- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT02866721
Badanie bezpieczeństwa i tolerancji infuzji allogenicznych mezenchymalnych komórek macierzystych u osób dorosłych z mukowiscydozą (CEASE-CF)
Jednoośrodkowe, otwarte badanie fazy I z pojedynczą dawką i zwiększaniem dawki oceniające bezpieczeństwo i tolerancję infuzji allogenicznych mezenchymalnych komórek macierzystych u dorosłych chorych na mukowiscydozę-CEASE CF
To badanie ma na celu sprawdzenie, czy podawanie komórek macierzystych dorosłym pacjentom z mukowiscydozą jest bezpieczne. Rodzaje komórek macierzystych, które badamy, nazywane są allogenicznymi ludzkimi mezenchymalnymi komórkami macierzystymi lub MSC. MSC to komórki w organizmie, które mogą rosnąć w różne typy komórek i reagować na różne sytuacje środowiskowe. Allogeniczny oznacza, że komórki pochodzą od innej osoby (dawcy).
To badanie dotyczy tylko tego, czy podawanie komórek macierzystych dorosłym chorym na mukowiscydozę jest bezpieczne i jak infuzja jest tolerowana. W przyszłości można przeprowadzić inne badania, aby sprawdzić, czy komórki macierzyste mogą być nowym sposobem leczenia mukowiscydozy.
Komórki macierzyste, podobnie jak inne produkty medyczne przeznaczone do leczenia lub zapobiegania chorobom, generalnie wymagają zatwierdzenia przez Amerykańską Agencję ds. Żywności i Leków (FDA), zanim zostaną wprowadzone na rynek. FDA nie zatwierdziła żadnych produktów opartych na komórkach macierzystych do zwykłej opieki medycznej, innych niż niektóre specyficzne krwiotwórcze komórki macierzyste do określonych wskazań.
Przegląd badań
Status
Warunki
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Faza 1
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
Ohio
-
Cleveland, Ohio, Stany Zjednoczone, 44106
- University Hospitals Cleveland Medical Center
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria włączenia podmiotu CF:
- Mężczyzna lub kobieta w wieku ≥18 lat
Potwierdzone rozpoznanie mukowiscydozy potwierdzone 1 lub więcej cechami klinicznymi zgodnymi z fenotypem mukowiscydozy i 1 lub więcej z następujących kryteriów:
- Stężenie chlorków w pocie równe lub większe niż 60 mEq/l w ilościowym teście jonoforezy pilokarpiny (QPIT)
- 2 dobrze scharakteryzowane, powodujące chorobę mutacje w genie CFTR
- Klinicznie stabilny bez istotnych zmian stanu zdrowia w ciągu 2 tygodni przed badaniem przesiewowym.
- FEV1 ≥ 40% wartości należnej dla wieku na podstawie globalnych równań inicjatywy czynności płuc podczas wizyty przesiewowej
- Waga ≥ 40 kg podczas wizyty przesiewowej
- Zdolny do wykonywania powtarzalnych, konsekwentnych wysiłków w badaniach czynnościowych płuc
- Pisemna świadoma zgoda uzyskana od podmiotu.
Kryteria wykluczenia pacjenta z mukowiscydozy:
- Stosowanie środka badawczego w okresie 4 tygodni poprzedzających Wizytę 1 (Dzień -42 do -10)
- Przewlekłe codzienne (>10 mg) lub co drugi dzień (>20 mg co drugi dzień) stosowanie ogólnoustrojowych kortykosteroidów w ciągu 4 tygodni poprzedzających Wizytę 1 (dzień -42 do -10) lub rozpoczęcie jakiejkolwiek dawki ogólnoustrojowych kortykosteroidów w ciągu 72 godzin przed do Wizyty 2 (Dzień 1).
- Stosowanie hydroksychlorochiny lub leków immunosupresyjnych.
- Rozpoczęcie podawania nowego antybiotyku (doustnie, dożylnie i/lub wziewnie), który nie jest częścią schematu leczenia podtrzymującego pacjenta w celu leczenia ostrych objawów ze strony układu oddechowego w ciągu 2 tygodni przed badaniem przesiewowym podczas wizyty 2 (dzień 1)
- Rozpoczęcie jakiejkolwiek nowej terapii przewlekłej (np. Pulmozyme®, hipertoniczny roztwór soli, Kalydeco®, Orkambi®, wysokie dawki ibuprofenu azytromycyny, TOBI®, Cayston®, kolistyina w nebulizacji, leki rozszerzające oskrzela, wziewne kortykosteroidy itp.) w ciągu 4 tygodni przed badaniem przesiewowym
- Aktywne leczenie prątków niegruźliczych
- Historia hodowli plwociny pozytywnej dla organizmu złożonego Burkholderia cepacia w ciągu ostatnich 12 miesięcy.
- Obecny palacz tytoniu
- Nasycenie tlenem < 92% w powietrzu pokojowym podczas wizyty 1 (dzień -42 do -10)
- Historia nadciśnienia płucnego
- SGOT (ALT) lub SGPT (AST) > 2,5-krotność górnej granicy normy w badaniu przesiewowym, udokumentowana marskość żółciowa lub nadciśnienie wrotne
- Stężenie bilirubiny całkowitej > 1,2 mg/dl podczas badania przesiewowego
- Kreatynina > 1,8 mg/dl w badaniu przesiewowym
- Ciąża, karmienie piersią lub brak chęci stosowania antykoncepcji między Wizytą 2 (Dzień 1) a Rozmową telefoniczną 3 (Dzień 56) (dopuszczalne formy antykoncepcji: abstynencja, antykoncepcja hormonalna, wkładka wewnątrzmaciczna lub metoda barierowa plus środek plemnikobójczy), chyba że wysterylizowane chirurgicznie lub po menopauzie
- Hematologia przesiewowa z liczbą krwinek białych < 4,5 x 109 komórek/l, hematokrytem < 30% i liczbą płytek krwi < 150 x 109 płytek krwi/l
- Historia raka inwazyjnego wymagającego leczenia systemowego
- Historia transplantacji narządów
- Obecnie wpisany do przeszczepu płuc lub potencjalnie wpisany do przeszczepu płuc w ciągu kolejnych 12 miesięcy kalendarzowych od badania przesiewowego
- Badany nie może ukończyć badania zgodnie z ustaleniami Badacza
Kryteria włączenia dla zdrowych dawców-wolontariuszy (UWAGA: rekrutacja zdrowych ochotników jest zakończona):
- Wiek mężczyzny/kobiety ≥ 18 lat do ≤ 40 lat
- Potrafi zrozumieć i podpisać formularz zgody (prawnie upoważniony przedstawiciel nie będzie dozwolony)
Kryteria włączenia dla dawców mukowiscydozy:
1. Pacjent z mukowiscydozą włączony do badania głównego i wyraził zgodę na tę opcjonalną procedurę
Kryteria wykluczenia zarówno dla zdrowych dawców-wolontariuszy, jak i dawców mukowiscydozy:
- Gorączka lub aktualna choroba w dniu pobrania komórek
- Dowód choroby zakaźnej
- Każda znacząca zmiana stanu zdrowia w ciągu 2 tygodni przed pobraniem komórek, którą PI/podbadacz uzna za istotną dla wykluczenia udziału
- Podmiot zgłosił historię przeszczepu narządu
- Pacjent zgłosił historię HIV, wirusowego zapalenia wątroby typu B lub C lub kiły
- Tylko dla dawców HV, zgłoszona przez pacjenta znana historia zdiagnozowania mukowiscydozy (CF) lub bycia nosicielem mukowiscydozy (jedna kopia mutacji genu mukowiscydozy)
- Pozytywny wynik przesiewowego badania krwi w kierunku jakiejkolwiek choroby zakaźnej.
- Tylko dla dawców HV, pozytywny wynik testu na CMV lub mutację genu CF.
- Ciąża, planowanie ciąży lub karmienie piersią podczas badania przesiewowego
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Nie dotyczy
- Model interwencyjny: Zadanie dla jednej grupy
- Maskowanie: Brak (otwarta etykieta)
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Ludzkie allogeniczne mezenchymalne komórki macierzyste
Jednorazowa infuzja dożylna (IV) maksymalnie 5 x 10^6 allogenicznych ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych na kilogram masy ciała (hMSC/kg).
Zostanie zastosowana eskalacja dawki przy użyciu schematu „3+3”.
Trzy dawki to 1 x 10^6, 3 x 10^6 i 5 x 10^6 hMSCs/kg.
Nie ma grupy placebo.
Wszyscy uczestnicy badania otrzymają komórki macierzyste.
|
Pojedyncza dawka, jednorazowy wlew (dożylny) jednej z następujących dawek ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC): 1 x 10^6, 3 x 10^6 lub 5 x 10^6 ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych na kilogram masy ciała (hMSC/kg) podczas wizyty 2. Wykorzystany zostanie tradycyjny schemat 3+3. Allogeniczne mezenchymalne komórki macierzyste (MSC) będą pochodzić z aspiratów szpiku kostnego od zdrowego dawcy, którego surowica ma ujemny wynik testu na obecność przeciwciał przeciwko wirusowi cytomegalii (CMV). Zdrowi dawcy zostaną poddani badaniom pod kątem chorób zakaźnych i przesiewowym pod kątem 41 typowych mutacji regulatora przewodnictwa przezbłonowego mukowiscydozy (CFTR). Ponadto MSC zostaną poddane walidacji pod kątem skuteczności i siły działania in vitro i in vivo przy użyciu mysiego modelu przedklinicznego in vivo zakażenia płuc i stanu zapalnego mukowiscydozy.
Inne nazwy:
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Liczba uczestników z toksycznością ograniczającą dawkę (DLT) wywołaną wystąpieniem w ciągu pierwszych 24 godzin po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC) stopnia ≥3. Toksyczność alergiczna związana z infuzją
Ramy czasowe: 24 godziny po infuzji
|
W tym badaniu toksyczność ograniczająca dawkę obejmowała pojawienie się alergicznych zdarzeń niepożądanych związanych z infuzją, jak również toksyczność związaną ze schematem leczenia w ciągu pierwszych 24 godzin po infuzji hMSC stopnia ≥ 3 zgodnie z punktacją według wspólnych kryteriów terminologicznych National Cancer Institute (NCI) dla zdarzeń niepożądanych (CTCAE) wersja 4.0.
Jest to liczba uczestników, u których podczas badania wystąpiła toksyczność ograniczająca dawkę.
|
24 godziny po infuzji
|
|
Liczba poważnych zdarzeń niepożądanych i liczba niebędących poważnymi zdarzeniami niepożądanymi
Ramy czasowe: 1 rok
|
Uczestników obserwowano przez 12 miesięcy po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych.
Uwzględniono wszystkie zdarzenia od daty wlewu do końca obserwacji.
To pokazuje całkowitą liczbę zdarzeń niepożądanych lub poważnych zdarzeń niepożądanych występujących w każdej kohorcie dawkowania.
|
1 rok
|
|
Liczba zaostrzeń płucnych wymagających dożylnych antybiotyków
Ramy czasowe: 1 rok
|
Uczestników obserwowano przez 12 miesięcy po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych.
Uwzględniono wszystkie zdarzenia występujące od daty wlewu do końca obserwacji.
Pokazuje to liczbę zaostrzeń płucnych wymagających dożylnego podania antybiotyków w każdej kohorcie dawkowania.
|
1 rok
|
|
Wymuszona objętość wydechowa w pierwszej sekundzie (FEV1) % przewidywana na początku badania i 30 minut, 4 godziny, 24 godziny, 7 dni, 14 dni, 28 dni, 3 miesiące, 6 miesięcy po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych.
Ramy czasowe: Wartość wyjściowa i 30 minut, 4 godziny, 24 godziny, 7 dni, 14 dni, 28 dni, 3 miesiące, 6 miesięcy po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Czynność płuc obserwowano przez 6 miesięcy po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych.
To pokazuje średnią wymuszoną objętość wydechową w pierwszej sekundzie (FEV1) procentową przewidywaną dla każdej kohorty w trakcie badania.
|
Wartość wyjściowa i 30 minut, 4 godziny, 24 godziny, 7 dni, 14 dni, 28 dni, 3 miesiące, 6 miesięcy po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Markery stanu zapalnego w surowicy — pomiary kalportektyny na początku badania, w dniu 7 i 28
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego w surowicy, w tym kalprotektynę, zbierano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazano wartości średnie z odchyleniem standardowym.
Dolna granica wykrywalności kalportektyny wynosiła 88,3 pikogramów na mililitr.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego w surowicy — pomiary czynnika stymulującego kolonie granulocytów i makrofagów (GM-CSF) na początku badania, w dniu 7. i dniu 28.
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego w surowicy, w tym czynnik stymulujący tworzenie kolonii granulocytów i makrofagów (GM-CSF), zbierano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazano wartości średnie z odchyleniem standardowym.
Dolna granica wykrywania GM-CSF wynosiła 2,6 pikogramów na mililitr.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego w surowicy — pomiary interleukiny-1 (IL-1) na początku badania, dnia 7 i dnia 28
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego w surowicy, w tym interleukinę-1 (IL-1), zbierano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazano wartości średnie z odchyleniem standardowym.
Dolna granica wykrywania IL-1 wynosiła 13,1 pikogramów na mililitr.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego w surowicy — pomiary interleukiny-17 (IL-17) na początku badania, dnia 7 i dnia 28
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego w surowicy, w tym interleukinę -17 (IL-17), zebrano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazano wartości średnie z odchyleniem standardowym.
Dolna granica wykrywania IL-17 wynosiła 13,5 pikogramów na mililitr.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego w surowicy — pomiary interleukiny-6 (IL-6) na początku badania, dnia 7 i dnia 28
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego w surowicy, w tym interleukinę -6 (IL-6), zebrano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazano wartości średnie z odchyleniem standardowym.
Dolna granica wykrywania IL-6 wynosiła 13,5 pikogramów na mililitr.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego w surowicy — pomiary interleukiny-8 (IL-8) na początku badania, dnia 7 i dnia 28
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego w surowicy, w tym interleukinę -8 (IL-8), zebrano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazano wartości średnie z odchyleniem standardowym.
Dolna granica wykrywania IL-8 wynosiła 13,9 pikogramów na mililitr.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego w surowicy — pomiary mieloperoksydazy (MPO) na początku badania, w dniu 7 i 28
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego w surowicy, w tym mieloperoksydazę (MPO), zebrano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazano wartości średnie z odchyleniem standardowym.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego w surowicy — pomiary czynnika martwicy nowotworu alfa (TNF-a) na początku badania, dnia 7 i dnia 28
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego w surowicy, w tym czynnik martwicy nowotworów alfa (TNF-a), zebrano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazano wartości średnie z odchyleniem standardowym.
Dolna granica wykrywalności dla TNF-α wynosiła 12,9 pikogramów na mililitr.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego plwociny — pomiary czynnika stymulującego kolonie granulocytów i makrofagów (GM-CSF) na początku badania, w dniu 7. i dniu 28.
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego plwociny, w tym czynnik stymulujący tworzenie kolonii granulocytów i makrofagów (GM-CSF), zbierano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazane są wartości średnie wraz z zakresem.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego plwociny — pomiary interleukiny-1 (IL-1) na początku badania, dnia 7. i dnia 28.
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego plwociny, w tym interleukinę-1 (IL-1), zbierano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazane są wartości średnie wraz z zakresem.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego plwociny — pomiary interleukiny-10 (IL-10) na początku badania, dnia 7 i dnia 28
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego plwociny, w tym interleukinę-10 (IL-10), zbierano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazane są wartości średnie wraz z zakresem.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego plwociny — pomiary interleukiny-17 (IL-17) na początku badania, dnia 7 i dnia 28
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego plwociny, w tym interleukinę-17 (IL-17), zbierano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazane są wartości średnie wraz z zakresem.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego plwociny — pomiary interleukiny-6 (IL-6) na początku badania, w dniu 7 i 28
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego plwociny, w tym interleukinę-6 (IL-6), zbierano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazane są wartości średnie wraz z zakresem.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego plwociny — pomiary interleukiny-8 (IL-8) na początku badania, dnia 7. i dnia 28.
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego plwociny, w tym interleukinę-8 (IL-8), zbierano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazane są wartości średnie wraz z zakresem.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego plwociny — pomiary makrofagowego białka zapalnego 3 alfa (MIP-3a) na początku badania, dnia 7 i dnia 28
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego plwociny, w tym makrofagowe białko zapalne-3 alfa (MIP-3a), zbierano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazane są wartości średnie wraz z zakresem.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
|
Markery stanu zapalnego plwociny — pomiary czynnika martwicy nowotworu alfa (TNF-a) na początku badania, w dniu 7. i 28.
Ramy czasowe: Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Markery stanu zapalnego plwociny, w tym czynnik martwicy nowotworów alfa (TNF-a), zbierano na początku badania oraz podczas wizyt 7 i 28 dni po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC).
Pokazane są wartości średnie wraz z zakresem.
|
Linia bazowa, dzień 7, dzień 28 po infuzji ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych
|
Współpracownicy i badacze
Śledczy
- Główny śledczy: Erica A. Roesch, MD, University Hospitals Cleveland Medical Center
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Ivy SP, Siu LL, Garrett-Mayer E, Rubinstein L. Approaches to phase 1 clinical trial design focused on safety, efficiency, and selected patient populations: a report from the clinical trial design task force of the national cancer institute investigational drug steering committee. Clin Cancer Res. 2010 Mar 15;16(6):1726-36. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-09-1961. Epub 2010 Mar 9.
- Inamdar AC, Inamdar AA. Mesenchymal stem cell therapy in lung disorders: pathogenesis of lung diseases and mechanism of action of mesenchymal stem cell. Exp Lung Res. 2013 Oct;39(8):315-27. doi: 10.3109/01902148.2013.816803. Epub 2013 Aug 30.
- Gebler A, Zabel O, Seliger B. The immunomodulatory capacity of mesenchymal stem cells. Trends Mol Med. 2012 Feb;18(2):128-34. doi: 10.1016/j.molmed.2011.10.004. Epub 2011 Nov 25.
- Lalu MM, McIntyre L, Pugliese C, Fergusson D, Winston BW, Marshall JC, Granton J, Stewart DJ; Canadian Critical Care Trials Group. Safety of cell therapy with mesenchymal stromal cells (SafeCell): a systematic review and meta-analysis of clinical trials. PLoS One. 2012;7(10):e47559. doi: 10.1371/journal.pone.0047559. Epub 2012 Oct 25.
- Caplan AI. Why are MSCs therapeutic? New data: new insight. J Pathol. 2009 Jan;217(2):318-24. doi: 10.1002/path.2469.
- Bonfield TL, Caplan AI. Adult mesenchymal stem cells: an innovative therapeutic for lung diseases. Discov Med. 2010 Apr;9(47):337-45.
- Dimarino AM, Caplan AI, Bonfield TL. Mesenchymal stem cells in tissue repair. Front Immunol. 2013 Sep 4;4:201. doi: 10.3389/fimmu.2013.00201.
- Antunes MA, Laffey JG, Pelosi P, Rocco PR. Mesenchymal stem cell trials for pulmonary diseases. J Cell Biochem. 2014 Jun;115(6):1023-32. doi: 10.1002/jcb.24783.
- Gupta N, Su X, Popov B, Lee JW, Serikov V, Matthay MA. Intrapulmonary delivery of bone marrow-derived mesenchymal stem cells improves survival and attenuates endotoxin-induced acute lung injury in mice. J Immunol. 2007 Aug 1;179(3):1855-63. doi: 10.4049/jimmunol.179.3.1855.
- Sutton MT, Fletcher D, Ghosh SK, Weinberg A, van Heeckeren R, Kaur S, Sadeghi Z, Hijaz A, Reese J, Lazarus HM, Lennon DP, Caplan AI, Bonfield TL. Antimicrobial Properties of Mesenchymal Stem Cells: Therapeutic Potential for Cystic Fibrosis Infection, and Treatment. Stem Cells Int. 2016;2016:5303048. doi: 10.1155/2016/5303048. Epub 2016 Jan 26.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Oszacować)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Oszacować)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- Protocol CF-MSC-01
- DASENB15A0 (Inny numer grantu/finansowania: Cystic Fibrosis Foundation Therapeutics)
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .