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L'impact du dysfonctionnement mitochondrial sur le métabolisme et le remodelage des cellules osseuses humaines

1 octobre 2025 mis à jour par: Anja Lisbeth Frederiksen, Aalborg University Hospital

Des études sur des cellules et des souris suggèrent que le dysfonctionnement mitochondrial peut entraîner une altération de la structure osseuse.

Hypothèse : La diminution de la production d'énergie mitochondriale affecte négativement le développement et l'activité des cellules osseuses.

En comparant des humains avec la variante de l'ADN mitochondrial, m.3243A>G, des variantes pathogènes des gènes POLG ou TWNK à des témoins sains, l'objectif est d'évaluer l'effet du dysfonctionnement mitochondrial sur : 1 : le développement et l'activité des cellules osseuses dans la tige de la moelle osseuse cellules et sang.

2 : métabolisme des cellules osseuses incluant la consommation de glucose. 3 : structure osseuse évaluée par microscopie électronique et μCT scans de biopsies osseuses.

Aperçu de l'étude

Description détaillée

Une activité mitochondriale intacte, y compris des apports énergétiques adéquats, est vitale pour les tissus actifs métaboliques, c'est-à-dire les muscles squelettiques, le cœur et le cerveau. Le squelette humain représente un tissu supplémentaire hautement métaboliquement actif ; néanmoins, l'importance du rôle des mitochondries dans la santé des os du squelette humain peut être étudiée plus avant.

Le remodelage osseux constitue le processus de régénération couplé et continu de la dégradation osseuse par les ostéoclastes des cellules de résorption osseuse (OC) suivi de la formation de la matrice osseuse par les ostéoblastes formant les os (OB). Le déséquilibre quantitatif entre la résorption et la formation entraîne des troubles squelettiques avec une faible masse osseuse, y compris l'ostéoporose, et son risque accru de fractures de fragilité.

Les mitochondries génèrent de l'adénosine triphosphate d'énergie cellulaire (ATP) par le processus de phosphorylation oxydative (OXPHOS) dans la chaîne respiratoire (RC) avec une production secondaire de radicaux libres délétères, c'est-à-dire des espèces réactives de l'oxygène (ROS). Notamment, les mitochondries détiennent leur propre ADN (m.DNA) et les sous-unités RC sont respectivement codées par les gènes m.DNA et ADN nucléaire (n.DNA). Avec le vieillissement, des mutations somatiques délétères de l'ADNm s'accumulent dans le muscle squelettique et le cœur, et des mutations somatiques de l'ADNm ainsi que des mutations héréditaires de l'ADNm ou de l'ADNn peuvent entraîner un dysfonctionnement mitochondrial avec une production d'ATP altérée et une accumulation de ROS. Les mutations de l'ADNm peuvent altérer les fonctions cérébrales, squelettiques et cardiaques, mais les effets sur le métabolisme et le remodelage des cellules osseuses humaines sont inconnus. Une étude récente d'une cohorte de jeunes individus indique que les maladies mitochondriales présentent un risque de fractures de fragilité osseuse.

Des études précliniques suggèrent que l'ATP et les ROS régulent le métabolisme osseux. Le nombre d'ADNm et l'activité mitochondriale augmentent pour soutenir la différenciation des cellules souches squelettiques humaines (mésenchymateuses) (hMSC) en OB matures formant des os. L'inhibition de l'activité mitochondriale ou l'augmentation des niveaux de ROS suppriment la différenciation OB. De même, les CO sont riches en mitochondries. Les cultures d'OC humaines démontrent que l'apport d'énergie pour la différenciation de l'OC de leurs progéniteurs est basé sur OXPHOS tandis que l'activité de résorption de l'OC repose sur la glycolyse.

De plus, de nouvelles preuves suggèrent que la plasticité métabolique, c'est-à-dire la régulation de la glycolyse, de l'OXPHOS et des niveaux de pyruvate, contribue à la régulation de la différenciation OB et OC.

L'activateur du récepteur du ligand du facteur nucléaire kappa-bêta (RANKL) sécrété par les OB active la résorption de l'OC. Chez la souris, la stimulation RANKL des progéniteurs OC de la moelle osseuse augmente les niveaux intracellulaires de ROS, ce qui stimule la différenciation OC et la résorption osseuse in vitro. En outre, les ROS inhibent la voie de signalisation de type sans ailes (Wnt) avec une atténuation de l'ostéoblastogenèse et une diminution de la formation osseuse.

De plus, les souris présentant des mutations dans le domaine de lecture d'épreuves codées par l'ADNn de l'ADNm polymérase POLG (PolgA-/-) accumulent des mutations de l'ADNm et présentent un phénotype de vieillissement prématuré, notamment une faible masse osseuse. En outre, une déficience du facteur de transcription mitochondrial codé par ADNn (TFAM) provoque un épuisement de l'ATP, et les souris avec des OC déficients en TFAM ont une activité OC accrue et une résorption osseuse augmentée. En face, la perte globale de NADH (nicotinamide-adénine dinucléotide) ubiquinone oxydoréductase Fe-S protéine 4 (NDUFS4) une sous-unité du complexe RC 1 altère la résorption osseuse, et les souris (ndufs4-/-) présentent une augmentation de la densité minérale osseuse (DMO) et un phénotype osseux apparent d'ostéopétrose.

L'objectif est d'étudier le phénotype des cellules osseuses chez les patients atteints d'une maladie mitochondriale rare Porteurs de MT-TL1 m.3243A>G (MIM : 590050). assemblage du complexe RC avec une production secondaire d'ATP altérée. Le phénotype est en partie associé à la charge de mutation m.3243A>G, c'est-à-dire au niveau d'hétéroplasmie (pourcentage de m.3243A>G / ADNm de type sauvage). Le groupe d'étude comprend également des porteurs de mutations dans le code nucléaire POLG (MIM : 174763) et TWNK (MIM : 606075).

Hypothèse : Une fonction mitochondriale altérée affecte la différenciation, le métabolisme et l'activité des cellules osseuses humaines, entraînant une formation osseuse altérée et une fragilité osseuse.

Objectif : Déterminer si les porteurs de mutations mitochondriales héréditaires, c'est-à-dire un dysfonctionnement mitochondrial, une déplétion d'ATP et une augmentation secondaire des ROS, entraînent une modification :

  1. Taux de différenciation OB in vitro, activité OB et formation osseuse.
  2. Différenciation OC in vitro, activité OC et résorption osseuse globale plus élevée.
  3. Changements in vivo dans la dynamique de la formation et de la résorption osseuse au niveau des tissus, tels qu'examinés dans les biopsies osseuses de la crête iliaque.

Conception, Participants et Méthodes : Étude cas-témoin transversale incluant des sujets (>18 ans) porteurs de l'une des mutations suivantes :

  1. MT-TL1 m.3243A>G
  2. Mutation POLG
  3. TWNK

N = 10 cas avec chaque variante génétique pathogène et un nombre égal de témoins (n ​​= 30) appariés sur le sexe, l'âge et l'IMC.

Type d'étude

Interventionnel

Inscription (Estimé)

30

Phase

  • N'est pas applicable

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Lieux d'étude

      • Aalborg, Danemark
        • Dept. of Clinical Genetics

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

18 ans et plus (Adulte, Adulte plus âgé)

Accepte les volontaires sains

Oui

La description

Critères d'inclusion - cas :

  • Diagnostic génétique avec : MT-TL1 m.3243A>G, ou variant POLG, het ou variant TWNK, het, > 18 ans
  • Consentement éclairé signé

Critères d'inclusion - contrôles :

  • Sujets sains appariés sur l'âge et le sexe > 18 ans
  • Consentement éclairé signé

Critère d'exclusion:

  • Rénal (créatinine > 90 µmol/l)
  • Dysfonctionnement hépatique (AST > 3 fois la limite supérieure)
  • Traitement médical influençant le métabolisme osseux (corticoïde oral <12 semaines, traitement anti-ostéoporotique, stéroïdes sexuels, anticonvulsivants)
  • Grossesse
  • Consommation excessive d'alcool
  • Traitement avec des anticoagulants
  • Coagulopathie préexistante
  • Allergie à la lidocaïne, à la morphine ou au diazépam.

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

  • Objectif principal: Science basique
  • Répartition: N / A
  • Modèle interventionnel: Affectation à un seul groupe
  • Masquage: Aucun (étiquette ouverte)

Armes et Interventions

Groupe de participants / Bras
Intervention / Traitement
Autre: Cas et témoins
Évaluation clinique, prélèvements sanguins, analyse par absorptiométrie à rayons X à double énergie (DXA) et évaluation de la moelle osseuse et biopsie osseuse marquée à la tétracycline
Évaluation des échantillons de sang, de la moelle osseuse et de la biopsie osseuse

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Taux d'acidification extracellulaire (ECAR) (mpH/min)
Délai: Jusqu'à 12 semaines
Mesure de l'ECAR dans les cellules souches squelettiques (mésenchymateuses) de la moelle osseuse humaine (hBM-MSC), les ostéoblastes (OB) et les ostéoclastes (OC)
Jusqu'à 12 semaines
Taux de consommation d'oxygène (OCR) (mpMol/min)
Délai: Jusqu'à 12 semaines
Mesure de l'OCR dans les hBM-MSC, OB et OC
Jusqu'à 12 semaines
Taux de croissance (nombre de cellules)
Délai: Jusqu'à 12 semaines
Taux de croissance des OB et des OC
Jusqu'à 12 semaines

Mesures de résultats secondaires

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Taux de croissance osseuse (µm/jour)
Délai: Jusqu'à 4 semaines
Mesures histomophométriques de la croissance osseuse dans la biopsie osseuse marquée à la tétracycline
Jusqu'à 4 semaines
Histomorphométrique
Délai: Jusqu'à 4 semaines
Études histomophométriques de biopsies osseuses
Jusqu'à 4 semaines

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Les enquêteurs

  • Chercheur principal: Anja L Frederiksen, MD, Aalborg University Hospital

Publications et liens utiles

La personne responsable de la saisie des informations sur l'étude fournit volontairement ces publications. Il peut s'agir de tout ce qui concerne l'étude.

Publications générales

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

1 février 2020

Achèvement primaire (Estimé)

1 août 2026

Achèvement de l'étude (Estimé)

1 décembre 2026

Dates d'inscription aux études

Première soumission

22 juillet 2022

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

29 juillet 2022

Première publication (Réel)

2 août 2022

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Estimé)

2 octobre 2025

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

1 octobre 2025

Dernière vérification

1 octobre 2025

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Plan pour les données individuelles des participants (IPD)

Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?

NON

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

produit fabriqué et exporté des États-Unis.

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

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