盆腔放疗对肠道微生物组和代谢组的影响 (EPRIMM)
研究盆腔放疗对肠道微生物组和代谢组的影响,以改进胃肠道 (GI) 毒性的检测和管理。
十分之八的患者会在放射治疗期间出现肠道问题,例如腹泻、疼痛和失禁,其中一半会出现长期困难的肠道问题。 尚不清楚为什么有些人会出现肠道问题而其他人不会出现肠道问题,也没有测试可以预测哪些人在接受治疗后会出现肠道问题。
在某些肠道疾病中,肠道细菌(微生物组)的数量和类型的变化之间存在联系,可以使用基因检测在简单的粪便样本中检测这些不同的细菌。 此外,肠道细菌会在粪便中产生不同的气体,称为“挥发性有机化合物”(VOC),可以在粪便样本中进行测量。 在其他肠道疾病中发现了特定的 VOC 模式,小型研究表明,接受盆腔放疗的患者的粪便中存在特定的 VOC 和肠道细菌模式,这可能有助于识别可能会出现肠道问题的人。 饮食可以改变微生物组/挥发性有机化合物,因此饮食改变可以改善放疗后的肠道症状。
研究人员希望对接受盆腔放疗的子宫癌、宫颈癌或膀胱癌患者的粪便样本进行检测,以了解严重肠道症状患者与轻度肠道症状患者的肠道细菌和挥发性有机化合物的数量/类型是否存在差异. 他们还想看看挥发性有机化合物或肠道细菌的这些差异是否可以判断谁会在放疗期间或放疗后出现严重的肠道症状,并确定饮食的效果。
第一步是进行小规模研究,以确认更大规模的研究是否可行。 这将确保研究人员可以安全地招募和同意人们,并将使用多种问卷选项测试测量肠道症状的最佳方法。 他们将收集所需的信息,以计算出在大型试验中需要多少人来全面检验该理论。 最终,研究人员希望利用肠道细菌和挥发性有机化合物的数量/类型的差异来寻找更好地预防和治疗盆腔放疗后肠道问题的方法。
研究概览
详细说明
背景 80% 的患者在盆腔放疗期间出现胃肠道毒性,一半患者出现慢性胃肠道毒性。 这表现为腹泻、疼痛、出血和失禁。 与许多疾病不同,触发事件(即放射治疗)是已知的,可以识别特定的病理生理变化。 接受盆腔放疗的患者的代谢组学和微生物组学概况以及与 GI 毒性的联系尚未得到充分探索。 研究表明辐射会改变肠道微生物组,从而改变微生物多样性。 在没有 GI 症状的患者中观察到较高的放疗前多样性,随着 GI 毒性的增加而降低多样性,并且低微生物多样性与慢性 GI 毒性的严重程度之间存在关联。 饮食变化可以改变微生物组成。 粪便 VOC 是在环境温度下以气相存在并形成粪便代谢组的化学物质,是肠道微生物群和细胞代谢相互作用的结果。 可以使用成熟的技术识别 VOC,并且已经在特定的 GI 疾病中识别出独特的 VOC 模式。 早期数据表明,具有高胃肠道毒性水平和低水平胃肠道毒性的患者之间的 VOC 存在差异。 代谢组学和微生物组学分析和操作有可能促进对疾病相关途径的理解,以预测、预防和治疗胃肠道毒性。
基本原理 胃肠道毒性是盆腔放疗期间和之后发病率的重要原因,其对生活质量产生不利影响。 对这种情况的研究很少。 接受盆腔放疗的患者的代谢组学和微生物组学概况以及与 GI 毒性的联系尚未得到充分探索。 研究表明辐射会改变肠道微生物组,从而改变微生物多样性。 在没有 GI 症状的患者中观察到较高的放疗前多样性,随着 GI 毒性的增加而降低多样性,并且低微生物多样性与慢性 GI 毒性的严重程度之间存在关联。 饮食变化可以改变微生物组成。 已在特定的胃肠道疾病中发现了独特的 VOC 模式。 早期数据表明,具有高胃肠道毒性水平和低水平胃肠道毒性的患者之间的 VOC 存在差异。 代谢组学和微生物组学分析和操作有可能促进对疾病相关途径的理解,以预测、预防和治疗胃肠道毒性。
通过比较放疗前后收集的样本,研究人员旨在识别潜在的生物标志物。 他们将整合元数据,表明对治疗有负面的 GI 反应,即 来自经过验证的问卷的 GI 毒性症状,以及微生物群落数据和 VOC 数据,以识别随症状增加的标记物(VOC 或细菌)。 他们还将通过分析社区预处理来确定哪些物种使患者更容易受到负面结果的影响。
以前使用基于培养方法的文献显示大肠杆菌和葡萄球菌属有所增加。 调查人员将确定他们是否可以证实这一点。 就 VOC 而言,他们将寻找炎症标志物,例如 醛类。 有人提出,辐射引起的 GI 毒性与 IBD,特别是克罗恩病之间存在相似之处,因此,看看是否存在与克罗恩病中观察到的微生物群落和 VOC 概况相似的生态失调,即在有严重胃肠道毒性症状的患者中是否也观察到物种多样性减少、拟杆菌属和肠杆菌科增加以及粪便细菌减少。
改变肠道微生物组的潜在干预措施,例如 饮食、益生菌/益生菌、合成粪便微生物群移植目前在其他相关临床领域广泛用于临床研究,例如 炎症性肠病,以及可能由这项工作和随后的最终研究中的信息指示的干预类型。
随后的最终研究的目标如下:
- 确定 4 周和 6 个月时胃肠道毒性最严重和最不严重的患者的 VOC 概况/微生物组的差异。
- 确定在 4 周和 6 个月时出现最严重和最不严重 GI 毒性的患者在基线时 VOC 概况/微生物组的差异。
- 表征疾病相关的胃肠道毒性途径,以确定潜在的治疗目标,包括饮食。
研究类型
注册 (实际的)
联系人和位置
学习地点
-
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Manchester、英国、M20 4GJ
- Louise James
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参与标准
资格标准
适合学习的年龄
接受健康志愿者
取样方法
研究人群
描述
纳入标准:
- 盆腔放疗-子宫颈/子宫内膜/膀胱癌。
- ≥18 岁。
- 能够同意。
- 能够完成问卷调查。
排除标准:
- 预先存在的胃肠道疾病
- 前 4 周内进行过腹盆腔手术
学习计划
研究是如何设计的?
设计细节
- 观测模型:其他
- 时间观点:预期
队列和干预
团体/队列 |
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EPRIMM 研究参与者
无干预:问卷、食物日记和粪便样本。
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研究衡量的是什么?
主要结果指标
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
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录用率
大体时间:12个月
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招募率:我们能否为研究实现足够的招募?
患者愿意参与吗?
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12个月
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招聘的可接受性
大体时间:12个月
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使用由研究护士领导的内部生成的未经验证的问卷测量招募过程对患者队列的可接受性
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12个月
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研究的患者经验
大体时间:6个月
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使用由研究护士领导的内部生成的未经验证的问卷测量患者队列研究过程的经验
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6个月
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粪便样本采集
大体时间:6个月
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使用由研究护士领导的内部生成的未经验证的问卷测量,为患者队列获取粪便样本的实用性和可接受性
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6个月
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离职率
大体时间:18个月
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完成前离开研究的患者比例
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18个月
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减员原因
大体时间:18个月
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患者在完成前离开研究的原因
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18个月
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次要结果测量
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
|---|---|---|
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问卷/食物日记的可接受性
大体时间:6个月
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使用由研究护士领导的内部生成的未经验证的问卷测量问卷和食物日记对患者队列的可接受性
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6个月
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完成资料
大体时间:6个月
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完成研究的患者比例,例如患者流失率和数据项缺失率
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6个月
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参加更大的多中心试验所需的参与者人数
大体时间:24个月
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确定微生物组(多样性或组成)或 VOCs 概况,这些概况会带来 GI 毒性风险,并且与参与者在急性和慢性阶段对放疗的反应更严重的 GI 毒性相关
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24个月
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参加更大的多中心试验所需的参与者人数,该试验将从代谢组学和微生物组学分析中确定潜在的治疗靶点
大体时间:24个月
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使用代谢组学和微生物组学分析进一步了解胃肠道毒性的病理生理学,以确定治疗和/或预防的潜在治疗目标,包括饮食目标
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24个月
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其他结果措施
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
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微生物组数据(DNA 读数)
大体时间:24个月
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获取与胃肠道毒性风险相关的微生物组(多样性或组成)的初步数据,这些数据与急性期和慢性期放疗反应中更严重的胃肠道毒性相关
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24个月
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通过固相微萃取和气相色谱-质谱 SPME-GC/MS 分析 VOC 图
大体时间:24个月
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获取与 GI 毒性风险相关的 VOC 概况的初始数据(峰面积/代谢物(VOC)/样本),并且与急性和慢性阶段放疗反应中更严重的 GI 毒性相关。
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24个月
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通过 SPME-GC/MS 进行代谢组学分析
大体时间:24个月
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使用代谢组学分析进一步了解胃肠道毒性的病理生理学,以确定治疗和/或预防的潜在治疗目标,包括饮食目标
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24个月
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通过细菌 16S rRNA 元条形码测序进行微生物组学分析
大体时间:24个月
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使用微生物组分析(包含读数/物种/样本数量的数据表)进一步了解胃肠道毒性的病理生理学,以确定治疗和/或预防的潜在治疗目标,包括饮食目标
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24个月
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合作者和调查者
调查人员
- 首席研究员:Caroline Henson, MBBS PhD、The Christie NHS Foundation Trust
出版物和有用的链接
一般刊物
- David LA, Maurice CF, Carmody RN, Gootenberg DB, Button JE, Wolfe BE, Ling AV, Devlin AS, Varma Y, Fischbach MA, Biddinger SB, Dutton RJ, Turnbaugh PJ. Diet rapidly and reproducibly alters the human gut microbiome. Nature. 2014 Jan 23;505(7484):559-63. doi: 10.1038/nature12820. Epub 2013 Dec 11.
- Wedlake L, Thomas K, McGough C, Andreyev HJ. Small bowel bacterial overgrowth and lactose intolerance during radical pelvic radiotherapy: An observational study. Eur J Cancer. 2008 Oct;44(15):2212-7. doi: 10.1016/j.ejca.2008.07.018. Epub 2008 Aug 27.
- Nam YD, Kim HJ, Seo JG, Kang SW, Bae JW. Impact of pelvic radiotherapy on gut microbiota of gynecological cancer patients revealed by massive pyrosequencing. PLoS One. 2013 Dec 18;8(12):e82659. doi: 10.1371/journal.pone.0082659. eCollection 2013.
- Kim YS, Kim J, Park SJ. High-throughput 16S rRNA gene sequencing reveals alterations of mouse intestinal microbiota after radiotherapy. Anaerobe. 2015 Jun;33:1-7. doi: 10.1016/j.anaerobe.2015.01.004. Epub 2015 Jan 16.
- Manichanh C, Varela E, Martinez C, Antolin M, Llopis M, Dore J, Giralt J, Guarner F, Malagelada JR. The gut microbiota predispose to the pathophysiology of acute postradiotherapy diarrhea. Am J Gastroenterol. 2008 Jul;103(7):1754-61. doi: 10.1111/j.1572-0241.2008.01868.x. Epub 2008 Jun 28.
- Goudarzi M, Mak TD, Jacobs JP, Moon BH, Strawn SJ, Braun J, Brenner DJ, Fornace AJ Jr, Li HH. An Integrated Multi-Omic Approach to Assess Radiation Injury on the Host-Microbiome Axis. Radiat Res. 2016 Sep;186(3):219-34. doi: 10.1667/RR14306.1. Epub 2016 Aug 11.
- Wang A, Ling Z, Yang Z, Kiela PR, Wang T, Wang C, Cao L, Geng F, Shen M, Ran X, Su Y, Cheng T, Wang J. Gut microbial dysbiosis may predict diarrhea and fatigue in patients undergoing pelvic cancer radiotherapy: a pilot study. PLoS One. 2015 May 8;10(5):e0126312. doi: 10.1371/journal.pone.0126312. eCollection 2015.
- Reis Ferreira M, Andreyev HJN, Mohammed K, Truelove L, Gowan SM, Li J, Gulliford SL, Marchesi JR, Dearnaley DP. Microbiota- and Radiotherapy-Induced Gastrointestinal Side-Effects (MARS) Study: A Large Pilot Study of the Microbiome in Acute and Late-Radiation Enteropathy. Clin Cancer Res. 2019 Nov 1;25(21):6487-6500. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-19-0960. Epub 2019 Jul 25.
- Cui M, Xiao H, Li Y, Zhou L, Zhao S, Luo D, Zheng Q, Dong J, Zhao Y, Zhang X, Zhang J, Lu L, Wang H, Fan S. Faecal microbiota transplantation protects against radiation-induced toxicity. EMBO Mol Med. 2017 Apr;9(4):448-461. doi: 10.15252/emmm.201606932.
- Reade S, Mayor A, Aggio R, Khalid T, Pritchard DM, Ewer AK, et al. Optimisation of Sample Preparation for Direct SPME-GC-MS Analysis of Murine and Human Faecal Volatile Organic Compounds for Metabolomic Studies. J Anal Bioanal Tech. 2014;5(2).
- Hough R, Archer D, Probert C. A comparison of sample preparation methods for extracting volatile organic compounds (VOCs) from equine faeces using HS-SPME. Metabolomics. 2018;14(2):19. doi: 10.1007/s11306-017-1315-7. Epub 2018 Jan 4.
- Probert CS. Role of faecal gas analysis for the diagnosis of IBD. Biochem Soc Trans. 2011 Aug;39(4):1079-80. doi: 10.1042/BST0391079.
- Probert CS, Ahmed I, Khalid T, Johnson E, Smith S, Ratcliffe N. Volatile organic compounds as diagnostic biomarkers in gastrointestinal and liver diseases. J Gastrointestin Liver Dis. 2009 Sep;18(3):337-43.
- Covington JA, Wedlake L, Andreyev J, Ouaret N, Thomas MG, Nwokolo CU, Bardhan KD, Arasaradnam RP. The detection of patients at risk of gastrointestinal toxicity during pelvic radiotherapy by electronic nose and FAIMS: a pilot study. Sensors (Basel). 2012 Sep 26;12(10):13002-18. doi: 10.3390/s121013002.
- Stringer AM, Al-Dasooqi N, Bowen JM, Tan TH, Radzuan M, Logan RM, Mayo B, Keefe DM, Gibson RJ. Biomarkers of chemotherapy-induced diarrhoea: a clinical study of intestinal microbiome alterations, inflammation and circulating matrix metalloproteinases. Support Care Cancer. 2013 Jul;21(7):1843-52. doi: 10.1007/s00520-013-1741-7. Epub 2013 Feb 10.
- Ferreira MR, Muls A, Dearnaley DP, Andreyev HJ. Microbiota and radiation-induced bowel toxicity: lessons from inflammatory bowel disease for the radiation oncologist. Lancet Oncol. 2014 Mar;15(3):e139-47. doi: 10.1016/S1470-2045(13)70504-7.
- Andreyev J. Gastrointestinal symptoms after pelvic radiotherapy: a new understanding to improve management of symptomatic patients. Lancet Oncol. 2007 Nov;8(11):1007-17. doi: 10.1016/S1470-2045(07)70341-8.
- Gami B, Harrington K, Blake P, Dearnaley D, Tait D, Davies J, Norman AR, Andreyev HJ. How patients manage gastrointestinal symptoms after pelvic radiotherapy. Aliment Pharmacol Ther. 2003 Nov 15;18(10):987-94. doi: 10.1046/j.1365-2036.2003.01760.x.
- Lam V, Moulder JE, Salzman NH, Dubinsky EA, Andersen GL, Baker JE. Intestinal microbiota as novel biomarkers of prior radiation exposure. Radiat Res. 2012 May;177(5):573-83. doi: 10.1667/rr2691.1. Epub 2012 Mar 23.
- Xu X, Xu P, Ma C, Tang J, Zhang X. Gut microbiota, host health, and polysaccharides. Biotechnol Adv. 2013 Mar-Apr;31(2):318-37. doi: 10.1016/j.biotechadv.2012.12.009. Epub 2012 Dec 30.
- Mikami T, Aoki M, Kimura T. The application of mass spectrometry to proteomics and metabolomics in biomarker discovery and drug development. Curr Mol Pharmacol. 2012 Jun;5(2):301-16. doi: 10.2174/1874467211205020301.
- Probert CS, Jones PR, Ratcliffe NM. A novel method for rapidly diagnosing the causes of diarrhoea. Gut. 2004 Jan;53(1):58-61. doi: 10.1136/gut.53.1.58.
- Sokol H, Adolph TE. The microbiota: an underestimated actor in radiation-induced lesions? Gut. 2018 Jan;67(1):1-2. doi: 10.1136/gutjnl-2017-314279. Epub 2017 May 4. No abstract available.
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