- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT05483738
El impacto de la disfunción mitocondrial en el metabolismo y la remodelación de las células óseas humanas
Los estudios con células y ratones sugieren que la disfunción mitocondrial puede causar una estructura ósea alterada.
Hipótesis: La disminución de la producción de energía mitocondrial afecta negativamente el desarrollo y la actividad de las células óseas.
Comparando humanos con la variante de ADN mitocondrial, m.3243A>G, variantes patogénicas en los genes POLG o TWNK con controles sanos, el objetivo es evaluar el efecto de la disfunción mitocondrial en: 1: el desarrollo y la actividad de las células óseas en el tallo de la médula ósea células y sangre.
2: metabolismo de las células óseas, incluido el consumo de glucosa. 3: estructura ósea evaluada por microscopía electrónica y escaneos μCT de biopsias óseas.
Descripción general del estudio
Estado
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
La actividad mitocondrial intacta, incluidos los suministros de energía adecuados, es vital para los tejidos metabólicos activos, es decir, el músculo esquelético, el corazón y el cerebro. El esqueleto humano representa un tejido metabólicamente muy activo adicional; sin embargo, la importancia del papel mitocondrial en la salud ósea del esqueleto humano puede investigarse más a fondo.
La remodelación ósea constituye el proceso regenerativo acoplado y continuo de degradación ósea por parte de los osteoclastos (OC) de las células de reabsorción ósea, seguido de la formación de matriz ósea por parte de los osteoblastos formadores de hueso (OB). El desequilibrio cuantitativo entre la reabsorción y la formación da como resultado trastornos esqueléticos con baja masa ósea, incluida la osteoporosis, y su mayor riesgo de fracturas por fragilidad.
Las mitocondrias generan energía celular trifosfato de adenosina (ATP) a través del proceso de fosforilación oxidativa (OXPHOS) en la cadena respiratoria (RC) con una producción secundaria de los subproductos nocivos radicales libres, es decir, especies reactivas de oxígeno (ROS). En particular, las mitocondrias contienen su propio ADN (m.DNA), y las subunidades RC están codificadas por genes m.DNA y nuclear DNA (n.DNA), respectivamente. Con el envejecimiento, se acumulan mutaciones nocivas de m.DNA somáticas en el músculo esquelético y el corazón, y las mutaciones somáticas de m.DNA, así como las mutaciones heredadas de m.DNA o n.DNA, pueden dar lugar a una disfunción mitocondrial con producción de ATP deteriorada y acumulación de ROS. Las mutaciones del m.DNA pueden afectar la función del músculo cardíaco, esquelético y cerebral, pero se desconocen los efectos sobre el metabolismo y la remodelación de las células óseas humanas. Un estudio reciente de una cohorte de individuos jóvenes indica que las enfermedades mitocondriales presentan un riesgo de fracturas por fragilidad ósea.
Los estudios preclínicos sugieren que ATP y ROS regulan el metabolismo óseo. El número de m.DNA y la actividad mitocondrial aumentan para apoyar la diferenciación de células madre esqueléticas (mesenquimales) humanas (hMSC) a OB maduras formadoras de hueso. La inhibición de la actividad mitocondrial o el aumento de los niveles de ROS suprimen la diferenciación de OB. Del mismo modo, los OC son ricos en mitocondrias. Los cultivos humanos de OC demuestran que los suministros de energía para la diferenciación de OC de sus progenitores se basan en OXPHOS, mientras que la actividad de reabsorción de OC se basa en la glucólisis.
Además, la evidencia emergente sugiere que la plasticidad metabólica, es decir, la regulación de los niveles de glucólisis, OXPHOS y piruvato, contribuye a la regulación de la diferenciación de OB y OC.
El activador del receptor del ligando kappa-beta del factor nuclear (RANKL) secretado por los OB activa la reabsorción de OC. En ratones, la estimulación de RANKL de los progenitores de OC de la médula ósea aumenta los niveles intracelulares de ROS, lo que estimula la diferenciación de OC y la resorción ósea in vitro. Además, ROS inhibe la vía de señalización de tipo sin alas (Wnt) con atenuación de la osteoblastogénesis y disminución de la formación ósea.
Además, los ratones con mutaciones en el dominio de lectura de prueba codificado por n.DNA de m.DNA polimerasa POLG (PolgA-/-) acumulan mutaciones de m.DNA y presentan un fenotipo de envejecimiento prematuro que incluye baja masa ósea. Además, la deficiencia del factor de transcripción mitocondrial (TFAM) codificado por n.DNA provoca el agotamiento de ATP, y los ratones con OC deficientes en TFAM tienen una mayor actividad de OC y una mayor resorción ósea. Por el contrario, la pérdida global de NADH (nicotinamida-adenina dinucleótido) ubiquinona oxidorreductasa Fe-S proteína 4 (NDUFS4), una subunidad en el complejo RC 1, altera la resorción ósea y (ndufs4-/-) los ratones presentan un aumento de la densidad mineral ósea (DMO) y fenotipo óseo de osteopetrosis aparente.
El objetivo es estudiar el fenotipo de las células óseas en pacientes con enfermedad mitocondrial rara Portadores de MT-TL1 m.3243A>G (MIM: 590050). El gen codifica el factor de transcripción tRNALeu(UUA/UUG) y m.3243A>G debilita el ensamblaje del complejo RC con una producción secundaria de ATP alterada. El fenotipo está, en parte, asociado con la carga de mutación m.3243A>G, es decir, el nivel de heteroplasmia (porcentaje de m.3243A>G/m.DNA de tipo salvaje). El grupo de estudio también incluye portadores de mutaciones en el codificado nuclear POLG (MIM: 174763) y TWNK (MIM: 606075).
Hipótesis: La función mitocondrial deteriorada afecta la diferenciación, el metabolismo y la actividad de las células óseas humanas, lo que conduce a una formación ósea deteriorada y fragilidad ósea.
Objetivo: determinar si los portadores de mutaciones mitocondriales heredadas, es decir, disfunción mitocondrial, agotamiento de ATP y aumento secundario de ROS conducen a cambios en:
- Tasa de diferenciación de OB in vitro, actividad de OB y formación ósea.
- Diferenciación in vitro de OC, actividad de OC y mayor resorción ósea global.
- Cambios in vivo en la dinámica del nivel de tejido de la formación y reabsorción ósea examinadas en biopsias óseas de la cresta ilíaca.
Diseño, Participantes y Métodos: Estudio transversal de casos y controles que incluye sujetos (>18 años) portadores de una de las siguientes mutaciones:
- MT-TL1 m.3243A>G
- mutación POLG
- JÓVENES
N=10 casos con cada variante genética patógena e igual número de controles (n=30) pareados por sexo, edad e IMC.
Tipo de estudio
Inscripción (Estimado)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Ubicaciones de estudio
-
-
-
Aalborg, Dinamarca
- Dept. of Clinical Genetics
-
-
Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Descripción
Criterios de inclusión - casos:
- Diagnóstico genético con: MT-TL1 m.3243A>G, o variante POLG, het o variante TWNK, het, > 18 años
- Consentimiento informado firmado
Criterios de inclusión - controles:
- Sujetos sanos pareados por edad y género > 18 años
- Consentimiento informado firmado
Criterio de exclusión:
- Renal (creatinina > 90 µmol/l)
- Disfunción hepática (AST > 3 veces el límite superior)
- Tratamiento médico que influye en el metabolismo óseo (corticoides orales <12 semanas, tratamiento antiosteoporosis, esteroides sexuales, anticonvulsivos)
- El embarazo
- Consumo excesivo de alcohol
- Tratamiento con anticoagulantes
- Coagulopatía preexistente
- Alergia a la lidocaína, morfina o diazepam.
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Ciencia básica
- Asignación: N / A
- Modelo Intervencionista: Asignación de un solo grupo
- Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
|---|---|
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Otro: Casos y controles
Evaluación clínica, muestras de sangre, exploración de absorciometría de rayos X de energía dual (DXA), evaluación de la médula ósea y biopsia ósea marcada con tetraciclina
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Valoración de muestras de sangre, médula ósea y biopsia ósea
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Tasa de acidificación extracelular (ECAR) (mpH/min)
Periodo de tiempo: Hasta 12 semanas
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Medición de ECAR en células madre esqueléticas (mesenquimales) de médula ósea humana (hBM-MSC), osteoblastos (OB) y osteoclastos (OC)
|
Hasta 12 semanas
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Tasa de consumo de oxígeno (OCR) (mpMol/min)
Periodo de tiempo: Hasta 12 semanas
|
Medición de OCR en hBM-MSC, OB y OC
|
Hasta 12 semanas
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Tasa de crecimiento (número de células)
Periodo de tiempo: Hasta 12 semanas
|
Tasa de crecimiento de OB y OC
|
Hasta 12 semanas
|
Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
|
Tasa de crecimiento óseo (µm/día)
Periodo de tiempo: Hasta 4 semanas
|
Mediciones histomofométricas del crecimiento óseo en biopsia ósea marcada con tetraciclina
|
Hasta 4 semanas
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|
Histomorfométrico
Periodo de tiempo: Hasta 4 semanas
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Estudios histomofométricos de biopsias óseas
|
Hasta 4 semanas
|
Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Anja L Frederiksen, MD, Aalborg University Hospital
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Gorman GS, Chinnery PF, DiMauro S, Hirano M, Koga Y, McFarland R, Suomalainen A, Thorburn DR, Zeviani M, Turnbull DM. Mitochondrial diseases. Nat Rev Dis Primers. 2016 Oct 20;2:16080. doi: 10.1038/nrdp.2016.80.
- Seeman E, Delmas PD. Bone quality--the material and structural basis of bone strength and fragility. N Engl J Med. 2006 May 25;354(21):2250-61. doi: 10.1056/NEJMra053077. No abstract available.
- Bartell SM, Kim HN, Ambrogini E, Han L, Iyer S, Serra Ucer S, Rabinovitch P, Jilka RL, Weinstein RS, Zhao H, O'Brien CA, Manolagas SC, Almeida M. FoxO proteins restrain osteoclastogenesis and bone resorption by attenuating H2O2 accumulation. Nat Commun. 2014 Apr 30;5:3773. doi: 10.1038/ncomms4773.
- Andreasen CM, Ding M, Overgaard S, Bollen P, Andersen TL. A reversal phase arrest uncoupling the bone formation and resorption contributes to the bone loss in glucocorticoid treated ovariectomised aged sheep. Bone. 2015 Jun;75:32-9. doi: 10.1016/j.bone.2015.02.014. Epub 2015 Feb 14.
- Kim SJ, Mehta HH, Wan J, Kuehnemann C, Chen J, Hu JF, Hoffman AR, Cohen P. Mitochondrial peptides modulate mitochondrial function during cellular senescence. Aging (Albany NY). 2018 Jun 10;10(6):1239-1256. doi: 10.18632/aging.101463.
- Sinha K, Das J, Pal PB, Sil PC. Oxidative stress: the mitochondria-dependent and mitochondria-independent pathways of apoptosis. Arch Toxicol. 2013 Jul;87(7):1157-80. doi: 10.1007/s00204-013-1034-4. Epub 2013 Mar 30.
- Meissner C, Bruse P, Mohamed SA, Schulz A, Warnk H, Storm T, Oehmichen M. The 4977 bp deletion of mitochondrial DNA in human skeletal muscle, heart and different areas of the brain: a useful biomarker or more? Exp Gerontol. 2008 Jul;43(7):645-652. doi: 10.1016/j.exger.2008.03.004. Epub 2008 Mar 20.
- Lee HC, Wei YH. Oxidative stress, mitochondrial DNA mutation, and apoptosis in aging. Exp Biol Med (Maywood). 2007 May;232(5):592-606.
- Hayashi G, Cortopassi G. Oxidative stress in inherited mitochondrial diseases. Free Radic Biol Med. 2015 Nov;88(Pt A):10-7. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2015.05.039. Epub 2015 Jun 12.
- Gandhi SS, Muraresku C, McCormick EM, Falk MJ, McCormack SE. Risk factors for poor bone health in primary mitochondrial disease. J Inherit Metab Dis. 2017 Sep;40(5):673-683. doi: 10.1007/s10545-017-0046-2. Epub 2017 Apr 27.
- Chen CT, Shih YR, Kuo TK, Lee OK, Wei YH. Coordinated changes of mitochondrial biogenesis and antioxidant enzymes during osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells. Stem Cells. 2008 Apr;26(4):960-8. doi: 10.1634/stemcells.2007-0509. Epub 2008 Jan 24.
- Gao J, Feng Z, Wang X, Zeng M, Liu J, Han S, Xu J, Chen L, Cao K, Long J, Li Z, Shen W, Liu J. SIRT3/SOD2 maintains osteoblast differentiation and bone formation by regulating mitochondrial stress. Cell Death Differ. 2018 Feb;25(2):229-240. doi: 10.1038/cdd.2017.144. Epub 2017 Sep 15.
- Brown D, Breton S. Mitochondria-rich, proton-secreting epithelial cells. J Exp Biol. 1996 Nov;199(Pt 11):2345-58. doi: 10.1242/jeb.199.11.2345.
- Lemma S, Sboarina M, Porporato PE, Zini N, Sonveaux P, Di Pompo G, Baldini N, Avnet S. Energy metabolism in osteoclast formation and activity. Int J Biochem Cell Biol. 2016 Oct;79:168-180. doi: 10.1016/j.biocel.2016.08.034. Epub 2016 Aug 30.
- Arnett TR, Orriss IR. Metabolic properties of the osteoclast. Bone. 2018 Oct;115:25-30. doi: 10.1016/j.bone.2017.12.021. Epub 2017 Dec 21.
- Lee NK, Choi YG, Baik JY, Han SY, Jeong DW, Bae YS, Kim N, Lee SY. A crucial role for reactive oxygen species in RANKL-induced osteoclast differentiation. Blood. 2005 Aug 1;106(3):852-9. doi: 10.1182/blood-2004-09-3662. Epub 2005 Apr 7.
- Garrett IR, Boyce BF, Oreffo RO, Bonewald L, Poser J, Mundy GR. Oxygen-derived free radicals stimulate osteoclastic bone resorption in rodent bone in vitro and in vivo. J Clin Invest. 1990 Mar;85(3):632-9. doi: 10.1172/JCI114485.
- Almeida M, Han L, Martin-Millan M, O'Brien CA, Manolagas SC. Oxidative stress antagonizes Wnt signaling in osteoblast precursors by diverting beta-catenin from T cell factor- to forkhead box O-mediated transcription. J Biol Chem. 2007 Sep 14;282(37):27298-27305. doi: 10.1074/jbc.M702811200. Epub 2007 Jul 10.
- Trifunovic A, Wredenberg A, Falkenberg M, Spelbrink JN, Rovio AT, Bruder CE, Bohlooly-Y M, Gidlof S, Oldfors A, Wibom R, Tornell J, Jacobs HT, Larsson NG. Premature ageing in mice expressing defective mitochondrial DNA polymerase. Nature. 2004 May 27;429(6990):417-23. doi: 10.1038/nature02517.
- Miyazaki T, Iwasawa M, Nakashima T, Mori S, Shigemoto K, Nakamura H, Katagiri H, Takayanagi H, Tanaka S. Intracellular and extracellular ATP coordinately regulate the inverse correlation between osteoclast survival and bone resorption. J Biol Chem. 2012 Nov 2;287(45):37808-23. doi: 10.1074/jbc.M112.385369. Epub 2012 Sep 17.
- Jin Z, Wei W, Yang M, Du Y, Wan Y. Mitochondrial complex I activity suppresses inflammation and enhances bone resorption by shifting macrophage-osteoclast polarization. Cell Metab. 2014 Sep 2;20(3):483-98. doi: 10.1016/j.cmet.2014.07.011. Epub 2014 Aug 14.
- Varanasi SS, Francis RM, Berger CE, Papiha SS, Datta HK. Mitochondrial DNA deletion associated oxidative stress and severe male osteoporosis. Osteoporos Int. 1999;10(2):143-9. doi: 10.1007/s001980050209.
- Kato H, Han X, Yamaza H, Masuda K, Hirofuji Y, Sato H, Pham TTM, Taguchi T, Nonaka K. Direct effects of mitochondrial dysfunction on poor bone health in Leigh syndrome. Biochem Biophys Res Commun. 2017 Nov 4;493(1):207-212. doi: 10.1016/j.bbrc.2017.09.045. Epub 2017 Sep 9.
- Langdahl JH, Frederiksen AL, Hansen SJ, Andersen PH, Yderstraede KB, Duno M, Vissing J, Frost M. Mitochondrial Point Mutation m.3243A>G Associates With Lower Bone Mineral Density, Thinner Cortices, and Reduced Bone Strength: A Case-Control Study. J Bone Miner Res. 2017 Oct;32(10):2041-2048. doi: 10.1002/jbmr.3193. Epub 2017 Jul 18.
- van den Ouweland JM, Lemkes HH, Ruitenbeek W, Sandkuijl LA, de Vijlder MF, Struyvenberg PA, van de Kamp JJ, Maassen JA. Mutation in mitochondrial tRNA(Leu)(UUR) gene in a large pedigree with maternally transmitted type II diabetes mellitus and deafness. Nat Genet. 1992 Aug;1(5):368-71. doi: 10.1038/ng0892-368.
- Sasarman F, Antonicka H, Shoubridge EA. The A3243G tRNALeu(UUR) MELAS mutation causes amino acid misincorporation and a combined respiratory chain assembly defect partially suppressed by overexpression of EFTu and EFG2. Hum Mol Genet. 2008 Dec 1;17(23):3697-707. doi: 10.1093/hmg/ddn265. Epub 2008 Aug 27.
- Frederiksen AL, Andersen PH, Kyvik KO, Jeppesen TD, Vissing J, Schwartz M. Tissue specific distribution of the 3243A->G mtDNA mutation. J Med Genet. 2006 Aug;43(8):671-7. doi: 10.1136/jmg.2005.039339. Epub 2006 Feb 20.
- Langdahl JH, Larsen M, Frost M, Andersen PH, Yderstraede KB, Vissing J, Duno M, Thomassen M, Frederiksen AL. Lecocytes mutation load declines with age in carriers of the m.3243A>G mutation: A 10-year Prospective Cohort. Clin Genet. 2018 Apr;93(4):925-928. doi: 10.1111/cge.13201.
- Jafari A, Qanie D, Andersen TL, Zhang Y, Chen L, Postert B, Parsons S, Ditzel N, Khosla S, Johansen HT, Kjaersgaard-Andersen P, Delaisse JM, Abdallah BM, Hesselson D, Solberg R, Kassem M. Legumain Regulates Differentiation Fate of Human Bone Marrow Stromal Cells and Is Altered in Postmenopausal Osteoporosis. Stem Cell Reports. 2017 Feb 14;8(2):373-386. doi: 10.1016/j.stemcr.2017.01.003. Epub 2017 Feb 2.
- Abdallah BM, Ditzel N, Kassem M. Assessment of bone formation capacity using in vivo transplantation assays: procedure and tissue analysis. Methods Mol Biol. 2008;455:89-100. doi: 10.1007/978-1-59745-104-8_6.
- Soe K, Delaisse JM. Glucocorticoids maintain human osteoclasts in the active mode of their resorption cycle. J Bone Miner Res. 2010 Oct;25(10):2184-92. doi: 10.1002/jbmr.113.
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Términos relacionados con este estudio
Palabras clave
Términos MeSH relevantes adicionales
- Enfermedades metabólicas
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Otros números de identificación del estudio
- S-20180170
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¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
producto fabricado y exportado desde los EE. UU.
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