- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT04990557
CRISPR/Cas9-modifizierte menschliche T-Zellen (PD-1- und ACE2-Knockout-T-Zellen) zur Induktion einer langfristigen Immunität bei COVID-19-Patienten
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Studientyp
Einschreibung (Voraussichtlich)
Phase
- Phase 2
- Phase 1
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Mahmoud R Elkazzaz, M.Sc of Biochemistry
- Telefonnummer: +201090302015
- E-Mail: mahmoudramadan2051@yahoo.com
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Patienten, die sich kürzlich von einer leichten COVID-19-Erkrankung erholt haben (Erst-, Zweit- und Drittinfektion).
- Die wichtigsten Organe funktionieren normal.
- Frauen im schwangeren Alter sollten empfängnisverhütend sein.
- Bereit und in der Lage, eine Einverständniserklärung abzugeben
Ausschlusskriterien
- Durch Blut übertragbare Infektionskrankheiten, z.B. Hepatitis B.:
- Obligatorische Untersuchungshaft in der Vergangenheit aufgrund einer Psychose oder einer anderen psychischen Erkrankung, die für eine Behandlung nach Ansicht des behandelnden Arztes ungeeignet ist.
- Bei anderen Immunerkrankungen oder bei chronischer Einnahme von Immunsuppressiva oder Steroiden.
- Eine Einhaltung kann nicht erwartet werden.
- Andere Erkrankungen, die nach Einschätzung des Arztes einen Ausschluss erfordern
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: Nicht randomisiert
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
|---|---|
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Experimental: A – Zwei Zyklen
Periphere Blutlymphozyten werden gesammelt und das programmierte Zelltodprotein 1 (PDCD1) und das ACE2-Gen werden durch CRISPR Cas9 im Labor ausgeschaltet (PD-1/ACE2-Knockout-T-Zellen). Die Lymphozyten werden ex vivo ausgewählt und vermehrt und den Patienten wieder infundiert. Insgesamt werden 1 x 10^7/kg PD-1- und ACE2-Knockout-T-Zellen in einem Zyklus infundiert. Jeder Zyklus ist in drei Verabreichungen unterteilt, wobei 20 % bei der ersten Verabreichung, 30 % bei der zweiten und die restlichen 50 % bei der dritten infundiert werden. Die Patienten erhalten insgesamt zwei Behandlungszyklen. |
Autologe Lymphozyten werden gesammelt und im Labor werden sowohl das PDCD1- als auch das ACE2-Gen ausgeschaltet.
Die Zellen werden ex vivo ausgewählt und expandiert.
Die Zellen werden den Patienten zur Behandlung zurück infundiert
|
|
Experimental: B – Zwei Zyklen
Periphere Blutlymphozyten werden gesammelt und das programmierte Zelltodprotein 1 (PDCD1) und das ACE2-Gen werden durch CRISPR Cas9 im Labor ausgeschaltet (PD-1/ACE2-Knockout-T-Zellen). Die Lymphozyten werden ex vivo ausgewählt und vermehrt und den Patienten wieder infundiert. In einem Zyklus werden insgesamt 1 x 10^7/kg PD-1- und ACE2-Knockout-T-Zellen infundiert. Jeder Zyklus ist in drei Verabreichungen unterteilt, wobei 20 % bei der ersten Verabreichung, 30 % bei der zweiten und die restlichen 50 % bei der dritten infundiert werden. Die Patienten erhalten insgesamt zwei Behandlungszyklen. In einem Zyklus werden insgesamt 2 x 10^7/kg PD-1- und ACE2-Knockout-T-Zellen infundiert. Jeder Zyklus ist in drei Verabreichungen unterteilt, wobei 20 % bei der ersten Verabreichung, 30 % bei der zweiten und die restlichen 50 % bei der dritten infundiert werden. Die Patienten erhalten insgesamt zwei Behandlungszyklen. |
Autologe Lymphozyten werden gesammelt und im Labor werden sowohl das PDCD1- als auch das ACE2-Gen ausgeschaltet.
Die Zellen werden ex vivo ausgewählt und expandiert.
Die Zellen werden den Patienten zur Behandlung zurück infundiert
|
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Experimental: C- Zwei Zyklen
Periphere Blutlymphozyten werden gesammelt und das programmierte Zelltodprotein 1 (PDCD1) und das ACE2-Gen werden durch CRISPR Cas9 im Labor ausgeschaltet (PD-1/ACE2-Knockout-T-Zellen). Die Lymphozyten werden ex vivo ausgewählt und vermehrt und den Patienten wieder infundiert. In einem Zyklus werden insgesamt 4 x 10^7/kg PD-1- und ACE2-Knockout-T-Zellen infundiert. Jeder Zyklus ist in drei Verabreichungen unterteilt, wobei 20 % bei der ersten Verabreichung, 30 % bei der zweiten und die restlichen 50 % bei der dritten infundiert werden. Die Patienten erhalten insgesamt zwei Behandlungszyklen. |
Autologe Lymphozyten werden gesammelt und im Labor werden sowohl das PDCD1- als auch das ACE2-Gen ausgeschaltet.
Die Zellen werden ex vivo ausgewählt und expandiert.
Die Zellen werden den Patienten zur Behandlung zurück infundiert
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Zeitfenster |
|---|---|
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Anzahl der Teilnehmer mit unerwünschten Ereignissen und/oder dosislimitierenden Toxizitäten als Maß für die Sicherheit und Verträglichkeit der Dosis von PD-1-Knockout-T-Zellen unter Verwendung gemeinsamer Terminologiekriterien für unerwünschte Ereignisse (CTCAE v4.0) bei Patienten
Zeitfenster: Dosissteigerung – ca. 5 Monate
|
Dosissteigerung – ca. 5 Monate
|
Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Anzahl der Patienten mit Gesamtreaktion auf die Reinfektion
Zeitfenster: 10 Monate
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10 Monate
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Alle verursachen Sterblichkeitsrate
Zeitfenster: Gemessen von Tag 0 bis Tag 180
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Die Zeit vom Datum der ersten bearbeiteten T-Zell-Infusion bis zum Datum der erneuten Infektion mit COVID-19 oder dem Tod aus irgendeinem Grund.
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Gemessen von Tag 0 bis Tag 180
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Anteil der Patienten mit hochregulierten Entzündungsfaktoren
Zeitfenster: 1 Monat und 3 Monate
|
Hochregulierte Entzündungsfaktoren werden zu unterschiedlichen Zeitpunkten gemessen
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1 Monat und 3 Monate
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Serumspiegel von IL-6, TNF, TLR3, CRP, ESR und Typ-I-Interferon
Zeitfenster: 1 Monat und 3 Monate
|
Die Serumspiegel von IL-6, TNF, TLR3, CRP, ESR und Typ-I-Interferon werden zu unterschiedlichen Zeitpunkten gemessen
|
1 Monat und 3 Monate
|
|
Absolute Lymphozytenzahl (CD4, CD8 und CD25+FOXP3+ Regulatory T)
Zeitfenster: 1 Monat und 3 Monate
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Die absoluten Lymphozytenzahlen (CD4, CD8 und CD25+FOXP3+ Regulatory T) werden zu unterschiedlichen Zeitpunkten gemessen
|
1 Monat und 3 Monate
|
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Sicherheitshämatologie
Zeitfenster: Gemessen von Tag 0 bis Tag 180
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Weiße Blutkörperchen (WBC) Differenzielle Zellzahlen sollten zu Studienbeginn, bei jedem Besuch während der Infusionsphase von PD-1 Knockout Engineered T Cells und danach nach Ermessen des Prüfarztes durchgeführt werden.
Der klinische Status und die Laborparameter müssen anhand individueller Richtlinien der Einrichtung und nach bestem klinischen Urteil des verantwortlichen Arztes befolgt werden, was häufigere Tests erfordern kann.
|
Gemessen von Tag 0 bis Tag 180
|
Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Ermittler
- Hauptermittler: Mahmoud R Elkazzaz, M.Sc of Biochemistry, Faculty of science Damietta university
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Voraussichtlich)
Primärer Abschluss (Voraussichtlich)
Studienabschluss (Voraussichtlich)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Mehr Informationen
Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie
Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
Andere Studien-ID-Nummern
- Novel Treatment for Covid-19
Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
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