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COVID-19 환자의 장기 면역 유도를 위한 CRISPR/Cas9 변형 인간 T 세포(PD-1 및 ACE2 녹아웃 조작 T 세포)

2021년 8월 13일 업데이트: Mahmoud Ramadan mohamed Elkazzaz
T 세포 고갈은 COVID-19 환자의 장기 면역을 제한할 수 있습니다. T 세포는 이러한 적에 장기간 노출되면 바이러스 및 종양과 싸우는 능력을 잃을 수 있습니다. 새로운 데이터에 따르면 가벼운 COVID-19 증상을 경험하는 사람들은 소진된 기억 T 세포의 분자 징후를 보여 재감염에 대항하는 능력이 감소할 수 있습니다. 반대로 심각한 COVID-19 증상이 나타나는 사람들은 재감염으로부터 더 잘 보호될 수 있습니다. 최근 연구에 따르면 COVID-19 사례의 82.1%에서 낮은 순환 림프구 수가 나타났습니다. 만성 바이러스의 경우 지속적인 PD-1 발현이 T 세포 고갈을 일으키고 감염 세포를 죽이는 능력을 손상시키는 것으로 보고되었다. COVID-19 환자의 적응증은 CD4+ 및 CD8+ T 세포의 비율이 비슷한 림프구 비율 감소를 특징으로 합니다. 후기 활성 마커 CD25 및 소진 마커 PD-1의 높은 발현율을 나타내는 T-세포, 대부분 CD8+ T-세포의 양이 증가합니다. 따라서 SARS-CoV-2는 B 및 T 세포를 포함한 후천 면역 체계를 수정하여 변화를 일으킬 수 있습니다. 실험에 따르면 PD-1의 발현은 T세포의 안정성을 유지하는 원주방향 내성의 유도 및 유지에 중요한 인자로서 코로나19 환자의 다른 세포에서 더 높은 비율을 갖는 것으로 밝혀졌다. Diao 등이 SARS-CoV-2 환자를 대상으로 수행한 실험에서 T 세포 표면의 PD-1 발현이 크게 증가한 것으로 관찰되었습니다. 또한 SARS-CoV-2로 유발된 질병 동안 T 세포에서 PD-1 및 Tim-3의 추가 발현이 질병의 중증도와 직접적으로 관련이 있는 것으로 나타났습니다. 다른 바이러스 감염에서도 증가한 요인. T 세포 고갈" 현상은 예를 들어 T 세포가 바이러스나 종양에 더 이상 노출되지 않는 경우 비교적 쉽게 역전될 수 있습니다. 그러나 불행하게도 만성 감염에서 회복된 소진된 T 세포(REC-TEX)는 기억 T 세포(TMEM)의 일부 기능과 특징을 되찾았지만, 유전자 발현 제어가 소진된 이력에 "고정"되어 있음을 나타내는 후성유전적 흉터를 유지합니다. 일단 T 세포가 소진되면 그들은 근본적으로 소진되도록 '연결'된 상태로 남아 있기 때문에 T 세포가 다시 효과적인 바이러스 및 암 투사가 되도록 하는 것이 어려울 수 있습니다. Pennsylvania 대학의 Perelman School of Medicine의 Penn Institute of Immunology의 번역 치료학 및 소장. 또한 COVID-19는 T 림프구 세포를 감염시켜 세포사멸 및 세포사멸 마커를 유도할 수 있습니다. 중동호흡기증후군(MERS) 사례에서도 림프구 감소증이 발견됐다. MERS-CoV는 인간의 1차 T 림프구를 직접 감염시키고 외인성 및 내인성 세포사멸 경로를 통해 T 세포 세포사멸을 유도할 수 있지만 T 림프구에서는 복제할 수 없습니다. 그러나 SARS-CoV-2가 T 세포를 감염시켜 림프구 감소증을 일으킬 수 있는지 여부는 불확실합니다. 한 연구에 따르면 T 세포는 세포 표면에서 매우 낮은 hACE2 발현 수준을 나타내며 T 세포주는 SARS-CoV와 비교할 때 SARS-CoV-2 감염에 훨씬 더 민감합니다. 즉, 이러한 결과는 T 림프구가 SARS-CoV-2 감염에 더 관대할 수 있음을 알려줍니다. 따라서 SARS-CoV-2의 S 단백질은 낮은 hACE2를 발현하는 세포에서도 강력한 감염성을 매개할 수 있으며, 이는 SARS-CoV-2의 전파율이 왜 그렇게 높은지 설명할 수 있습니다. 게놈 편집의 최근 발전을 통해 T 세포는 이제 CRISPR/Cas9 기술을 통해 성공적으로 수정할 수 있습니다. 예를 들어, T 세포 사이토카인 생산을 강화하기 위한 (후)전사 메커니즘, T 세포 항원 특이성의 재표적화 또는 억제 수용체 신호에 대해 T 세포를 굴절시키는 것은 T 세포 이펙터 기능을 증가시킬 수 있습니다. 따라서 CRISPR/Cas9 매개 게놈 편집은 COVID-19에 대한 장기 면역을 유도하기 위한 새로운 전략을 제공할 수 있습니다. 자가 T 세포를 사용한 면역 요법은 바이러스 감염이나 암과 같은 많은 질병에 대한 강력한 치료 옵션이 되었습니다. 여기에는 자연적으로 발생하는 바이러스/종양 특이 T 세포의 양자 분리 및 전달과 유전적으로 변형된 T 림프구의 전달이 포함됩니다. 연구원에 따르면, 소진된 바이러스 반응성 CD8+ 기억 T 세포는 수정된 항원 반응성 T 세포 강화(ARTE) 분석을 사용하여 경미한 감염 환자로부터 분리될 것입니다. 소진된 바이러스 반응성 CD8+ 기억 T 세포를 채취하여 실험실에서 CRISPR Cas9에 의해 PDCD1(Programmed cell death protein 1) 유전자와 ACE2 유전자를 모두 제거합니다. 림프구는 선택되고 체외에서 확장되어 환자에게 다시 주입됩니다.

연구 개요

상태

아직 모집하지 않음

상세 설명

이 연구는 PD-1 및 ACE2 녹아웃 조작 T 세포가 바이러스가 재유입되면 기억하고 죽임으로써 COVID-19에 대한 장기 면역을 제공할 수 있는 유전자 변형 기억 T 세포로서 안전성을 평가할 것입니다. 혈액 샘플도 연구 목적으로 수집됩니다. 이는 자가 기원의 생체외 녹아웃, 확장 및 선택된 PD-1 및 ACE2 녹아웃-T 세포의 용량 증량 연구입니다. 환자는 최대 허용 용량을 결정하기 위해 3개의 치료 그룹 중 하나에 할당됩니다. 더 적은 수의 주기가 내성이 있는 것으로 간주된 후, 다음으로 더 높은 수의 주기가 다음 환자에게 개방됩니다. 바이오마커 및 면역학적 마커도 수집 및 분석됩니다. 연구원에 따르면, 소진된 바이러스 반응성 CD8+ 기억 T 세포는 수정된 항원 반응성 T 세포 강화(ARTE) 분석을 사용하여 경미한 감염 환자로부터 분리될 것입니다. 소진된 바이러스 반응성 CD8+ 기억 T 세포를 채취하여 실험실에서 CRISPR Cas9에 의해 PDCD1(Programmed cell death protein 1) 유전자와 ACE2 유전자를 녹아웃시킵니다(PD-1 및 ACE2 녹아웃 T 세포). 림프구는 선택되고 체외에서 확장되어 환자에게 다시 주입됩니다. 총 2 x 10^7/kg PD-1 및 ACE2 녹아웃 T 세포가 한 주기에 주입됩니다. 각 주기는 3회 투여로 나뉘며, 첫 번째 투여 시 20%, 두 번째 투여 시 30%, 세 번째 투여 시 나머지 50%가 주입됩니다. 환자는 총 2주기의 치료를 받게 됩니다.

연구 유형

중재적

등록 (예상)

16

단계

  • 2 단계
  • 1단계

연락처 및 위치

이 섹션에서는 연구를 수행하는 사람들의 연락처 정보와 이 연구가 수행되는 장소에 대한 정보를 제공합니다.

연구 연락처

참여기준

연구원은 적격성 기준이라는 특정 설명에 맞는 사람을 찾습니다. 이러한 기준의 몇 가지 예는 개인의 일반적인 건강 상태 또는 이전 치료입니다.

자격 기준

공부할 수 있는 나이

18년 (성인, 고령자)

건강한 자원 봉사자를 받아들입니다

아니

연구 대상 성별

모두

설명

포함 기준:

  • 경미한 COVID-19 질병(1차, 2차 및 3차 감염)에서 최근에 회복된 환자.
  • 주요 장기는 정상적으로 기능합니다.
  • 임신한 여성은 피임을 해야 합니다..
  • 정보에 입각한 동의를 제공할 의지와 능력

제외 기준

  • 혈액 매개 전염병, 예. B형 간염:
  • 치료 의사가 인정하는 정신병 또는 치료에 부적합한 기타 심리적 질병으로 인한 강제 양육 이력.
  • 다른 면역 질환이 있거나 면역억제제나 스테로이드를 만성적으로 사용하는 경우.
  • 규정 준수를 기대할 수 없습니다.
  • 의사가 판단하는 제외가 필요한 기타 조건

공부 계획

이 섹션에서는 연구 설계 방법과 연구가 측정하는 내용을 포함하여 연구 계획에 대한 세부 정보를 제공합니다.

연구는 어떻게 설계됩니까?

디자인 세부사항

  • 주 목적: 치료
  • 할당: 무작위화되지 않음
  • 중재 모델: 병렬 할당
  • 마스킹: 없음(오픈 라벨)

무기와 개입

참가자 그룹 / 팔
개입 / 치료
실험적: A - 2주기

말초 혈액 림프구를 채취하여 실험실에서 CRISPR Cas9에 의해 PDCD1(Programmed cell death protein 1)과 ACE2 유전자를 녹아웃시킵니다(PD-1/ACE2 녹아웃 T 세포). 림프구는 선택되고 체외에서 확장되어 환자에게 다시 주입됩니다.

총 1 x 10^7/kg PD-1 및 ACE2 녹아웃 T 세포가 한 주기에 주입됩니다. 각 주기는 3회 투여로 나뉘며, 첫 번째 투여 시 20%, 두 번째 투여 시 30%, 세 번째 투여 시 나머지 50%가 주입됩니다. 환자는 총 2주기의 치료를 받게 됩니다.

자가 림프구를 수집하고 실험실에서 PDCD1 및 ACE2 유전자를 모두 제거합니다. 세포는 생체 외에서 선택되고 확장됩니다. 세포는 치료를 위해 환자에게 다시 주입됩니다.
실험적: B- 2주기

말초 혈액 림프구를 채취하여 실험실에서 CRISPR Cas9에 의해 PDCD1(Programmed cell death protein 1)과 ACE2 유전자를 녹아웃시킵니다(PD-1/ACE2 녹아웃 T 세포). 림프구는 선택되고 체외에서 확장되어 환자에게 다시 주입됩니다.

총 1 x 10^7/kg PD-1 및 ACE2 녹아웃 T 세포가 한 주기에 주입됩니다. 각 주기는 3회 투여로 나뉘며, 첫 번째 투여 시 20%, 두 번째 투여 시 30%, 세 번째 투여 시 나머지 50%가 주입됩니다. 환자는 총 2주기의 치료를 받게 됩니다.

총 2 x 10^7/kg PD-1 및 ACE2 녹아웃 T 세포가 한 주기에 주입됩니다. 각 주기는 3회 투여로 나뉘며, 첫 번째 투여 시 20%, 두 번째 투여 시 30%, 세 번째 투여 시 나머지 50%가 주입됩니다. 환자는 총 2주기의 치료를 받게 됩니다.

자가 림프구를 수집하고 실험실에서 PDCD1 및 ACE2 유전자를 모두 제거합니다. 세포는 생체 외에서 선택되고 확장됩니다. 세포는 치료를 위해 환자에게 다시 주입됩니다.
실험적: C- 2주기

말초 혈액 림프구를 채취하여 실험실에서 CRISPR Cas9에 의해 PDCD1(Programmed cell death protein 1)과 ACE2 유전자를 녹아웃시킵니다(PD-1/ACE2 녹아웃 T 세포). 림프구는 선택되고 체외에서 확장되어 환자에게 다시 주입됩니다.

총 4 x 10^7/kg PD-1 및 ACE2 녹아웃 T 세포가 한 주기에 주입됩니다. 각 주기는 3회 투여로 나뉘며, 첫 번째 투여 시 20%, 두 번째 투여 시 30%, 세 번째 투여 시 나머지 50%가 주입됩니다. 환자는 총 2주기의 치료를 받게 됩니다.

자가 림프구를 수집하고 실험실에서 PDCD1 및 ACE2 유전자를 모두 제거합니다. 세포는 생체 외에서 선택되고 확장됩니다. 세포는 치료를 위해 환자에게 다시 주입됩니다.

연구는 무엇을 측정합니까?

주요 결과 측정

결과 측정
기간
환자의 부작용에 대한 일반 용어 기준(CTCAE v4.0)을 사용하여 PD-1 녹아웃 T 세포 용량의 안전성 및 내약성의 척도로서 부작용 및/또는 용량 제한 독성이 있는 참가자 수
기간: 용량 증량 - 약 5개월
용량 증량 - 약 5개월

2차 결과 측정

결과 측정
측정값 설명
기간
재감염에 대한 전반적인 반응을 보인 환자의 수
기간: 10개월
10개월
모든 원인 사망률
기간: 0일부터 180일까지 측정
최초 편집된 T 세포 주입 날짜부터 COVID-19에 재감염된 날짜 또는 어떤 이유로든 사망한 날짜까지의 시간.
0일부터 180일까지 측정
염증 인자가 상향 조절된 환자의 비율
기간: 1개월 3개월
상향 조절된 염증 인자는 다른 시점에서 측정됩니다.
1개월 3개월
IL-6,TNF,TLR3,CRP, ESR 및 유형 I 인터페론의 혈청 수준
기간: 1개월 3개월
IL-6,TNF,TLR3,CRP, ESR 및 유형 I 인터페론의 혈청 수준은 다른 시점에서 측정됩니다.
1개월 3개월
절대 림프구 수(CD4,CD8 및 CD25+FOXP3+ 조절 T)
기간: 1개월 3개월
절대 림프구 수(CD4,CD8 및 CD25+FOXP3+ 조절 T)는 다른 시점에서 측정됩니다.
1개월 3개월
안전-혈액학
기간: 0일부터 180일까지 측정
백혈구(WBC) 차등 세포 수는 기준선에서 PD-1 녹아웃 조작 T 세포 주입 단계 동안 각 방문 시 그리고 그 이후에는 조사자의 재량에 따라 수행되어야 합니다. 임상 상태 및 실험실 매개변수는 개별 기관 지침 및 담당 의사의 최선의 임상적 판단을 사용하여 따라야 하며, 이는 더 자주 테스트를 포함할 수 있습니다.
0일부터 180일까지 측정

공동 작업자 및 조사자

여기에서 이 연구와 관련된 사람과 조직을 찾을 수 있습니다.

수사관

  • 수석 연구원: Mahmoud R Elkazzaz, M.Sc of Biochemistry, Faculty of science Damietta university

연구 기록 날짜

이 날짜는 ClinicalTrials.gov에 대한 연구 기록 및 요약 결과 제출의 진행 상황을 추적합니다. 연구 기록 및 보고된 결과는 공개 웹사이트에 게시되기 전에 특정 품질 관리 기준을 충족하는지 확인하기 위해 국립 의학 도서관(NLM)에서 검토합니다.

연구 주요 날짜

연구 시작 (예상)

2021년 8월 1일

기본 완료 (예상)

2022년 11월 1일

연구 완료 (예상)

2022년 11월 1일

연구 등록 날짜

최초 제출

2021년 8월 1일

QC 기준을 충족하는 최초 제출

2021년 8월 2일

처음 게시됨 (실제)

2021년 8월 4일

연구 기록 업데이트

마지막 업데이트 게시됨 (실제)

2021년 8월 16일

QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출

2021년 8월 13일

마지막으로 확인됨

2021년 8월 1일

추가 정보

이 연구와 관련된 용어

약물 및 장치 정보, 연구 문서

미국 FDA 규제 의약품 연구

아니

미국 FDA 규제 기기 제품 연구

아니

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