- ICH GCP
- Registr klinických studií v USA
- Klinická studie NCT02342561
Jódem impregnované incizní roušky a bakteriální rekolonizace v simulované operaci kolene. Kontrolovaný randomizovaný experimentální pokus.
Jódem impregnované incizní roušky a bakteriální rekolonizace v simulované totální endoprotéze kolene. Kontrolovaný randomizovaný experimentální pokus.
Tato studie hodnotí vliv jódem impregnovaných samolepicích plastových roušek (IIAD) na množství kožních bakterií, což je známý faktor ve vývoji infekcí v místě chirurgického zákroku v ortopedické chirurgii. 16 pacientů s plánovanou totální náhradou kolenního kloubu (TKA) je přijato k účasti na zákroku prováděném na ortopedickém oddělení Fakultní nemocnice v Odense v Dánsku.
Pravé nebo levé koleno pacienta je randomizováno k zakrytí pomocí IIAD, zatímco druhé koleno není zakryto. Poté je simulován lokální standardní předoperační postup při operaci kolene.
Po 75 minutách se z obou kolen odebere vzorky na množství bakterií pomocí metody cup scrub a vzorky se aerobně inkubují. Bakteriální růst skupiny IIAD a skupiny bez roušky je poté porovnán pomocí neparametrické statistiky.
Přehled studie
Postavení
Podmínky
Intervence / Léčba
Detailní popis
Pozadí
Infekce chirurgického místa (SSI) je závažnou komplikací ortopedické chirurgie, která vede k reoperaci a prodloužené rekonvalescenci (1, 2)
K prevenci SSI byly zavedeny profylaktické metody jako součást postupů v mnoha typech operací. Profylaktické strategie, jako je předoperační dezinfekce pomocí chlorhexidinu nebo roztoků jódu s alkoholem, prokazatelně snižují počet kožních bakterií před chirurgickým řezem nebo zavedením intravenózního katétru. (3-7). Vytvoření zcela aseptického prostředí po dobu operace je však nemožné z důvodu neschopnosti předoperační dezinfekce zcela sterilizovat kůži v kombinaci s rekolonizací endogenní flóry pacienta z vlasových folikulů, mazových žláz a potních žláz.(6) (8, 9)
Bylo zavedeno použití samolepicích plastových roušek, aby se zabránilo kontaminaci místa chirurgického zákroku v důsledku opětovné kolonizace kožní flóry, a to blokováním translokace bakterií z kůže přilehlé k operačnímu místu do operační rány. Samolepicí plastové roušky na řez jsou tímto způsobem navrženy tak, aby fungovaly jako bariéra, obsahující kožní flóru během operace.
Bylo však zjištěno, že tyto typy roušek jsou méně kvalitní v prevenci bakteriálního SSI ve srovnání s novějšími typy roušek, které obsahují antiseptický komplex jódu do lepidla roušky směrem ke kůži (10, 11) Tento výsledek lze vysvětlit rouškou- indukovaný „skleníkový efekt“ podpořený důkazy o zvýšené míře bakteriální kolonizace s intraoperačním použitím nejodových samolepicích plastových roušek (12, 13). Tento efekt může být důsledkem relativní okluze kůže vedoucí ke zvýšení hydratace kůže.(14) Toto zvýšení bakteriálního růstu nebylo nikdy prokázáno u jódem impregnovaných samolepicích incizních roušek (IIAD) a bylo v rozporu ve studiích uvádějících snížení míry opětovné kolonizace kožními bakteriemi na břiše, když byla IIAD srovnávána s bez roušek a bez roušek. jodové roušky, zatímco jiní autoři uváděli pokles kontaminace operační rány při použití IIAD předoperačně v břišní chirurgii (3, 15)
Bez ohledu na převahu IIAD ve srovnání s nejodovými roušky byl nedávno metaanalýzou konstatován závěr, že použití IIAD nesnižuje incidenci SSI ve srovnání s bez roušky [10]. Tento závěr byl kritizován pro chybu 2. typu vyplývající z relativně nízkého výskytu SSI v čisté chirurgii (16). Přehled však obsahuje minimum údajů o použití IIAD v ortopedické chirurgii. Přenositelnost jeho závěrů do ortopedického prostředí je tedy sporná.
Kožní flóra, převážně stafylokoky, je primárním průběhem SSI v ortopedické chirurgii (17, 18) a bylo také prokázáno, že tvoří většinu rekolonizujících druhů na kůži (8, 19).
IIAD se proto stala součástí standardního předoperačního postupu v mnoha ortopedických chirurgických zařízeních v nemocnicích jižního Dánska, včetně univerzitní nemocnice v Odense a nemocnice Svendborg. Toto rozhodnutí lze odůvodnit studiemi in vitro, které došly k závěru o výrazném baktericidním účinku IIAD na širokou škálu bakteriálních druhů, zejména stafylokoky. (16) Baktericidní účinek IIAD byl také hodnocen in vivo v chirurgii kyčle, kde byl baktericidní účinek a významné snížení kontaminace rány hlášeno při aplikaci IIAD 24 hodin před odběrem vzorků kůže (20). Baktericidní účinek však nebyl hodnocen, když je IIAD aplikována na začátku chirurgického zákroku před incizí, jak je běžnou praxí v ortopedické chirurgii.
Bylo prokázáno, že k opětovné kolonizaci kožních bakterií po dezinfekci dochází zcela nebo částečně do 7 dnů, pokud je kůže dezinfikována roztokem chlorhexidinu nebo jódu a pokryta polyuretanovým obvazem, který neobsahuje antimikrobiální látky.(21-24) Rekolonizace však může být již detekovatelná během několika hodin po dezinfekci. To však nebylo spojeno s významným zvýšením míry SSI.(3, 13) Stojí za zmínku, že některé důkazy naznačují, že roztoky pro kožní přípravky obsahující chlorhexidin se mohou nacházet na kůži a samy o sobě poskytovat reziduální antiseptický účinek. (25-27)
Nebylo prokázáno, že by IIAD zlepšila incidenci SSI v neortopedické chirurgii a některé retrospektivní důkazy naznačují podobné nálezy u operací kyčle (28). Je proto velmi důležité osvětlit účinek IIAD v ortopedickém chirurgickém prostředí.
Motivace
Jódem impregnované samolepicí plastové roušky se již léta používají v mnoha typech chirurgie. Přesto se neprokázalo, že by jeho použití snižovalo výskyt SSI.
SSI vedoucí k intraartikulární infekci kožními bakteriemi je dobře známou a závažnou komplikací ortopedické chirurgie. Vyhodnocení profylaktických opatření, jako je IIAD, je proto zoufale potřebné. Přesto je ortopedická chirurgie v současné literatuře na toto téma málo zastoupena.
Cílem naší studie je rozšířit poznatky o vlivu použití IIAD na dermální bakteriální růst v ortopedickém chirurgickém prostředí.
Cíle
Cílem této studie je zhodnotit vliv intraoperační aplikace jódem impregnovaných samolepicích roušek na bakteriální množství (jednotky tvořící kolonie) kůže u pacientů s plánovanou totální náhradou kolenního kloubu (TKA). Rádi bychom prozkoumali, zda intraoperační roušky s IIAD zvyšují rekolonizaci kožními mikroby ve srovnání s nepoužitím roušky během simulované operace TKA. Primárním výsledkem je mikrobiální množství, zatímco sekundárním výsledkem je identifikace životaschopných organismů na kůži. Hypotézou je, že IIAD zvyšuje rekolonizaci kožních mikrobů ve srovnání s používáním roušek bez roušky.
Metoda
Studovat design
Studie je navržena jako experimentální randomizovaná kontrolovaná studie prováděná v paralelním prostředí. Pacienti budou sloužit jako jejich vlastní kontrola a poměr přidělování je tedy stejný.
Účastníci
Pacienti jsou prospektivně získáváni prostřednictvím ambulance pro osteoartrózu kolenního kloubu, Fakultní nemocnice v Odense. Ošetřující lékař provádí screening pacientů k účasti.
Pacienti mají nárok na zařazení, pokud jsou naplánováni na operaci totální náhrady kolenního kloubu prostřednictvím Fakultní nemocnice v Odense. Důvody vyloučení jsou uvedeny níže.
Velikost vzorku
Rozdíl v bakteriálním množství faktoru 10 (1,0 log10) mezi intervenovanou a kontrolní skupinou je považován za klinicky významný při rozvoji SSI. Pro detekci rozdílu 1,0 log v bakteriálním množství s hladinou výkonu 80 %, hladinou významnosti 5 % a směrodatnou odchylkou 1,0 log10 je vyžadován vzorek velikosti 16 kolen v každé skupině, což vyžaduje zahrnutí 16 pacientů. Pro nábor tohoto počtu pacientů se předpokládá období zařazení 6 měsíců.
Randomizace
Přiřazení kolen do skupiny zakrývajících se vs. skupiny bez roušek bude randomizováno. Randomizace zajišťuje, že rozdíl v bakteriální flóře mezi koleny pacientů má minimální vliv na výsledek. Potenciální alokační zkreslení je minimalizováno.
V této studii bude přidělení přiděleno pomocí obálek obsahujících číslované listy papíru. Posuzuje se kvalita obálek, aby bylo zajištěno, že přidělení nelze určit bez otevření obálek. Bude připraveno 30 obálek určujících přidělení. Obálky připraví externí strana.
Sudá čísla přidělují účastníka zakrytí pravého kolena, zatímco lichá čísla přiřadí zakrytí levé strany. Obálky budou obsahovat sudé množství sudých a lichých čísel.
Nemáme podezření, že znalost alokace kolena je důležitá pro výsledek studie. Není proto považováno za nutné, aby účastníci nebo výzkumníci z intervence nevidomí.
Zásah
Zákrok bude probíhat na chirurgické části ortopedického oddělení fakultní nemocnice v Odense. Pacienti jsou vítáni a požádáni, aby se převlékli do místního oblečení pacientů.
Pacienti jsou umístěni na zádech na standardním operačním sále s aktivním laminárním prouděním a chirurgickými lampami. Operační rouška bude nastavena na úrovni pasu pacienta, aby byla zajištěna minimální kontaminace dýchajícími pacienty. Obě kolena jsou dezinfikována pomocí kurkuminového barevného roztoku 0,5% chlorhexidinu v 96% etanolu aplikovaného malovacím pohybem ve 2 sezeních po 10 sekundách oddělených 30 sekundovou periodou sušení. Dezinfikovaná oblast se poté nechá zcela vyschnout. Po dezinfekci následuje standardní zakrytí oblastí přiléhajících k operačnímu místu chirurgickými roušky. Jedno koleno je následně překryto jodovou plastovou lepicí rouškou (Ioban 2), zatímco druhé koleno je ponecháno nezakryté. Aplikace roušky se provádí v souladu s pokyny 3M.(11) Pokud má účastník dlouhé chlupy na nohou, jsou před zásahem zastřiženy pomocí elektrických nůžek. Pacient je poté požádán, aby zůstal 75 minut vleže na operačním stole. Po dezinfekci a následném zakrytí obou kolen je operační stůl umístěn do polohy plážového křesla a pacientovi je nabídnut polštář na podložení kolen. To se umístí pod chirurgické roušky. Poloha plážového křesla minimalizuje nepohodlí spojené s nutností zůstat na zádech zvednutím hlavy pacienta a zajištěním určité flexe v kolenou. Pacientovi je umožněno kontrolovaně pohybovat nohama, aby nedošlo ke kontaminaci kontralaterálního kolena. Obě kolena se musí pohybovat rovnoměrně, aby se zajistilo stejné namáhání kůže v místě odběru během zásahu. Trup pacienta je pokryt přikrývkou "Bair Hugger", aby se zabránilo podchlazení.
Výzkumník a sestra budou mít při dezinfekci a aplikaci roušek síťku na vlasy, sterilní operační oděv, sterilní rukavice a obličejovou masku. Projektová sestra se zkušenostmi s aplikací roušky tak učiní v souladu se standardním nemocničním postupem.
Odběr vzorků kůže
V dřívějších studiích bylo použito mnoho metod bakteriologického odběru vzorků kůže. Vzhledem k tomu, že výsledkem této studie je porovnání středního množství bakterií, rozhodli jsme se použít upravenou verzi cup-scrub techniky/cylindrové metody odběru vzorků, což je standardní metoda pro testování předoperační přípravy kůže.(21, 29, 30)
Tato metoda odebírá vzorky kůže pomocí válce omezujícího oblast odběru vzorků na malou oblast pokrytou rouškou. Do vzorkovacího válce se nanese 1 ml vzorkovacího roztoku. Místo vzorku se poté otírá mírným tlakem v rovnoměrné mřížce se sterilní plastovou očkovací smyčkou po dobu 1 minuty. Po rozetření se vzorkovací roztok odebere do sterilní zkumavky pomocí sterilní pipety. Proces odběru vzorků se poté opakuje, čímž se získá další vzorek, který se spojí s prvním.
Použitím dvou peelingů místo jednoho se zvýší procento organismů odstraněných z místa vzorku, zatímco čištění povrchu kůže se zdá být životně důležitou součástí procesu odběru vzorků. Přestože se většina organismů nachází na povrchu kůže nebo v její blízkosti, některé mají adhezivní vlastnosti, zatímco jiné se nacházejí v hlubších částech rohovinové vrstvy a vlasových folikulů. To by mohlo vysvětlovat, proč je mytí místa vzorku bez drhnutí horší než metoda drhnutí, protože poskytuje pouze méně než polovinu organismů odebraných drhnutím (30). Účinnost této metody byla hodnocena jinými autory a je považována za vhodný přístup k odběru vzorků kůže, když je cílem zhodnotit jak povrchovou, tak rezidentní/"skrytou" flóru.(5, 6, 31)
Uznáváme, že odběr vzorků kožních bakterií poskytne pouze zlomek celkové flóry kvůli relativní nepřístupnosti hluboce sídlící flóry. (6)
Vzorky kůže se odebírají oboustranně z distálního předního stehna před dezinfekcí, aby se stanovilo normální množství bakterií. Po dezinfekci a úplném odpaření všech alkoholů budou odebrány základní vzorky z obou kolen, aby se před zakrytím zdokumentovalo stejné množství bakterií. Po době trvání intervence (75 minut) budou odebrány pointervenční vzorky z kolena bez roušky, následuje otevření Ioban roušky přes odběrové oblasti pomocí sterilních nůžek a chirurgických kleští. Poté se odebere vzorek kůže. Vzorky budou odebrány z oblasti suprapatellární kůže, která odpovídá kůži pokrývající okraje šlachy m. quadriceps femoris a z infrapatelární oblasti kůže pokrývající okraje vazu pately. Tyto oblasti odpovídají kůži ohraničující incizní linii mediálního parapatelárního přístupu běžně používaného v chirurgii TKA. Přesná oblast pro odběr vzorků v těchto oblastech je zvolena v době odběru vzorků, aby se umožnil minimální únik mezi kůží a vzorkovacím válcem.
3 misky obsahující 5 % krevního agaru se položí na stůl ve vzdálenosti maximálně 1 m od kolen. Tyto plotny budou odkryty a otevřeny pro inokulaci mikroorganismy ve vzduchu operačního sálu na začátku doby zásahu 75 minut po zakrytí. Dlahy se zakryjí na konci intervence, po konečném odběru vzorků kolene. Nepoužitý vzorek vzorkovací tekutiny se nanese v duplikátech a bude sloužit jako negativní kontrola.
Veškerý odběr vzorků provede stejný výzkumník, čímž zajistí konzistenci v rutině odběru vzorků. Při odběru vzorků pomáhá sestra. Kontrolní koleno bude odebráno jako první, aby se zabránilo kontaminaci kontralaterálního kolena před odběrem vzorků, když se odstraní samolepicí rouška.
Výzkumník a sestra budou mít během odběru na sobě síťku na vlasy, sterilní operační oděv, sterilní rukavice a obličejovou masku.
Roztok vzorku a neutralizační systém
Kůže se odebírá pomocí vzorkovacího roztoku sestávajícího z roztoku fosfátového pufru (PBS) obsahujícího 10 % polysorbátu 80 (Tween 80), 1 % lecitinu, 0,5 % pentahydrátu thiosíranu sodného a 0,1 % Triton-x 100 s pH upraveným na 7,9. (21, 32-35)
Neutralizační systém má být validován v souladu se standardem Americké společnosti pro testování a materiály (ASTM) E-1054-08 "Standardní zkušební metody pro hodnocení inaktivátorů antimikrobiálních látek" pomocí Staph. epidermidis jako provokační organismus s dobou expozice 30 minut.
Manipulace se vzorky
Po odběru vzorků jsou spojené vzorky okamžitě umístěny na operační sál. To zajišťuje optimální životaschopnost bakterií v přítomnosti tritonu-x a přenášené kontaminace kožními antiseptiky, u kterých bylo prokázáno, že inhibují růst bakterií i ve velmi malých koncentracích (33, 36-38). Validační studie vlastností vzorkovací tekutiny neprokázala žádnou inhibici růstu mikroorganismů, když bylo nanesení na plotnu provedeno do 30 minut po vzorkování.
Naočkované plotny jsou pak po ukončení intervence transportovány na mikrobiologické oddělení OUH k inkubaci.
Vzorky kolena budou sériově ředěny ve sterilním fosfátovém pufru v desetinásobném ředění na 10-3 pro vzorky před dezinfekcí a 10-1 pro vzorky po dezinfekci. Alikvoty 100-200 mikrolitrů každého zředěného a neředěného vzorku se poté rozprostře v duplikátech na misky s 5% krevním agarem. Všechny plotny se pak aerobně inkubují po dobu 36-48 hodin při 35 stupních Celsia. Destičky naočkované vzduchem a destičky s negativní kontrolou se inkubují spolu se vzorky z kolena po dobu 36-48 hodin při 35 stupních Celsia.
Vzorky budou označeny v souladu se systémem kódování popsaným v části správy dat tohoto protokolu.
Poté se určí počet jednotek tvořících kolonie, CFU, ve vzorcích. N. Milandt provede počítání CFU za asistence pracovníků mikrobiologického oddělení OUH. Všechny desky budou vyfotografovány, aby bylo možné v případě potřeby provést následné přepočítání.
Vybavení
Operační sály pro projekt dodá ortopedické oddělení Kliniky ortopedické chirurgie Fakultní nemocnice Odense (OUH).
Oddělení klinické mikrobiologie OU dodává laboratorní zázemí pro mikrobiální analýzu.
Etika
Neočekáváme žádné komplikace nebo vedlejší účinky intervence této studie. Být v poloze na zádech po dobu 75 minut může způsobit menší nepohodlí a může u některých pacientů vést k bolesti zad. Odstranění Ioban roušku může být spojeno s nepohodlím způsobeným přilnutím k ochlupení dolní končetiny. Aplikace dezinfekčního roztoku obsahujícího kurkumin může mít za následek skvrny na kůži, které lze jen obtížně zcela odstranit ihned po zákroku. Toto zabarvení však zmizí během několika dnů s normálním odlupováním epidermis.
Informace týkající se projektu a jeho intervence budou účastníkům předloženy ústně i písemně. Pacienti budou nejprve kontaktováni ústně a budou jim předány písemné informace o projektu. Pacienti, kteří projeví zájem o účast, obdrží později ústní informace, které jim poskytne hlavní výzkumník. Pokud pacient potřebuje další informace týkající se projektu, jsou mu poskytnuty kontaktní údaje sestry projektu a hlavního řešitele.
Iniciativu projektu převzal vysokoškolák N. Milandt ve spolupráci s profesorem, MD, S. Overgaardem.
Žádní členové této výzkumné skupiny nemají žádné finanční vazby na žádné podniky, které prodávají nebo vyrábějí jódem impregnované samolepicí závěsy.
Účastníci této studie neobdrží za svou účast žádnou odměnu. Účastníkům však bude po intervenci nabídnuto ovoce, svačiny a nealkoholický nápoj a budou mít nárok na náhradu nákladů na dopravu při zpáteční cestě do 100 km v souladu s platnými regionálními dohodami.
Tento protokol byl předložen Regionálním vědeckým etickým výborům pro jižní Dánsko a byl přijat v červnu 2014.
Výsledek
Správa dat
Registrace dat
Všechna data pacienta se registrují a ukládají pomocí Epidata. Jeden dokument obsahuje všechny informace o pacientovi spojené s jedinečným identifikačním číslem (ID). Tento soubor klíčů bude obsahovat číslo sociálního pojištění a jména všech účastníků spolu s dalšími proměnnými, které nás zajímají.
Výsledky mikrobiologického rozboru jsou zaznamenány v samostatném dokumentu obsahujícím pouze identifikační čísla. Výsledek analýzy bude přiřazen kód, který označí ID pacienta (1,2,3...), čas vzorku (Pre- (0), 10 minut (10) nebo 75 minut (75) po dezinfekci. Kód bude také obsahovat informace o randomizaci nohou ((Drape (D) / No-drape (N)) a místě odběru (Suprapatellar (S) / Infrapatellar (I)). Všechny vzorky jsou naneseny v duplikátech, a proto bude přiřazeno další číslo k identifikaci jedinečné destičky a kroku ředění destičky. Jedinečný kód je přiřazen příslušnému štítku s nálepkami a bude mít odpovídající proměnnou ve formuláři pro zadávání dat.
Všechna data budou zaznamenána bez aritmetických úprav.
Všechny vstupní proměnné jsou dokumentovány v číselníku.
Šifrování
Všechna data jsou šifrována pomocí integrovaného šifrovacího modulu Epidata založeného na šifrovacích protokolech Advanced Encryption Standard. Soubor klíčů spojující ID čísla s čísly sociálního zabezpečení bude šifrován pomocí tohoto standardu. Fotografie destiček se ukládají pouze obsahující přiřazený kód pacienta a nelze je propojit s identifikovatelnou osobou bez odemknutí hlavních datových souborů. Vzorový datový soubor nebude obsahovat žádné citlivé informace o osobě, a proto nebude šifrován.
Záloha
Zálohování všech projektových dokumentů a souborů se provádí týdně na zabezpečený server počítačového systému Fakultní nemocnice Odense. N. Milandt bude mít výhradní přístup k zálohovaným datům.
N. Milandt bude sloužit jako kontaktní osoba a bude mít hlavní odpovědnost za data projektu. Všechna data budou uložena a zveřejněna v souladu s rozhodnutími Dánské agentury pro ochranu dat.
Výsledky a statistické vyvozování
Čištění dat
Aby byly zajištěny platné výsledky, když jsou data log transformována, je minimální hodnota měření nastavena na 1, což po transformaci znamená 0 log10. Duplicitní průměr <1 kolonie tvořící jednotky (CFU)/miska je jako výsledek nastaven na 0 log10. Citlivost analýzy rozprostřené desky může být nedostatečná pro rozlišení mezi 0 a 1 CFU a sloučení těchto hodnot jako společné hodnoty log10 = 0 může být proto vhodné.
Očekává se, že hustota bakterií ve vzorcích provedených po dezinfekci nepřekročí hustotu vzorku před dezinfekcí. V tomto případě je pozorování pravděpodobně způsobeno kontaminací a je vyloučeno z analýzy.
Primární výsledky
Primárním výsledkem této studie je počet CFU narostlých na agarových plotnách. Toto číslo zahrnuje všechny životaschopné organismy. Nezpracovaná data budou převedena na CFU/cm2 kůže a poté transformována log10, aby bylo možné předpokládat linearitu. Z infrapatelárních a suprapatelárních vzorků se vypočte průměr reprezentující celé koleno.
Poté jsou porovnány průměrné přežívající CFU/cm2. Porovnání bude provedeno v rámci stejného kolena a mezi koleny u stejného pacienta. Vzorky z jednoho kolena se porovnávají v různých časech odběru (základní hodnota, 10 minut po dezinfekci a 75 minut po zahájení simulovaného chirurgického zákroku). Analýza mezi koleny bude provedena mezi skupinou s roušky a skupinou bez roušek ve všech časech odběru vzorků. Nakonec bude vypočítán průměrný bakteriální opětovný růst jako proměnná představující zvýšení bakteriální hustoty mezi odběry vzorků provedenými před a po použití roušky Ioban. Poté se porovná opětovný růst bakterií v těchto dvou prostředích.
Data jsou zkoumána pomocí průzkumné analýzy dat, aby se odůvodnil předpoklad Gaussova rozdělení. V tomto případě bude analýza provedena pomocí dvoustranného studentského t-testu.
Pokud se data nepřibližují normálnímu rozdělení, použije se neparametrický Mann-Whitney U test. P ≤0,05 je interpretováno jako významné. Statistická analýza bude provedena pomocí datové analýzy a statistického softwaru STATA.
Všechny analytické procesy jsou dokumentovány v deníku správy dat a souboru STATA do-file
Sekundární výsledek
Typ organismu přítomného na kůži po dezinfekci a použití roušky Ioban je také zajímavý v klinické praxi. Předmětem této studie však není provádět podrobnou kvantitativní analýzu četnosti různých organismů na kůži. Po použití Ioban roušky však provedeme menší deskriptivní vyšetření kožní flóry.
Neředěné růstové plotny ze 75minutových vzorků každého účastníka budou makroskopicky vyšetřeny na jedinečné kolonie. Analyzuje se zakryté i nezakryté koleno. Kolonie jsou poté identifikovány pomocí analýzy doby letu za pomoci matrice laserové desorpce/ionizace (MALDI-TOF). Nálezy budou uvedeny jako prevalence růstu konkrétních organismů ve studované populaci.
Časový harmonogram
Plánovaný začátek projektu je 1. září 2014. Projekt bude zahájen obdobím sběru dat v délce 9 měsíců. Během tohoto období bude přijato minimálně 16 pacientů, kteří budou podrobeni projektové intervenci. Poslední 3 měsíce období projektu budou věnovány analýze dat a výrobě článku a přípravě prezentace projektu. Ukončení projektu je naplánováno na 31. srpna 2015.
Komentář od autorů:
Bereme na vědomí, že po primární registraci zkušebního protokolu byly provedeny revize tohoto zkušebního protokolu. Prohlašujeme, že změny protokolu byly provedeny před náborem do studie a analýzou dat. Nebyla provedena žádná změna kritérií pro zařazení/vyloučení, ani měření výsledků studie.
Typ studie
Zápis (Aktuální)
Fáze
- Nelze použít
Kontakty a umístění
Studijní místa
-
-
-
Odense, Dánsko, 5000
- Ortopeadic research Unit, Odense University Hospital
-
-
Kritéria účasti
Kritéria způsobilosti
Věk způsobilý ke studiu
Přijímá zdravé dobrovolníky
Pohlaví způsobilá ke studiu
Popis
Kritéria pro zařazení:
- Pacient je naplánován na primární operaci náhrady kolenního kloubu (TKA).
Kritéria vyloučení:
- Věk pacienta do 50 let
- Pacient je alergický na jód
- Pacient byl léčen antibiotiky do 4 týdnů od intervence.
- Pacient trpí chronickým kožním onemocněním s lézemi v oblasti kolene
- Pacient má kožní léze v důsledku traumatu, které utrpěl do 1 týdne od zákroku.
Studijní plán
Jak je studie koncipována?
Detaily designu
- Primární účel: Prevence
- Přidělení: Randomizované
- Intervenční model: Přiřazení jedné skupiny
- Maskování: Žádné (otevřený štítek)
Zbraně a zásahy
Skupina účastníků / Arm |
Intervence / Léčba |
|---|---|
|
Experimentální: Intervenční kolena (strana s překrytím)
Jedno koleno pacienta je náhodně vybráno k zakrytí incizní rouškou Ioban 2.
|
Přední koleno pacienta je zakryto rouškou Ioban 2 po dobu 75 minut.
Rouška se aplikuje a odstraňuje v souladu s pokyny k produktu.
Ostatní jména:
|
|
Žádný zásah: Kontrolní kolena (strana bez zakrytí)
Koleno, které není zakryto, je během zákroku ponecháno odkryté.
|
Co je měření studie?
Primární výstupní opatření
Měření výsledku |
Popis opatření |
Časové okno |
|---|---|---|
|
Bakteriální množství
Časové okno: Měřeno po dezinfekci kůže a 75 minut po aplikaci roušky
|
Bakteriální množství kůže bylo odebráno pomocí válcové metody odběru vzorků a inkubováno po dobu 36-48 hodin.
Manuálně spočítaný růst se uvádí jako log10 jednotek tvořících kolonie (CFU)/cm^2
|
Měřeno po dezinfekci kůže a 75 minut po aplikaci roušky
|
Sekundární výstupní opatření
Měření výsledku |
Popis opatření |
Časové okno |
|---|---|---|
|
Popis bakteriální kožní flóry
Časové okno: Vzorky odebrané 75 minut po aplikaci roušky se analyzují
|
Makroskopicky unikátní kolonie se izolují a analyzují pomocí analýzy asistované laserové desorpce/ionizace matrice (MALDI-TOF).
Nálezy jsou uváděny jako prevalence jedinečného růstu organismu ve studované populaci
|
Vzorky odebrané 75 minut po aplikaci roušky se analyzují
|
Spolupracovníci a vyšetřovatelé
Sponzor
Publikace a užitečné odkazy
Obecné publikace
- Williamson P, Kligman AM. A new method for the quantitative investigation of cutaneous bacteria. J Invest Dermatol. 1965 Dec;45(6):498-503. doi: 10.1038/jid.1965.164. No abstract available.
- Mangram AJ, Horan TC, Pearson ML, Silver LC, Jarvis WR. Guideline for prevention of surgical site infection, 1999. Hospital Infection Control Practices Advisory Committee. Infect Control Hosp Epidemiol. 1999 Apr;20(4):250-78; quiz 279-80. doi: 10.1086/501620. No abstract available.
- Falk-Brynhildsen K, Friberg O, Soderquist B, Nilsson UG. Bacterial colonization of the skin following aseptic preoperative preparation and impact of the use of plastic adhesive drapes. Biol Res Nurs. 2013 Apr;15(2):242-8. doi: 10.1177/1099800411430381. Epub 2012 Jan 24.
- Anderson DJ, Kaye KS, Classen D, Arias KM, Podgorny K, Burstin H, Calfee DP, Coffin SE, Dubberke ER, Fraser V, Gerding DN, Griffin FA, Gross P, Klompas M, Lo E, Marschall J, Mermel LA, Nicolle L, Pegues DA, Perl TM, Saint S, Salgado CD, Weinstein RA, Wise R, Yokoe DS. Strategies to prevent surgical site infections in acute care hospitals. Infect Control Hosp Epidemiol. 2008 Oct;29 Suppl 1:S51-61. doi: 10.1086/591064. No abstract available.
- Webster J, Alghamdi AA. Use of plastic adhesive drapes during surgery for preventing surgical site infection. Cochrane Database Syst Rev. 2007 Oct 17;(4):CD006353. doi: 10.1002/14651858.CD006353.pub2.
- Johnston DH, Fairclough JA, Brown EM, Morris R. Rate of bacterial recolonization of the skin after preparation: four methods compared. Br J Surg. 1987 Jan;74(1):64. doi: 10.1002/bjs.1800740121. No abstract available.
- Lewis DA, Leaper DJ, Speller DC. Prevention of bacterial colonization of wounds at operation: comparison of iodine-impregnated ('Ioban') drapes with conventional methods. J Hosp Infect. 1984 Dec;5(4):431-7. doi: 10.1016/0195-6701(84)90013-6.
- Brush M. Surgical preparation and site acces: Testing´s stepchild. In: Paulson DS, editor. Handbook of topical antimicrobials: Industrial applications in consumer products and pharmaceutical. New York: Marcel Dekker Inc; 2003. p. 197-220.
- Selwyn S. Evaluating skin disinfectants in vivo by excision biopsy and other methods. J Hosp Infect. 1985 Mar;6 Suppl A:37-43. doi: 10.1016/s0195-6701(85)80044-x. No abstract available.
- So BK, Chu CC, Ho PL, Chow KH, Leung JN, Lee IY, Lin CK, Lee CK. Evaluation of two chlorhexidine-alcohol-based skin disinfectants in blood donation setting. Vox Sang. 2014 May;106(4):316-21. doi: 10.1111/vox.12107.
- Fleischmann W, Meyer H, von Baer A. Bacterial recolonization of the skin under a polyurethane drape in hip surgery. J Hosp Infect. 1996 Oct;34(2):107-16. doi: 10.1016/s0195-6701(96)90135-8.
- Wilson SE. Microbial sealing: a new approach to reducing contamination. J Hosp Infect. 2008 Nov;70 Suppl 2:11-4. doi: 10.1016/S0195-6701(08)60018-3.
- 3M HC. 3M incise drapes 2014 [cited 2014 Oktober 29th]. Available from: http://solutions.3m.com/wps/portal/3M/en_US/IPD-NA/3M-Infection-Prevention/products/catalog/~/All-3M-Products/Industry-and-Professionals/Medical-Supplies-Software/Infection-Prevention-Products/Incise-Drapes?N=5716450&rt=c3.
- Chiu KY, Lau SK, Fung B, Ng KH, Chow SP. Plastic adhesive drapes and wound infection after hip fracture surgery. Aust N Z J Surg. 1993 Oct;63(10):798-801. doi: 10.1111/j.1445-2197.1993.tb00343.x.
- Marples RR, Kligman AM. Growth of bacteria under adhesive tapes. Arch Dermatol. 1969 Jan;99(1):107-10. No abstract available.
- Dewan PA, Van Rij AM, Robinson RG, Skeggs GB, Fergus M. The use of an iodophor-impregnated plastic incise drape in abdominal surgery--a controlled clinical trial. Aust N Z J Surg. 1987 Nov;57(11):859-63. doi: 10.1111/j.1445-2197.1987.tb01281.x.
- Kramer A, Assadian O, Lademann J. Prevention of postoperative wound infections by covering the surgical field with iodine-impregnated incision drape (Ioban 2). GMS Krankenhhyg Interdiszip. 2010 Sep 21;5(2):Doc08. doi: 10.3205/dgkh000151.
- Nichols RL. Surgical infections: prevention and treatment--1965 to 1995. Am J Surg. 1996 Jul;172(1):68-74. doi: 10.1016/S0002-9610(96)00049-9.
- Danish Orthopeadic Society. Reference program, Primary knee arthroplastic surgery. 2007.
- Falk-Brynhildsen K, Soderquist B, Friberg O, Nilsson UG. Bacterial recolonization of the skin and wound contamination during cardiac surgery: a randomized controlled trial of the use of plastic adhesive drape compared with bare skin. J Hosp Infect. 2013 Jun;84(2):151-8. doi: 10.1016/j.jhin.2013.02.011. Epub 2013 Apr 25.
- Fairclough JA, Johnson D, Mackie I. The prevention of wound contamination by skin organisms by the pre-operative application of an iodophor impregnated plastic adhesive drape. J Int Med Res. 1986;14(2):105-9. doi: 10.1177/030006058601400210.
- Bashir MH, Olson LK, Walters SA. Suppression of regrowth of normal skin flora under chlorhexidine gluconate dressings applied to chlorhexidine gluconate-prepped skin. Am J Infect Control. 2012 May;40(4):344-8. doi: 10.1016/j.ajic.2011.03.030. Epub 2011 Jul 7.
- Aly R, Bayles C, Maibach H. Restriction of bacterial growth under commercial catheter dressings. Am J Infect Control. 1988 Jun;16(3):95-100. doi: 10.1016/0196-6553(88)90045-4.
- Callahan JL, Wesorick B. Bacterial growth under a transparent dressing. Am J Infect Control. 1987 Dec;15(6):231-7. doi: 10.1016/0196-6553(87)90116-7.
- Waxman BP, Easmon CS, Dudley HA. Skin bacteria and Op Site chest dressings. Clin Nutr. 1985 Feb;4(1):29-34. doi: 10.1016/0261-5614(85)90034-2.
- Faoagali J, Fong J, George N, Mahoney P, O'Rourke V. Comparison of the immediate, residual, and cumulative antibacterial effects of Novaderm R,* Novascrub R,* Betadine Surgical Scrub, Hibiclens, and liquid soap. Am J Infect Control. 1995 Dec;23(6):337-43. doi: 10.1016/0196-6553(95)90263-5.
- Wade JJ, Casewell MW. The evaluation of residual antimicrobial activity on hands and its clinical relevance. J Hosp Infect. 1991 Jun;18 Suppl B:23-8. doi: 10.1016/0195-6701(91)90259-b.
- Sogawa Y, Kobayashi H. Comparison of residual antimicrobial activity of chlorhexidine-containing antiseptics: An express report. Journal of Healthcare-associated Infection. 2010;2:32-6.
- Ritter MA, Campbell ED. Retrospective evaluation of an iodophor-incorporated antimicrobial plastic adhesive wound drape. Clin Orthop Relat Res. 1988 Mar;(228):307-8.
- Billhimer WL, Berge CA, Englehart JS, Rains GY, Keswick BH. A modified cup scrub method for assessing the antibacterial substantivity of personal cleansing products. J Cosmet Sci. 2001 Nov-Dec;52(6):369-75.
- Hambraeus A, Hoborn J, Whyte W. Skin sampling-validation of a pad method and comparison with commonly used methods. J Hosp Infect. 1990 Jul;16(1):19-27. doi: 10.1016/0195-6701(90)90045-p.
- Beausoleil CM. A guide for validation of neutralizer systems. In: Paulson DS, editor. Handbook of topical antimicrobials: Industrial applications in consumer products and pharmaceutical. New York: Marcel Dekker Inc; 2003. p. 365-76.
- Kampf G. What is left to justify the use of chlorhexidine in hand hygiene? J Hosp Infect. 2008 Oct;70 Suppl 1:27-34. doi: 10.1016/S0195-6701(08)60008-0.
- Shimizu M, Okuzumi K, Yoneyama A, Kunisada T, Araake M, Ogawa H, Kimura S. In vitro antiseptic susceptibility of clinical isolates from nosocomial infections. Dermatology. 2002;204 Suppl 1:21-7. doi: 10.1159/000057720.
- Zamany A, Spangberg LS. An effective method of inactivating chlorhexidine. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 2002 May;93(5):617-20. doi: 10.1067/moe.2002.122346.
- Bloom E, Aly R, Maibach HI. Quantitation of skin bacteria: lethality of the wash solution used to remove bacteria. Acta Derm Venereol. 1979;59(5):460-3.
- Reichel M, Heisig P, Kampf G. Pitfalls in efficacy testing--how important is the validation of neutralization of chlorhexidine digluconate? Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2008 Dec 2;7:20. doi: 10.1186/1476-0711-7-20.
- Cecilio. RL PF, Palileo. E,. Microbiological efficacy of Chlorhexidine: An In Vitro Study on 400 Bacterial Isolates from Four Metro Manila Hospitals. Phil J Microbial Dis. 1983;12:7-13.
Termíny studijních záznamů
Hlavní termíny studia
Začátek studia
Primární dokončení (Aktuální)
Dokončení studie (Aktuální)
Termíny zápisu do studia
První předloženo
První předloženo, které splnilo kritéria kontroly kvality
První zveřejněno (Odhad)
Aktualizace studijních záznamů
Poslední zveřejněná aktualizace (Odhad)
Odeslaná poslední aktualizace, která splnila kritéria kontroly kvality
Naposledy ověřeno
Více informací
Termíny související s touto studií
Klíčová slova
Další relevantní podmínky MeSH
Další identifikační čísla studie
- S-20140060
Tyto informace byly beze změn načteny přímo z webu clinicaltrials.gov. Máte-li jakékoli požadavky na změnu, odstranění nebo aktualizaci podrobností studie, kontaktujte prosím register@clinicaltrials.gov. Jakmile bude změna implementována na clinicaltrials.gov, bude automaticky aktualizována i na našem webu .