par conséquent, il est plausible que la protéine S du SRAS-CoV-2 puisse être à l'origine d'une infectivité puissante, même sur des cellules exprimant un faible hACE2, ce qui expliquerait à son tour pourquoi le taux de transmission du SRAS-CoV-2 est si élevé. Grâce aux progrès récents de l'édition génomique, les lymphocytes T peuvent désormais être modifiés avec succès via la technologie CRISPR/Cas9. Par exemple, engager des mécanismes (post-) transcriptionnels pour améliorer la production de cytokines des lymphocytes T, le reciblage de la spécificité de l'antigène des lymphocytes T ou rendre les lymphocytes T réfractifs à la signalisation des récepteurs inhibiteurs peut augmenter la fonction effectrice des lymphocytes T. Par conséquent, l'édition du génome médiée par CRISPR/Cas9 pourrait fournir de nouvelles stratégies pour induire une immunité à long terme contre le COVID-19. Les immunothérapies avec des lymphocytes T autologues sont devenues une option de traitement puissante pour de nombreuses maladies comme les infections virales ou le cancer. Celles-ci comprennent l'isolement adoptif et le transfert de lymphocytes T spécifiques de virus/tumeurs d'origine naturelle et le transfert de lymphocytes T qui ont été génétiquement modifiés . Selon l'investigateur, les lymphocytes T mémoire CD8 + réactifs au virus épuisés seront isolés des patients atteints d'une infection bénigne à l'aide d'un test d'enrichissement des lymphocytes T réactifs à l'antigène modifié (ARTE). Les lymphocytes T mémoire CD8 + réactifs au virus épuisés seront collectés et le gène de la protéine de mort cellulaire programmée 1 (PDCD1) et le gène ACE2 seront éliminés par CRISPR Cas9 en laboratoire. Les lymphocytes seront sélectionnés et multipliés ex vivo et réinjectés aux patients.

Aperçu de l'étude

Statut

Pas encore de recrutement

Description détaillée

Cette étude évaluera l'innocuité des lymphocytes T modifiés par PD-1 et ACE2 en tant que lymphocytes T à mémoire génétiquement modifiés capables de fournir une immunité à long terme contre le COVID-19 en se souvenant et en tuant le virus s'il est réintroduit. Des échantillons de sang seront également prélevés à des fins de recherche. Il s'agit d'une étude d'escalade de dose de cellules T KO ex vivo, expansées et sélectionnées PD-1 et ACE2 d'origine autologue. Les patients sont assignés à 1 des 3 groupes de traitement pour déterminer la dose tolérante maximale. Une fois que le nombre inférieur de cycles est considéré comme tolérant, un bras du nombre supérieur de cycles suivant sera ouvert aux patients suivants. Des biomarqueurs et des marqueurs immunologiques sont également collectés et analysés. Selon l'investigateur, les lymphocytes T mémoire CD8 + réactifs au virus épuisés seront isolés des patients atteints d'une infection bénigne à l'aide d'un test d'enrichissement des lymphocytes T réactifs à l'antigène modifié (ARTE). les cellules T mémoire CD8 + réactives au virus épuisées seront collectées et le gène de la protéine de mort cellulaire programmée 1 (PDCD1) et le gène ACE2 seront éliminés par CRISPR Cas9 en laboratoire (cellules T PD-1 et ACE2 Knockout). Les lymphocytes seront sélectionnés et multipliés ex vivo et réinjectés aux patients. Un total de 2 x 10 ^ 7/kg de lymphocytes T PD-1 et ACE2 Knockout seront perfusés en un cycle. Chaque cycle est divisé en trois administrations, avec 20 % de perfusion lors de la première administration, 30 % lors de la seconde et les 50 % restants lors de la troisième. Les patients recevront un total de deux cycles de traitement.

Type d'étude

Interventionnel

Inscription (Anticipé)

16

Phase

  • Phase 2
  • La phase 1

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Coordonnées de l'étude

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

18 ans à 70 ans (Adulte, Adulte plus âgé)

Accepte les volontaires sains

Non

Sexes éligibles pour l'étude

Tout

La description

Critère d'intégration:

  • Patients qui se sont récemment remis d'une légère maladie COVID-19 (première, deuxième et troisième infection).
  • Les principaux organes fonctionnent normalement.
  • Les femmes en âge de grossesse doivent être sous contraception..
  • Volonté et capable de donner un consentement éclairé

Critère d'exclusion

  • Maladie infectieuse à diffusion hématogène, par ex. hépatite B.:
  • Antécédents de détention obligatoire en raison d'une psychose ou d'une autre maladie psychologique inappropriée pour un traitement jugé par le médecin traitant.
  • Avec d'autres maladies immunitaires, ou l'utilisation chronique d'immunosuppresseurs ou de stéroïdes.
  • La conformité ne peut pas être attendue.
  • Autres conditions nécessitant une exclusion jugée par le médecin

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

  • Objectif principal: Traitement
  • Répartition: Non randomisé
  • Modèle interventionnel: Affectation parallèle
  • Masquage: Aucun (étiquette ouverte)

Armes et Interventions

Groupe de participants / Bras
Intervention / Traitement
Expérimental: A - Deux cycles

Les lymphocytes du sang périphérique seront collectés et la protéine de mort cellulaire programmée 1 (PDCD1) et le gène ACE2 seront éliminés par CRISPR Cas9 en laboratoire (cellules T knockout PD-1/ACE2). Les lymphocytes seront sélectionnés et multipliés ex vivo et réinjectés aux patients.

Un total de 1 x 10 ^ 7/kg de lymphocytes T PD-1 et ACE2 Knockout seront perfusés en un cycle. Chaque cycle est divisé en trois administrations, avec 20 % de perfusion lors de la première administration, 30 % lors de la seconde et les 50 % restants lors de la troisième. Les patients recevront un total de deux cycles de traitement.

Des lymphocytes autologues sont collectés et les gènes PDCD1 et ACE2 sont éliminés en laboratoire. Les cellules sont sélectionnées et développées ex vivo. Les cellules sont réinjectées aux patients pour traitement
Expérimental: B- Deux cycles

Les lymphocytes du sang périphérique seront collectés et la protéine de mort cellulaire programmée 1 (PDCD1) et le gène ACE2 seront éliminés par CRISPR Cas9 en laboratoire (cellules T knockout PD-1/ACE2). Les lymphocytes seront sélectionnés et multipliés ex vivo et réinjectés aux patients.

Un total de 1 x 10 ^ 7/kg de lymphocytes T PD-1 et ACE2 Knockout seront perfusés en un cycle. Chaque cycle est divisé en trois administrations, avec 20 % de perfusion lors de la première administration, 30 % lors de la seconde et les 50 % restants lors de la troisième. Les patients recevront un total de deux cycles de traitement.

Un total de 2 x 10 ^ 7/kg de lymphocytes T PD-1 et ACE2 Knockout seront perfusés en un cycle. Chaque cycle est divisé en trois administrations, avec 20 % de perfusion lors de la première administration, 30 % lors de la seconde et les 50 % restants lors de la troisième. Les patients recevront un total de deux cycles de traitement.

Des lymphocytes autologues sont collectés et les gènes PDCD1 et ACE2 sont éliminés en laboratoire. Les cellules sont sélectionnées et développées ex vivo. Les cellules sont réinjectées aux patients pour traitement
Expérimental: C- Deux cycles

Les lymphocytes du sang périphérique seront collectés et la protéine de mort cellulaire programmée 1 (PDCD1) et le gène ACE2 seront éliminés par CRISPR Cas9 en laboratoire (cellules T knockout PD-1/ACE2). Les lymphocytes seront sélectionnés et multipliés ex vivo et réinjectés aux patients.

Un total de 4 x 10 ^ 7/kg de lymphocytes T PD-1 et ACE2 Knockout seront perfusés en un cycle. Chaque cycle est divisé en trois administrations, avec 20 % de perfusion lors de la première administration, 30 % lors de la seconde et les 50 % restants lors de la troisième. Les patients recevront un total de deux cycles de traitement.

Des lymphocytes autologues sont collectés et les gènes PDCD1 et ACE2 sont éliminés en laboratoire. Les cellules sont sélectionnées et développées ex vivo. Les cellules sont réinjectées aux patients pour traitement

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Délai
Nombre de participants présentant des événements indésirables et/ou des toxicités limitant la dose comme mesure de l'innocuité et de la tolérabilité de la dose de cellules T knock-out PD-1 à l'aide des critères de terminologie communs pour les événements indésirables (CTCAE v4.0) chez les patients
Délai: Escalade de dose - Environ 5 mois
Escalade de dose - Environ 5 mois

Mesures de résultats secondaires

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Nombre de patients ayant une réponse globale à la réinfection
Délai: 10 mois
10 mois
Taux de mortalité toutes causes
Délai: Mesuré du jour 0 au jour 180
Le temps écoulé entre la date de la première perfusion de lymphocytes T éditée et la date de réinfection par le COVID-19 ou le décès pour quelque raison que ce soit.
Mesuré du jour 0 au jour 180
Proportion de patients présentant des facteurs inflammatoires régulés à la hausse
Délai: 1 mois et 3 mois
Les facteurs inflammatoires régulés positivement seront mesurés à différents moments
1 mois et 3 mois
Niveaux sériques d'IL-6, TNF, TLR3, CRP, ESR et interféron de type I
Délai: 1 mois et 3 mois
Les niveaux sériques d'IL-6, de TNF, de TLR3, de CRP, d'ESR et d'interféron de type I seront mesurés à différents moments
1 mois et 3 mois
Numération absolue des lymphocytes (CD4, CD8 et CD25 + FOXP3 + T régulateur)
Délai: 1 mois et 3 mois
Le nombre absolu de lymphocytes (CD4, CD8 et CD25 + FOXP3 + T régulateur) sera mesuré à différents moments
1 mois et 3 mois
Sécurité-Hématologie
Délai: Mesuré du jour 0 au jour 180
globules blancs (WBC) Des numérations cellulaires différentielles doivent être effectuées au départ, à chaque visite pendant la phase de perfusion des cellules T PD-1 Knockout Engineered et par la suite à la discrétion des enquêteurs. L'état clinique et les paramètres de laboratoire doivent être suivis en utilisant les directives institutionnelles individuelles et le meilleur jugement clinique du médecin responsable, ce qui peut impliquer des tests plus fréquents.
Mesuré du jour 0 au jour 180

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Les enquêteurs

  • Chercheur principal: Mahmoud R Elkazzaz, M.Sc of Biochemistry, Faculty of science Damietta university

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Anticipé)

1 août 2021

Achèvement primaire (Anticipé)

1 novembre 2022

Achèvement de l'étude (Anticipé)

1 novembre 2022

Dates d'inscription aux études

Première soumission

1 août 2021

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

2 août 2021

Première publication (Réel)

4 août 2021

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Réel)

16 août 2021

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

13 août 2021

Dernière vérification

1 août 2021

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

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