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L'impatto della disfunzione mitocondriale sul metabolismo e sul rimodellamento delle cellule ossee umane

1 ottobre 2025 aggiornato da: Anja Lisbeth Frederiksen, Aalborg University Hospital

Studi su cellule e topi suggeriscono che la disfunzione mitocondriale può causare un'alterazione della struttura ossea.

Ipotesi: la ridotta produzione di energia mitocondriale influisce negativamente sullo sviluppo e sull'attività delle cellule ossee.

Confrontando gli esseri umani con la variante del DNA mitocondriale, m.3243A>G, varianti patogene nei geni POLG o TWNK con controlli sani, l'obiettivo è valutare l'effetto della disfunzione mitocondriale su: 1: sviluppo e attività delle cellule ossee nel midollo osseo cellule e sangue.

2: metabolismo delle cellule ossee compreso il consumo di glucosio. 3: struttura ossea valutata mediante microscopia elettronica e scansioni μCT di biopsie ossee.

Panoramica dello studio

Descrizione dettagliata

L'attività mitocondriale intatta, compreso un adeguato apporto energetico, è vitale per i tessuti metabolici attivi, vale a dire il muscolo scheletrico, il cuore e il cervello. Lo scheletro umano rappresenta un ulteriore tessuto altamente metabolicamente attivo; tuttavia il significato del ruolo mitocondriale nella salute delle ossa scheletriche umane può essere ulteriormente studiato.

Il rimodellamento osseo costituisce il processo rigenerativo accoppiato e continuo della degradazione ossea da parte degli osteoclasti delle cellule che riassorbono l'osso (OC) seguito dalla formazione della matrice ossea da parte degli osteoblasti che formano l'osso (OB). Lo squilibrio quantitativo tra riassorbimento e formazione si traduce in disturbi scheletrici con bassa massa ossea inclusa l'osteoporosi e il suo aumentato rischio di fratture da fragilità.

I mitocondri generano energia cellulare adenosina trifosfato (ATP) attraverso il processo di fosforilazione ossidativa (OXPHOS) nella catena respiratoria (RC) con una produzione secondaria dei sottoprodotti deleteri radicali liberi, cioè specie reattive dell'ossigeno (ROS). In particolare, i mitocondri contengono il proprio DNA (m.DNA) e le subunità RC sono codificate rispettivamente dai geni m.DNA e DNA nucleare (n.DNA). Con l'invecchiamento, le mutazioni somatiche deleterie del m.DNA si accumulano nel muscolo scheletrico e nel cuore, e le mutazioni somatiche del m.DNA così come le mutazioni ereditarie del m.DNA o del n.DNA possono causare disfunzione mitocondriale con alterata produzione di ATP e accumulo di ROS. Le mutazioni m.DNA possono compromettere la funzione cerebrale, scheletrica e dei muscoli cardiaci, ma gli effetti sul metabolismo e sul rimodellamento delle cellule ossee umane sono sconosciuti. Un recente studio su una coorte di giovani individui indica che le malattie mitocondriali rappresentano un rischio di fratture da fragilità ossea.

Studi preclinici suggeriscono che ATP e ROS regolano il metabolismo osseo. Il numero di m.DNA e l'attività mitocondriale aumentano per supportare la differenziazione dalle cellule staminali scheletriche umane (mesenchimali) (hMSC) agli OB che formano l'osso maturo. L'inibizione dell'attività mitocondriale o l'aumento dei livelli di ROS sopprimono la differenziazione OB. Allo stesso modo, gli OC sono ricchi di mitocondri. Le colture umane di OC dimostrano che l'approvvigionamento energetico per la differenziazione di OC dai loro progenitori si basa su OXPHOS mentre l'attività di riassorbimento di OC si basa sulla glicolisi.

Inoltre, prove emergenti suggeriscono che la plasticità metabolica, ovvero la regolazione dei livelli di glicolisi, OXPHOS e piruvato, contribuisce alla regolazione della differenziazione di OB e OC.

L'attivatore del recettore del fattore nucleare kappa-Beta ligando (RANKL) secreto dagli OB attiva il riassorbimento di OC. Nei topi, la stimolazione RANKL dei progenitori OC del midollo osseo aumenta i livelli intracellulari di ROS, che stimola la differenziazione OC e il riassorbimento osseo in vitro. Inoltre, i ROS inibiscono la via di segnalazione di tipo senza ali (Wnt) con attenuazione dell'osteoblastogenesi e diminuzione della formazione ossea.

Inoltre, i topi con mutazioni nel dominio di lettura delle prove codificato n.DNA della m.DNA polimerasi POLG (PolgA-/-) accumulano mutazioni m.DNA e presentano un fenotipo di invecchiamento precoce che include una bassa massa ossea. Inoltre, la carenza del fattore di trascrizione mitocondriale (TFAM) codificato da n.DNA causa la deplezione di ATP e i topi con OC carenti di TFAM hanno una maggiore attività OC e un aumento del riassorbimento osseo. Al contrario, la perdita globale di NADH (nicotinamide-adenina dinucleotide) ubiquinone ossidoreduttasi Fe-S proteina 4 (NDUFS4) una subunità nel complesso RC 1 compromette il riassorbimento osseo e i topi (ndufs4-/-) presentano una maggiore densità minerale ossea (BMD) e un apparente fenotipo osseo osteopetrosi.

L'obiettivo è studiare il fenotipo delle cellule ossee in pazienti con malattia mitocondriale rara Portatori di MT-TL1 m.3243A>G (MIM: 590050). Il gene codifica per il fattore di trascrizione tRNALeu(UUA/UUG) e m.3243A>G indebolisce il assemblaggio del complesso RC con una produzione di ATP compromessa secondaria. Il fenotipo è, in parte, associato al carico di mutazione m.3243A>G, cioè al livello di eteroplasmia (percentuale di m.3243A>G/m.DNA di tipo selvatico). Il gruppo di studio comprende anche portatori di mutazioni nel codificato nucleare POLG (MIM: 174763) e TWNK (MIM: 606075).

Ipotesi: la compromissione della funzione mitocondriale influisce sulla differenziazione, sul metabolismo e sull'attività delle cellule ossee umane, portando a una compromissione della formazione ossea e alla fragilità ossea.

Obiettivo: determinare se i portatori di mutazioni mitocondriali ereditarie, ad esempio disfunzione mitocondriale, deplezione di ATP e aumento secondario di ROS, portino a cambiamenti in:

  1. Tasso di differenziazione dell'OB in vitro, attività dell'OB e formazione ossea.
  2. Differenziazione OC in vitro, attività OC e maggiore riassorbimento osseo complessivo.
  3. Cambiamenti in vivo nelle dinamiche a livello dei tessuti della formazione ossea e del riassorbimento come esaminato nelle biopsie ossee della cresta iliaca.

Disegno, partecipanti e metodi: studio caso-controllo trasversale che include soggetti (>18 anni) portatori di una delle seguenti mutazioni:

  1. MT-TL1m.3243A>G
  2. Mutazione POLG
  3. TWNK

N=10 casi con ciascuna variante genetica patogena e uguale numero di controlli (n=30) appaiati per sesso, età e BMI.

Tipo di studio

Interventistico

Iscrizione (Stimato)

30

Fase

  • Non applicabile

Contatti e Sedi

Questa sezione fornisce i recapiti di coloro che conducono lo studio e informazioni su dove viene condotto lo studio.

Luoghi di studio

      • Aalborg, Danimarca
        • Dept. of Clinical Genetics

Criteri di partecipazione

I ricercatori cercano persone che corrispondano a una certa descrizione, chiamata criteri di ammissibilità. Alcuni esempi di questi criteri sono le condizioni generali di salute di una persona o trattamenti precedenti.

Criteri di ammissibilità

Età idonea allo studio

18 anni e precedenti (Adulto, Adulto più anziano)

Accetta volontari sani

Sì

Descrizione

Criteri di inclusione - casi:

  • Diagnosi genetica con: MT-TL1 m.3243A>G, o variante POLG, het o variante TWNK, het, > 18 anni
  • Consenso informato firmato

Criteri di inclusione - controlli:

  • Soggetti sani appaiati per età e sesso > 18 anni
  • Consenso informato firmato

Criteri di esclusione:

  • Renale (creatinina > 90 µmol/l)
  • Disfunzione epatica (AST > 3 volte il limite superiore)
  • Trattamento medico che influenza il metabolismo osseo (corticosteroidi orali <12 settimane, trattamento anti-osteoporosi, steroidi sessuali, anticonvulsivanti)
  • Gravidanza
  • Consumo eccessivo di alcol
  • Trattamento con anticoagulanti
  • Coagulopatia preesistente
  • Allergia alla lidocaina, alla morfina o al diazepam.

Piano di studio

Questa sezione fornisce i dettagli del piano di studio, compreso il modo in cui lo studio è progettato e ciò che lo studio sta misurando.

Come è strutturato lo studio?

Dettagli di progettazione

  • Scopo principale: Scienza basilare
  • Assegnazione: N / A
  • Modello interventistico: Assegnazione di gruppo singolo
  • Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)

Armi e interventi

Gruppo di partecipanti / Arm
Intervento / Trattamento
Altro: Casi e controlli
Valutazione clinica, campioni di sangue, scansione di assorbimetria a raggi X a doppia energia (DXA) e valutazione del midollo osseo e biopsia ossea marcata con tetraciclina
Valutazione di campioni di sangue, midollo osseo e biopsia ossea

Cosa sta misurando lo studio?

Misure di risultato primarie

Misura del risultato
Misura Descrizione
Lasso di tempo
Tasso di acidificazione extracellulare (ECAR) (mpH/min)
Lasso di tempo: Fino a 12 settimane
Misurazione dell'ECAR nelle cellule staminali scheletriche (mesenchimali) del midollo osseo umano (hBM-MSC), negli osteoblasti (OB) e negli osteoclasti (OC)
Fino a 12 settimane
Tasso di consumo di ossigeno (OCR) (mpMol/min)
Lasso di tempo: Fino a 12 settimane
Misurazione dell'OCR in hBM-MSC, OB e OC
Fino a 12 settimane
Tasso di crescita (numero di cellule)
Lasso di tempo: Fino a 12 settimane
Tasso di crescita di OB e OC
Fino a 12 settimane

Misure di risultato secondarie

Misura del risultato
Misura Descrizione
Lasso di tempo
Tasso di crescita ossea (µm/giorno)
Lasso di tempo: Fino a 4 settimane
Misurazioni istomofometriche della crescita ossea nella biopsia ossea marcata con tetraciclina
Fino a 4 settimane
Istomorfometrico
Lasso di tempo: Fino a 4 settimane
Studi istomofometrici su biopsie ossee
Fino a 4 settimane

Collaboratori e investigatori

Qui è dove troverai le persone e le organizzazioni coinvolte in questo studio.

Investigatori

  • Investigatore principale: Anja L Frederiksen, MD, Aalborg University Hospital

Pubblicazioni e link utili

La persona responsabile dell'inserimento delle informazioni sullo studio fornisce volontariamente queste pubblicazioni. Questi possono riguardare qualsiasi cosa relativa allo studio.

Pubblicazioni generali

Studiare le date dei record

Queste date tengono traccia dell'avanzamento della registrazione dello studio e dell'invio dei risultati di sintesi a ClinicalTrials.gov. I record degli studi e i risultati riportati vengono esaminati dalla National Library of Medicine (NLM) per assicurarsi che soddisfino specifici standard di controllo della qualità prima di essere pubblicati sul sito Web pubblico.

Studia le date principali

Inizio studio (Effettivo)

1 febbraio 2020

Completamento primario (Stimato)

1 agosto 2026

Completamento dello studio (Stimato)

1 dicembre 2026

Date di iscrizione allo studio

Primo inviato

22 luglio 2022

Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità

29 luglio 2022

Primo Inserito (Effettivo)

2 agosto 2022

Aggiornamenti dei record di studio

Ultimo aggiornamento pubblicato (Stimato)

2 ottobre 2025

Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC

1 ottobre 2025

Ultimo verificato

1 ottobre 2025

Maggiori informazioni

Termini relativi a questo studio

Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)

Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?

NO

Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio

Studia un prodotto farmaceutico regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti

No

Studia un dispositivo regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti

No

prodotto fabbricato ed esportato dagli Stati Uniti

No

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