- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT07276464
Caratterizzazione della Firma del Microbiota Intestinale in Relazione alla Forma Fisica e sue Implicazioni per la Salute Intestinale. (MICROPEPS)
Caratterizzazione della firma metagenomica del microbiota intestinale in base alla forma fisica e sue implicazioni per la salute intestinale.
Il microbiota intestinale comprende tutti i microrganismi che abitano il tratto digerente, evolvendosi nel corso della vita sotto l'influenza di vari fattori intrinseci ed estrinseci. In condizioni di salute, il microbiota rimane stabile, resiliente e mantiene una relazione simbiotica con il suo ospite. Al contrario, la disbiosi si riferisce a un'alterazione nella composizione e nella funzione microbica, che è stata collegata a malattie come la malattia infiammatoria intestinale (IBD). L'IBD, compresa la malattia di Crohn e la colite ulcerosa, è associata a un microbiota alterato rispetto agli individui sani, portando a un'integrità compromessa della barriera intestinale e all'attivazione di vie infiammatorie locali.
Evidenze crescenti suggeriscono anche che il microbiota intestinale degli atleti differisce da quello degli individui fisicamente inattivi, mostrando una maggiore diversità microbica e concentrazioni più elevate di acidi grassi a catena corta (SCFA). In questo contesto, il presente studio clinico mira a caratterizzare il metagenoma batterico del microbiota intestinale lungo un continuum che va da individui inattivi ad atleti d'élite con elevate o molto elevate esigenze energetiche. L'obiettivo finale di questo progetto è determinare se specifiche composizioni e profili funzionali del microbiota intestinale siano associati a diversi livelli di capacità di esercizio, e creare una biobanca di microbiota fecale per future ricerche sulla salute intestinale.
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Descrizione dettagliata
Il microbiota intestinale comprende tutti i microrganismi - batteri, virus e funghi - che abitano il tratto digestivo. La colonizzazione inizia alla nascita e si evolve durante tutta la vita sotto l'influenza di numerosi fattori come la dieta, l'uso di antibiotici, il sonno, lo stress, l'attività fisica, l'esposizione ad agenti ambientali, nonché l'età, il sesso e l'origine etnica o migratoria (Hou et al., 2022).
Questo ecosistema microbico svolge diverse funzioni essenziali per il suo ospite, tra cui la digestione e l'assorbimento dei nutrienti, la regolazione immunitaria e la protezione contro i patogeni (Estaki et al., 2016). Attraverso la fermentazione di carboidrati complessi, in particolare le fibre alimentari indigeribili dagli enzimi umani, alcuni batteri producono acidi grassi a catena corta (SCFA), principalmente butirrato, propionato e acetato. Questi metaboliti svolgono un ruolo chiave nel mantenere l'integrità della barriera intestinale e nel metabolismo energetico dei colonociti (Estaki et al., 2016).
Quando la composizione o la funzione microbica viene alterata, sia nella diversità, nelle proporzioni relative o nelle vie metaboliche, si verifica uno stato di disbiosi. Questo squilibrio è frequentemente osservato in varie condizioni patologiche ed è stato associato allo sviluppo di malattie come il diabete, alcuni tumori, aterosclerosi, asma, malattie infiammatorie intestinali (IBD) e persino depressione (Hou et al., 2022).
Le IBD comprendono la malattia di Crohn (CD) e la colite ulcerosa (UC). Mentre la CD è caratterizzata da lesioni discontinue in tutto il tratto gastrointestinale, la UC coinvolge un'infiammazione continua e superficiale del colon. Queste patologie colpiscono lo 0,3-0,5% della popolazione mondiale (Ng et al., 2017). Numerosi studi hanno dimostrato differenze significative nella composizione del microbiota tra pazienti con IBD e individui sani (Oligschlaeger et al., 2019), portando a una compromissione della funzione della barriera intestinale (Qiu et al., 2022).
Parallelamente, un crescente numero di evidenze suggerisce che il microbiota intestinale degli individui fisicamente attivi differisce da quello delle persone sedentarie (Estaki et al., 2016; Clarke et al., 2014; Barton et al., 2017; Mohr et al., 2020).
Più recentemente, il nostro laboratorio ha caratterizzato il microbiota intestinale di 50 volontari che vanno da individui inattivi ad atleti d'élite con capacità di esercizio alta (calciatori d'élite) e molto alta (ciclisti d'élite) (EXOMIC, NCT05220657). I nostri dati hanno rivelato che la capacità di esercizio influenza l'ecologia microbica intestinale e i livelli fecali di SCFA, indipendentemente dalla dieta. Interessante, gli individui con capacità di esercizio molto alta mostravano una ridotta diversità microbica, densità e abbondanza di vie funzionali, sollevando interrogativi sul fatto che tali ecosistemi microbici siano benefici per il metabolismo energetico dell'ospite e la performance fisica. Utilizzando il trapianto di microbiota fecale (FMT) da donatori umani nella nostra coorte a topi trattati con antibiotici, abbiamo ulteriormente dimostrato che il microbiota del donatore, legato alla capacità di esercizio, influenza la sensibilità all'insulina e lo stoccaggio di glicogeno muscolare nei topi riceventi, evidenziando il ruolo critico del microbiota intestinale associato all'esercizio nel modellare le risposte metaboliche dell'ospite (Martin et al., 2025).
In questo contesto, questo studio clinico mira a caratterizzare il metagenoma batterico del microbiota intestinale lungo un continuum che va da individui sedentari ad atleti d'élite con elevate o molto elevate richieste energetiche, e a determinare se specifiche composizioni e profili funzionali del microbiota intestinale siano associati a diversi livelli di capacità di esercizio. L'obiettivo finale di questo progetto è creare una biobanca di microbiota fecale per future ricerche sulla salute intestinale.
Il protocollo clinico MICROPEPS è uno studio prospettico, monocentrico, comparativo e minimamente interventistico. Nessun farmaco, dispositivo medico o prodotto sarà testato all'interno di questo protocollo. Lo studio sarà condotto presso la piattaforma Exermove (Laboratorio M2S) per valutare la capacità di esercizio e la firma metagenomica del microbiota intestinale in uomini attivi, allenati e altamente allenati nella resistenza. I partecipanti parteciperanno a tre visite in laboratorio:
- Visita di inclusione: misurazioni antropometriche, questionari sulla dieta e sull'attività fisica. I partecipanti riceveranno quindi un kit per la raccolta fecale per raccogliere e inviare un campione di feci entro sette giorni.
- Seconda visita: test incrementale su cicloergometro per determinare il VO₂max.
- Terza visita: valutazioni metaboliche in condizioni di digiuno, a riposo e durante esercizio submassimale.
I parametri metabolici misurati durante questi test (ad esempio, VO₂max, potenza alle soglie aerobica e anaerobica, ossidazione massima di carboidrati e lipidi) saranno correlati con i dati metagenomici shotgun ottenuti dai campioni fecali.
Inoltre, lo studio stabilirà una biobanca di microbiota fecale di donatori stratificati per capacità di esercizio. Utilizzando un modello murino di trapianto di microbiota fecale combinato con colite indotta da DSS, l'obiettivo finale è determinare come la capacità di esercizio del donatore e gli ecosistemi microbici intestinali influenzino le risposte infiammatorie e la permeabilità intestinale.
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Frédéric DERBRE, PhD
- Numero di telefono: +33290091580
- Email: frederic.derbre@univ-rennes2.fr
Backup dei contatti dello studio
- Nome: Eglantine LE CHEVERT, M.S.
- Numero di telefono: +33688345332
- Email: eglantine.le-chevert@univ-rennes2.fr
Luoghi di studio
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Britanny
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Bruz, Britanny, Francia, 35170
- Reclutamento
- University Rennes 2 - Laboratory "Movement, Sport and health Sciences"
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Contatto:
- Le Chevert, M.S.
- Numero di telefono: +33688345332
- Email: eglantine.lechevert@orange.fr
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Investigatore principale:
- Nicolas BARBAROT, M.D.
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Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Adulto
Accetta volontari sani
Metodo di campionamento
Popolazione di studio
Descrizione
Criteri di inclusione:
- Partecipante di sesso maschile
- Età compresa tra 18 e 30 anni (inclusi)
- Indice di Massa Corporea (IMC) compreso tra 18 e 25 kg/m² (inclusi)
- Nessuna storia di malattia gastrointestinale, inclusa la malattia infiammatoria intestinale
- Non fumatore
- Avere un transito intestinale regolare (1-2 evacuazioni al giorno o a giorni alterni) senza episodi ricorrenti di diarrea o stitichezza
- Aver fornito consenso libero, informato e scritto per partecipare allo studio
Stato di allenamento:
- Soggetti con attività da bassa a moderata: svolgono 2-4 ore a settimana di attività fisica da moderata a vigorosa (VO₂max tra 40 e 50 mL·min⁻¹·kg⁻¹).
- Soggetti allenati: svolgono 5-7 ore a settimana di allenamento regolare di resistenza da almeno un anno (VO₂max tra 50 e 65 mL·min⁻¹·kg⁻¹).
Soggetti altamente allenati: svolgono almeno 10 ore a settimana di allenamento strutturato di resistenza, con sessioni giornaliere o due volte al giorno (VO₂max superiore a 65 mL·min⁻¹·kg⁻¹).
Criteri di esclusione:
- Storia di malattie cardiovascolari.
- Presenza di un disturbo metabolico (es. diabete).
- Uso di antibiotici, antimicotici o agenti antiparassitari nei 3 mesi precedenti, o uso pianificato durante la partecipazione allo studio.
- Uso di integratori prebiotici e/o probiotici nei 7 giorni precedenti lo studio, fornendo ≥10⁸ UFC o organismi al giorno.
- Uso attuale di farmaci per la gestione del dolore cronico, inclusi paracetamolo, vasodilatatori, trattamenti omeopatici o aspirina a dosi >500 mg/giorno.
- Partecipazione simultanea a un altro studio clinico che coinvolge soggetti umani, o recente partecipazione a uno studio precedente per il quale il periodo di esclusione non è ancora scaduto.
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
Coorti e interventi
Gruppo / Coorte |
Intervento / Trattamento |
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Soggetti con attività da bassa a moderata
V̇O₂max: 40-50 ml/min/kg
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I partecipanti eseguiranno questo test su un cicloergometro.
Lo scambio gassoso verrà misurato continuamente durante il test e il lattato ematico verrà campionato a intervalli regolari fino al raggiungimento del consumo massimo di ossigeno.
Un test di esercizio submassimale di 25 minuti su cicloergometro in condizioni di digiuno.
Gli scambi gassosi vengono misurati durante tutto il test e il lattato nel sangue sarà campionato a intervalli regolari.
I campioni fecali verranno raccolti al fine di (1) condurre analisi metagenomiche e metabolomiche per caratterizzare la composizione e la funzione del microbiota intestinale, e (2) creare una biobanca fecale per future ricerche che coinvolgano il trapianto di microbiota fecale nei topi.
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Soggetti formati
V̇O₂max : 50-65 ml/min/kg
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I partecipanti eseguiranno questo test su un cicloergometro.
Lo scambio gassoso verrà misurato continuamente durante il test e il lattato ematico verrà campionato a intervalli regolari fino al raggiungimento del consumo massimo di ossigeno.
Un test di esercizio submassimale di 25 minuti su cicloergometro in condizioni di digiuno.
Gli scambi gassosi vengono misurati durante tutto il test e il lattato nel sangue sarà campionato a intervalli regolari.
I campioni fecali verranno raccolti al fine di (1) condurre analisi metagenomiche e metabolomiche per caratterizzare la composizione e la funzione del microbiota intestinale, e (2) creare una biobanca fecale per future ricerche che coinvolgano il trapianto di microbiota fecale nei topi.
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Soggetti altamente qualificati
V̇O₂max > 65 ml/min/kg
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I partecipanti eseguiranno questo test su un cicloergometro.
Lo scambio gassoso verrà misurato continuamente durante il test e il lattato ematico verrà campionato a intervalli regolari fino al raggiungimento del consumo massimo di ossigeno.
Un test di esercizio submassimale di 25 minuti su cicloergometro in condizioni di digiuno.
Gli scambi gassosi vengono misurati durante tutto il test e il lattato nel sangue sarà campionato a intervalli regolari.
I campioni fecali verranno raccolti al fine di (1) condurre analisi metagenomiche e metabolomiche per caratterizzare la composizione e la funzione del microbiota intestinale, e (2) creare una biobanca fecale per future ricerche che coinvolgano il trapianto di microbiota fecale nei topi.
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Composizione del microbiota intestinale (α-diversità)
Lasso di tempo: Settimana 1
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La misura dell'esito primario sarà la diversità α (cioè, l'indice di Shannon) valutata a partire da campioni fecali raccolti da ciascun partecipante. Questo indice fungerà da criterio principale per rilevare il rimodellamento del microbiota intestinale associato allo stato di allenamento e ai parametri chiave della performance aerobica. Dopo aver trasformato le variabili quantitative continue in variabili discrete secondo scale di performance standardizzate, valuteremo se esistono differenze statistiche nella diversità α tra i gruppi definiti utilizzando analisi statistiche comparative (parametriche o non parametriche a seconda della distribuzione dei dati). Questo approccio mira a identificare associazioni tra la biodiversità microbica intestinale, lo stato di allenamento e la performance aerobica, con l'obiettivo più ampio di esplorare firme microbiche potenzialmente benefiche per la salute intestinale. |
Settimana 1
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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β-diversità (cioè, differenze tra campioni)
Lasso di tempo: Settimana 1
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Per determinare se la diversità β (ovvero le differenze tra i campioni) del microbiota intestinale può discriminare tra gruppi di partecipanti classificati in base alle variabili chiave della performance aerobica (ad esempio, VO₂max, ossidazione di carboidrati e lipidi, soglie ventilatorie 1 e 2).
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Settimana 1
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Stabilire una biobanca fecale
Lasso di tempo: Settimana 1
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Per stabilire una biobanca fecale per future analisi funzionali utilizzando un modello murino di infiammazione intestinale.
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Settimana 1
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Collaboratori e investigatori
Sponsor
Investigatori
- Investigatore principale: Frédéric DERBRE, PhD, Laboratory of Movement, Sport and health Sciences (M2S)
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Clarke SF, Murphy EF, O'Sullivan O, Lucey AJ, Humphreys M, Hogan A, Hayes P, O'Reilly M, Jeffery IB, Wood-Martin R, Kerins DM, Quigley E, Ross RP, O'Toole PW, Molloy MG, Falvey E, Shanahan F, Cotter PD. Exercise and associated dietary extremes impact on gut microbial diversity. Gut. 2014 Dec;63(12):1913-20. doi: 10.1136/gutjnl-2013-306541. Epub 2014 Jun 9.
- Martin D, Bonneau M, Orfila L, Horeau M, Hazon M, Demay R, Lecommandeur E, Boumpoutou R, Guillotel A, Guillemot P, Croyal M, Cressard P, Cressard C, Cuzol A, Monbet V, Derbre F. Atypical gut microbial ecosystem from athletes with very high exercise capacity improves insulin sensitivity and muscle glycogen store in mice. Cell Rep. 2025 Apr 22;44(4):115448. doi: 10.1016/j.celrep.2025.115448. Epub 2025 Mar 27.
- Mohr AE, Jager R, Carpenter KC, Kerksick CM, Purpura M, Townsend JR, West NP, Black K, Gleeson M, Pyne DB, Wells SD, Arent SM, Kreider RB, Campbell BI, Bannock L, Scheiman J, Wissent CJ, Pane M, Kalman DS, Pugh JN, Ortega-Santos CP, Ter Haar JA, Arciero PJ, Antonio J. The athletic gut microbiota. J Int Soc Sports Nutr. 2020 May 12;17(1):24. doi: 10.1186/s12970-020-00353-w.
- Barton W, Penney NC, Cronin O, Garcia-Perez I, Molloy MG, Holmes E, Shanahan F, Cotter PD, O'Sullivan O. The microbiome of professional athletes differs from that of more sedentary subjects in composition and particularly at the functional metabolic level. Gut. 2018 Apr;67(4):625-633. doi: 10.1136/gutjnl-2016-313627. Epub 2017 Mar 30.
- Qiu P, Ishimoto T, Fu L, Zhang J, Zhang Z, Liu Y. The Gut Microbiota in Inflammatory Bowel Disease. Front Cell Infect Microbiol. 2022 Feb 22;12:733992. doi: 10.3389/fcimb.2022.733992. eCollection 2022.
- Oligschlaeger Y, Yadati T, Houben T, Condello Olivan CM, Shiri-Sverdlov R. Inflammatory Bowel Disease: A Stressed "Gut/Feeling". Cells. 2019 Jun 30;8(7):659. doi: 10.3390/cells8070659.
- Estaki M, Pither J, Baumeister P, Little JP, Gill SK, Ghosh S, Ahmadi-Vand Z, Marsden KR, Gibson DL. Cardiorespiratory fitness as a predictor of intestinal microbial diversity and distinct metagenomic functions. Microbiome. 2016 Aug 8;4(1):42. doi: 10.1186/s40168-016-0189-7.
- Hou K, Wu ZX, Chen XY, Wang JQ, Zhang D, Xiao C, Zhu D, Koya JB, Wei L, Li J, Chen ZS. Microbiota in health and diseases. Signal Transduct Target Ther. 2022 Apr 23;7(1):135. doi: 10.1038/s41392-022-00974-4.
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Inizio studio (Effettivo)
Completamento primario (Stimato)
Completamento dello studio (Stimato)
Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
Primo Inserito (Stimato)
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Parole chiave
Termini MeSH pertinenti aggiuntivi
Altri numeri di identificazione dello studio
- 2025-A01645-44
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