- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT07328087
COLONYVAQ™, un vaccin personnalisé de néoantigènes guidé par l'informatique quantique-classique pour le cancer colorectal de stade III MSS (COLONYVAQ™-CRC)
COLONYVAQ™-CRC, un vaccin personnalisé à base de peptides néo-antigènes guidé par une IA quantique-classique consciente de la physique, administré en combinaison avec une chimiothérapie adjuvante standard à base d'oxaliplatine (mFOLFOX6 ou CAPOX) et de nivolumab 3 mg/kg chez des patients atteints d'un cancer colorectal de stade III complètement réséqué et microsatellite-stable (MSS)
Une cohorte initiale de sécurité de 12 patients sera inscrite et étroitement surveillée pour détecter toute toxicité attribuable à la préparation expérimentale du vaccin.
Si, parmi ces 12 patients, moins de 3 développent une toxicité liée à la préparation expérimentale supérieure au grade 2 et qu'aucun patient ne développe une toxicité liée à la préparation expérimentale de grade 4, l'étude sera étendue pour inclure un total de 50 patients.
Les objectifs principaux portent sur la sécurité et la tolérabilité du schéma thérapeutique combiné.
Les objectifs secondaires et exploratoires caractérisent les réponses immunitaires spécifiques aux néoantigènes, la dynamique de l'ADN tumoral circulant (ADNtc), l'évolution des clonotypes du récepteur des cellules T (TCR), les caractéristiques du microenvironnement immunitaire tumoral et le contrôle préliminaire de la maladie (survie sans maladie et survie globale) pour éclairer la conception ultérieure de la phase II.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Le cancer colorectal est une cause majeure de mortalité liée au cancer. Dans la maladie de stade III, la récidive reste fréquente malgré une chirurgie à visée curative et une chimiothérapie adjuvante à base d'oxaliplatine. Les inhibiteurs de points de contrôle immunitaires ont transformé les pronostics dans le cancer colorectal déficient en réparation des mésappariements (dMMR) / à instabilité microsatellitaire élevée (MSI-H), mais les tumeurs microsatellitaires stables (MSS) / pMMR présentent généralement une charge mutationnelle tumorale plus faible et un microenvironnement immunosuppresseur peu inflammé. Par conséquent, le blocage conventionnel de PD-1 seul offre un bénéfice minimal dans la maladie MSS/pMMR. Les approches vaccinales antérieures dans le cancer colorectal se concentraient sur des antigènes associés aux tumeurs tels que CEA, MUC1, survivine, MAGE et des cocktails de peptides multi-TAA. Ces études ont montré que les vaccins à base de peptides et de cellules dendritiques peuvent induire des réponses des lymphocytes T et B spécifiques de l'antigène, mais les réponses objectives étaient rares, le bénéfice clinique modeste, et les toxicités hors tumeur étaient une préoccupation car les TAA sont fréquemment exprimés dans les tissus normaux. Les néoantigènes spécifiques des tumeurs, générés par des mutations somatiques non synonymes, sont au contraire restreints aux cellules malignes, échappent à la tolérance centrale, peuvent susciter des réponses des lymphocytes T de plus haute avidité et minimiser la toxicité hors tumeur. Les premiers essais de néoantigènes colorectaux et pan-cancéreux, ainsi que les programmes de néoantigènes partagés tels que SLATE-KRAS et les plateformes d'ARN viral entièrement personnalisées comme GRANITE, ont démontré que la vaccination multi-néoantigènes est réalisable, sûre et immunogène, particulièrement dans des contextes de faible charge tumorale ou de maintenance et lorsqu'elle est combinée au blocage des points de contrôle. L'essai du vaccin adjuvant à cellules dendritiques ciblant les néoantigènes plus nivolumab dans le carcinome hépatocellulaire réséqué et les métastases hépatiques colorectales soutient davantage l'idée que la vaccination personnalisée par néoantigènes dans le contexte de maladie résiduelle minimale (MRD) peut augmenter les réponses des lymphocytes T spécifiques des néoantigènes et potentiellement améliorer la survie sans récidive. Les régimes à base d'oxaliplatine (mFOLFOX6 ou CAPOX) peuvent induire une mort cellulaire immunogène, exposant la calréticuline et d'autres signaux de danger qui améliorent la capture par les cellules dendritiques et la présentation croisée des antigènes tumoraux. Le nivolumab, en bloquant PD-1, lève la signalisation inhibitrice sur les lymphocytes T activés. Combiner un vaccin peptidique multi-néoantigènes personnalisé avec une chimiothérapie immunogène et un blocage de PD-1 est donc censé augmenter la libération d'antigènes, améliorer la présentation des antigènes et augmenter la fonction effectrice, transformant potentiellement les tumeurs MSS immunologiquement "froides" en lésions plus inflammées, "chaudes", susceptibles d'une surveillance immunitaire durable dans le cadre adjuvant.
COLONYVAQ-CRC : Priorisation des néoantigènes quantique-classique, consciente de la physique La plupart des pipelines de néoantigènes existants traitent le classement des épitopes comme principalement statistique. COLONYVAQ-CRC introduit une couche d'IA quantique-classique consciente de la physique, adaptée de Tamavaq, pour générer une chaîne mécaniste vérifiable du séquençage à la sélection clinique des peptides. Pour chaque paire peptide-HLA candidate p, le système construit une représentation unifiée des caractéristiques Φ(p), qui concatène des preuves basées sur la séquence, biologiques, quantiques, structurales et énergétiques : Φ(p)=[e_"CNN" (p),"" aux(p),"" z_Q (p),"" φ_"struct" (p),""φ_"dock" (p)]. Le terme e_"CNN" (p) désigne un plongement profond de séquence/HLA dérivé de modèles convolutifs ou de transformateurs entraînés sur de grands ensembles de données d'immunopeptidome. Le bloc auxiliaire aux(p) compile des a priori de traitement et d'expression antigéniques tels que la probabilité de clivage protéasomique, la propension au transport par TAP, l'abondance transcriptionnelle, la clonalité et, lorsqu'ils sont disponibles, les informations ctDNA/MRD pour approximer la force effective de la source antigénique. Le descripteur quantique z_Q (p) est un vecteur classique de faible dimension qui paramètre un plongement de circuit quantique. Le terme structural φ_"struct" (p) résume l'occupation de la poche et les contacts résidu-résidu dans les complexes peptide-HLA modélisés. Enfin, φ_"dock" (p) agrège les statistiques de l'ensemble de docking, y compris les énergies des poses, la dispersion et la diversité conformationnelle.
La similarité entre deux candidats p et q est capturée par un noyau composite semi-défini positif K_"total" (p,q)=αK_"CNN" (p,q)+βK_"aux" (p,q)+γK_Q (p,q)+δK_"struct" (p,q)+εK_"dock" (p,q), où les poids non négatifs α,β,γ,δ,ε ajustent la contribution relative de chaque modalité. Parce que chaque composant du noyau est construit pour être semi-défini positif, leur combinaison linéaire non négative reste semi-définie positive, garantissant que K_"total" peut être utilisé de manière cohérente dans la régression logistique à noyau ou des méthodes similaires. Une fonction de décision peut s'écrire f(p)=∑_(i=1)^M▒α_i K_"total" (p,p_i)+b, où {p_i } sont des peptides d'entraînement et α_i,b sont des coefficients appris. La probabilité d'immunogénicité est ensuite modélisée comme I ̂(p)=σ(f(p)), où σ(z)=1/(1+e^(-z)) est la fonction logistique. Du côté quantique, chaque peptide x est encodé comme un état normalisé ∣ψ(x)⟩ dans un espace de Hilbert H de dimension 2^n, construit via une carte de caractéristiques U(z_Q (x),θ) agissant sur un état de référence ∣0⟩^(⊗n) : ∣ψ(x)⟩=U(z_Q (x),θ) " "∣0⟩^(⊗n). Le recouvrement entre deux états peptidiques est ⟨ψ(x)∣ψ(y)⟩. La similarité quantique-géométrique est quantifiée par la distance de Fubini-Study d_"FS" (x,y)=arccos(∣⟨ψ(x)∣ψ(y)⟩∣), qui se situe dans [0°,π/2], où d_"FS" =0 correspond à des rayons identiques et d_"FS" =π/2 à des états orthogonaux. À partir de cette distance, un noyau de similarité quantique est défini comme K_q (x,y)=〖∣⟨ψ(x)∣ψ(y)⟩∣〗^2=〖cos〗^2 (d_"FS" (x,y)). Ce noyau peut être interprété comme la probabilité que l'état ∣ψ(x)⟩ soit projeté sur ∣ψ(y)⟩. Lorsque des peptides de faible identité de séquence partagent une structure physico-chimique d'ordre supérieur, ils peuvent se projeter sur des points proches sur cette variété projective complexe, générant de grandes valeurs K_q même lorsque la similarité de séquence classique est faible. La structure interne et l'intrication de ∣ψ(x)⟩ sont surveillées en formant des matrices de densité réduites sur des sous-systèmes. Pour une bipartition en sous-systèmes A et B, l'état réduit est ρ_A (x)=Tr_B (∣ψ(x)⟩⟨ψ(x)∣). L'entropie de von Neumann S_A (x)=-Tr[ρ_A (x)logρ_A (x)] quantifie l'intrication entre A et B. Un terme de régularisation encourage l'entropie dans une plage cible, évitant les états produits triviaux (trop peu d'intrication) et les états excessivement intriqués qui peuvent être numériquement instables et difficiles à approximer sur du matériel quantique à échelle intermédiaire bruyante (NISQ).
La sensibilité du plongement quantique aux changements de paramètres est caractérisée par la matrice d'information de Fisher quantique F(θ) avec les entrées F_ij (θ)=R[⟨∂_i ψ∣∂_j ψ⟩-⟨∂_i ψ∣ψ⟩⟨ψ∣∂_j ψ⟩], où ∣∂_i ψ⟩=∂∣ψ(θ)⟩/∂θ_i. Les matrices de Fisher mal conditionnées, avec de très petites valeurs propres, peuvent conduire à de grandes variances dans les estimations des paramètres et à des valeurs de noyau instables. COLONYVAQ introduit donc une pénalité proportionnelle à tr(F(θ)^(-1)), qui diverge lorsque les valeurs propres approchent de zéro ; minimiser ce terme pousse l'optimisation vers des régions de paramètres où toutes les directions de l'espace des paramètres sont bien informées par les données. Les aspects énergétiques sont traités de manière thermodynamiquement calibrée. Pour chaque pose de docking peptide-HLA i avec énergie libre standard ΔG_i^⊖, les constantes d'association et de dissociation du micro-état sont K_(a,i)=exp(⊖ (ΔG_i^⊖)/RT),K_(d,i)=exp((ΔG_i^⊖)/RT), avec R=1,987×10^(-3) " " kcal·mol^(-1)·K^(-1) et T=310"" K, de sorte que RT≈0,616" " kcal·mol^(-1). L'ensemble de docking est résumé comme une constante d'association effective pondérée par Boltzmann K_a^"eff" =∑_i▒w_i exp(⊖-(ΔG_i^⊖)/RT),∑_i▒w_i =1, produisant une énergie libre effective ΔG_"eff" ^⊖=-RTlnK_a^"eff" et une constante de dissociation correspondante K_d^"eff" =1/K_a^"eff" . Ces valeurs sont rapportées dans des unités familières aux expérimentateurs (kcal·mol⁻¹ pour ΔG_"eff" ^⊖, nM pour K_d^"eff" ). Si l'étalement des énergies libres dans l'ensemble est σ_ΔG, alors l'incertitude associée dans K_d peut être exprimée multiplicativement comme exp(±σ_ΔG/(RT)). Par exemple, à T=310"" K, un changement de 1,2"" kcal·mol^(-1) dans ΔG^⊖ change K_d d'un facteur d'environ exp(1,2/0,616)≈6,3. Un terme de perte de docking L_"dock" =λ_1 E ̄+λ_2 σ_E, où E ̄ et σ_E sont la moyenne et l'écart type des énergies de docking, biaise le modèle vers des ensembles à faible énergie et faible variance qui sont empiriquement associés à une présentation peptide-CMH robuste. Au-dessus de Φ(p) et du noyau K_"total" , COLONYVAQ entraîne une tête logistique calibrée I ̂(p)=σ(w^⊤ Φ(p)+b), qui est interprétée comme la probabilité que le peptide p soit reconnu par les lymphocytes T, optimisée à la fois pour la discrimination (par exemple AUC) et l'étalonnage (par exemple score de Brier, erreur d'étalonnage attendue). En parallèle, une tête thermodynamique linéaire prédit (ΔG) ̂^⊖ (p)=η^⊤ Φ(p)+η_0, à partir de laquelle une constante de dissociation prédite K ̂_d (p)=exp((ΔG) ̂^⊖ (p)/(RT)) est dérivée. La perte totale couple la prédiction, la structure, le docking et la régularisation de Fisher quantique en un objectif unique L=L_"pred" +L_"struct" +L_"dock" +L_"QFIM", avec L_"QFIM" proportionnel à tr(F(θ)^(-1)).
Les peptides candidats passent par un oracle à trois portes "physique + géométrie + immunologie". Premièrement, une porte quantique-géométrique exige que la distance de Fubini-Study entre ∣ψ(x)⟩ et un centroïde ∣ψ(P)⟩ de peptides immunogènes empiriquement validés satisfasse d_"FS" (ψ(x),ψ(P))≤d^"*" . Deuxièmement, une porte thermodynamique exige que l'énergie libre effective et la constante de dissociation répondent à des critères minimaux de force de liaison, ΔG_"eff" ^⊖ (x)≤ΔG^"*" ou équivalemment K_d^"eff" (x)≤K_d^"*" . Troisièmement, une porte d'immunogénicité exige que la probabilité calibrée dépasse un seuil, I ̂(x)≥I^"*" . Soit N le nombre total de candidats, avec M peptides passant les trois filtres. En termes quantiques abstraits, une superposition uniforme sur tous les candidats est ∣Ψ_0⟩=1/√N ∑_(j=1)^N▒〖∣j⟩, qui peut être décomposée en sous-espaces "marqués" et "non marqués" comme ∣Ψ_0⟩=sinθ " "∣Ψ_"good" ⟩+cosθ " "∣Ψ_"bad" ⟩, où 〖sin〗^2 θ=M/N. Un opérateur d'amplification d'amplitude de type Grover G est défini comme le produit d'un oracle O qui inverse la phase des états marqués et d'un opérateur de diffusion D qui réfléchit autour de ∣Ψ_0⟩. Après r itérations, l'état devient ∣Ψ_r⟩=G^r∣Ψ_0⟩=sin((2r+1)θ)∣Ψ_"good" ⟩+cos((2r+1)θ)∣Ψ_"bad" ⟩, et la probabilité de mesurer un indice marqué est P_r=〖sin〗^2 ((2r+1)θ).
Lorsque θ est petit (peu de bons candidats), le nombre optimal d'itérations qui maximise P_r est approximativement r_"opt" ≈π/4 √(N/M), mais dans le régime NISQ et en présence d'incertitude sur M, COLONYVAQ utilise un petit nombre d'itérations (typiquement une à trois) pour amplifier de manière fiable le poids des peptides marqués sans sur-rotation. En pratique, cette étape de style Grover est simulée ou approximée d'une manière compatible avec le matériel disponible et sert à concentrer la synthèse peptidique GMP sur un sous-ensemble compact et de haute confiance.
Dans l'ensemble des peptides marqués, les égalités résiduelles sont départagées en utilisant un score composite S(x)=αK_q (x,P)+β " " σ " " ((I ̂(x)-I^"*" )/τ_I )+γ " " σ " " ((K_d^"*" -K_d^"eff" (x))/τ_K ), où K_q (x,P)=〖∣⟨ψ(x)∣ψ(P)⟩∣〗^2, τ_I et τ_K définissent la raideur des transitions, et σ est la fonction logistique. Cette expression rend explicite comment la similarité aux contrôles positifs connus, la puissance immunitaire modélisée et la force de liaison prédite déterminent conjointement le classement final utilisé pour définir la cargaison peptidique COLONYVAQ-CRC pour chaque patient.
Justification de la combinaison avec mFOLFOX6 ou CAPOX et Nivolumab
L'oxaliplatine et les fluoropyrimidines sont des composants standards de la thérapie adjuvante dans le cancer colorectal de stade III et peuvent induire une mort cellulaire immunogène, augmentant la libération d'antigènes tumoraux et de signaux de danger, ce qui à son tour améliore l'activation des cellules dendritiques et la présentation croisée des antigènes. Le nivolumab 3 mg/kg toutes les 2 semaines bloque PD-1, empêchant l'épuisement et la suppression fonctionnelle des lymphocytes T spécifiques des tumeurs induits par le vaccin et libérés par la chimiothérapie. Le moteur quantique-classique COLONYVAQ-CRC vise à maximiser la qualité des cibles néoantigéniques ; la chimiothérapie immunogène augmente la disponibilité des antigènes ; et le blocage de PD-1 maintient la fonction effectrice des lymphocytes T. L'essai de phase I précoce testera la sécurité et la faisabilité de cette stratégie à trois composants dans le contexte adjuvant MRD et générera des données préliminaires de réponse immunitaire et moléculaire.
Type d'étude
Inscription (Estimé)
Phase
- Première phase 1
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Ioannis Grigoriadis, PharmacistPharmD
- Numéro de téléphone: +306936592686
- E-mail: BIOGENEADRUG@GMAIL.COM
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Christos Emmanouelides, MD, PhD, Medical Oncologist,
- Numéro de téléphone: +306972221474
- E-mail: cemmanou@gmail.com
Lieux d'étude
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Thessaloniki, Grèce, 54627
- Recrutement
- Biogenea Pharmaeuticals Ltd
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
- Enfant
- Adulte
- Adulte plus âgé
Accepte les volontaires sains
La description
Critères d'inclusion :
- Diagnostic et Histologie Adénocarcinome du côlon ou du rectum confirmé histologiquement.
Rapport d'anatomopathologie disponible pour une revue centrale ou par le promoteur (si demandé), incluant :
Site tumoral primaire (côlon vs rectum), Grade de différenciation, Marges de résection. Stade et Statut Chirurgical Maladie de stade pathologique III (tout T, N1-2, M0) selon la 8e édition de l'AJCC. Résection R0 de la tumeur primitive documentée par les rapports opératoires et anatomopathologiques (pas de tumeur résiduelle macroscopique ou microscopique au niveau des marges).
Aucune preuve de maladie métastatique à distance (M1) sur l'imagerie de stadification (TDM thorax/abdomen/bassin ± IRM/TEP selon les standards institutionnels) réalisée dans un délai défini par le protocole (par exemple, ≤8 semaines avant l'inclusion).
Inclusion et début du traitement prévus dans un délai défini après la chirurgie (par exemple, 4-12 semaines après la résection), permettant une récupération appropriée.
Sous-type Moléculaire (MSS/pMMR)
Tumeur confirmée microsatellite-stable (MSS) ou avec réparation des mésappariements compétente (pMMR) par test local utilisant :
Immunohistochimie (IHC) pour MLH1, MSH2, MSH6, PMS2, et/ou panel MSI par PCR, et/ou statut MSI ou MMR par NGS. Aucune preuve de statut dMMR/MSI-H ou de phénotype POLE-ultramuté. Profil de Récidive à Haut Risque
Au moins une des caractéristiques de haut risque suivantes définies dans le protocole :
Tumeur pathologique T4. Statut ganglionnaire pathologique N2 (≥4 ganglions lymphatiques positifs). ctDNA postopératoire positive (maladie résiduelle minimale) par un test validé informé par la tumeur dans un délai défini après la chirurgie/début de la chimiothérapie.
Autres caractéristiques de haut risque spécifiées par le protocole (par exemple, envahissement lymphovasculaire, envahissement périnerveux, histologie peu différenciée, prélèvement ganglionnaire inadéquat) comme détaillé dans le plan d'analyse statistique.
Adéquation à la Chimiothérapie Adjuvante Standard
Candidat à une chimiothérapie adjuvante à base d'oxaliplatine avec soit :
mFOLFOX6 toutes les 14 jours pendant environ 6 mois, ou CAPOX (XELOX) toutes les 21 jours pendant environ 3-6 mois. Le choix du schéma (mFOLFOX6 vs CAPOX) doit être déterminé avant l'inclusion sur la base des directives institutionnelles et des facteurs patients, et enregistré comme un facteur de stratification de la randomisation.
Aucune contre-indication à l'oxaliplatine, au 5-fluorouracile, au leucovorin ou à la capécitabine (par exemple, déficit sévère en dihydropyrimidine déshydrogénase, antécédent de toxicité sévère au 5-FU/capécitabine).
Adéquation au Nivolumab
Éligible selon le jugement de l'investigateur à recevoir un anticorps anti-PD-1 (nivolumab 3 mg/kg IV toutes les 2 semaines), incluant :
Aucun antécédent d'événements indésirables liés à l'immunité sévères (Grade ≥3) dus à une immunothérapie antérieure.
Aucune maladie auto-immune active nécessitant une immunosuppression systémique. État Général Statut de performance Eastern Cooperative Oncology Group (ECOG) 0 ou 1 au dépistage.
Fonction Organique et Médullaire Adéquate
Documentée dans les 14 jours précédant l'inclusion, sans transfusions ni facteurs de croissance uniquement pour répondre aux critères d'éligibilité :
Fonction hématologique Numération absolue des neutrophiles (ANC) ≥ 1,5 × 109/L. Numération plaquettaire ≥ 100 × 109/L. Hémoglobine ≥ 9,0 g/dL (transfusions autorisées si cliniquement indiquées, mais pas uniquement pour se qualifier).
Fonction hépatique Bilirubine totale ≤ 1,5 × limite supérieure de la normale (LSN) (≤3 × LSN autorisé pour un syndrome de Gilbert connu si la bilirubine directe est normale).
AST et ALT ≤ 2,5 × LSN. Phosphatase alcaline ≤ 2,5 × LSN (des seuils plus élevés peuvent être autorisés s'ils sont adéquatement expliqués par une atteinte osseuse ou hépatique de causes non malignes, selon le protocole).
Fonction rénale Créatinine sérique ≤ 1,5 × LSN ou clairance de la créatinine ≥ 50 mL/min (Cockcroft-Gault ou standard institutionnel).
Disponibilité de Biospecimens pour COLONYVAQ
Disponibilité d'un tissu tumoral adéquat provenant de la tumeur primitive réséquée (et/ou des métastases le cas échéant) :
De préférence tissu frais congelé ; sinon, blocs FFPE ou ≥15 lames non colorées (ou équivalent) pour permettre l'extraction d'ADN/ARN tumoral.
Échantillon normal apparié (sang périphérique) disponible pour le séquençage d'ADN germinal. Volonté de fournir des échantillons sanguins supplémentaires pour le ctDNA, la surveillance immunitaire et les tests exploratoires selon le calendrier.
Si des données WES/RNA-seq préexistantes répondent aux exigences de COLONYVAQ, elles peuvent être acceptées selon le protocole.
Adéquation des Néoantigènes
Au moins un néoantigène tumoral de haute qualité prédit identifié via le pipeline quantique-classique COLONYVAQ, répondant à des critères prédéfinis :
Liaison prédite forte aux allèles HLA spécifiques du patient (par exemple, K_d dans la plage des liants établis).
Preuve d'expression d'ARN tumoral du gène/allèle source. Priorisation par un score d'immunogénicité multi-algorithmique et passage des portes quantiques-géométriques, thermodynamiques et d'immunogénicité de COLONYVAQ.
Alternativement, disponibilité de peptides néoantigéniques de qualité GMP préfabriqués avec une immunogénicité in vitro démontrée et un profil de sécurité acceptable.
Espérance de Vie Espérance de vie estimée par l'investigateur ≥ 3 ans en l'absence de récidive du CCR, basée sur les comorbidités et l'état général.
Contraception et Grossesse
Femmes en âge de procréer (FEC) :
Test de grossesse sérique ou urinaire négatif dans les 7 jours précédant la randomisation. Accord d'utiliser une contraception hautement efficace (par exemple, hormonale + barrière, DIU, SIU, ou vasectomie du partenaire) pendant le traitement de l'étude et pour une période définie par le protocole après la dernière dose de nivolumab et de chimiothérapie (par exemple, 5 mois après le dernier nivolumab et 6 mois après la dernière dose de chimiothérapie, ou selon l'étiquetage/les directives institutionnelles).
Hommes avec des partenaires en âge de procréer :
Accord d'utiliser une contraception efficace et d'éviter le don de sperme pendant le traitement de l'étude et pour la période spécifiée par le protocole après la dernière dose.
Consentement Éclairé et Conformité Capacité à comprendre et à signer volontairement un document de consentement éclairé écrit. Volonté et capacité à se conformer à toutes les procédures de l'étude, y compris les visites programmées, l'imagerie, les prélèvements sanguins et les évaluations de suivi.
Critères d'exclusion :
- Maladie Résiduelle ou Métastatique au Départ Maladie macroscopique résiduelle (résection R2) ou marges indéterminées non clairement R0.
Preuve radiologique ou histologique de métastases à distance (M1) au départ lors de la stadification (par exemple, foie, poumon, péritoine).
Maladie résiduelle macroscopique au site primaire. Maladie avec Déficit de Réparation des Mésappariements ou MSI-Élevé / Maladie POLE-Mutée CCR dMMR/MSI-H connu ou tumeurs avec signatures POLE ultramutées pour lesquelles les stratégies établies d'inhibiteurs de points de contrôle sont la norme de soins ou préférées.
Traitement Anticancéreux Systémique Antérieur pour le CCR au-delà du Néoadjuvant Autorisé Traitement systémique antérieur pour le CCR métastatique.
Chimiothérapie ou chimioradiothérapie néoadjuvante qui :
N'a pas été terminée dans les délais définis par le protocole, ou A entraîné une toxicité non hématologique de Grade ≥2 non résolue (à l'exclusion de l'alopécie ou de la neuropathie cliniquement insignifiante comme spécifié).
Traitement antérieur par tout vaccin tumoral ciblant des TAA ou des néoantigènes (peptides, cellules dendritiques, viral, ARN, ADN).
Traitement antérieur par des inhibiteurs de points de contrôle immunitaires (par exemple, anti-PD-1, anti-PD-L1, anti-CTLA-4).
Infections Actives ou Non Contrôlées Infection systémique en cours nécessitant une antibiothérapie IV ou orale qui, selon l'avis de l'investigateur, interférerait avec le traitement de l'étude.
Infection VIH connue avec maladie non contrôlée (par exemple, numération CD4 en dessous du seuil du protocole ou charge virale non supprimée).
Hépatite B active avec charge virale élevée (par exemple, HBsAg positif avec ADN du HBV au-dessus de la limite prédéfinie) ou hépatite C active avec ARN du VHC détectable non traitée de manière adéquate.
Toute autre maladie infectieuse cliniquement significative jugée présenter un risque excessif avec l'immunothérapie, le vaccin ou la chimiothérapie.
Maladie Auto-immune et Immunosuppression
Antécédent de maladie auto-immune sévère ou non contrôlée nécessitant un traitement immunosuppresseur systémique (par exemple, corticostéroïdes à haute dose, agents biologiques). Exemples incluent :
Lupus érythémateux systémique, maladie inflammatoire de l'intestin avec poussées récentes, polyarthrite rhumatoïde nécessitant des biologiques, sclérose en plaques, myasthénie grave, etc.
Des exceptions peuvent inclure :
Thyroïdite auto-immune stable sous traitement de substitution, Vitiligo, Diabète de type 1 bien contrôlé ou autres affections bénignes comme défini dans le protocole.
Traitement chronique par corticostéroïdes systémiques dépassant les doses de remplacement physiologiques (par exemple, >10 mg équivalent prednisone par jour) ou autres immunosuppresseurs dans un délai spécifié par le protocole avant la première dose, sauf si requis pour un remplacement surrénalien.
Antécédents de Transplantation Transplantation allogénique de cellules souches hématopoïétiques antérieure. Transplantation d'organe solide antérieure (par exemple, rein, foie, cœur), en raison du risque de rejet de greffe et d'immunosuppression complexe.
Hypersensibilité et Intolérance Médicamenteuse
Hypersensibilité connue ou réaction allergique sévère (par exemple, anaphylaxie) à :
Tout composant de COLONYVAQ-CRC (peptides ou excipients), Poly I:C ou agonistes TLR similaires, Nivolumab ou autres agents anti-PD-1/PD-L1, Oxaliplatine, 5-FU, leucovorin ou capécitabine (y compris déficit sévère en DPD documenté).
Tumeurs Malignes Concurrentes Seconde tumeur primitive active nécessitant un traitement systémique ou susceptible d'en nécessiter un pendant la période de l'essai.
Exceptions :
Carcinome basocellulaire ou spinocellulaire de la peau adéquatement traité, Carcinome in situ du col de l'utérus, Autres tumeurs malignes en rémission complète et non anticipées pour rechuter ou nécessiter un traitement systémique dans les 5 prochaines années, selon le jugement de l'investigateur.
Comorbidités Cardiovasculaires, Pulmonaires ou Autres Sérieuses
Maladie cardiovasculaire instable ou cliniquement significative telle que :
Infarctus du myocarde récent (par exemple, dans les 6 mois), Angor instable, Arythmies non contrôlées, Insuffisance cardiaque congestive symptomatique (Classe NYHA III-IV), Hypertension non contrôlée malgré un traitement médical. Maladie cérébrovasculaire cliniquement significative (par exemple, accident vasculaire cérébral ou AIT dans les 6 mois) qui, selon le jugement de l'investigateur, augmente le risque.
Bronchopneumopathie chronique obstructive sévère ou maladie pulmonaire interstitielle avec altération fonctionnelle significative, ou pneumonite antérieure nécessitant des stéroïdes systémiques.
Toute autre affection médicale sérieuse et non contrôlée (par exemple, diabète mal contrôlé, cirrhose hépatique sévère, insuffisance rénale avancée) qui, selon l'opinion de l'investigateur, compromettrait la sécurité ou l'adhésion au protocole.
Grossesse et Allaitement Femmes enceintes (confirmé par un test de grossesse positif au dépistage). Femmes allaitantes ; l'allaitement doit être interrompu avant la première dose du traitement de l'étude.
Agents d'Investigation Concomitants et Traitements Confondants Participation concomitante à un autre essai clinique interventionnel impliquant des agents d'investigation systémiques, sauf approbation du promoteur et du CIR et non prévue pour biaiser les évaluations de sécurité ou d'efficacité.
Réception d'un vaccin vivant atténué dans un délai défini par le protocole (par exemple, 30 jours) avant la première dose de nivolumab ou COLONYVAQ-CRC et pendant la période de traitement de l'étude.
Autres Conditions Affectant la Conformité ou l'Évaluation Toute maladie psychiatrique, déficience cognitive, abus de substances ou situation sociale qui limiterait la conformité aux exigences de l'étude (par exemple, visites régulières, surveillance biologique, imagerie).
Toute condition qui, selon l'opinion de l'investigateur, rendrait le patient inapte à participer à l'essai, ou interférerait avec l'interprétation des données de sécurité, immunologiques ou des résultats cliniques.
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Traitement
- Répartition: N / A
- Modèle interventionnel: Affectation à un seul groupe
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Expérimental: Bras expérimental : COLONYVAQ-CRC + Chimiothérapie adjuvante standard + Nivolumab
Tous les patients inclus reçoivent le traitement de l'étude après une résection R0 d'un cancer colorectal de stade III MSS/pMMR.
La chimiothérapie adjuvante standard est soit mFOLFOX6, soit CAPOX, présélectionnée selon la pratique institutionnelle.
mFOLFOX6 est administré toutes les 14 jours pendant environ 6 mois : oxaliplatine 85 mg/m² IV sur 2 h, leucovorine 400 mg/m² IV sur 2 h, 5-FU 400 mg/m² IV en bolus, puis 5-FU 2400 mg/m² IV continu sur 46 h.
CAPOX est administré toutes les 21 jours pendant environ 3 à 6 mois : oxaliplatine 130 mg/m² IV sur environ 2 h le Jour 1 plus capécitabine 1000 mg/m² PO BID les Jours 1-14, puis 7 jours de repos.
COLONYVAQ-CRC est un vaccin néoantigénique multi-peptidique personnalisé (≤20 peptides, 8-30 aa, 0,3 mg chacun), sélectionné par un pipeline quantique-classique, synthétisé sous GMP, regroupé (2-4 pools) et mélangé 1:1 avec poly I:C (2 mg/mL) jusqu'à 1 mL pour injection SC selon un schéma prime-boost (Jours 1, 4, 8, 15, 22 ; Semaines 12, 20).
Nivolumab 3 mg/kg IV toutes les 2 semaines est administré jusqu'à 12 mois.
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Type d'intervention : Biologique Nom de l'intervention : COLONYVAQ-CRC (Vaccin peptidique personnalisé contre les néoantigènes) Description : COLONYVAQ-CRC est un vaccin personnalisé multi-peptides contre les néoantigènes composé de jusqu'à 20 peptides synthétiques spécifiques au patient (8-30 acides aminés ; 0,3 mg par peptide par dose). Les néoantigènes sont sélectionnés à partir du séquençage complet de l'exome tumoral/normal et de l'ARN tumoral en utilisant le pipeline quantique-classique COLONYVAQ (incluant le typage HLA, la similarité quantique-géométrique, l'amarrage thermodynamique et le score d'immunogénicité calibré). Les peptides passant toutes les barrières physique-immunologie sont synthétisés sous GMP, regroupés en 2-4 pools (≤5 peptides/pool dans 500 µL), et mélangés 1:1 avec du Montamide (2 mg/mL) pour un volume final de 1 mL pour injection sous-cutanée dans des régions riches en ganglions lymphatiques (par exemple, aisselles/aines bilatérales). La vaccination suit un calendrier prime-boost (par exemple, Jours 1, 4, 8, 15, 22 ; doses de rappel vers les Semaines 12 et 20), coordonné avec la chimiothérapie. |
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Incidence des EIs/ESIs liés au traitement et des EIs liés à l'immunité (CTCAE v5.0) avec COLONYVAQ-CRC plus chimiothérapie et nivolumab
Délai: Depuis la première dose de tout traitement de l'étude (chimiothérapie, vaccin ou nivolumab) jusqu'à 90 jours après la dernière dose (observation totale ~12 mois par patient).
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Incidence, nature et sévérité (grade CTCAE v5.0) des événements indésirables (EI) émergents du traitement et des événements indésirables graves (EIG), avec évaluation spécifique des toxicités attribuables au vaccin et des événements indésirables liés au système immunitaire.
Un seuil d'expansion de sécurité prédéfini sera évalué : parmi les 12 premiers patients, <3 avec une toxicité liée au vaccin >Grade 2 et aucune toxicité liée au vaccin de Grade 4 avant l'expansion de 12 à 50 patients.
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Depuis la première dose de tout traitement de l'étude (chimiothérapie, vaccin ou nivolumab) jusqu'à 90 jours après la dernière dose (observation totale ~12 mois par patient).
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Faisabilité de la Fabrication et de la Livraison du Vaccin COLONYVAQ-CRC
Délai: De l'inclusion jusqu'à la fin de la phase de vaccination primaire, généralement dans les 8 premières semaines après la première dose de vaccin.
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Proportion de patients inscrits chez lesquels un matériel tumoral et sanguin adéquat peut être obtenu, la découverte de néoantigènes et la priorisation de peptides basée sur COLONYVAQ peuvent être complétées, la fabrication GMP réussit, et au moins un nombre prédéfini minimal de doses de vaccin sont administrées sans échec logistique majeur.
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De l'inclusion jusqu'à la fin de la phase de vaccination primaire, généralement dans les 8 premières semaines après la première dose de vaccin.
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Proportion de participants avec une augmentation ≥2 fois des lymphocytes T spécifiques des néoantigènes par rapport à la valeur initiale
Délai: Baseline (dans les 28 jours avant la première dose de vaccin), pendant la vaccination à environ 4, 12 et 20 semaines après la première vaccination, à la fin de la période de vaccination (environ 8 mois après la première vaccination) et lors d'un suivi à 12 mois.
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Changement par rapport au niveau de base des réponses spécifiques des lymphocytes T CD4⁺ et CD8⁺ aux peptides néoantigènes sélectionnés par COLONYVAQ, mesurées dans le sang périphérique.
Les réponses seront évaluées à l'aide de tests ELISPOT IFN-γ, de marquage intracellulaire des cytokines (ICS) et/ou de marquage par multimères peptide-CMH.
Le résultat est rapporté en pourcentage de participants présentant une augmentation ≥2 fois par rapport au niveau de base des lymphocytes T spécifiques des néoantigènes à tout moment après le niveau de base.
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Baseline (dans les 28 jours avant la première dose de vaccin), pendant la vaccination à environ 4, 12 et 20 semaines après la première vaccination, à la fin de la période de vaccination (environ 8 mois après la première vaccination) et lors d'un suivi à 12 mois.
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Clairance de l'ADN tumoral circulant à la fin de la chimiothérapie adjuvante
Délai: Postopératoire de base avant la thérapie adjuvante (dans les 4 semaines précédant le premier cycle de chimiothérapie), pendant le traitement à environ 3 mois et à la fin de la chimiothérapie adjuvante, environ 7 mois après la randomisation, et lors du suivi à 12 mois.
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Description : Parmi les participants ayant un ADN tumoral circulant détectable en postopératoire de base, la proportion (%) qui passe à un ADN tumoral circulant indétectable à la fin de la chimiothérapie adjuvante. Outil/paramètre de mesure : Statut de l'ADN tumoral circulant (détectable vs indétectable) mesuré par un test d'ADN tumoral circulant validé (plateforme informée par la tumeur ou indépendante de la tumeur, comme spécifié dans le protocole). |
Postopératoire de base avant la thérapie adjuvante (dans les 4 semaines précédant le premier cycle de chimiothérapie), pendant le traitement à environ 3 mois et à la fin de la chimiothérapie adjuvante, environ 7 mois après la randomisation, et lors du suivi à 12 mois.
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Survie sans maladie (SSM) préliminaire
Délai: À partir de la date du premier traitement de l'étude jusqu'à la première récidive documentée du cancer colorectal ou le décès quelle qu'en soit la cause, selon la première éventualité, avec une analyse descriptive prévue à 36 mois après le premier traitement du premier patient.
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La DFS sera estimée à l'aide des méthodes de Kaplan-Meier dans cette cohorte à bras unique.
Comme il s'agit d'une étude de phase I, les résultats de la DFS sont considérés comme exploratoires et serviront à éclairer les hypothèses et les définitions des critères d'évaluation pour les essais de phase II ultérieurs, plutôt qu'à tirer des conclusions définitives sur l'efficacité.
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À partir de la date du premier traitement de l'étude jusqu'à la première récidive documentée du cancer colorectal ou le décès quelle qu'en soit la cause, selon la première éventualité, avec une analyse descriptive prévue à 36 mois après le premier traitement du premier patient.
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Survie globale préliminaire (OS)
Délai: À partir de la date du premier traitement de l'étude jusqu'au décès, quelle qu'en soit la cause, avec un suivi prévu jusqu'à 60 mois après le début du traitement du premier patient.
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L'OS sera résumée de manière descriptive à l'aide des estimations de Kaplan-Meier.
Comme pour la SLP, les données d'OS seront génératrices d'hypothèses et serviront à façonner la conception des études de phase ultérieure.
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À partir de la date du premier traitement de l'étude jusqu'au décès, quelle qu'en soit la cause, avec un suivi prévu jusqu'à 60 mois après le début du traitement du premier patient.
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Qualité de vie liée à la santé (HRQoL)
Délai: Baseline dans les 28 jours avant la première chimiothérapie ou la première dose de vaccin, à la fin de la chimiothérapie adjuvante environ 6 mois après le début du traitement, à 12 mois, et annuellement par la suite jusqu'à 36 mois.
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Évolution par rapport à la valeur initiale de l'état de santé général et des échelles fonctionnelles et de symptômes sélectionnées mesurées par l'EORTC QLQ-C30 (et, optionnellement, des modules spécifiques au cancer colorectal tels que le QLQ-CR29).
Les résultats seront comparés au fil du temps au sein de la cohorte pour évaluer l'impact du régime de combinaison sur la qualité de vie.
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Baseline dans les 28 jours avant la première chimiothérapie ou la première dose de vaccin, à la fin de la chimiothérapie adjuvante environ 6 mois après le début du traitement, à 12 mois, et annuellement par la suite jusqu'à 36 mois.
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Ampleur des réponses des lymphocytes T spécifiques aux néoantigènes (nombre de peptides réactifs par participant)
Délai: Au départ (dans les 28 jours avant la première dose de vaccin), pendant la vaccination à environ 4, 12 et 20 semaines après la première vaccination, à la fin de la période de vaccination (environ 8 mois après la première vaccination), et lors d'un suivi à 12 mois.
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Étendue des réponses des lymphocytes T CD4⁺ et CD8⁺ spécifiques des peptides néoantigéniques sélectionnés par COLONYVAQ, mesurées dans le sang périphérique à l'aide de l'ELISPOT IFN-γ, de la CMI et/ou de la coloration par multimères peptide-CMH.
Le résultat est rapporté comme le nombre de peptides néoantigéniques par participant qui suscitent une réponse lymphocytaire T mesurable aux temps post-inclusion.
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Au départ (dans les 28 jours avant la première dose de vaccin), pendant la vaccination à environ 4, 12 et 20 semaines après la première vaccination, à la fin de la période de vaccination (environ 8 mois après la première vaccination), et lors d'un suivi à 12 mois.
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Persistence des réponses des lymphocytes T spécifiques aux néoantigènes au fil du temps
Délai: Baseline (dans les 28 jours précédant la première dose de vaccin), pendant la vaccination à environ 4, 12 et 20 semaines après la première vaccination, à la fin de la période de vaccination (environ 8 mois après la première vaccination), et lors d'un suivi à 12 mois.
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Durabilité des réponses des lymphocytes T CD4⁺ et CD8⁺ spécifiques des peptides néoantigéniques sélectionnés par COLONYVAQ dans le sang périphérique, évaluées longitudinalement par ELISPOT IFN-γ, ICS et/ou coloration par multimères peptide-CMH.
Le résultat est rapporté comme la proportion de participants présentant une réponse lymphocytaire T spécifique du néoantigène mesurable maintenue lors des visites de suivi prédéfinies (par exemple, réponse soutenue à des points temporels consécutifs après la première détection).
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Baseline (dans les 28 jours précédant la première dose de vaccin), pendant la vaccination à environ 4, 12 et 20 semaines après la première vaccination, à la fin de la période de vaccination (environ 8 mois après la première vaccination), et lors d'un suivi à 12 mois.
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Clairance de l'ADN tumoral circulant à 12 mois
Délai: Postopératoire de base avant la thérapie adjuvante (dans les 4 semaines précédant le premier cycle de chimiothérapie), pendant le traitement à environ 3 mois et à la fin de la chimiothérapie adjuvante, vers 7 mois après la randomisation, et au suivi à 12 mois.
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Description : Parmi les participants présentant un ADN tumoral circulant détectable en postopératoire, la proportion (%) de ceux qui ont un ADN tumoral circulant indétectable à 12 mois. Outil/mesure de mesure : État de l'ADN tumoral circulant (détectable vs indétectable) mesuré par le test d'ADN tumoral circulant de l'étude. |
Postopératoire de base avant la thérapie adjuvante (dans les 4 semaines précédant le premier cycle de chimiothérapie), pendant le traitement à environ 3 mois et à la fin de la chimiothérapie adjuvante, vers 7 mois après la randomisation, et au suivi à 12 mois.
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Densité des infiltrats de cellules immunitaires tumorales
Délai: À l'inclusion (dans les 28 jours précédant la première dose de vaccin), pendant la vaccination aux semaines 4, 12 et 20 environ après la première vaccination, à la fin de la période de vaccination (environ 8 mois après la première vaccination) et lors d'un suivi à 12 mois.
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Description : Quantification des infiltrats de cellules immunitaires intratumorales (par exemple, lymphocytes T CD8⁺, lymphocytes T régulateurs, sous-ensembles de macrophages) dans le tissu tumoral disponible. Outil de mesure : Immunohistochimie (IHC) et/ou immunofluorescence multiplex (mIF). Unité de mesure : Densité cellulaire (par exemple, cellules/mm²) et/ou % des cellules nucléées totales, selon la lecture de l'essai. |
À l'inclusion (dans les 28 jours précédant la première dose de vaccin), pendant la vaccination aux semaines 4, 12 et 20 environ après la première vaccination, à la fin de la période de vaccination (environ 8 mois après la première vaccination) et lors d'un suivi à 12 mois.
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Autres mesures de résultats
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Diversité, expansion et persistance des clonotypes des récepteurs des lymphocytes T (TCR)
Délai: Baseline dans les 28 jours précédant la première dose de vaccin, pendant la vaccination aux semaines 4, 12 et 20 après la première vaccination, à la fin de la période de vaccination environ à 7 mois, et à 12 et 24 mois après le début de la thérapie adjuvante.
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Analyse des répertoires de clonotypes de TCR à partir de cellules mononucléées du sang périphérique (et éventuellement de tissu tumoral lorsque disponible), en utilisant le séquençage TCR en masse ou à cellule unique.
Les critères d'évaluation comprennent les indices de diversité, l'expansion des clonotypes associés aux cibles de COLONYVAQ, et la persistance de ces clonotypes au fil du temps.
Les corrélations entre la dynamique des TCR, les scores de sélection quantique-classique (par exemple K_q, ΔG_"eff" ^°, K_d^"eff" , I ̂(p)), et les résultats cliniques seront explorées.
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Baseline dans les 28 jours précédant la première dose de vaccin, pendant la vaccination aux semaines 4, 12 et 20 après la première vaccination, à la fin de la période de vaccination environ à 7 mois, et à 12 et 24 mois après le début de la thérapie adjuvante.
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Corrélation des caractéristiques immunitaires de la tumeur avec les réponses immunitaires systémiques induites par le vaccin
Délai: Spécimen de résection de base (prétraitement) et échantillons de tissus facultatifs en cas de récidive ou à des moments prédéfinis jusqu'à 60 mois après le début du traitement.
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Description : Corrélation entre les caractéristiques immunitaires de la tumeur (Mesures de résultats 1-3) et les réponses immunitaires systémiques induites par le vaccin mesurées dans le sang périphérique. Outils de mesure : Caractéristiques immunitaires de la tumeur évaluées par IHC/mIF (densités cellulaires/pourcentages ; score PD-L1) et profilage transcriptionique (scores de signature). Réponses immunitaires systémiques évaluées par des tests immunologiques prédéfinis (par exemple, ELISPOT IFN-γ, coloration intracellulaire des cytokines et/ou coloration par multimères peptide-CMH). Unité de mesure : Coefficient de corrélation (par exemple, ρ de Spearman ou r de Pearson, prédéfini). |
Spécimen de résection de base (prétraitement) et échantillons de tissus facultatifs en cas de récidive ou à des moments prédéfinis jusqu'à 60 mois après le début du traitement.
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Corrélation clinique des caractéristiques génomiques et de la modélisation COLONYVAQ avec l'étendue de la réponse immunitaire et les résultats cliniques
Délai: Profilage moléculaire de base effectué avant la fabrication du vaccin, avec suivi des résultats cliniques et immunitaires jusqu'à 60 mois après le début du traitement.
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Les critères d'évaluation clinique utilisés dans les analyses corrélatives comprennent : La réponse en ADN tumoral circulant (ctDNA) mesurée par le test ctDNA de l'étude (par exemple, clairance ou changement quantitatif, selon la définition du protocole) (unité : % avec clairance et/ou changement quantitatif de ctDNA en unités de test). Survie sans maladie (DFS) (unité : temps jusqu'à l'événement, par exemple, mois). Survie globale (OS) (unité : temps jusqu'à l'événement, par exemple, mois). |
Profilage moléculaire de base effectué avant la fabrication du vaccin, avec suivi des résultats cliniques et immunitaires jusqu'à 60 mois après le début du traitement.
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Valeurs du Descripteur Quantique-Géométrique du Modèle Quantique COLONYVAQ
Délai: De la conception initiale du vaccin (pré-traitement) jusqu'au suivi immunologique longitudinal à environ 4, 12, 20 semaines, 7-8 mois, et à 12 et 24 mois après la première dose du vaccin.
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Description : Quantification rétrospective des descripteurs quantiques-géométriques générés par le cadre de modélisation quantique COLONYVAQ, incluant la distance de Fubini-Study (d_FS), la valeur du noyau quantique K_q(x,y), l'entropie d'intrication et les termes de régularisation basés sur l'information quantique de Fisher (QFI). Outil de mesure : Pipeline de modélisation quantique COLONYVAQ / extraction de caractéristiques computationnelle. Unité de mesure : Valeurs des descripteurs dans les unités définies par le modèle (par exemple, unités de distance d_FS ; valeur du noyau K_q(x,y) ; unités d'entropie ; valeur des termes basés sur la QFI), telles que produites par le modèle. |
De la conception initiale du vaccin (pré-traitement) jusqu'au suivi immunologique longitudinal à environ 4, 12, 20 semaines, 7-8 mois, et à 12 et 24 mois après la première dose du vaccin.
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Immunogénicité des cellules T spécifiques des néoantigènes induite par le vaccin
Délai: De la conception initiale du vaccin (pré-traitement) jusqu'à la surveillance immunitaire longitudinale aux environs des semaines 4, 12, 20, 7-8 mois, et à 12 et 24 mois après la première dose du vaccin.
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Description : Réponses des lymphocytes T spécifiques des néoantigènes induites par le vaccin dans le sang périphérique. Outil de mesure : Tests d'immunogénicité prédéfinis (par exemple, ELISPOT IFN-γ, coloration intracellulaire des cytokines et/ou coloration par multimère peptide-CMH). Unité de mesure : Amplitude et/ou fréquence de la réponse immunitaire dans les unités spécifiques au test (par exemple, unités formant des taches, % de lymphocytes T positifs pour les cytokines, % de lymphocytes T positifs pour les multimères), telles que définies dans le protocole. |
De la conception initiale du vaccin (pré-traitement) jusqu'à la surveillance immunitaire longitudinale aux environs des semaines 4, 12, 20, 7-8 mois, et à 12 et 24 mois après la première dose du vaccin.
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Réponse moléculaire de l'ADN tumoral circulant (détectable vs indétectable) pour la modélisation rétrospective
Délai: Du schéma vaccinal de base (pré-traitement) jusqu'au suivi aux environs des semaines 4, 12, 20, ~7-8 mois, et 12 et 24 mois après la première dose de vaccin.
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Description : Proportion de participants présentant une réponse ADNtc, définie comme la conversion d'un ADNtc détectable au départ en un ADNtc non détectable à un moment postérieur au départ, évaluée par le test ADNtc de l'étude. Unité de mesure : Pourcentage (%) de participants présentant une réponse ADNtc. |
Du schéma vaccinal de base (pré-traitement) jusqu'au suivi aux environs des semaines 4, 12, 20, ~7-8 mois, et 12 et 24 mois après la première dose de vaccin.
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Évolution du niveau quantitatif d'ADN tumoral circulant pour la modélisation rétrospective
Délai: De la conception initiale du vaccin (avant traitement) jusqu'au suivi à environ 4, 12, 20 semaines, environ 7-8 mois, et 12 et 24 mois après la première dose de vaccin.
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Description : Évolution par rapport à la valeur initiale du niveau quantitatif d'ADN tumoral circulant mesuré par le test d'ADN tumoral circulant de l'étude (par exemple, fraction d'ADN tumoral circulant/VAF ou concentration d'ADN tumoral circulant, selon le résultat du test), évaluée à chaque point temporel pour les analyses rétrospectives de performance du modèle. Unité de mesure : Unités quantitatives spécifiques au test (par exemple, VAF [%] ou copies/mL), telles que rapportées par le test d'ADN tumoral circulant. |
De la conception initiale du vaccin (avant traitement) jusqu'au suivi à environ 4, 12, 20 semaines, environ 7-8 mois, et 12 et 24 mois après la première dose de vaccin.
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Survie Sans Maladie (DFS) pour la Modélisation Rétrospective
Délai: De la première dose de vaccin jusqu'à 24 mois après la première dose de vaccin.
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Description : La survie sans maladie (DFS) est définie comme le temps entre la première dose de vaccin et la première récidive/progression documentée de la maladie ou le décès, quelle qu'en soit la cause, selon la définition du protocole, utilisée dans les analyses rétrospectives de performance du modèle. Unité de mesure : Temps jusqu'à l'événement (mois). |
De la première dose de vaccin jusqu'à 24 mois après la première dose de vaccin.
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Survie globale (SG) pour la modélisation rétrospective
Délai: De la première dose de vaccin jusqu'à 24 mois après la première dose de vaccin.
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Description : OS défini comme le temps écoulé entre la première dose de vaccin et le décès, quelle qu'en soit la cause, selon la définition du protocole, utilisé dans les analyses rétrospectives de performance du modèle. Unité de mesure : Temps jusqu'à l'événement (mois). |
De la première dose de vaccin jusqu'à 24 mois après la première dose de vaccin.
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Ioannis Grigoriadis, Pharmacist PharmD, Biogenea Pharmaceuticals Ltd.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Estimé)
Achèvement primaire (Estimé)
Achèvement de l'étude (Estimé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Estimé)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Termes MeSH pertinents supplémentaires
- Tumeurs par site
- Tumeurs
- Maladies intestinales
- Tumeurs gastro-intestinales
- Tumeurs du système digestif
- Maladies du système digestif
- Maladies gastro-intestinales
- Tumeurs intestinales
- Maladies rectales
- Maladies du côlon
- Tumeurs colorectales
- Acides aminés, peptides et protéines
- Protéines
- Anticorps, monoclonal, humanisé
- Anticorps, monoclonal
- Anticorps
- Immunoglobulines
- Immunoprotéines
- Protéines sanguines
- Globulines sériques
- Globulines
- Nivolumab
Autres numéros d'identification d'étude
- BiogeneaTMMyVaccine3
- 10210381179 (Autre subvention/numéro de financement: Biogenea™ Pharmaceuticals Ltd)
- COLONYVAQ-CRC P1-Adjuvant-MSS™ (Autre identifiant: Myoncotherapy™)
Plan pour les données individuelles des participants (IPD)
Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?
Description du régime IPD
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
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