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El impacto de la disfunción mitocondrial en el metabolismo y la remodelación de las células óseas humanas

1 de octubre de 2025 actualizado por: Anja Lisbeth Frederiksen, Aalborg University Hospital

Los estudios con células y ratones sugieren que la disfunción mitocondrial puede causar una estructura ósea alterada.

Hipótesis: La disminución de la producción de energía mitocondrial afecta negativamente el desarrollo y la actividad de las células óseas.

Comparando humanos con la variante de ADN mitocondrial, m.3243A>G, variantes patogénicas en los genes POLG o TWNK con controles sanos, el objetivo es evaluar el efecto de la disfunción mitocondrial en: 1: el desarrollo y la actividad de las células óseas en el tallo de la médula ósea células y sangre.

2: metabolismo de las células óseas, incluido el consumo de glucosa. 3: estructura ósea evaluada por microscopía electrónica y escaneos μCT de biopsias óseas.

Descripción general del estudio

Descripción detallada

La actividad mitocondrial intacta, incluidos los suministros de energía adecuados, es vital para los tejidos metabólicos activos, es decir, el músculo esquelético, el corazón y el cerebro. El esqueleto humano representa un tejido metabólicamente muy activo adicional; sin embargo, la importancia del papel mitocondrial en la salud ósea del esqueleto humano puede investigarse más a fondo.

La remodelación ósea constituye el proceso regenerativo acoplado y continuo de degradación ósea por parte de los osteoclastos (OC) de las células de reabsorción ósea, seguido de la formación de matriz ósea por parte de los osteoblastos formadores de hueso (OB). El desequilibrio cuantitativo entre la reabsorción y la formación da como resultado trastornos esqueléticos con baja masa ósea, incluida la osteoporosis, y su mayor riesgo de fracturas por fragilidad.

Las mitocondrias generan energía celular trifosfato de adenosina (ATP) a través del proceso de fosforilación oxidativa (OXPHOS) en la cadena respiratoria (RC) con una producción secundaria de los subproductos nocivos radicales libres, es decir, especies reactivas de oxígeno (ROS). En particular, las mitocondrias contienen su propio ADN (m.DNA), y las subunidades RC están codificadas por genes m.DNA y nuclear DNA (n.DNA), respectivamente. Con el envejecimiento, se acumulan mutaciones nocivas de m.DNA somáticas en el músculo esquelético y el corazón, y las mutaciones somáticas de m.DNA, así como las mutaciones heredadas de m.DNA o n.DNA, pueden dar lugar a una disfunción mitocondrial con producción de ATP deteriorada y acumulación de ROS. Las mutaciones del m.DNA pueden afectar la función del músculo cardíaco, esquelético y cerebral, pero se desconocen los efectos sobre el metabolismo y la remodelación de las células óseas humanas. Un estudio reciente de una cohorte de individuos jóvenes indica que las enfermedades mitocondriales presentan un riesgo de fracturas por fragilidad ósea.

Los estudios preclínicos sugieren que ATP y ROS regulan el metabolismo óseo. El número de m.DNA y la actividad mitocondrial aumentan para apoyar la diferenciación de células madre esqueléticas (mesenquimales) humanas (hMSC) a OB maduras formadoras de hueso. La inhibición de la actividad mitocondrial o el aumento de los niveles de ROS suprimen la diferenciación de OB. Del mismo modo, los OC son ricos en mitocondrias. Los cultivos humanos de OC demuestran que los suministros de energía para la diferenciación de OC de sus progenitores se basan en OXPHOS, mientras que la actividad de reabsorción de OC se basa en la glucólisis.

Además, la evidencia emergente sugiere que la plasticidad metabólica, es decir, la regulación de los niveles de glucólisis, OXPHOS y piruvato, contribuye a la regulación de la diferenciación de OB y ​​OC.

El activador del receptor del ligando kappa-beta del factor nuclear (RANKL) secretado por los OB activa la reabsorción de OC. En ratones, la estimulación de RANKL de los progenitores de OC de la médula ósea aumenta los niveles intracelulares de ROS, lo que estimula la diferenciación de OC y la resorción ósea in vitro. Además, ROS inhibe la vía de señalización de tipo sin alas (Wnt) con atenuación de la osteoblastogénesis y disminución de la formación ósea.

Además, los ratones con mutaciones en el dominio de lectura de prueba codificado por n.DNA de m.DNA polimerasa POLG (PolgA-/-) acumulan mutaciones de m.DNA y presentan un fenotipo de envejecimiento prematuro que incluye baja masa ósea. Además, la deficiencia del factor de transcripción mitocondrial (TFAM) codificado por n.DNA provoca el agotamiento de ATP, y los ratones con OC deficientes en TFAM tienen una mayor actividad de OC y una mayor resorción ósea. Por el contrario, la pérdida global de NADH (nicotinamida-adenina dinucleótido) ubiquinona oxidorreductasa Fe-S proteína 4 (NDUFS4), una subunidad en el complejo RC 1, altera la resorción ósea y (ndufs4-/-) los ratones presentan un aumento de la densidad mineral ósea (DMO) y fenotipo óseo de osteopetrosis aparente.

El objetivo es estudiar el fenotipo de las células óseas en pacientes con enfermedad mitocondrial rara Portadores de MT-TL1 m.3243A>G (MIM: 590050). El gen codifica el factor de transcripción tRNALeu(UUA/UUG) y m.3243A>G debilita el ensamblaje del complejo RC con una producción secundaria de ATP alterada. El fenotipo está, en parte, asociado con la carga de mutación m.3243A>G, es decir, el nivel de heteroplasmia (porcentaje de m.3243A>G/m.DNA de tipo salvaje). El grupo de estudio también incluye portadores de mutaciones en el codificado nuclear POLG (MIM: 174763) y TWNK (MIM: 606075).

Hipótesis: La función mitocondrial deteriorada afecta la diferenciación, el metabolismo y la actividad de las células óseas humanas, lo que conduce a una formación ósea deteriorada y fragilidad ósea.

Objetivo: determinar si los portadores de mutaciones mitocondriales heredadas, es decir, disfunción mitocondrial, agotamiento de ATP y aumento secundario de ROS conducen a cambios en:

  1. Tasa de diferenciación de OB in vitro, actividad de OB y ​​formación ósea.
  2. Diferenciación in vitro de OC, actividad de OC y mayor resorción ósea global.
  3. Cambios in vivo en la dinámica del nivel de tejido de la formación y reabsorción ósea examinadas en biopsias óseas de la cresta ilíaca.

Diseño, Participantes y Métodos: Estudio transversal de casos y controles que incluye sujetos (>18 años) portadores de una de las siguientes mutaciones:

  1. MT-TL1 m.3243A>G
  2. mutación POLG
  3. JÓVENES

N=10 casos con cada variante genética patógena e igual número de controles (n=30) pareados por sexo, edad e IMC.

Tipo de estudio

Intervencionista

Inscripción (Estimado)

30

Fase

  • No aplica

Contactos y Ubicaciones

Esta sección proporciona los datos de contacto de quienes realizan el estudio e información sobre dónde se lleva a cabo este estudio.

Ubicaciones de estudio

      • Aalborg, Dinamarca
        • Dept. of Clinical Genetics

Criterios de participación

Los investigadores buscan personas que se ajusten a una determinada descripción, denominada criterio de elegibilidad. Algunos ejemplos de estos criterios son el estado de salud general de una persona o tratamientos previos.

Criterio de elegibilidad

Edades elegibles para estudiar

18 años y mayores (Adulto, Adulto Mayor)

Acepta Voluntarios Saludables

Sí

Descripción

Criterios de inclusión - casos:

  • Diagnóstico genético con: MT-TL1 m.3243A>G, o variante POLG, het o variante TWNK, het, > 18 años
  • Consentimiento informado firmado

Criterios de inclusión - controles:

  • Sujetos sanos pareados por edad y género > 18 años
  • Consentimiento informado firmado

Criterio de exclusión:

  • Renal (creatinina > 90 µmol/l)
  • Disfunción hepática (AST > 3 veces el límite superior)
  • Tratamiento médico que influye en el metabolismo óseo (corticoides orales <12 semanas, tratamiento antiosteoporosis, esteroides sexuales, anticonvulsivos)
  • El embarazo
  • Consumo excesivo de alcohol
  • Tratamiento con anticoagulantes
  • Coagulopatía preexistente
  • Alergia a la lidocaína, morfina o diazepam.

Plan de estudios

Esta sección proporciona detalles del plan de estudio, incluido cómo está diseñado el estudio y qué mide el estudio.

¿Cómo está diseñado el estudio?

Detalles de diseño

  • Propósito principal: Ciencia básica
  • Asignación: N / A
  • Modelo Intervencionista: Asignación de un solo grupo
  • Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)

Armas e Intervenciones

Grupo de participantes/brazo
Intervención / Tratamiento
Otro: Casos y controles
Evaluación clínica, muestras de sangre, exploración de absorciometría de rayos X de energía dual (DXA), evaluación de la médula ósea y biopsia ósea marcada con tetraciclina
Valoración de muestras de sangre, médula ósea y biopsia ósea

¿Qué mide el estudio?

Medidas de resultado primarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Tasa de acidificación extracelular (ECAR) (mpH/min)
Periodo de tiempo: Hasta 12 semanas
Medición de ECAR en células madre esqueléticas (mesenquimales) de médula ósea humana (hBM-MSC), osteoblastos (OB) y osteoclastos (OC)
Hasta 12 semanas
Tasa de consumo de oxígeno (OCR) (mpMol/min)
Periodo de tiempo: Hasta 12 semanas
Medición de OCR en hBM-MSC, OB y ​​OC
Hasta 12 semanas
Tasa de crecimiento (número de células)
Periodo de tiempo: Hasta 12 semanas
Tasa de crecimiento de OB y ​​OC
Hasta 12 semanas

Medidas de resultado secundarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Tasa de crecimiento óseo (µm/día)
Periodo de tiempo: Hasta 4 semanas
Mediciones histomofométricas del crecimiento óseo en biopsia ósea marcada con tetraciclina
Hasta 4 semanas
Histomorfométrico
Periodo de tiempo: Hasta 4 semanas
Estudios histomofométricos de biopsias óseas
Hasta 4 semanas

Colaboradores e Investigadores

Aquí es donde encontrará personas y organizaciones involucradas en este estudio.

Investigadores

  • Investigador principal: Anja L Frederiksen, MD, Aalborg University Hospital

Publicaciones y enlaces útiles

La persona responsable de ingresar información sobre el estudio proporciona voluntariamente estas publicaciones. Estos pueden ser sobre cualquier cosa relacionada con el estudio.

Publicaciones Generales

Fechas de registro del estudio

Estas fechas rastrean el progreso del registro del estudio y los envíos de resultados resumidos a ClinicalTrials.gov. Los registros del estudio y los resultados informados son revisados ​​por la Biblioteca Nacional de Medicina (NLM) para asegurarse de que cumplan con los estándares de control de calidad específicos antes de publicarlos en el sitio web público.

Fechas importantes del estudio

Inicio del estudio (Actual)

1 de febrero de 2020

Finalización primaria (Estimado)

1 de agosto de 2026

Finalización del estudio (Estimado)

1 de diciembre de 2026

Fechas de registro del estudio

Enviado por primera vez

22 de julio de 2022

Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad

29 de julio de 2022

Publicado por primera vez (Actual)

2 de agosto de 2022

Actualizaciones de registros de estudio

Última actualización publicada (Estimado)

2 de octubre de 2025

Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad

1 de octubre de 2025

Última verificación

1 de octubre de 2025

Más información

Términos relacionados con este estudio

Plan de datos de participantes individuales (IPD)

¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?

NO

Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio

Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.

No

Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.

No

producto fabricado y exportado desde los EE. UU.

No

Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .

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