L'effet de l'anesthésie à débit minimal sur la réponse au stress oxydatif et neuroendocrinien

L'anesthésie générale est caractérisée par l'anesthésie, l'analgésie, l'amnésie et la relaxation musculaire. La pratique la plus courante aujourd’hui pour maintenir l’anesthésie après l’induction consiste à ajouter un anesthésique par inhalation efficace de faible densité à un mélange oxygène/air. Les patients qui sont inconscients et qui ont arrêté leur respiration spontanée sont activement ventilés avec des appareils d'anesthésie, garantissant que le gaz anesthésique atteint les poumons puis la circulation sanguine. La ventilation minute fait référence à la quantité totale de gaz (mélange d'oxygène, d'air et d'agent anesthésique) qu'un patient respire en une minute, soit environ 5 à 6 L chez un adulte normal pesant 70 kg.

Pendant la respiration, tout le gaz atteignant les poumons n’est pas utilisé ; une petite partie est absorbée par le corps et la majeure partie est expulsée lors de l'expiration. Après avoir éliminé le dioxyde de carbone présent dans le gaz expiré, il est plus approprié de réinspirer le gaz restant pour des raisons de physiologie pulmonaire, de protection de l'environnement et de rentabilité. La portion prise par le patient doit être fournie pour la respiration suivante, et ce gaz ajouté est appelé « flux de gaz frais ».

Aujourd'hui, chez l'adulte, l'anesthésie à faible débit est définie lorsque le débit de gaz frais est de 0,5 à 1 L/min, l'anesthésie à débit minimal lorsqu'il est de 0,25 à 0,5 L/min et l'anesthésie à débit métabolique lorsqu'il est de 0,25 L/min. La réduction du débit de gaz frais a des effets positifs sur la santé du patient sous anesthésie, la protection de l'environnement et la rentabilité, ainsi que la réduction des pathologies du personnel de la salle d'opération dues à la pollution de l'air. Il a été démontré que l'anesthésie à faible débit n'a aucun effet indésirable sur l'oxygénation, la ventilation, les fonctions des organes ou les paramètres hémodynamiques. Cela n’affecte aucune intervention chirurgicale.

La réponse au stress aigu associée à la chirurgie et à l’anesthésie est liée au système métabolique neuroendocrinien et au système immunitaire inflammatoire. En réponse au stress chirurgical, l'hormone adrénocorticotrope (ACTH) est libérée par l'hypophyse via la corticolibérine (CRH). L'ACTH stimule le cortex surrénalien à libérer des glucocorticoïdes (cortisol). Les cellules immunitaires innées et adaptatives jouent un rôle dans la réponse au stress lié à la chirurgie. Les cytokines interviennent dans la réponse inflammatoire locale observée lors de lésions tissulaires. Les cytokines pro-inflammatoires, telles que l'interleukine-6 ​​(IL-6), sont libérées, avec un pic dans les 24 heures suivant l'intervention chirurgicale.

Des études antérieures ont montré une augmentation des valeurs de cortisol, d'ACTH et d'IL-6 le premier jour postopératoire ; leurs modifications ont été enregistrées en les mesurant à l'induction, à la fin de l'intervention chirurgicale et à 12 et 24 heures postopératoires. Le corps contient des molécules instables définies comme des radicaux libres d’oxygène. Ces molécules sont équilibrées par des molécules antioxydantes. Le déséquilibre en faveur des oxydants conduit à un stress oxydatif, provoquant une série de lésions tissulaires. Les marqueurs biochimiques indiquant cet équilibre sont le statut antioxydant total (TAS) et le statut oxydatif total (TOS).

Notre étude évaluera les effets de l'anesthésie à débit minimal, largement utilisée aujourd'hui en raison de ses avantages, sur le stress oxydatif et la réponse au stress neuroendocrinien.

*Méthodologie de recherche* Notre recherche est une étude clinique prospective et randomisée contrôlée. Patients âgés de 18 à 65 ans subissant une septorhinoplastie élective classée American Society of Anesthesiologists (ASA) 1-2 sera inclus. Le consentement éclairé sera obtenu des patients qui se portent volontaires pour l'étude.

Les patients inclus dans l'étude seront divisés en deux groupes en utilisant une méthode d'enveloppe fermée. Après avoir atteint une valeur de concentration alvéolaire minimale (MAC) de 0,9 à 1,0, le groupe 1 (groupe à débit minimal) (n = 16) recevra une anesthésie d'entretien avec un débit de gaz frais minimal, et le groupe 2 (groupe à débit élevé) (n = 16) recevra une anesthésie d'entretien avec un débit de gaz frais élevé. Le groupe 1 recevra une anesthésie d'entretien avec 80 à 100 % d'O2 et 3,5 à 4,5 % de sévoflurane à un débit de gaz frais de 0,3 à 0,4. L/min. Le groupe 2 recevra une anesthésie d'entretien avec un mélange oxygène-air de 40 à 45 %, 2 à 2,5 % de sévoflurane et un débit de gaz frais de 4 L/min.

Les niveaux de statut antioxydant total (TAS), de statut oxydatif total (TOS), d'ACTH (hormone adrénocorticotrope), de cortisol et d'IL-6 (cytokine inflammatoire) seront mesurés à partir d'échantillons de sang prélevés sur les patients. Avant la chirurgie, une canule veineuse de calibre 20 sera placée dans la région antécubitale pour un prélèvement sanguin afin d'éviter des procédures invasives répétées. Immédiatement avant l'intervention chirurgicale, 8 ml de sang seront prélevés comme premier échantillon. L'échantillon sera placé dans des tubes de gel de 3 ml d'acide éthylènediaminetétraacétique (EDTA) et de 5 ml et envoyé au laboratoire de biochimie pour être conservé à -80°C. A la fin de l'intervention chirurgicale, 5 ml de sang seront prélevés comme deuxième échantillon avant extubation, placés dans un tube de gel, et envoyés au laboratoire de biochimie pour être conservés à -80°C. A la 6ème heure postopératoire, 8 ml de sang seront prélevés comme troisième échantillon, placés dans des tubes de gel de 3 ml EDTA et 5 ml, et envoyés au laboratoire de biochimie pour être conservé à -80°C. A la 18ème heure postopératoire, 8 ml de sang seront prélevés comme quatrième échantillon, placés dans des tubes de gel de 3 ml EDTA et 5 ml, et envoyés au laboratoire de biochimie pour être conservé à -80°C. Un total de 30 ml d'échantillons de sang seront prélevés sur le patient. Les échantillons de sang seront centrifugés à 3 000 tr/min pendant 10 minutes et les sérums séparés seront conservés à -80°C pour analyse.

Les patients sortiront avec un traitement approprié jugé approprié par l'équipe chirurgicale. Les niveaux de statut oxydatif total (TOS), de statut antioxydant total (TAS), d'ACTH (hormone adrénocorticotrope), de cortisol et d'IL-6 (cytokine inflammatoire) seront mesurés dans l'échantillon de sang prélevé avant l'induction. Le TAS/TOS sera mesuré dans le deuxième échantillon de sang prélevé à la fin de l'intervention chirurgicale. Statut oxydatif total (TOS), statut antioxydant total (TAS), ACTH (hormone adrénocorticotrope), cortisol et IL-6 (cytokine inflammatoire) seront mesurés dans des échantillons de sang prélevés aux 6e et 18e heures postopératoires. Paramètres hémodynamiques, score de douleur visuel analogique (EVA) et l'état des nausées-vomissements sera enregistré aux 6e et 18e heures postopératoires. Après avoir centrifugé les échantillons de sang, ils seront conservés à -80°C et les biomarqueurs spécifiés seront évalués en laboratoire une fois tous les échantillons collectés. Les résultats seront utilisés dans nos recherches après analyse statistique.

Les données seront analysées à l'aide du progiciel Statistical Package for the Social Sciences (SPSS) -statistics 22.0. Les variables catégorielles seront exprimées sous forme de nombres et de pourcentages, tandis que les variables continues seront présentées sous forme de médiane, moyenne et écart type. Le test du chi carré sera utilisé pour comparer les différences entre les variables catégorielles. La distribution normale des variables continues sera évaluée par le test de Shapiro-Wilk. Le test t de Student sera utilisé pour les données paramétriques et le test U de Mann-Whitney pour les données non paramétriques afin de comparer les variables continues entre les deux groupes. Une valeur p <0,05 sera considérée comme significative dans tous les tests.