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- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT07276464
Caractérisation de la signature du microbiote intestinal en fonction de la condition physique et ses implications pour la santé intestinale. (MICROPEPS)
Caractérisation de la signature métagénomique du microbiote intestinal selon la condition physique et ses implications pour la santé intestinale.
Le microbiote intestinal comprend tous les micro-organismes qui habitent le tractus digestif, évoluant tout au long de la vie sous l'influence de divers facteurs intrinsèques et extrinsèques. Dans des conditions saines, le microbiote reste stable, résilient et maintient une relation symbiotique avec son hôte. À l'inverse, la dysbiose désigne une altération de la composition et de la fonction microbiennes, qui a été liée à des maladies telles que la maladie inflammatoire de l'intestin (MII). La MII, comprenant la maladie de Crohn et la rectocolite hémorragique, est associée à un microbiote perturbé par rapport aux individus sains, entraînant une altération de l'intégrité de la barrière intestinale et l'activation de voies inflammatoires locales.
De plus en plus de preuves suggèrent également que le microbiote intestinal des athlètes diffère de celui des individus physiquement inactifs, montrant une plus grande diversité microbienne et des concentrations plus élevées d'acides gras à chaîne courte (AGCC). Dans ce contexte, la présente étude clinique vise à caractériser le métagénome bactérien du microbiote intestinal sur un continuum allant des individus inactifs aux athlètes d'élite ayant des besoins énergétiques élevés ou très élevés. L'objectif ultime de ce projet est de déterminer si des compositions spécifiques du microbiote intestinal et des profils fonctionnels sont associés à différents niveaux de capacité d'exercice, et de créer une biobanque de microbiote fécal pour des recherches futures sur la santé intestinale.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Description détaillée
Le microbiote intestinal englobe l'ensemble des micro-organismes - bactéries, virus et champignons - qui habitent le tube digestif. La colonisation commence à la naissance et évolue tout au long de la vie sous l'influence de nombreux facteurs tels que l'alimentation, l'utilisation d'antibiotiques, le sommeil, le stress, l'activité physique, l'exposition à des agents environnementaux, ainsi que l'âge, le sexe et l'origine ethnique ou migratoire (Hou et al., 2022).
Cet écosystème microbien remplit plusieurs fonctions essentielles pour son hôte, notamment la digestion et l'absorption des nutriments, la régulation immunitaire et la protection contre les agents pathogènes (Estaki et al., 2016). Par la fermentation des glucides complexes, en particulier des fibres alimentaires indigestes par les enzymes humaines, certaines bactéries produisent des acides gras à chaîne courte (AGCC), principalement le butyrate, le propionate et l'acétate. Ces métabolites jouent un rôle clé dans le maintien de l'intégrité de la barrière intestinale et dans le métabolisme énergétique des colonocytes (Estaki et al., 2016).
Lorsque la composition ou la fonction microbienne est altérée, que ce soit en diversité, en proportions relatives ou en voies métaboliques, un état de dysbiose survient. Ce déséquilibre est fréquemment observé dans diverses conditions pathologiques et a été associé au développement de maladies telles que le diabète, certains cancers, l'athérosclérose, l'asthme, les maladies inflammatoires chroniques de l'intestin (MICI), et même la dépression (Hou et al., 2022).
Les MICI englobent la maladie de Crohn (MC) et la rectocolite hémorragique (RCH). Alors que la MC se caractérise par des lésions discontinues tout au long du tractus gastro-intestinal, la RCH implique une inflammation continue et superficielle du côlon. Ces pathologies affectent 0,3-0,5% de la population mondiale (Ng et al., 2017). De nombreuses études ont démontré des différences significatives dans la composition du microbiote entre les patients atteints de MICI et les individus sains (Oligschlaeger et al., 2019), conduisant à une altération de la fonction de barrière intestinale (Qiu et al., 2022).
Parallèlement, un nombre croissant de preuves suggère que le microbiote intestinal des individus physiquement actifs diffère de celui des personnes sédentaires (Estaki et al., 2016 ; Clarke et al., 2014 ; Barton et al., 2017 ; Mohr et al., 2020).
Plus récemment, notre laboratoire a caractérisé le microbiote intestinal de 50 volontaires allant d'individus inactifs à des athlètes d'élite ayant des capacités d'exercice élevées (joueurs de football d'élite) et très élevées (cyclistes d'élite) (EXOMIC, NCT05220657). Nos données ont révélé que la capacité d'exercice influence l'écologie microbienne intestinale et les niveaux fécaux d'AGCC, indépendamment de l'alimentation. Fait intéressant, les individus ayant une capacité d'exercice très élevée présentaient une diversité microbienne, une densité et une abondance de voies fonctionnelles réduites, soulevant la question de savoir si de tels écosystèmes microbiens sont bénéfiques pour le métabolisme énergétique de l'hôte et la performance à l'exercice. En utilisant une transplantation de microbiote fécal (TMF) de donneurs humains de notre cohorte à des souris traitées aux antibiotiques, nous avons en outre démontré que le microbiote du donneur, lié à la capacité d'exercice, affecte la sensibilité à l'insuline et le stockage du glycogène musculaire chez les souris receveuses, soulignant le rôle critique du microbiote intestinal associé à l'exercice dans la modulation des réponses métaboliques de l'hôte (Martin et al., 2025).
Dans ce contexte, cette étude clinique vise à caractériser le métagénome bactérien du microbiote intestinal sur un continuum allant d'individus sédentaires à des athlètes d'élite ayant des besoins énergétiques élevés ou très élevés, et à déterminer si des compositions et des profils fonctionnels spécifiques du microbiote intestinal sont associés à différents niveaux de capacité d'exercice. L'objectif ultime de ce projet est de créer une biobanque de microbiote fécal pour des recherches futures sur la santé intestinale.
Le protocole clinique MICROPEPS est une étude prospective, monocentrique, comparative et à intervention minimale. Aucun médicament, dispositif médical ou produit ne sera testé dans le cadre de ce protocole. L'étude sera menée sur la plateforme Exermove (Laboratoire M2S) pour évaluer la capacité d'exercice et la signature métagénomique du microbiote intestinal chez des hommes actifs, entraînés et hautement entraînés en endurance. Les participants effectueront trois visites en laboratoire :
- Visite d'inclusion : mesures anthropométriques, questionnaires alimentaires et d'activité physique. Les participants recevront ensuite un kit de collecte fécale pour prélever et envoyer un échantillon de selles dans les sept jours.
- Deuxième visite : test d'effort incrémental sur vélo pour déterminer le VO₂max.
- Troisième visite : évaluations métaboliques à jeun, au repos et pendant un exercice sous-maximal.
Les paramètres métaboliques mesurés lors de ces tests (par exemple, VO₂max, puissance aux seuils aérobie et anaérobie, oxydation maximale des glucides et des lipides) seront corrélés avec les données métagénomiques shotgun obtenues à partir des échantillons fécaux.
De plus, l'étude établira une biobanque de microbiote fécal de donneurs stratifiés selon leur capacité d'exercice. En utilisant un modèle murin de transplantation de microbiote fécal combiné à une colite induite par le DSS, l'objectif final est de déterminer comment la capacité d'exercice du donneur et les écosystèmes microbiens intestinaux influencent les réponses inflammatoires et la perméabilité intestinale.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
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Britanny
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Bruz, Britanny, France, 35170
- University Rennes 2 - Laboratory "Movement, Sport and health Sciences"
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
- Adulte
Accepte les volontaires sains
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
La description
Critères d'inclusion :
- Participant de sexe masculin
- Âgé entre 18 et 30 ans (inclus)
- Indice de masse corporelle (IMC) entre 18 et 25 kg/m² (inclus)
- Aucun antécédent de maladie gastro-intestinale, y compris la maladie inflammatoire de l'intestin
- Être non-fumeur
- Avoir un transit intestinal régulier (1 à 2 selles par jour ou tous les deux jours) sans épisodes récurrents de diarrhée ou de constipation
- Avoir fourni un consentement libre, éclairé et écrit pour participer à l'étude
Niveau d'entraînement :
- Sujets peu à modérément actifs : Pratiquer 2 à 4 heures par semaine d'activité physique modérée à vigoureuse (VO₂max entre 40 et 50 mL·min⁻¹·kg⁻¹)
- Sujets entraînés : Pratiquer 5 à 7 heures par semaine d'entraînement d'endurance régulier depuis au moins un an (VO₂max entre 50 et 65 mL·min⁻¹·kg⁻¹)
Sujets hautement entraînés : Pratiquer au moins 10 heures par semaine d'entraînement d'endurance structuré, avec des séances quotidiennes ou biquotidiennes (VO₂max supérieure à 65 mL·min⁻¹·kg⁻¹)
Critères d'exclusion :
- Antécédents de maladie cardiovasculaire
- Présence d'un trouble métabolique (ex. diabète)
- Utilisation d'antibiotiques, d'antifongiques ou d'antiparasitaires au cours des 3 derniers mois, ou utilisation prévue pendant la participation à l'étude
- Utilisation de suppléments prébiotiques et/ou probiotiques dans les 7 jours précédant l'étude, fournissant ≥10⁸ UFC ou organismes par jour
- Utilisation actuelle de médicaments pour la gestion de la douleur chronique, y compris le paracétamol, les vasodilatateurs, les traitements homéopathiques ou l'aspirine à des doses >500 mg/jour
- Participation simultanée à une autre étude clinique impliquant des sujets humains, ou participation récente à une étude précédente pour laquelle la période d'exclusion n'est pas encore expirée
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
Intervention / Traitement |
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Sujets faiblement à modérément actifs
V̇O₂max : 40-50 ml/min/kg
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Les participants effectueront ce test sur un ergocycle.
Les échanges gazeux seront mesurés en continu tout au long du test, et le lactate sanguin sera prélevé à intervalles réguliers jusqu'à ce que la consommation maximale d'oxygène soit atteinte.
Un test d'exercice sous-maximal de 25 minutes sur ergocycle en condition de jeûne.
Les échanges gazeux sont mesurés pendant tout le test et le lactate sanguin sera échantillonné à intervalles réguliers.
Les échantillons fécaux seront collectés afin de (1) réaliser des analyses métagénomiques et métabolomiques pour caractériser la composition et la fonction du microbiote intestinal, et (2) créer une biobanque fécale pour des recherches futures impliquant la transplantation de microbiote fécal chez la souris.
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Sujets formés
V̇O₂max : 50-65 ml/min/kg
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Les participants effectueront ce test sur un ergocycle.
Les échanges gazeux seront mesurés en continu tout au long du test, et le lactate sanguin sera prélevé à intervalles réguliers jusqu'à ce que la consommation maximale d'oxygène soit atteinte.
Un test d'exercice sous-maximal de 25 minutes sur ergocycle en condition de jeûne.
Les échanges gazeux sont mesurés pendant tout le test et le lactate sanguin sera échantillonné à intervalles réguliers.
Les échantillons fécaux seront collectés afin de (1) réaliser des analyses métagénomiques et métabolomiques pour caractériser la composition et la fonction du microbiote intestinal, et (2) créer une biobanque fécale pour des recherches futures impliquant la transplantation de microbiote fécal chez la souris.
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Sujets hautement qualifiés
V̇O₂max > 65 ml/min/kg
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Les participants effectueront ce test sur un ergocycle.
Les échanges gazeux seront mesurés en continu tout au long du test, et le lactate sanguin sera prélevé à intervalles réguliers jusqu'à ce que la consommation maximale d'oxygène soit atteinte.
Un test d'exercice sous-maximal de 25 minutes sur ergocycle en condition de jeûne.
Les échanges gazeux sont mesurés pendant tout le test et le lactate sanguin sera échantillonné à intervalles réguliers.
Les échantillons fécaux seront collectés afin de (1) réaliser des analyses métagénomiques et métabolomiques pour caractériser la composition et la fonction du microbiote intestinal, et (2) créer une biobanque fécale pour des recherches futures impliquant la transplantation de microbiote fécal chez la souris.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Composition du microbiote intestinal (α-diversité)
Délai: Semaine 1
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Le critère de jugement principal sera la diversité α (c'est-à-dire l'indice de Shannon) évaluée à partir d'échantillons fécaux prélevés chez chaque participant. Cet indice servira de critère principal pour détecter le remodelage du microbiote intestinal associé au statut d'entraînement et aux paramètres clés de la performance aérobie. Après avoir transformé les variables quantitatives continues en variables discrètes selon des échelles de performance standardisées, nous évaluerons si des différences statistiques existent dans la diversité α entre les groupes définis en utilisant des analyses statistiques comparatives (paramétriques ou non paramétriques selon la distribution des données). Cette approche vise à identifier les associations entre la biodiversité microbienne intestinale, le statut d'entraînement et la performance aérobie, avec l'objectif plus large d'explorer les signatures microbiennes potentiellement bénéfiques pour la santé intestinale. |
Semaine 1
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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β-diversité (c'est-à-dire les différences entre les échantillons)
Délai: Semaine 1
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Pour déterminer si la β-diversité (c'est-à-dire les différences entre les échantillons) du microbiote intestinal peut discriminer entre les groupes de participants classés selon les variables clés de la performance aérobie (par exemple, VO₂max, oxydation des glucides et des lipides, seuils ventilatoires 1 et 2).
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Semaine 1
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Établir une biobanque de selles
Délai: Semaine 1
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Établir une biobanque fécale pour des analyses fonctionnelles futures en utilisant un modèle murin d'inflammation intestinale.
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Semaine 1
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Frédéric DERBRE, PhD, Laboratory of Movement, Sport and health Sciences (M2S)
Publications et liens utiles
Publications générales
- Clarke SF, Murphy EF, O'Sullivan O, Lucey AJ, Humphreys M, Hogan A, Hayes P, O'Reilly M, Jeffery IB, Wood-Martin R, Kerins DM, Quigley E, Ross RP, O'Toole PW, Molloy MG, Falvey E, Shanahan F, Cotter PD. Exercise and associated dietary extremes impact on gut microbial diversity. Gut. 2014 Dec;63(12):1913-20. doi: 10.1136/gutjnl-2013-306541. Epub 2014 Jun 9.
- Martin D, Bonneau M, Orfila L, Horeau M, Hazon M, Demay R, Lecommandeur E, Boumpoutou R, Guillotel A, Guillemot P, Croyal M, Cressard P, Cressard C, Cuzol A, Monbet V, Derbre F. Atypical gut microbial ecosystem from athletes with very high exercise capacity improves insulin sensitivity and muscle glycogen store in mice. Cell Rep. 2025 Apr 22;44(4):115448. doi: 10.1016/j.celrep.2025.115448. Epub 2025 Mar 27.
- Mohr AE, Jager R, Carpenter KC, Kerksick CM, Purpura M, Townsend JR, West NP, Black K, Gleeson M, Pyne DB, Wells SD, Arent SM, Kreider RB, Campbell BI, Bannock L, Scheiman J, Wissent CJ, Pane M, Kalman DS, Pugh JN, Ortega-Santos CP, Ter Haar JA, Arciero PJ, Antonio J. The athletic gut microbiota. J Int Soc Sports Nutr. 2020 May 12;17(1):24. doi: 10.1186/s12970-020-00353-w.
- Barton W, Penney NC, Cronin O, Garcia-Perez I, Molloy MG, Holmes E, Shanahan F, Cotter PD, O'Sullivan O. The microbiome of professional athletes differs from that of more sedentary subjects in composition and particularly at the functional metabolic level. Gut. 2018 Apr;67(4):625-633. doi: 10.1136/gutjnl-2016-313627. Epub 2017 Mar 30.
- Qiu P, Ishimoto T, Fu L, Zhang J, Zhang Z, Liu Y. The Gut Microbiota in Inflammatory Bowel Disease. Front Cell Infect Microbiol. 2022 Feb 22;12:733992. doi: 10.3389/fcimb.2022.733992. eCollection 2022.
- Oligschlaeger Y, Yadati T, Houben T, Condello Olivan CM, Shiri-Sverdlov R. Inflammatory Bowel Disease: A Stressed "Gut/Feeling". Cells. 2019 Jun 30;8(7):659. doi: 10.3390/cells8070659.
- Estaki M, Pither J, Baumeister P, Little JP, Gill SK, Ghosh S, Ahmadi-Vand Z, Marsden KR, Gibson DL. Cardiorespiratory fitness as a predictor of intestinal microbial diversity and distinct metagenomic functions. Microbiome. 2016 Aug 8;4(1):42. doi: 10.1186/s40168-016-0189-7.
- Hou K, Wu ZX, Chen XY, Wang JQ, Zhang D, Xiao C, Zhu D, Koya JB, Wei L, Li J, Chen ZS. Microbiota in health and diseases. Signal Transduct Target Ther. 2022 Apr 23;7(1):135. doi: 10.1038/s41392-022-00974-4.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Réel)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
- 2025-A01645-44
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