COLONYVAQ™、MSSステージIII大腸癌に対する量子-古典ハイブリッド誘導型パーソナライズネオアンチゲンワクチン (COLONYVAQ™-CRC)
COLONYVAQ™-CRC、物理学的に考慮された量子古典AI誘導型個別化ネオアンチゲンペプチドワクチン、完全切除されたステージIIIマイクロサテライト安定(MSS)患者における標準補助療法オキサリプラチン系化学療法(mFOLFOX6またはCAPOX)およびニボルマブ3 mg/kgとの併用投与
調査の概要
状態
詳細な説明
大腸がんは、がん関連死亡率の主要な原因です。 III期疾患では、治癒を目的とした手術およびオキサリプラチン系補助化学療法にもかかわらず、再発は依然として頻繁に起こります。 免疫チェックポイント阻害剤は、ミスマッチ修復欠損/マイクロサテライト不安定性高の大腸がんにおける治療成績を変革しましたが、マイクロサテライト安定/pMMR腫瘍は一般に、腫瘍突然変異負荷が低く、炎症が乏しい免疫抑制性微小環境を示します。 その結果、従来のPD-1阻害単独では、MSS/pMMR疾患において最小限の利益しか提供しません。 大腸がんにおける初期のワクチンアプローチは、CEA、MUC1、サバイビン、MAGEなどの腫瘍関連抗原および多TAAペプチドカクテルに焦点を当てていました。 これらの研究では、ペプチドおよび樹状細胞ベースのワクチンが抗原特異的T細胞およびB細胞応答を誘導できることが示されましたが、客観的奏効は稀であり、臨床的有益性は控えめで、TAAsが正常組織で頻繁に発現するため、腫瘍外毒性が懸念されました。 非同義体細胞変異によって生成される腫瘍特異的ネオ抗原は、対照的に悪性細胞に限定され、中枢性寛容を回避し、より高親和性のT細胞応答を誘発し、腫瘍外毒性を最小限に抑えることができます。 初期の大腸がんおよび汎がんネオ抗原試験、ならびにSLATE-KRASなどの共有ネオ抗原プログラムおよびGRANITEなどの完全に個別化されたウイルスRNAプラットフォームは、複数ネオ抗原ワクチン接種が、特に低負荷または維持療法の設定で、およびチェックポイント阻害と組み合わせた場合に、実行可能で安全かつ免疫原性であることを実証しました。 切除された肝細胞がんおよび大腸がん肝転移における補助ネオ抗原樹状細胞ワクチン+ニボルマブ試験は、微小残存病変(MRD)設定における個別化ネオ抗原ワクチン接種がネオ抗原特異的T細胞応答を増強し、無再発生存期間を改善する可能性があるという考えをさらに支持します。 オキサリプラチン系レジメン(mFOLFOX6またはCAPOX)は、免疫原性細胞死を誘導し、カルレティキュリンおよびその他の危険シグナルを露出させ、樹状細胞の取り込みおよび腫瘍抗原の交差提示を増強することができます。 ニボルマブは、PD-1を阻害することにより、活性化T細胞上の抑制シグナリングを解除します。 したがって、個別化複数ネオ抗原ペプチドワクチンを免疫原性化学療法およびPD-1阻害と組み合わせることは、抗原放出を増加させ、抗原提示を改善し、エフェクター機能を増強し、補助療法設定において、免疫学的に「コールド」なMSS腫瘍を、持続的免疫監視に適したより炎症性の「ホット」な病変に変換する可能性が期待されます。
COLONYVAQ-CRC:量子古典的、物理学的に考慮したネオ抗原優先順位付け 既存のネオ抗原パイプラインのほとんどは、エピトープのランキングを主に統計的に扱います。 COLONYVAQ-CRCは、Tamavaqから適応された物理学的に考慮した量子古典的AI層を導入し、シーケンシングから臨床ペプチド選択への監査可能な機構的連鎖を生成します。 各候補ペプチド-HLAペアpについて、システムは統一された特徴表現Φ(p)を構築し、配列ベース、生物学的、量子的、構造的、およびエネルギー的証拠を連結します:Φ(p)=[e_CNN(p), aux(p), z_Q(p), φ_struct(p), φ_dock(p)]。 項e_CNN(p)は、大規模免疫ペプチドームデータセットで訓練された畳み込みまたはトランスフォーマーモデルから導出された深層配列/HLA埋め込みを表します。 補助ブロックaux(p)は、プロテアソーム切断可能性、TAP輸送傾向、転写産物量、クローナリティ、および利用可能な場合にはctDNA/MRD情報などの抗原処理および発現事前確率をコンパイルし、有効抗原源強度を近似します。 量子記述子z_Q(p)は、量子回路埋め込みをパラメータ化する低次元古典ベクトルです。 構造項φ_struct(p)は、モデル化されたペプチド-HLA複合体におけるポケット占有率および残基-残基接触を要約します。 最後に、φ_dock(p)は、ポーズエネルギー、分散、および立体構造多様性を含むドッキングアンサンブル統計を集約します。
2つの候補pおよびq間の類似性は、複合正半定値カーネルK_total(p,q)=αK_CNN(p,q)+βK_aux(p,q)+γK_Q(p,q)+δK_struct(p,q)+εK_dock(p,q)によって捕捉されます。ここで、非負重みα,β,γ,δ,εは各モダリティの相対的寄与を調整します。 各成分カーネルは正半定値になるように構築されているため、それらの非負線形結合は正半定値のままであり、K_totalがカーネルロジスティック回帰または関連手法で一貫して使用できることを保証します。 決定関数はf(p)=∑_(i=1)^M α_i K_total(p,p_i)+bと記述できます。ここで、{p_i}は訓練ペプチド、α_i,bは学習係数です。 免疫原性確率は、I ̂(p)=σ(f(p))としてモデル化されます。ここで、σ(z)=1/(1+e^(-z))はロジスティック関数です。 量子側では、各ペプチドxは、次元2^nのヒルベルト空間Hにおける正規化状態|ψ(x)⟩としてエンコードされ、参照状態|0⟩^(⊗n)に作用する特徴写像U(z_Q(x),θ)を介して構築されます:|ψ(x)⟩=U(z_Q(x),θ) |0⟩^(⊗n)。 2つのペプチド状態間の重なりは⟨ψ(x)|ψ(y)⟩です。 量子幾何学的類似性は、フィビニ・スタディ距離d_FS(x,y)=arccos(|⟨ψ(x)|ψ(y)⟩|)によって定量化されます。これは[0,π/2]にあり、d_FS=0は同一光線に対応し、d_FS=π/2は直交状態に対応します。 この距離から、量子類似性カーネルはK_q(x,y)=|⟨ψ(x)|ψ(y)⟩|^2=cos^2(d_FS(x,y))として定義されます。 このカーネルは、状態|ψ(x)⟩が|ψ(y)⟩に射影される確率と解釈できます。 低配列同一性ペプチドが高次物理化学構造を共有する場合、それらはこの複素射影多様体上の近接点に写像され、古典的配列類似性が低い場合でも大きなK_q値を生成する可能性があります。 |ψ(x)⟩の内部構造およびエンタングルメントは、部分系上の縮小密度行列を形成することによって監視されます。 部分系AおよびBへの二分割に対して、縮小状態はρ_A(x)=Tr_B(|ψ(x)⟩⟨ψ(x)|)です。 フォン・ノイマンエントロピーS_A(x)=-Tr[ρ_A(x)log ρ_A(x)]は、AとB間のエンタングルメントを定量化します。正則化項は、目標範囲内のエントロピーを促進し、自明な積状態(エンタングルメントが少なすぎる)および数値的に不安定でノイズのある中規模量子(NISQ)ハードウェアで近似が困難な過度にエンタングルメント状態を回避します。
量子埋め込みのパラメータ変化に対する感度は、量子フィッシャー情報行列F(θ)によって特徴付けられます。その要素はF_ij(θ)=R[⟨∂_i ψ|∂_j ψ⟩-⟨∂_i ψ|ψ⟩⟨ψ|∂_j ψ⟩]です。ここで、|∂_i ψ⟩=∂|ψ(θ)⟩/∂θ_iです。 非常に小さい固有値を持つ悪条件フィッシャー行列は、パラメータ推定値の大きな分散および不安定なカーネル値を引き起こす可能性があります。 したがって、COLONYVAQはtr(F(θ)^(-1))に比例するペナルティを導入します。これは固有値がゼロに近づくと発散します。この項を最小化することは、パラメータ空間のすべての方向がデータによって十分に情報提供されるパラメータ領域へ最適化を促します。 エネルギー論は、熱力学的に較正された方法で扱われます。 標準自由エネルギーΔG_i^°を持つ各ペプチド-HLAドッキングポーズiに対して、微視状態会合および解離定数はK_(a,i)=exp( (ΔG_i^°)/RT)、K_(d,i)=exp((ΔG_i^°)/RT)です。ここで、R=1.987×10^(-3) kcal·mol^(-1)·K^(-1)、T=310 Kであり、RT≈0.616 kcal·mol^(-1)です。 ドッキングアンサンブルは、ボルツマン重み付き有効会合定数K_a^eff=∑_i w_i exp( -(ΔG_i^°)/RT)、∑_i w_i =1として要約され、有効自由エネルギーΔG_eff^°=-RTln K_a^effおよび対応する解離定数K_d^eff=1/K_a^effが得られます。 これらの値は、実験者に馴染みのある単位(ΔG_eff^°にはkcal·mol⁻¹、K_d^effにはnM)で報告されます。 アンサンブルにおける自由エネルギーの広がりがσ_ΔGの場合、K_dに関連する不確実性は乗法的にexp(±σ_ΔG/(RT))として表すことができます。 例えば、T=310 Kでは、ΔG^°の1.2 kcal·mol^(-1)の変化は、K_dを約exp(1.2/0.616)≈6.3倍変化させます。 ドッキング損失項L_dock=λ_1 Ē+λ_2 σ_E(ここで、Ēおよびσ_Eはドッキングエネルギーの平均および標準偏差)は、経験的に堅牢なペプチド-MHC表示と関連付けられる低エネルギー、低分散アンサンブルに向けてモデルを偏らせます。 Φ(p)およびカーネルK_totalに加えて、COLONYVAQは較正済みロジスティックヘッドI ̂(p)=σ(w^⊤ Φ(p)+b)を訓練します。これは、ペプチドpがT細胞によって認識される確率と解釈され、識別(例えばAUC)および較正(例えばブライアースコア、期待較正誤差)の両方に対して最適化されます。 並行して、線形熱力学ヘッドは(ΔG) ̂^°(p)=η^⊤ Φ(p)+η_0を予測し、そこから予測解離定数K ̂_d(p)=exp((ΔG) ̂^°(p)/(RT))が導出されます。 総損失は、予測、構造、ドッキング、および量子フィッシャー正則化を単一の目的L=L_pred+L_struct+L_dock+L_QFIMに結合します。ここで、L_QFIMはtr(F(θ)^(-1))に比例します。
候補ペプチドは、3ゲート「物理学+幾何学+免疫学」オラクルを通過します。 まず、量子幾何学ゲートは、|ψ(x)⟩と経験的に検証された免疫原性ペプチドの重心|ψ(P)⟩との間のフィビニ・スタディ距離がd_FS(ψ(x),ψ(P))≤d^*を満たすことを要求します。 第二に、熱力学ゲートは、有効自由エネルギーおよび解離定数が最小結合強度基準を満たすこと、ΔG_eff^°(x)≤ΔG^*または等価的にK_d^eff(x)≤K_d^*を要求します。 第三に、免疫原性ゲートは、較正済み確率が閾値を超えること、I ̂(x)≥I^*を要求します。 候補の総数をNとし、M個のペプチドがすべての3つのフィルターを通過するとします。 抽象的量子用語では、すべての候補に対する一様重ね合わせは|Ψ_0⟩=1/√N ∑_(j=1)^N |j⟩であり、これは「マークされた」および「マークされていない」部分空間に分解できます:|Ψ_0⟩=sinθ |Ψ_good⟩+cosθ |Ψ_bad⟩、ここでsin^2 θ=M/N。 グローバー様振幅増幅演算子Gは、マークされた状態の位相を反転するオラクルOと|Ψ_0⟩に関する反射である拡散演算子Dの積として定義されます。 r回反復後、状態は|Ψ_r⟩=G^r|Ψ_0⟩=sin((2r+1)θ)|Ψ_good⟩+cos((2r+1)θ)|Ψ_bad⟩となり、マークされたインデックスを測定する確率はP_r=sin^2((2r+1)θ)です。
θが小さい場合(良好な候補が少ない)、P_rを最大化する最適反復回数は約r_opt≈π/4 √(N/M)ですが、NISQ体制およびMの不確実性の存在下では、COLONYVAQは、過回転なしにマークされたペプチドの重みを確実に増幅するために、少数の反復(通常1〜3回)を使用します。 実際には、このグローバースタイルステップは、利用可能なハードウェアと互換性のある方法でシミュレートまたは近似され、GMPペプチド合成をコンパクトで高信頼性のサブセットに集中させる役割を果たします。
マークされたペプチドセット内では、残りの同点は複合スコアS(x)=αK_q(x,P)+β σ((I ̂(x)-I^*)/τ_I)+γ σ((K_d^*-K_d^eff(x))/τ_K)を使用して解消されます。ここで、K_q(x,P)=|⟨ψ(x)|ψ(P)⟩|^2、τ_Iおよびτ_Kは遷移の急峻さを設定し、σはロジスティック関数です。 この式は、既知の陽性対照との類似性、モデル化された免疫効力、および予測結合強度が、各患者に対するCOLONYVAQ-CRCペプチドカーゴを定義するために使用される最終ランキングを共同で決定する方法を明示的に示しています。
mFOLFOX6またはCAPOXおよびニボルマブとの併用の理論的根拠
オキサリプラチンおよびフルオロピリミジンは、III期大腸がんの補助療法の標準構成要素であり、免疫原性細胞死を誘導し、腫瘍抗原および危険シグナルの放出を増加させ、それによって樹状細胞活性化および抗原交差提示を増強することができます。 ニボルマブ3 mg/kgを2週間ごとに投与することは、PD-1を阻害し、ワクチン誘導および化学療法放出腫瘍特異的T細胞の枯渇および機能的抑制を防ぎます。 量子古典的COLONYVAQ-CRCエンジンは、ネオ抗原標的の品質を最大化することを意図しています。免疫原性化学療法は抗原利用可能性を増加させます。PD-1阻害はT細胞エフェクター機能を持続させます。 初期第I相試験は、補助MRD設定におけるこの3成分戦略の安全性および実行可能性をテストし、予備的免疫および分子応答データを生成します。
研究の種類
入学 (推定)
段階
- 初期フェーズ 1
連絡先と場所
研究連絡先
- 名前:Ioannis Grigoriadis, PharmacistPharmD
- 電話番号:+306936592686
- メール:BIOGENEADRUG@GMAIL.COM
研究連絡先のバックアップ
- 名前:Christos Emmanouelides, MD, PhD, Medical Oncologist,
- 電話番号:+306972221474
- メール:cemmanou@gmail.com
研究場所
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Thessaloniki、ギリシャ、54627
- 募集
- Biogenea Pharmaeuticals Ltd
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参加基準
適格基準
就学可能な年齢
- 子
- 大人
- 高齢者
健康ボランティアの受け入れ
説明
適格基準:
- 診断と組織学的所見:組織学的に確認された結腸または直腸の腺癌。
病理報告書が中央またはスポンサーのレビュー(要求があった場合)に利用可能であり、以下を含むこと:
原発腫瘍部位(結腸 vs 直腸)、分化度、切除断端。 病期と手術状況:AJCC 第8版に基づく病理学的ステージIII疾患(あらゆるT、N1-2、M0)。 手術記録および病理報告書により確認された原発腫瘍のR0切除(断端に肉眼的または顕微鏡的残存腫瘍なし)。
プロトコルで定義された期間内(例:登録前8週間以内)に実施された病期診断画像検査(胸部/腹部/骨盤部CT ± MRI/PET、施設基準に従う)において、遠隔転移性疾患(M1)の証拠がないこと。
手術後定義された期間内(例:切除後4-12週間)に登録および治療開始が計画されており、適切な回復が可能であること。
分子サブタイプ(MSS/pMMR)
局所検査により、腫瘍がマイクロサテライト安定(MSS)またはミスマッチ修復機能正常(pMMR)であることが確認されていること。使用法:
MLH1、MSH2、MSH6、PMS2の免疫組織化学(IHC)検査、および/またはPCRベースのMSIパネル、および/またはNGSベースのMSIまたはMMR状態。 dMMR/MSI-H状態またはPOLE超変異表現型の証拠がないこと。 高リスク再発プロファイル
プロトコルで定義された以下の高リスク特徴の少なくとも1つを有すること:
病理学的T4腫瘍。 病理学的N2リンパ節状態(陽性リンパ節数≥4)。 手術後/化学療法開始後定義された期間内に、検証済みの腫瘍情報付きアッセイによる陽性術後ctDNA(微小残存病変)。
統計解析計画書に詳細が記載されているその他のプロトコル指定の高リスク特徴(例:リンパ管侵襲、神経周囲侵襲、低分化組織像、不十分なリンパ節検体採取)。
標準的補助化学療法の適応
以下のいずれかのオキサリプラチンベースの補助化学療法の適応であること:
mFOLFOX6を14日毎に約6ヶ月間、またはCAPOX(XELOX)を21日毎に約3-6ヶ月間。 レジメンの選択(mFOLFOX6 vs CAPOX)は、施設のガイドラインと患者因子に基づき登録前に決定され、無作為化層別化因子として記録されなければならない。
オキサリプラチン、5-フルオロウラシル、ロイコボリン、またはカペシタビンに対する禁忌がないこと(例:重度のジヒドロピリミジンデヒドロゲナーゼ欠乏症、重度の5-FU/カペシタビン毒性の既往)。
ニボルマブの適応
研究者の判断において、抗PD-1抗体(ニボルマブ 3 mg/kg 静脈内投与、2週間毎)の投与が可能であること。以下を含む:
過去の免疫療法による重度(グレード≥3)の免疫関連有害事象の既往がないこと。
全身性免疫抑制を必要とする活動性自己免疫疾患がないこと。 Performance Status:スクリーニング時にEastern Cooperative Oncology Group(ECOG)performance statusが0または1であること。
適切な臓器および骨髄機能
登録前14日以内に文書化されており、適格性を満たすためだけの輸血や成長因子投与がないこと:
血液学的機能:絶対好中球数(ANC)≥ 1.5 × 10⁹/L。 血小板数 ≥ 100 × 10⁹/L。 ヘモグロビン ≥ 9.0 g/dL(臨床的に適応があれば輸血可、ただし適格化のためだけのものは不可)。
肝機能:総ビリルビン ≤ 1.5 × 正常上限(ULN)(ギルバート症候群が既知で直接ビリルビンが正常の場合は≤3 × ULNまで可)。
ASTおよびALT ≤ 2.5 × ULN。 アルカリホスファターゼ ≤ 2.5 × ULN(非悪性原因による骨または肝関与により適切に説明される場合、プロトコルに従いより高い閾値が許可される場合あり)。
腎機能:血清クレアチニン ≤ 1.5 × ULN、またはクレアチニンクリアランス ≥ 50 mL/分(Cockcroft-Gault法または施設基準)。
COLONYVAQのための生体試料の入手可能性
切除された原発腫瘍(および/または適用可能な場合は転移巣)から十分な腫瘍組織が入手可能であること:
可能であれば新鮮凍結組織。それ以外の場合は、FFPEブロックまたは未染色スライド15枚以上(または同等品)で、腫瘍DNA/RNA抽出が可能なもの。
対照正常サンプル(末梢血)が、生殖細胞系列DNAシークエンシングに利用可能であること。 スケジュールに従い、ctDNA、免疫モニタリング、および探索的アッセイのための追加血液サンプルを提供する意思があること。
既存のWES/RNA-seqデータがCOLONYVAQの要件を満たす場合、プロトコルに従って受け入れられる可能性がある。
ネオ抗原の適応
COLONYVAQ量子-古典的パイプラインを通じて、事前に指定された基準を満たす、少なくとも1つの高品質な腫瘍ネオ抗原が予測されていること:
患者特異的HLAアレルへの強力な予測結合(例:確立されたバインダー範囲内のK_d)。
原因遺伝子/アレルの腫瘍RNA発現の証拠。 複数アルゴリズムによる免疫原性スコアリングによる優先順位付け、およびCOLONYVAQ量子-幾何学的、熱力学的、免疫原性ゲートの通過。
または、GMPグレードのネオ抗原ペプチドが事前製造されており、in vitro免疫原性が実証され、許容可能な安全性プロファイルを有することが利用可能であること。
余命:研究者による推定余命が、併存疾患とperformance statusに基づき、CRC再発がない場合に3年以上であること。
避妊と妊娠
妊娠可能な女性(WOCBP):
無作為化前7日以内の血清または尿妊娠検査が陰性であること。 研究治療中およびニボルマブおよび化学療法の最終投与後プロトコルで定義された期間(例:最終ニボルマブ投与後5ヶ月および最終化学療法投与後6ヶ月、またはラベル/施設ガイダンスに従う)において、高度に効果的な避妊法(例:ホルモン+バリア法、IUD、IUS、またはパートナーの精管切除術)を使用することに同意すること。
妊娠可能なパートナーを持つ男性:
研究治療中および最終投与後プロトコルで指定された期間において、効果的な避妊法を使用し、精子提供を避けることに同意すること。
インフォームドコンセントと遵守:書面によるインフォームドコンセント文書を理解し自発的に署名する能力。 スケジュールされた来院、画像検査、採血、およびフォローアップ評価を含むすべての研究手順に従う意思と能力。
除外基準:
- ベースライン時の残存または転移性疾患:残存肉眼的疾患(R2切除)または明らかにR0でない不確定断端。
ベースライン病期診断(例:肝臓、肺、腹膜)における遠隔転移(M1)の放射線学的または組織学的証拠。
原発部位における肉眼的残存病変。 ミスマッチ修復欠損またはMSI-High / POLE変異疾患:確立されたチェックポイント阻害薬戦略が標準治療または優先される、既知のdMMR/MSI-H大腸癌またはPOLE超変異シグネチャーを有する腫瘍。
許容される術前療法を超えるCRCに対する過去の全身的抗がん療法:転移性CRCに対する過去の全身療法。
以下の術前化学療法または化学放射線療法:
プロトコルで定義された期間内に完了しなかったもの、または未解決のグレード≥2の非血液学的毒性(脱毛または指定された臨床的に無意味な神経障害を除く)をもたらしたもの。
TAAsまたはネオ抗原を標的とするあらゆる腫瘍ワクチン(ペプチド、DC、ウイルス、RNA、DNA)による過去の治療。
免疫チェックポイント阻害剤(例:抗PD-1、抗PD-L1、抗CTLA-4)による過去の治療。
活動性または制御不能な感染症:研究者の意見において、研究治療に干渉すると考えられる、静脈内または経口抗菌療法を必要とする進行中の全身感染症。
制御されていない既知のHIV感染(例:プロトコル閾値以下のCD4数または抑制されていないウイルス量)。
高ウイルス量を伴う活動性B型肝炎(例:HBsAg陽性でHBV DNAが事前定義された限界を超える)または検出可能なHCV RNAを伴う活動性C型肝炎で適切に治療されていないもの。
免疫療法、ワクチン、または化学療法により過度のリスクをもたらすと判断されるその他の臨床的に有意な感染症。
自己免疫疾患と免疫抑制
全身性免疫抑制療法(例:高用量コルチコステロイド、生物学的製剤)を必要とする重度または制御不能な自己免疫疾患の既往。 例:
全身性エリテマトーデス、最近の増悪を伴う炎症性腸疾患、生物学的製剤を必要とする関節リウマチ、多発性硬化症、重症筋無力症など。
例外として以下が含まれる場合あり:
補充療法による安定した自己免疫性甲状腺炎、白斑、プロトコルで定義されるように十分にコントロールされた1型糖尿病またはその他の軽度の状態。
生理的補充量を超える慢性全身性コルチコステロイド療法(例:プレドニゾン換算で>10 mg/日)または初回投与前プロトコルで指定された期間内の他の免疫抑制剤。ただし副腎補充のために必要な場合を除く。
移植歴:過去の同種造血幹細胞移植。 移植片拒絶反応および複雑な免疫抑制のリスクのため、過去の実質臓器移植(例:腎臓、肝臓、心臓)。
過敏症および薬剤不耐容
以下のいずれかに対する既知の過敏症または重度のアレルギー反応(例:アナフィラキシー):
COLONYVAQ-CRCのいずれかの成分(ペプチドまたは賦形剤)、Poly I:Cまたは類似のTLRアゴニスト、ニボルマブまたは他の抗PD-1/PD-L1剤、オキサリプラチン、5-FU、ロイコボリン、またはカペシタビン(文書化された重度のDPD欠乏症を含む)。
併存悪性腫瘍:全身療法を必要とする、または試験期間中に全身療法が必要と予想される活動性の第二原発悪性腫瘍。
例外:
十分に治療された基底細胞癌または有棘細胞癌、子宮頸部上皮内癌、研究者の判断により完全寛解にあり、今後5年以内に再発または全身治療が必要と予想されないその他の悪性腫瘍。
心血管、肺、またはその他の重篤な併存疾患
不安定または臨床的に有意な心血管疾患。例:
最近の心筋梗塞(例:6ヶ月以内)、不安定狭心症、制御不能な不整脈、症状を伴ううっ血性心不全(NYHAクラスIII-IV)、薬物療法にもかかわらず制御不能な高血圧。 研究者の判断においてリスクを増大させる臨床的に有意な脳血管疾患(例:6ヶ月以内の脳卒中またはTIA)。
重度の慢性閉塞性肺疾患または間質性肺疾患で有意な機能障害を伴うもの、または全身性ステロイドを必要とした過去の肺炎。
研究者の意見において、安全性またはプロトコル遵守を損なうであろう、その他の重篤で制御不能な医学的状態(例:十分にコントロールされていない糖尿病、重度の肝硬変、進行性腎不全)。
妊娠と授乳:妊娠中の女性(スクリーニング時の陽性妊娠検査で確認)。 授乳中の女性;研究治療の初回投与前までに授乳を中止しなければならない。
併用研究薬剤および交絡療法:全身的研究薬剤を含む別の介入的臨床試験への同時参加。ただし、スポンサーおよびIRBによって承認され、安全性または有効性評価を交絡させないと予想される場合を除く。
ニボルマブまたはCOLONYVAQ-CRCの初回投与前プロトコルで定義された期間内(例:30日)および研究治療期間中に、弱毒生ワクチンの接種を受けていること。
遵守または評価に影響を与えるその他の状態:研究要件(例:定期的な来院、検査室モニタリング、画像検査)の遵守を制限するあらゆる精神疾患、認知障害、物質乱用、または社会的状況。
研究者の意見において、患者が試験参加に不適切な候補者となる、または安全性、免疫学的、または臨床的転帰データの解釈を妨げるであろうあらゆる状態。
研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 主な目的:処理
- 割り当て:なし
- 介入モデル:単一グループの割り当て
- マスキング:なし(オープンラベル)
武器と介入
参加者グループ / アーム |
介入・治療 |
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実験的:実験群:COLONYVAQ-CRC + 標準術後補助化学療法 + ニボルマブ
全登録患者は、ステージIII MSS/pMMR結腸直腸癌のR0切除後に研究治療を受けます。
標準的補助化学療法は、施設の慣行に基づき事前選択されたmFOLFOX6またはCAPOXです。
mFOLFOX6は約6ヶ月間q14dで投与されます:オキサリプラチン85 mg/m²を2時間かけて静脈内投与、ロイコボリン400 mg/m²を2時間かけて静脈内投与、5-FU 400 mg/m²を静脈内ボーラス投与、その後5-FU 2400 mg/m²を46時間かけて持続静脈内投与。
CAPOXは約3-6ヶ月間q21dで投与されます:オキサリプラチン130 mg/m²を約2時間かけて静脈内投与(第1日目)、カペシタビン1000 mg/m²を経口1日2回(第1-14日目)投与、その後7日間休薬。
COLONYVAQ-CRCは、量子-古典パイプラインで選択され、GMP下で合成された個人化マルチペプチドネオ抗原ワクチン(最大20ペプチド、8-30アミノ酸、各0.3 mg)で、プール化(2-4プール)し、ポリI:C(2 mg/mL)と1:1で混合して1 mLとし、プライム-ブーストスケジュール(第1、4、8、15、22日目;第12、20週)で皮下注射します。
ニボルマブ3 mg/kgを静脈内q2wで最大12ヶ月間投与します。
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介入タイプ:生物学的介入 名称:COLONYVAQ-CRC(個別化ネオアンチゲンペプチドワクチン) 説明: COLONYVAQ-CRCは、最大20種類の患者特異的合成ペプチド(8-30アミノ酸、1回投与あたりペプチド0.3 mg)から構成される個別化多ペプチドネオアンチゲンワクチンです。 ネオアンチゲンは、COLONYVAQ量子-古典パイプライン(HLAタイピング、量子幾何学的類似性、熱力学的ドッキング、較正免疫原性スコアリングを含む)を用いて、腫瘍/正常組織全エクソームおよび腫瘍RNAシークエンシングから選択されます。 すべての物理学-免疫学ゲートを通過したペプチドはGMP条件下で合成され、2-4プール(1プールあたり最大5ペプチド、500 µL)に分けられ、Montamide(2 mg/mL)と1:1で混合され、最終体積1 mLとして、リンパ節豊富領域(例:両側腋窩/鼠径部)に皮下注射されます。 ワクチン接種はプライム-ブーストスケジュール(例:1日目、4日目、8日目、15日目、22日目、ブースター投与は約12週目と20週目)で行われ、化学療法と調整されます。 |
この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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COLONYVAQ-CRCプラス化学療法およびニボルマブにおける治療関連有害事象/重篤な有害事象および免疫関連有害事象(CTCAE v5.0)の発生率
時間枠:いずれかの研究治療(化学療法、ワクチン、またはニボルマブ)の初回投与から最終投与後90日まで(患者1人あたりの総観察期間は約12ヶ月)。
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治療誘発性有害事象(AEs)および重篤な有害事象(SAEs)の発生率、性質、および重症度(CTCAE v5.0グレード)を、ワクチン起因性毒性および免疫関連有害事象の具体的評価とともに記録します。
事前に設定された安全性拡張ベンチマークが評価されます:最初の12人の患者のうち、12人から50人への拡大前において、ワクチン関連毒性がグレード2超の患者が<3人であり、かつワクチン関連グレード4毒性がないこと。
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いずれかの研究治療(化学療法、ワクチン、またはニボルマブ)の初回投与から最終投与後90日まで(患者1人あたりの総観察期間は約12ヶ月)。
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二次結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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COLONYVAQ-CRCワクチンの製造および提供の実現可能性
時間枠:登録からプライムワクチン接種段階の完了まで、通常は初回ワクチン投与後の最初の8週間以内に行われます。
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登録患者において、適切な腫瘍および血液材料が得られ、ネオ抗原発見およびCOLONYVAQベースのペプチド優先順位付けが完了し、GMP製造が成功し、少なくとも事前定義された最小数のワクチン投与量が主要なロジスティック障害なく投与される割合。
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登録からプライムワクチン接種段階の完了まで、通常は初回ワクチン投与後の最初の8週間以内に行われます。
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ベースラインからネオ抗原特異的T細胞が2倍以上増加した参加者の割合
時間枠:ベースライン(初回ワクチン接種前28日以内)、初回接種後約4週、12週、20週の接種時、接種期間終了時(初回接種後約8か月)、および12か月フォローアップ時
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末梢血で測定されたCOLONYVAQ選択ネオ抗原ペプチド特異的CD4⁺およびCD8⁺T細胞応答のベースラインからの変化。
応答は、IFN-γ ELISPOT、細胞内サイトカイン染色(ICS)、および/またはペプチド-MHCマルチマー染色を用いて評価される。
アウトカムは、ベースライン後のいずれかの時点でネオ抗原特異的T細胞がベースラインに対して2倍以上増加した参加者の割合として報告される。
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ベースライン(初回ワクチン接種前28日以内)、初回接種後約4週、12週、20週の接種時、接種期間終了時(初回接種後約8か月)、および12か月フォローアップ時
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術後補助化学療法終了時のctDNAクリアランス
時間枠:術後ベースライン(初回化学療法サイクル開始前4週間以内)、治療中(約3カ月後)、補助化学療法終了時(ランダム化後約7カ月)、および12カ月後のフォローアップ時。
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説明:術後ベースラインctDNAが検出可能な参加者のうち、補助化学療法終了時にctDNAが検出不能に転換した割合(%)。 測定ツール/パラメーター:検証済みctDNAアッセイ(プロトコルで指定された腫瘍情報付きまたは腫瘍非依存プラットフォーム)により測定された循環腫瘍DNA状態(検出可能 vs 検出不能)。 |
術後ベースライン(初回化学療法サイクル開始前4週間以内)、治療中(約3カ月後)、補助化学療法終了時(ランダム化後約7カ月)、および12カ月後のフォローアップ時。
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予備的無病生存率(DFS)
時間枠:最初の研究治療日から、結腸直腸癌の初回文書化された再発またはあらゆる原因による死亡のいずれか早い方まで。最初の患者の最初の治療から36か月後に計画された記述的分析を実施。
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この単一アームコホートでは、DFSはカプラン・マイヤー法を用いて推定されます。
これは第I相試験であるため、DFSの結果は探索的なものとみなされ、明確な有効性の結論を導くためではなく、後続の第II相試験のための仮定とエンドポイント定義を情報提供するために使用されます。
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最初の研究治療日から、結腸直腸癌の初回文書化された再発またはあらゆる原因による死亡のいずれか早い方まで。最初の患者の最初の治療から36か月後に計画された記述的分析を実施。
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予備的全生存期間(OS)
時間枠:最初の研究治療開始日からあらゆる原因による死亡まで、最初の患者の治療開始後60か月までフォローアップを予定しています。
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OSは、カプラン・マイヤー推定量を用いて記述的に要約されます。
DFSと同様に、OSデータは仮説生成に使用され、後期段階の研究のデザインを形作るために活用されます。
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最初の研究治療開始日からあらゆる原因による死亡まで、最初の患者の治療開始後60か月までフォローアップを予定しています。
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健康関連QOL(HRQoL)
時間枠:最初の化学療法または最初のワクチン接種前28日以内のベースライン、治療開始後約6か月の補助化学療法終了時、12か月後、その後最長36か月まで毎年。
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EORTC QLQ-C30(および、QLQ-CR29などの大腸癌特異的モジュールをオプションで使用)によって測定された、全体的な健康状態および選択された機能・症状スケールのベースラインからの変化。
結果は、コホート内で経時的に比較され、併用レジメンが生活の質に与える影響を評価します。 |
最初の化学療法または最初のワクチン接種前28日以内のベースライン、治療開始後約6か月の補助化学療法終了時、12か月後、その後最長36か月まで毎年。
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ネオ抗原特異的T細胞反応の広がり(参加者1人あたりの反応性ペプチド数)
時間枠:ベースライン(初回ワクチン投与の28日前以内)、初回投与後約4週、12週、20週のワクチン接種時、ワクチン接種期間終了時(初回投与後約8か月)、および12か月フォローアップ時。
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IFN-γ ELISPOT、ICS、および/またはペプチド-MHCマルチマー染色を用いて末梢血で測定された、COLONYVAQ選択ネオ抗原ペプチド特異的CD4⁺およびCD8⁺ T細胞応答の幅。
アウトカムは、ベースライン後の時点で測定可能なT細胞応答を誘発するネオ抗原ペプチドの参加者あたりの数として報告されます。
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ベースライン(初回ワクチン投与の28日前以内)、初回投与後約4週、12週、20週のワクチン接種時、ワクチン接種期間終了時(初回投与後約8か月)、および12か月フォローアップ時。
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時間経過に伴うネオ抗原特異的T細胞応答の持続性
時間枠:ベースライン(初回ワクチン接種前28日以内)、初回接種後約4週、12週、20週の接種時、接種期間終了時(初回接種後約8か月)、および12か月フォローアップ時。
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末梢血におけるIFN-γ ELISPOT、ICS、および/またはペプチド-MHCマルチマー染色により縦断的に評価された、COLONYVAQ選択ネオ抗原ペプチド特異的CD4⁺およびCD8⁺ T細胞応答の持続性。
結果は、事前に指定された追跡調査時点(例:初回検出後の連続した時間点での持続的応答)において測定可能なネオ抗原特異的T細胞応答が維持された参加者の割合として報告されます。
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ベースライン(初回ワクチン接種前28日以内)、初回接種後約4週、12週、20週の接種時、接種期間終了時(初回接種後約8か月)、および12か月フォローアップ時。
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12ヶ月時点のctDNAクリアランス
時間枠:術後補助療法前のベースライン(最初の化学療法サイクルの4週間以内)、治療中(約3か月後)、補助化学療法終了時(ランダム化後約7か月)、および12か月後のフォローアップ時。
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説明:術後ベースラインctDNAが検出可能な参加者のうち、12か月時にctDNAが検出不能となった参加者の割合(%)。 測定ツール/パラメーター:研究用ctDNAアッセイにより測定された循環腫瘍DNAの状態(検出可能 vs 検出不能)。 |
術後補助療法前のベースライン(最初の化学療法サイクルの4週間以内)、治療中(約3か月後)、補助化学療法終了時(ランダム化後約7か月)、および12か月後のフォローアップ時。
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腫瘍免疫細胞浸潤の密度
時間枠:ベースライン(初回ワクチン投与の28日前以内)、初回投与後約4週、12週、20週のワクチン接種中、ワクチン接種期間終了時(初回投与後約8か月)、および12か月フォローアップ時。
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説明: 利用可能な腫瘍組織内の腫瘍内免疫細胞浸潤(例:CD8⁺ T細胞、制御性T細胞、マクロファージサブセット)の定量化。 測定ツール: 免疫組織化学(IHC)および/または多重免疫蛍光(mIF)。 測定単位: 細胞密度(例:細胞/mm²)および/または全有核細胞の割合(%)、アッセイの読み取り結果で定義されるもの。 |
ベースライン(初回ワクチン投与の28日前以内)、初回投与後約4週、12週、20週のワクチン接種中、ワクチン接種期間終了時(初回投与後約8か月)、および12か月フォローアップ時。
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その他の成果指標
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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T細胞受容体(TCR)クロノタイプの多様性、増殖、および持続性
時間枠:最初のワクチン投与の28日前以内のベースライン、初回ワクチン投与後の4週目、12週目、20週目のワクチン投与期間中、ワクチン投与期間終了時(約7カ月後)、および補助療法開始後の12カ月と24カ月時点。
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末梢血単核細胞(および利用可能な場合は腫瘍組織)からのTCRクロノタイプレパトアの分析を、バルクまたは単細胞TCRシーケンシングを用いて実施する。
エンドポイントには、多様性指数、COLONYVAQ標的に関連するクロノタイプの増殖、およびこれらのクロノタイプの時間経過に伴う持続性が含まれる。
TCR動態、量子古典選択スコア(例:K_q、ΔG_"eff" ^∘、K_d^"eff"、Î(p))、および臨床転帰との相関関係を探索する。
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最初のワクチン投与の28日前以内のベースライン、初回ワクチン投与後の4週目、12週目、20週目のワクチン投与期間中、ワクチン投与期間終了時(約7カ月後)、および補助療法開始後の12カ月と24カ月時点。
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腫瘍免疫特性とワクチン誘発性全身性免疫応答との相関
時間枠:治療前のベースライン切除標本と、治療開始後最大60ヵ月までの再発時または事前設定時点でのオプション組織サンプル。
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説明:腫瘍免疫特徴(アウトカム指標1-3)と末梢血で測定されるワクチン誘導性全身免疫応答との相関。 測定ツール: 腫瘍免疫特徴はIHC/mIF(細胞密度/割合;PD-L1スコアリング)およびトランスクリプトミクスプロファイリング(シグネチャースコア)により評価。 全身免疫応答は事前指定された免疫アッセイ(例:IFN-γ ELISPOT、細胞内サイトカイン染色、および/またはペプチド-MHCマルチマー染色)により評価。 測定単位:相関係数(例:SpearmanのρまたはPearsonのr、事前指定)。 |
治療前のベースライン切除標本と、治療開始後最大60ヵ月までの再発時または事前設定時点でのオプション組織サンプル。
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ゲノムおよびCOLONYVAQモデリング特徴の免疫応答の広がりと臨床転帰との臨床的相関
時間枠:ワクチン製造前に行われるベースライン分子プロファイリングにより、治療開始後60ヶ月までの臨床および免疫学的転帰を追跡します。
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相関分析で使用される臨床エンドポイントには以下が含まれます: 研究ctDNAアッセイにより測定されたctDNA反応(例:クリアランスまたは定量的変化、プロトコル定義に従い)(単位:クリアランスおよび/またはアッセイ単位での定量的ctDNA変化の%)。 無病生存期間(DFS)(単位:イベント発生までの時間、例:月)。 全生存期間(OS)(単位:イベント発生までの時間、例:月)。 |
ワクチン製造前に行われるベースライン分子プロファイリングにより、治療開始後60ヶ月までの臨床および免疫学的転帰を追跡します。
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COLONYVAQ量子モデルからの量子幾何記述子値
時間枠:ベースラインのワクチン設計(前処置)から、初回ワクチン投与後約4週、12週、20週、7~8ヶ月、12ヶ月、24ヶ月での縦断的免疫モニタリングまで。
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説明:COLONYVAQ量子モデリングフレームワークによって生成される量子幾何記述子の回顧的定量化。これには、フビニ・スタディ距離(d_FS)、量子カーネル値K_q(x,y)、エンタングルメントエントロピー、および量子フィッシャー情報(QFI)に基づく正則化項が含まれます。 測定ツール:COLONYVAQ量子モデリングパイプライン/計算的特徴抽出。 測定単位:モデルによって出力される、モデル定義単位での記述子値(例:d_FS距離単位;K_q(x,y)カーネル値;エントロピー単位;QFIベースの項の値)。 |
ベースラインのワクチン設計(前処置)から、初回ワクチン投与後約4週、12週、20週、7~8ヶ月、12ヶ月、24ヶ月での縦断的免疫モニタリングまで。
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ワクチン誘導性ネオ抗原特異的T細胞免疫原性
時間枠:ベースラインのワクチン設計(治療前)から、初回ワクチン投与後のおおよそ4週、12週、20週、7〜8ヶ月、12ヶ月、24ヶ月時点での縦断的免疫モニタリングまで。
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説明:末梢血におけるワクチン誘導性ネオアンチゲン特異的T細胞応答。 測定ツール:事前に定められた免疫原性アッセイ(例:IFN-γ ELISPOT、細胞内サイトカイン染色、および/またはペプチド-MHCマルチマー染色)。 測定単位:プロトコルで定義された、アッセイ固有の単位での免疫応答の強度および/または頻度(例:スポット形成単位、サイトカイン陽性T細胞の%、マルチマー陽性T細胞の%)。 |
ベースラインのワクチン設計(治療前)から、初回ワクチン投与後のおおよそ4週、12週、20週、7〜8ヶ月、12ヶ月、24ヶ月時点での縦断的免疫モニタリングまで。
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ctDNA分子学的反応(検出可能 vs 検出不可能)による遡及的モデリング
時間枠:ベースラインのワクチン設計(前処置)から、初回ワクチン投与後の約4週、12週、20週、約7〜8ヶ月、および12ヶ月と24ヶ月のフォローアップまで。
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説明:ベースライン時に検出可能なctDNAが、ベースライン後の時点で検出不能なctDNAに変換されることで定義されるctDNA応答を示した参加者の割合。研究用ctDNAアッセイにより評価されます。 測定単位:ctDNA応答を示した参加者の割合(%)。 |
ベースラインのワクチン設計(前処置)から、初回ワクチン投与後の約4週、12週、20週、約7〜8ヶ月、および12ヶ月と24ヶ月のフォローアップまで。
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レトロスペクティブモデリングのためのctDNA定量レベルの変化
時間枠:ベースラインのワクチン設計(治療前)から、初回ワクチン投与後約4週、12週、20週、約7〜8か月、12か月、24か月のフォローアップまで。
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説明: ベースラインからの定量的ctDNAレベルの変化を、研究用ctDNAアッセイ(例:ctDNA分画/VAFまたはctDNA濃度、アッセイ出力ごと)で測定し、各時点で評価して、遡及的モデルパフォーマンス分析を行います。 測定単位: ctDNAアッセイで報告されるアッセイ固有の定量的単位(例:VAF [%]またはコピー数/mL)。 |
ベースラインのワクチン設計(治療前)から、初回ワクチン投与後約4週、12週、20週、約7〜8か月、12か月、24か月のフォローアップまで。
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無病生存期間(DFS)の回顧的モデリング
時間枠:初回ワクチン投与から初回ワクチン投与後24か月まで。
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説明:DFS(無増悪生存期間)は、プロトコル定義に基づき、初回ワクチン投与から初めて確認された疾患の再発/進行、またはあらゆる原因による死亡までの期間として定義され、遡及的モデル性能解析に使用されます。 測定単位:イベントまでの時間(月)。 |
初回ワクチン投与から初回ワクチン投与後24か月まで。
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レトロスペクティブモデリングのための全生存期間(OS)
時間枠:初回ワクチン接種時から初回ワクチン接種後24ヶ月まで。
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説明:OSは、プロトコル定義に基づき、初回ワクチン投与からあらゆる原因による死亡までの時間と定義され、遡及的モデルパフォーマンス分析に使用されます。 測定単位:時間対イベント(月)。 |
初回ワクチン接種時から初回ワクチン接種後24ヶ月まで。
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協力者と研究者
捜査官
- 主任研究者:Ioannis Grigoriadis, Pharmacist PharmD、Biogenea Pharmaceuticals Ltd.
研究記録日
主要日程の研究
研究開始 (推定)
一次修了 (推定)
研究の完了 (推定)
試験登録日
最初に提出
QC基準を満たした最初の提出物
最初の投稿 (推定)
学習記録の更新
投稿された最後の更新 (実際)
QC基準を満たした最後の更新が送信されました
最終確認日
詳しくは
本研究に関する用語
追加の関連 MeSH 用語
その他の研究ID番号
- BiogeneaTMMyVaccine3
- 10210381179 (その他の助成金/資金番号:Biogenea™ Pharmaceuticals Ltd)
- COLONYVAQ-CRC P1-Adjuvant-MSS™ (その他の識別子:Myoncotherapy™)
個々の参加者データ (IPD) の計画
個々の参加者データ (IPD) を共有する予定はありますか?
IPD プランの説明
医薬品およびデバイス情報、研究文書
米国FDA規制医薬品の研究
米国FDA規制機器製品の研究
この情報は、Web サイト clinicaltrials.gov から変更なしで直接取得したものです。研究の詳細を変更、削除、または更新するリクエストがある場合は、register@clinicaltrials.gov。 までご連絡ください。 clinicaltrials.gov に変更が加えられるとすぐに、ウェブサイトでも自動的に更新されます。
大腸がん転移性の臨床試験
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Novartis Pharmaceuticals終了しましたメラノーマ | 高度なEGFR変異体非小さな細胞肺cancer(NSCLC) | KRAS G12変異NSCLC | 食道扁平上皮がん(SCC) | ヘッド/ネックSCC | 進行した胃腸間質腫瘍(GIST) | 進行したNRAS/BRAFT WT皮膚黒色腫アメリカ, 台湾, オランダ, カナダ, スペイン, シンガポール, イタリア, 日本, 韓国
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Jonsson Comprehensive Cancer CenterNational Cancer Institute (NCI); Highlight Therapeutics積極的、募集していない平滑筋肉腫 | 悪性末梢神経鞘腫瘍 | 滑膜肉腫 | 未分化多形肉腫 | 骨の未分化高悪性度多形肉腫 | 粘液線維肉腫 | II期の体幹および四肢の軟部肉腫 AJCC v8 | III期の体幹および四肢の軟部肉腫 AJCC v8 | IIIA 期の体幹および四肢の軟部肉腫 AJCC v8 | IIIB 期の体幹および四肢の軟部肉腫 AJCC v8 | 切除可能な軟部肉腫 | 多形性横紋筋肉腫 | 切除可能な脱分化型脂肪肉腫 | 切除可能な未分化多形肉腫 | 軟部組織線維肉腫 | 紡錘細胞肉腫 | ステージ I 後腹膜肉腫 AJCC (American Joint Committee on Cancer) v8 | 体幹および四肢の I 期軟部肉腫 AJCC v8 | ステージ... およびその他の条件アメリカ