- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT05483738
O Impacto da Disfunção Mitocondrial no Metabolismo e Remodelação das Células Ósseas Humanas
Estudos com células e camundongos sugerem que a disfunção mitocondrial pode causar alteração na estrutura óssea.
Hipótese: A diminuição da produção de energia mitocondrial afeta negativamente o desenvolvimento e a atividade das células ósseas.
Comparando humanos com a variante do DNA mitocondrial, m.3243A>G, variantes patogênicas nos genes POLG ou TWNK com controles saudáveis, o objetivo é avaliar o efeito da disfunção mitocondrial em: 1: desenvolvimento e atividade das células ósseas no tronco da medula óssea células e sangue.
2: metabolismo das células ósseas, incluindo consumo de glicose. 3: estrutura óssea avaliada por microscopia eletrônica e μCT scans de biópsias ósseas.
Visão geral do estudo
Status
Intervenção / Tratamento
Descrição detalhada
A atividade mitocondrial intacta, incluindo suprimentos de energia adequados, é vital para os tecidos metabólicos ativos, como músculo esquelético, coração e cérebro. O esqueleto humano representa um tecido adicional altamente metabolicamente ativo; no entanto, a importância do papel mitocondrial na saúde óssea do esqueleto humano pode ser mais investigada.
A remodelação óssea constitui o processo regenerativo acoplado e contínuo da degradação óssea pelos osteoclastos (OC) das células reabsorvedoras de osso, seguida da formação da matriz óssea pelos osteoblastos formadores de osso (OB). O desequilíbrio quantitativo entre reabsorção e formação resulta em distúrbios esqueléticos com baixa massa óssea, incluindo osteoporose, e seu risco aumentado de fraturas por fragilidade.
As mitocôndrias geram energia celular trifosfato de adenosina (ATP) através do processo de fosforilação oxidativa (OXPHOS) na cadeia respiratória (RC) com uma produção secundária de subprodutos deletérios radicais livres, ou seja, espécies reativas de oxigênio (ROS). Notavelmente, as mitocôndrias possuem seu próprio DNA (m.DNA) e as subunidades RC são codificadas pelos genes m.DNA e DNA nuclear (n.DNA), respectivamente. Com o envelhecimento, mutações somáticas deletérias do m.DNA se acumulam no músculo esquelético e no coração, e mutações somáticas do m.DNA, bem como mutações herdadas do m.DNA ou n.DNA, podem resultar em disfunção mitocondrial com produção de ATP prejudicada e acúmulo de ROS. As mutações do m.DNA podem prejudicar a função cerebral, esquelética e dos músculos cardíacos, mas os efeitos sobre o metabolismo e a remodelação das células ósseas humanas são desconhecidos. Um estudo recente de uma coorte de indivíduos jovens indica que as doenças mitocondriais representam um risco para fraturas por fragilidade óssea.
Estudos pré-clínicos sugerem que ATP e ROS regulam o metabolismo ósseo. O número de m.DNA e a atividade mitocondrial aumentam para apoiar a diferenciação de células-tronco esqueléticas (mesenquimais) humanas (hMSC) para OBs formadores de ossos maduros. A inibição da atividade mitocondrial ou o aumento nos níveis de ROS suprimem a diferenciação OB. Da mesma forma, os OCs são ricos em mitocôndrias. As culturas de OC humanas demonstram que o fornecimento de energia para a diferenciação de OC de seus progenitores é baseado em OXPHOS, enquanto a atividade de reabsorção de OC depende da glicólise.
Além disso, evidências emergentes sugerem que a plasticidade metabólica, ou seja, a regulação da glicólise, OXPHOS e níveis de piruvato, contribuem para a regulação da diferenciação de OB e OC.
O ativador do receptor do ligante do fator nuclear kappa-Beta (RANKL) secretado pelos OBs ativa a reabsorção de OC. Em camundongos, a estimulação RANKL de progenitores OC da medula óssea aumenta os níveis intracelulares de ROS, o que estimula a diferenciação OC e a reabsorção óssea in vitro. Além disso, ROS inibe a via de sinalização do tipo sem asas (Wnt) com atenuação da osteoblastogênese e diminuição da formação óssea.
Além disso, camundongos com mutações no domínio de leitura de prova codificado por n.DNA da polimerase de m.DNA POLG (PolgA-/-) acumulam mutações de m.DNA e apresentam fenótipo de envelhecimento prematuro, incluindo baixa massa óssea. Além disso, a deficiência do fator de transcrição mitocondrial codificado por n.DNA (TFAM) causa depleção de ATP, e camundongos com OCs deficientes em TFAM têm atividade OC aumentada e reabsorção óssea aumentada. Ao contrário, a perda global de NADH (nicotinamida-adenina dinucleotídeo) ubiquinona oxidoredutase Fe-S proteína 4 (NDUFS4), uma subunidade no complexo RC 1, prejudica a reabsorção óssea e camundongos (ndufs4-/-) apresentam aumento da densidade mineral óssea (BMD) e um aparente fenótipo ósseo de osteopetrose.
O objetivo é estudar o fenótipo da célula óssea em pacientes com doença mitocondrial rara Portadores de MT-TL1 m.3243A>G (MIM: 590050). O gene codifica o fator de transcrição tRNALeu(UUA/UUG) e m.3243A>G enfraquece montagem do complexo RC com produção secundária de ATP prejudicada. O fenótipo está, em parte, associado à carga de mutação m.3243A>G, ou seja, nível de heteroplasmia (porcentagem de m.3243A>G/m.DNA de tipo selvagem). O grupo de estudo também inclui portadores de mutações no código nuclear POLG (MIM: 174763) e TWNK (MIM: 606075).
Hipótese: A função mitocondrial prejudicada afeta a diferenciação, o metabolismo e a atividade das células ósseas humanas, levando à formação óssea prejudicada e à fragilidade óssea.
Objetivo: Determinar se os portadores de mutações mitocondriais hereditárias, ou seja, disfunção mitocondrial, depleção de ATP e aumento secundário de ROS levam a alterações em:
- Taxa de diferenciação de OB in vitro, atividade de OB e formação óssea.
- Diferenciação de OC in vitro, atividade de OC e maior reabsorção óssea geral.
- Alterações in vivo na dinâmica do nível dos tecidos de formação e reabsorção óssea, conforme examinado em biópsias ósseas da crista ilíaca.
Desenho, participantes e métodos: Estudo de caso-controle transversal incluindo indivíduos (>18 anos) portadores de uma das seguintes mutações:
- MT-TL1 m.3243A>G
- mutação POLG
- TWNK
N=10 casos com cada variante genética patogênica e igual número de controles (n=30) pareados por sexo, idade e IMC.
Tipo de estudo
Inscrição (Estimado)
Estágio
- Não aplicável
Contactos e Locais
Locais de estudo
-
-
-
Aalborg, Dinamarca
- Dept. of Clinical Genetics
-
-
Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Descrição
Critérios de inclusão - casos:
- Diagnóstico genético com: MT-TL1 m.3243A>G, ou variante POLG, het ou variante TWNK, het, > 18 anos
- Consentimento informado assinado
Critérios de inclusão - controles:
- Indivíduos saudáveis pareados em idade e sexo > 18 anos
- Consentimento informado assinado
Critério de exclusão:
- Renal (creatinina > 90 µmol/l)
- Disfunção hepática (AST > 3 vezes o limite superior)
- Tratamento médico que influencia o metabolismo ósseo (corticosteróide oral <12 semanas, tratamento anti-osteoporose, esteróides sexuais, anticonvulsivantes)
- Gravidez
- Consumo excessivo de álcool
- Tratamento com anticoagulantes
- Coagulopatia pré-existente
- Alergia à lidocaína, morfina ou diazepam.
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Ciência básica
- Alocação: N / D
- Modelo Intervencional: Atribuição de grupo único
- Mascaramento: Nenhum (rótulo aberto)
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
|---|---|
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Outro: Casos e controles
Avaliação clínica, amostras de sangue, varredura de absorciometria de raios X de dupla energia (DXA) e avaliação da medula óssea e biópsia óssea marcada com tetraciclina
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Avaliação de amostras de sangue, medula óssea e biópsia óssea
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Taxa de acidificação extracelular (ECAR) (mpH/min)
Prazo: Até 12 semanas
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Medição de ECAR em células-tronco esqueléticas (mesenquimais) da medula óssea humana (hBM-MSCs), osteoblastos (OB) e osteoclastos (OC)
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Até 12 semanas
|
|
Taxa de consumo de oxigênio (OCR) (mpMol/min)
Prazo: Até 12 semanas
|
Medição de OCR em hBM-MSCs, OBs e OCs
|
Até 12 semanas
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|
Taxa de crescimento (número de células)
Prazo: Até 12 semanas
|
Taxa de crescimento de OBs e OCs
|
Até 12 semanas
|
Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Taxa de crescimento ósseo (µm/dia)
Prazo: Até 4 semanas
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Medições histomofométricas do crescimento ósseo em biópsia óssea marcada com tetraciclina
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Até 4 semanas
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Histomorfométrico
Prazo: Até 4 semanas
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Estudos histomofométricos de biópsias ósseas
|
Até 4 semanas
|
Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Anja L Frederiksen, MD, Aalborg University Hospital
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Gorman GS, Chinnery PF, DiMauro S, Hirano M, Koga Y, McFarland R, Suomalainen A, Thorburn DR, Zeviani M, Turnbull DM. Mitochondrial diseases. Nat Rev Dis Primers. 2016 Oct 20;2:16080. doi: 10.1038/nrdp.2016.80.
- Seeman E, Delmas PD. Bone quality--the material and structural basis of bone strength and fragility. N Engl J Med. 2006 May 25;354(21):2250-61. doi: 10.1056/NEJMra053077. No abstract available.
- Bartell SM, Kim HN, Ambrogini E, Han L, Iyer S, Serra Ucer S, Rabinovitch P, Jilka RL, Weinstein RS, Zhao H, O'Brien CA, Manolagas SC, Almeida M. FoxO proteins restrain osteoclastogenesis and bone resorption by attenuating H2O2 accumulation. Nat Commun. 2014 Apr 30;5:3773. doi: 10.1038/ncomms4773.
- Andreasen CM, Ding M, Overgaard S, Bollen P, Andersen TL. A reversal phase arrest uncoupling the bone formation and resorption contributes to the bone loss in glucocorticoid treated ovariectomised aged sheep. Bone. 2015 Jun;75:32-9. doi: 10.1016/j.bone.2015.02.014. Epub 2015 Feb 14.
- Kim SJ, Mehta HH, Wan J, Kuehnemann C, Chen J, Hu JF, Hoffman AR, Cohen P. Mitochondrial peptides modulate mitochondrial function during cellular senescence. Aging (Albany NY). 2018 Jun 10;10(6):1239-1256. doi: 10.18632/aging.101463.
- Sinha K, Das J, Pal PB, Sil PC. Oxidative stress: the mitochondria-dependent and mitochondria-independent pathways of apoptosis. Arch Toxicol. 2013 Jul;87(7):1157-80. doi: 10.1007/s00204-013-1034-4. Epub 2013 Mar 30.
- Meissner C, Bruse P, Mohamed SA, Schulz A, Warnk H, Storm T, Oehmichen M. The 4977 bp deletion of mitochondrial DNA in human skeletal muscle, heart and different areas of the brain: a useful biomarker or more? Exp Gerontol. 2008 Jul;43(7):645-652. doi: 10.1016/j.exger.2008.03.004. Epub 2008 Mar 20.
- Lee HC, Wei YH. Oxidative stress, mitochondrial DNA mutation, and apoptosis in aging. Exp Biol Med (Maywood). 2007 May;232(5):592-606.
- Hayashi G, Cortopassi G. Oxidative stress in inherited mitochondrial diseases. Free Radic Biol Med. 2015 Nov;88(Pt A):10-7. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2015.05.039. Epub 2015 Jun 12.
- Gandhi SS, Muraresku C, McCormick EM, Falk MJ, McCormack SE. Risk factors for poor bone health in primary mitochondrial disease. J Inherit Metab Dis. 2017 Sep;40(5):673-683. doi: 10.1007/s10545-017-0046-2. Epub 2017 Apr 27.
- Chen CT, Shih YR, Kuo TK, Lee OK, Wei YH. Coordinated changes of mitochondrial biogenesis and antioxidant enzymes during osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells. Stem Cells. 2008 Apr;26(4):960-8. doi: 10.1634/stemcells.2007-0509. Epub 2008 Jan 24.
- Gao J, Feng Z, Wang X, Zeng M, Liu J, Han S, Xu J, Chen L, Cao K, Long J, Li Z, Shen W, Liu J. SIRT3/SOD2 maintains osteoblast differentiation and bone formation by regulating mitochondrial stress. Cell Death Differ. 2018 Feb;25(2):229-240. doi: 10.1038/cdd.2017.144. Epub 2017 Sep 15.
- Brown D, Breton S. Mitochondria-rich, proton-secreting epithelial cells. J Exp Biol. 1996 Nov;199(Pt 11):2345-58. doi: 10.1242/jeb.199.11.2345.
- Lemma S, Sboarina M, Porporato PE, Zini N, Sonveaux P, Di Pompo G, Baldini N, Avnet S. Energy metabolism in osteoclast formation and activity. Int J Biochem Cell Biol. 2016 Oct;79:168-180. doi: 10.1016/j.biocel.2016.08.034. Epub 2016 Aug 30.
- Arnett TR, Orriss IR. Metabolic properties of the osteoclast. Bone. 2018 Oct;115:25-30. doi: 10.1016/j.bone.2017.12.021. Epub 2017 Dec 21.
- Lee NK, Choi YG, Baik JY, Han SY, Jeong DW, Bae YS, Kim N, Lee SY. A crucial role for reactive oxygen species in RANKL-induced osteoclast differentiation. Blood. 2005 Aug 1;106(3):852-9. doi: 10.1182/blood-2004-09-3662. Epub 2005 Apr 7.
- Garrett IR, Boyce BF, Oreffo RO, Bonewald L, Poser J, Mundy GR. Oxygen-derived free radicals stimulate osteoclastic bone resorption in rodent bone in vitro and in vivo. J Clin Invest. 1990 Mar;85(3):632-9. doi: 10.1172/JCI114485.
- Almeida M, Han L, Martin-Millan M, O'Brien CA, Manolagas SC. Oxidative stress antagonizes Wnt signaling in osteoblast precursors by diverting beta-catenin from T cell factor- to forkhead box O-mediated transcription. J Biol Chem. 2007 Sep 14;282(37):27298-27305. doi: 10.1074/jbc.M702811200. Epub 2007 Jul 10.
- Trifunovic A, Wredenberg A, Falkenberg M, Spelbrink JN, Rovio AT, Bruder CE, Bohlooly-Y M, Gidlof S, Oldfors A, Wibom R, Tornell J, Jacobs HT, Larsson NG. Premature ageing in mice expressing defective mitochondrial DNA polymerase. Nature. 2004 May 27;429(6990):417-23. doi: 10.1038/nature02517.
- Miyazaki T, Iwasawa M, Nakashima T, Mori S, Shigemoto K, Nakamura H, Katagiri H, Takayanagi H, Tanaka S. Intracellular and extracellular ATP coordinately regulate the inverse correlation between osteoclast survival and bone resorption. J Biol Chem. 2012 Nov 2;287(45):37808-23. doi: 10.1074/jbc.M112.385369. Epub 2012 Sep 17.
- Jin Z, Wei W, Yang M, Du Y, Wan Y. Mitochondrial complex I activity suppresses inflammation and enhances bone resorption by shifting macrophage-osteoclast polarization. Cell Metab. 2014 Sep 2;20(3):483-98. doi: 10.1016/j.cmet.2014.07.011. Epub 2014 Aug 14.
- Varanasi SS, Francis RM, Berger CE, Papiha SS, Datta HK. Mitochondrial DNA deletion associated oxidative stress and severe male osteoporosis. Osteoporos Int. 1999;10(2):143-9. doi: 10.1007/s001980050209.
- Kato H, Han X, Yamaza H, Masuda K, Hirofuji Y, Sato H, Pham TTM, Taguchi T, Nonaka K. Direct effects of mitochondrial dysfunction on poor bone health in Leigh syndrome. Biochem Biophys Res Commun. 2017 Nov 4;493(1):207-212. doi: 10.1016/j.bbrc.2017.09.045. Epub 2017 Sep 9.
- Langdahl JH, Frederiksen AL, Hansen SJ, Andersen PH, Yderstraede KB, Duno M, Vissing J, Frost M. Mitochondrial Point Mutation m.3243A>G Associates With Lower Bone Mineral Density, Thinner Cortices, and Reduced Bone Strength: A Case-Control Study. J Bone Miner Res. 2017 Oct;32(10):2041-2048. doi: 10.1002/jbmr.3193. Epub 2017 Jul 18.
- van den Ouweland JM, Lemkes HH, Ruitenbeek W, Sandkuijl LA, de Vijlder MF, Struyvenberg PA, van de Kamp JJ, Maassen JA. Mutation in mitochondrial tRNA(Leu)(UUR) gene in a large pedigree with maternally transmitted type II diabetes mellitus and deafness. Nat Genet. 1992 Aug;1(5):368-71. doi: 10.1038/ng0892-368.
- Sasarman F, Antonicka H, Shoubridge EA. The A3243G tRNALeu(UUR) MELAS mutation causes amino acid misincorporation and a combined respiratory chain assembly defect partially suppressed by overexpression of EFTu and EFG2. Hum Mol Genet. 2008 Dec 1;17(23):3697-707. doi: 10.1093/hmg/ddn265. Epub 2008 Aug 27.
- Frederiksen AL, Andersen PH, Kyvik KO, Jeppesen TD, Vissing J, Schwartz M. Tissue specific distribution of the 3243A->G mtDNA mutation. J Med Genet. 2006 Aug;43(8):671-7. doi: 10.1136/jmg.2005.039339. Epub 2006 Feb 20.
- Langdahl JH, Larsen M, Frost M, Andersen PH, Yderstraede KB, Vissing J, Duno M, Thomassen M, Frederiksen AL. Lecocytes mutation load declines with age in carriers of the m.3243A>G mutation: A 10-year Prospective Cohort. Clin Genet. 2018 Apr;93(4):925-928. doi: 10.1111/cge.13201.
- Jafari A, Qanie D, Andersen TL, Zhang Y, Chen L, Postert B, Parsons S, Ditzel N, Khosla S, Johansen HT, Kjaersgaard-Andersen P, Delaisse JM, Abdallah BM, Hesselson D, Solberg R, Kassem M. Legumain Regulates Differentiation Fate of Human Bone Marrow Stromal Cells and Is Altered in Postmenopausal Osteoporosis. Stem Cell Reports. 2017 Feb 14;8(2):373-386. doi: 10.1016/j.stemcr.2017.01.003. Epub 2017 Feb 2.
- Abdallah BM, Ditzel N, Kassem M. Assessment of bone formation capacity using in vivo transplantation assays: procedure and tissue analysis. Methods Mol Biol. 2008;455:89-100. doi: 10.1007/978-1-59745-104-8_6.
- Soe K, Delaisse JM. Glucocorticoids maintain human osteoclasts in the active mode of their resorption cycle. J Bone Miner Res. 2010 Oct;25(10):2184-92. doi: 10.1002/jbmr.113.
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo (Real)
Conclusão Primária (Estimado)
Conclusão do estudo (Estimado)
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- S-20180170
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