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CRISPR/Cas9 修饰的人类 T 细胞(PD-1 和 ACE2 基因敲除工程 T 细胞)用于在 COVID-19 患者中诱导长期免疫

2021年8月13日 更新者:Mahmoud Ramadan mohamed Elkazzaz
T 细胞耗竭可能会限制 COVID-19 患者的长期免疫力。 当 T 细胞长时间暴露于这些敌人时,它们可能会失去对抗病毒和肿瘤的能力。 新数据表明,出现轻度 COVID-19 症状的人会表现出记忆 T 细胞耗尽的分子迹象,因此抵抗再感染的能力可能会降低。 相反,出现严重 COVID-19 症状的人可能会更好地避免再次感染。 最近的一项研究报告说,82.1% 的 COVID-19 病例显示循环淋巴细胞计数低。 据报道,在慢性病毒的情况下,持续的 PD-1 表达会导致 T 细胞耗竭,并削弱杀伤感染细胞的能力。 COVID-19 患者的预兆特征是淋巴细胞百分比降低,CD4+ 和 CD8+ T 细胞比例相似。 T 细胞的数量,主要是 CD8+ T 细胞,表现出晚期活性标志物 CD25 和衰竭标志物 PD-1 的高表达率增加。 因此,SARS-CoV-2 能够通过修改获得性免疫系统(包括 B 细胞和 T 细胞)来进行改变。 实验表明,PD-1的表达作为诱导和维持维持T细胞稳定性的周向耐受性的重要因素,已被发现在COVID-19患者的不同细胞中有较高的表达比例。 Diao 等人在 SARS-CoV-2 患者身上进行的一项实验中,观察到 T 细胞表面 PD-1 的表达显着增加;还表明,在 SARS-CoV-2 诱发疾病期间,T 细胞上 PD-1 和 Tim-3 的额外表达与疾病的严重程度直接相关;在其他病毒感染中也增加的因素。 “T 细胞耗竭”现象可以相对容易地逆转,例如当 T 细胞不再暴露于病毒或肿瘤时。 但不幸的是,虽然从慢性感染中恢复的耗尽 T 细胞 (REC-TEX) 恢复了记忆 T 细胞 (TMEM) 的某些功能和特征,但它们保留了表观遗传疤痕,表明基因表达的控制被“锁定”在它们的耗竭历史中。 一旦 T 细胞耗尽,它们从根本上保持‘连接’到耗尽状态——因此可能很难让它们再次成为有效的病毒和癌症斗士,”系统药理学和癌症系主任 John Wherry 博士说。转化治疗学和宾夕法尼亚大学佩雷​​尔曼医学院宾夕法尼亚免疫学研究所所长。 此外,COVID-19 可能感染 T 淋巴细胞并诱导细胞凋亡和细胞凋亡标志物。 在中东呼吸综合征(MERS)病例中也发现了淋巴细胞减少症。 MERS-CoV可直接感染人原代T淋巴细胞,通过外源性和内源性凋亡途径诱导T细胞凋亡,但不能在T淋巴细胞内复制。 然而,尚不清楚 SARS-CoV-2 是否也可以感染 T 细胞,从而导致淋巴细胞减少。 一项研究表明,T 细胞在其细胞表面表达非常低的 hACE2 表达水平,与 SARS-CoV 相比,T 细胞系对 SARS-CoV-2 感染明显更敏感。 换句话说,这些结果告诉我们,T 淋巴细胞可能更容易感染 SARS-CoV-2。 因此,SARS-CoV-2 的 S 蛋白可能介导强大的感染性是合理的,即使在表达低 hACE2 的细胞上也是如此,这反过来可以解释为什么 SARS-CoV-2 的传播率如此之高。 通过基因组编辑的最新进展,现在可以通过 CRISPR/Cas9 技术成功修饰 T 细胞。 例如,参与(后)转录机制以增强 T 细胞细胞因子的产生、T 细胞抗原特异性的重新靶向或使 T 细胞对抑制性受体信号转导产生折射可以增强 T 细胞效应子功能。 因此,CRISPR/Cas9 介导的基因组编辑可能为诱导针对 COVID-19 的长期免疫提供新策略。自体 T 细胞免疫疗法已成为病毒感染或癌症等许多疾病的强大治疗选择。 其中包括自然产生的病毒/肿瘤特异性 T 细胞的过继分离和转移,以及经过基因改造的 T 淋巴细胞的转移。 据研究人员称,将使用改良的抗原反应性 T 细胞富集 (ARTE) 测定法从轻度感染患者中分离出耗尽的病毒反应性 CD8+ 记忆 T 细胞。 将收集耗尽的病毒反应性 CD8+ 记忆 T 细胞,并在实验室中通过 CRISPR Cas9 敲除程序性细胞死亡蛋白 1(PDCD1)基因和 ACE2 基因。 将选择淋巴细胞并离体扩增,然后输回患者体内。

研究概览

详细说明

这项研究将评估 PD-1 和 ACE2 基因敲除工程 T 细胞的安全性,作为经过基因改造的记忆 T 细胞,能够通过记住并杀死重新引入的病毒来提供针对 COVID-19 的长期免疫力。 还将收集血样用于研究目的。 这是一项对自体来源的 PD-1 和 ACE2 敲除 T 细胞进行体外敲除、扩增和选择的剂量递增研究。 患者被分配到 3 个治疗组中的 1 个,以确定最大耐受剂量。 在较低数量的周期被认为是耐受的之后,下一个较高数量的周期的臂将对下一个患者开放。 还收集和分析生物标志物和免疫学标志物。 据研究人员称,将使用改良的抗原反应性 T 细胞富集 (ARTE) 测定法从轻度感染患者中分离出耗尽的病毒反应性 CD8+ 记忆 T 细胞。 将收集耗尽的病毒反应性 CD8+ 记忆 T 细胞,并在实验室通过 CRISPR Cas9 敲除程序性细胞死亡蛋白 1(PDCD1) 基因和 ACE2 基因(PD-1 和 ACE2 敲除 T 细胞)。 将选择淋巴细胞并离体扩增,然后输回患者体内。 一个周期内将总共输注 2 x 10^7/kg PD-1 和 ACE2 敲除 T 细胞。 每个周期分为三次给药,第一次输注 20%,第二次输注 30%,第三次输注剩余的 50%。 患者将接受总共两个周期的治疗。

研究类型

介入性

注册 (预期的)

16

阶段

  • 阶段2
  • 阶段1

联系人和位置

本节提供了进行研究的人员的详细联系信息,以及有关进行该研究的地点的信息。

学习联系方式

参与标准

研究人员寻找符合特定描述的人,称为资格标准。这些标准的一些例子是一个人的一般健康状况或先前的治疗。

资格标准

适合学习的年龄

18年 至 70年 (成人、年长者)

接受健康志愿者

不

有资格学习的性别

全部

描述

纳入标准:

  • 最近从轻度 COVID-19 疾病(第一次、第二次和第三次感染)中康复的患者。
  • 主要器官功能正常。
  • 怀孕年龄的妇女应采取避孕措施。
  • 愿意并能够提供知情同意

排除标准

  • 血源性传染病,例如 乙型肝炎:
  • 因精神病或其他不适合主治医师治疗的心理疾病而被强制监护的历史。
  • 伴有其他免疫疾病,或长期使用免疫抑制剂或类固醇。
  • 不能期望合规。
  • 医师认为需要排除的其他情况

学习计划

本节提供研究计划的详细信息,包括研究的设计方式和研究的衡量标准。

研究是如何设计的?

设计细节

  • 主要用途:治疗
  • 分配:非随机化
  • 介入模型:并行分配
  • 屏蔽:无(打开标签)

武器和干预

参与者组/臂
干预/治疗
实验性的:A - 两个周期

采集外周血淋巴细胞,在实验室通过CRISPR Cas9敲除程序性细胞死亡蛋白1(PDCD1)和ACE2基因(PD-1/ACE2 Knockout T细胞)。 将选择淋巴细胞并离体扩增,然后输回患者体内。

一个周期内将总共输注 1 x 10^7/kg PD-1 和 ACE2 敲除 T 细胞。 每个周期分为三次给药,第一次输注 20%,第二次输注 30%,第三次输注剩余的 50%。 患者将接受总共两个周期的治疗。

收集自体淋巴细胞并在实验室中敲除 PDCD1 和 ACE2 基因。 选择细胞并离体扩增。 细胞被回输给患者进行治疗
实验性的:B- 两个周期

采集外周血淋巴细胞,在实验室通过CRISPR Cas9敲除程序性细胞死亡蛋白1(PDCD1)和ACE2基因(PD-1/ACE2 Knockout T细胞)。 将选择淋巴细胞并离体扩增,然后输回患者体内。

一个周期内将总共输注 1 x 10^7/kg PD-1 和 ACE2 敲除 T 细胞。 每个周期分为三次给药,第一次输注 20%,第二次输注 30%,第三次输注剩余的 50%。 患者将接受总共两个周期的治疗。

一个周期内将总共输注 2 x 10^7/kg PD-1 和 ACE2 敲除 T 细胞。 每个周期分为三次给药,第一次输注 20%,第二次输注 30%,第三次输注剩余的 50%。 患者将接受总共两个周期的治疗。

收集自体淋巴细胞并在实验室中敲除 PDCD1 和 ACE2 基因。 选择细胞并离体扩增。 细胞被回输给患者进行治疗
实验性的:C- 两个周期

采集外周血淋巴细胞,在实验室通过CRISPR Cas9敲除程序性细胞死亡蛋白1(PDCD1)和ACE2基因(PD-1/ACE2 Knockout T细胞)。 将选择淋巴细胞并离体扩增,然后输回患者体内。

一个周期内将总共输注 4 x 10^7/kg PD-1 和 ACE2 敲除 T 细胞。 每个周期分为三次给药,第一次输注 20%,第二次输注 30%,第三次输注剩余的 50%。 患者将接受总共两个周期的治疗。

收集自体淋巴细胞并在实验室中敲除 PDCD1 和 ACE2 基因。 选择细胞并离体扩增。 细胞被回输给患者进行治疗

研究衡量的是什么?

主要结果指标

结果测量
大体时间
使用不良事件通用术语标准 (CTCAE v4.0) 衡量 PD-1 敲除 T 细胞剂量的安全性和耐受性的具有不良事件和/或剂量限制毒性的参与者人数 (CTCAE v4.0)
大体时间:剂量递增 - 大约 5 个月
剂量递增 - 大约 5 个月

次要结果测量

结果测量
措施说明
大体时间
对再感染有总体反应的患者人数
大体时间:10个月
10个月
全因死亡率
大体时间:从第 0 天到第 180 天测量
从第一次编辑的 T 细胞输注之日到再次感染 COVID-19 或因任何原因死亡之日的时间。
从第 0 天到第 180 天测量
炎症因子上调的患者比例
大体时间:1个月和3个月
将在不同的时间点测量上调的炎症因子
1个月和3个月
IL-6、TNF、TLR3、CRP、ESR和I型干扰素的血清水平
大体时间:1个月和3个月
IL-6、TNF、TLR3、CRP、ESR和I型干扰素的血清水平将在不同的时间点测量
1个月和3个月
绝对淋巴细胞计数(CD4、CD8 和 CD25+FOXP3+ 调节性 T)
大体时间:1个月和3个月
将在不同时间点测量绝对淋巴细胞计数(CD4、CD8 和 CD25+FOXP3+ 调节性 T)
1个月和3个月
安全血液学
大体时间:从第 0 天到第 180 天测量
白细胞 (WBC) 差异细胞计数应在基线时进行,在 PD-1 基因敲除工程化 T 细胞输注阶段的每次就诊时进行,此后由研究人员酌情决定。 应使用个别机构指南和负责医生的最佳临床判断来遵循临床状态和实验室参数,这可能涉及更频繁的测试。
从第 0 天到第 180 天测量

合作者和调查者

在这里您可以找到参与这项研究的人员和组织。

调查人员

  • 首席研究员:Mahmoud R Elkazzaz, M.Sc of Biochemistry、Faculty of science Damietta university

研究记录日期

这些日期跟踪向 ClinicalTrials.gov 提交研究记录和摘要结果的进度。研究记录和报告的结果由国家医学图书馆 (NLM) 审查,以确保它们在发布到公共网站之前符合特定的质量控制标准。

研究主要日期

学习开始 (预期的)

2021年8月1日

初级完成 (预期的)

2022年11月1日

研究完成 (预期的)

2022年11月1日

研究注册日期

首次提交

2021年8月1日

首先提交符合 QC 标准的

2021年8月2日

首次发布 (实际的)

2021年8月4日

研究记录更新

最后更新发布 (实际的)

2021年8月16日

上次提交的符合 QC 标准的更新

2021年8月13日

最后验证

2021年8月1日

更多信息

与本研究相关的术语

药物和器械信息、研究文件

研究美国 FDA 监管的药品

不

研究美国 FDA 监管的设备产品

不

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