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IL-6R 차단 후 조직 및 순환에서의 급성 운동 및 NK 세포 조절

2022년 8월 19일 업데이트: Andreas Kraag Kraag Ziegler, Rigshospitalet, Denmark

IL-6R 차단 후 조직 및 순환에서의 급성 운동 및 NK 세포 조절 - 무작위 대조 시험

이 연구는 동시 IL-6R 수용체 차단(Tocilizumab)이 있거나 없는 인간 참가자의 NK(Natural Killer) 세포 활성화 및 식욕 조절에 대한 강렬한 유산소 운동의 급성 효과를 연구하는 무작위 통제 시험입니다.

연구 개요

상세 설명

목표:

주요 목표:

  • 급성 운동, IL-6 봉쇄 및 NK 조절 사이의 연관성을 탐색합니다.
  • 단일 세포 RNA 시퀀싱을 사용하여 운동 활성화 NK 세포가 고유한 표현형을 갖는지 여부를 탐색합니다.

보조 목표:

  • 건강한 젊은 남성의 NK 세포 수와 순환, 근육 및 지방 조직의 활동에 대한 급성 유산소 운동의 효과를 탐색하여 항암 치료제로서의 운동을 간접적으로 탐색합니다.
  • NK 세포 반응의 동역학을 평가하고 가능하면 활성화된 NK 세포의 모양과 소재를 연대순으로 조사합니다.

탐색 목표

  • 다양한 면역 세포를 추적하고 인간의 급성 운동 반응에 관여하는 재현 가능한 프로토콜을 확립하기 위해
  • 면역학적으로 중요한 운동 중 근육에서 방출되는 새로운 신호 분자를 조사합니다.
  • 운동 및 음식 섭취 후 배고픔과 포만감에 대한 운동 유도 IL-6의 가능한 역할을 조사합니다. • 질량 분석법을 사용하여 IL-6 수용체 차단이 운동 프로테옴 및 대사체에 미치는 영향 탐색

행동 양식:

30명의 건강하고 오락적으로 활동적인 젊은 남성이 급성 유산소 운동 및 IL-6R 차단 또는 위약에 대한 반응으로 NK 세포 동역학 및 조절을 연구하는 급성 운동 연구에 포함될 것입니다.

연구는 2회 방문으로 구성됩니다. 포함 시(방문 1) 모든 피험자는 기본 의료 스크리닝(청진, 혈압, ECG), 체성분 결정(DXA), 심혈관 건강(VO2max) 및 즉시 분석되는 표준 공복 혈액-생화학을 포함하는 평가를 받게 됩니다. 방문 2는 우세한 다리와 복부 피하 지방 저장소 각각(둘 다 휴식 상태에서)의 근육 및 지방 생검으로 구성되며, 이후 추가 조직 분석을 위한 참조 조직으로 작용할 것입니다. 그런 다음 IL-6R 주입을 시작하기 전에 18G 팔주위 말초 정맥 접근이 확보됩니다. 주입 절차 2시간 후 피험자는 급성 운동 프로토콜을 받게 됩니다. 그런 다음 피험자는 자전거 에르고미터를 사용하여 고강도 급성 유산소 운동을 하게 됩니다. 혈액 샘플은 식욕 조절 하위 연구에서 운동 후 즉시, 운동 후 ½, 1, 1½ 및 2시간 및 운동 후 최대 4시간 동안뿐만 아니라 주입 및 운동 전, 운동 중 채취될 것입니다. 혈액 샘플은 백혈구 수와 분화, 혈장 생화학에 대해 즉시 분석됩니다. 또한, 혈액 샘플은 후속 단일 세포 RNA 시퀀싱, 면역 세포 분포 및 암세포에 대한 살상 능력과 함께 NK 세포 분리에 활용될 것입니다. 또한, IL-6 및 G-CSF를 포함하되 이에 국한되지 않는 코르티솔, 프로락틴 및 순환 사이토카인의 추후 결정을 위해 혈장 샘플을 수집하고 동결할 것입니다. 마지막으로 식욕 하위 연구에서는 인슐린, GLP-1 및 유리 지방산을 측정합니다.

유전자 발현 분석을 최적화하기 위해 운동 2시간 후 조직 샘플을 채취합니다. 근육 및 지방 조직 샘플 모두는 염증 및 항염증 마커, NK 세포 함량 및 혈액 유래 NK 세포에서 수행된 단일 세포 시퀀싱에서 얻은 마커를 사용하여 이러한 NK 세포의 표현형에 대해 분석됩니다. 또한, 면역 세포 침윤은 조직학을 사용하여 평가될 것이다. 모든 조직 샘플은 샘플과 관련된 불편함이나 감염을 최소화하기 위해 국소 마취 동안 멸균 상태에서 Bergström 바늘을 사용하여 채취합니다.

조직 샘플 후, 임의 식사가 제공되며 피험자는 가능한 한 많이 먹을 수 있지만 남은 음식은 집으로 가져갈 수 있으므로 과식하지 않도록 지시받습니다. 파라세타몰(1.5g)은 위 배출 엉덩이에 제공됩니다.

모든 참가자는 하루 중 대략 같은 시간(오전 9시)에 2번의 연구 방문을 받게 됩니다. 연구 완료 후 남은 재료는 CFAS 바이오뱅크로 전송됩니다.

피험자: 포함된 피험자는 18-40세의 건강한 젊은 남성 30명입니다. 제외 기준은 심혈관, 류마티스 및 대사 질환, 엘리트 스포츠 또는 고도의 유산소 훈련 상태입니다. 비스테로이드성 항염증제(NSAID) 또는 기타 면역억제제의 만성 사용.

개입: 피험자는 사전 IL-6R 차단이 있거나(n=15) 또는 없는(n=15) 급성 운동에 무작위 배정됩니다. 운동 개입은 고정식 자전거 에르고미터에서 수행되는 매우 부담스러운 약 45분 간격의 유산소 운동 시합으로 구성됩니다. HRmax의 50-60%에서 처음 5분간 워밍업한 후, 대상자는 90% HRmax 이상에서 3분 간격으로 구두로 권장되는 7번의 저강도 페달링을 3분간 실시합니다. 혈액 샘플은 2시간 시점에서 조직 샘플링과 함께 운동 전, 도중 및 운동 후 ½, 1, 1½ 및 2시간에 채취됩니다.

식욕 조절을 평가하기 위해 운동 후 2시간에서 4시간 사이에 추가 혈액 샘플을 채취합니다.

통계적 고려 사항: 파일럿 연구의 데이터를 기반으로 CON과 비교하여 IL6R 억제 그룹에서 최대 NK 세포 동원이 약 45% 더 낮고 IL6R 억제 그룹에서 얻은 최저 값과 NK 세포 최저값에서 29%의 차이가 있을 것으로 예상합니다. 양측 테스트에서 5% 유의 수준을 가정하면 개입 그룹에서 45%의 상대적인 차이를 감지하기 위해 90% 검정력을 달성하기 위해 각 그룹에 9명의 환자를 포함해야 합니다. 잠재적인 탈락/제외를 설명하기 위해 다소 침습적인 설정으로 인해 총 30명의 환자(그룹당 15명)를 포함합니다.

모집: 피험자는 forsøgsperson.dk 또는 관련 사이트의 광고와 함께 유사한 사이트를 통해 모집됩니다.

피험자는 CFAS에 연락하고 연구 정보 수신 여부를 선택할 수 있습니다. 전화(방관자의 선택권 거부) 또는 CFAS에서의 대면 회의. 이 모든 정보는 1차 조사관이 제공합니다. 피험자가 연구에 대해 더 듣고 싶어하는 경우 관련 문서가 이메일로 전송됩니다. 피험자가 서면 또는 구두 정보를 받은 후 연구 참여에 관심이 있는 경우 연구 참여를 고려할 시간이 24시간 주어집니다. 피험자가 전화 또는 대면으로 통보를 받고 연구 참여를 수락하면 서면 및 사전 동의를 얻을 수 있는 1을 방문하도록 초대됩니다(또는 참여자가 서명하고 집에서 가져옴).

위험 및 부작용: 피험자는 혈액 및 조직 샘플과 관련하여 약간의 불편함을 경험할 수 있습니다. 채혈된 혈액량은 무시할 수 있으며 건강상의 위험과 관련이 없습니다. 조직의 모든 샘플링은 국소 마취 동안 무균 상태에서 수행되므로 통증이나 불편함이 거의 없고 감염 위험이 거의 없습니다. 운동 테스트 중에 참가자는 숨가쁨을 경험할 수 있습니다.

IL-6R 억제는 일반적으로 부작용이 거의 없이 잘 견딥니다. 파라세타몰의 복용량은 적고 위험과 관련이 없습니다.

관련된 의사의 연락처 정보는 모든 부작용을 보고하고 해결할 수 있도록 연구 포함 시 참가자에게 제공됩니다.

연구 결과의 보급: 긍정적, 부정적 및 결정적이지 않은 결과 모두 관련 국제 과학 저널에 게재됩니다.

윤리적 고려: 프로젝트는 제한된 위험, 부작용 및 불편함을 유발할 것으로 예상됩니다. 모든 절차는 관련 안전성을 갖춘 숙련된 의사와 생리학자가 수행합니다. Tocilizumab은 일반적으로 내약성이 좋으며 파라세타몰의 용량은 낮습니다. 포함된 피험자는 언제든지 정당한 이유 없이 연구 참여에 대한 동의를 철회할 수 있습니다. 우리는 이 프로젝트가 중요하며 순환계와 지방 및 근육 조직 모두에서 급성 운동에 대한 IL-6 수정 가능한 NK 세포 반응에 대한 중요한 새로운 정보에 기여할 것이라고 믿습니다(현재 후자에 대한 지식이 매우 제한되어 있기 때문입니다).

이 연구는 Lægemiddelstyrelsen의 도구 상자 연구로 간주되므로 약학 연구가 아닙니다.

연구 유형

중재적

등록 (실제)

30

단계

  • 해당 없음

연락처 및 위치

이 섹션에서는 연구를 수행하는 사람들의 연락처 정보와 이 연구가 수행되는 장소에 대한 정보를 제공합니다.

연구 장소

      • Copenhagen Ø, 덴마크, 2100
        • Center For Physical Activity (CFAS)

참여기준

연구원은 적격성 기준이라는 특정 설명에 맞는 사람을 찾습니다. 이러한 기준의 몇 가지 예는 개인의 일반적인 건강 상태 또는 이전 치료입니다.

자격 기준

공부할 수 있는 나이

18년 (성인)

건강한 자원 봉사자를 받아들입니다

연구 대상 성별

남성

설명

포함 기준:

  • 레크리에이션 활동
  • 적당히 훈련된
  • 18~40세의 건강한 젊은 남성
  • BMI 18~30kg·m2

제외 기준:

  • 심혈관 질환
  • 류마티스 질환
  • 대사질환,
  • 엘리트 스포츠 또는 고도의 유산소 훈련 상태(VO2max>60ml O2/min/kg),
  • 신체적 성능 또는 염증에 영향을 미치는 약물(NSAIDS, DMARDS)의 빈번한/만성적 사용

공부 계획

이 섹션에서는 연구 설계 방법과 연구가 측정하는 내용을 포함하여 연구 계획에 대한 세부 정보를 제공합니다.

연구는 어떻게 설계됩니까?

디자인 세부사항

  • 주 목적: 기초_과학
  • 할당: 무작위
  • 중재 모델: 평행한
  • 마스킹: 삼루타

무기와 개입

참가자 그룹 / 팔
개입 / 치료
플라시보_COMPARATOR: 범죄자
이 그룹은 수반되는 IL-6R 차단 없이 강렬한 유산소 운동을 할 것입니다.
대조군은 운동 전 1시간 동안 식염수를 주입하는 고강도 유산소 운동을 합니다.
ACTIVE_COMPARATOR: 차단하다
이 그룹은 IL-6R 봉쇄를 수반하는 강렬한 유산소 운동을 할 것입니다.
중재 그룹은 운동 시합 1시간 전에 사전 IL-6R 주입과 함께 강렬한 유산소 운동을 하게 됩니다.

연구는 무엇을 측정합니까?

주요 결과 측정

결과 측정
측정값 설명
기간
급성 운동 중 및 이후의 NK(Natural Killer) 세포의 역학 및 조절
기간: 최대 1일
IL-6R 봉쇄 유무에 관계없이 급성 유산소 운동 전후 순환계의 NK 세포 및 NK 세포 하위 집합 수의 변화.
최대 1일
IL-6R 차단 유무에 따른 급성 운동에 대한 NK 세포 표현형
기간: 최대 1일

단세포 RNA 시퀀싱을 이용한 NK 세포 표현형의 변화. 여기서 기준선 대 운동 후 시점의 그룹 내 변화와 IL-6 봉쇄와 위약 사이의 그룹 차이를 조사할 것입니다.

초점은 세포 독성, 세포 접착 및 아드레날린 신호의 마커에 있습니다.

최대 1일

2차 결과 측정

결과 측정
측정값 설명
기간
지방조직의 NK 세포수 변화
기간: 개입 후 3시간
CD56, CD57 및 기타 NK 세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 주임 조사자는 지방 조직에서 NK 세포의 수를 식별하고 계산합니다.
개입 후 3시간
지방 조직에서 NK 세포 표현형의 변화
기간: 개입 후 3시간
CD56, CD57 및 기타 NK 세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 수석 연구원은 지방 조직에서 NK 세포의 표현형을 식별합니다.
개입 후 3시간
근육 조직의 NK 세포 수 변화
기간: 개입 후 3시간
CD56, CD57 및 기타 NK 세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 수석 연구원은 근육 조직에서 NK 세포의 수를 식별하고 계산합니다.
개입 후 3시간
근육 조직의 NK 세포 표현형 변화
기간: 개입 후 3시간
CD56, CD57 및 기타 NK 세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 수석 연구원은 근육 조직에서 NK 세포의 표현형을 식별합니다.
개입 후 3시간
근육 조직의 대식세포 수 변화
기간: 개입 후 3시간
CD68, CD163, CD206, TNF-알파 및 기타 대식세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 수석 조사자는 근육 조직에서 대식세포의 수를 식별하고 계산합니다.
개입 후 3시간
근육 조직에서 대식세포 표현형의 변화
기간: 개입 후 3시간
CD68, CD163, CD206, TNF-알파 및 기타 대식세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 주요 조사자는 근육 조직에서 표현형(M1/M2) 대식세포를 분석합니다.
개입 후 3시간
지방 조직의 대식세포 수 변화
기간: 개입 후 3시간
CD68, CD163, CD206, TNF-알파 및 기타 대식세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 수석 조사관은 지방 조직에서 대식세포의 수를 식별하고 계산합니다.
개입 후 3시간
지방 조직에서 대식세포 표현형의 변화
기간: 개입 후 3시간
CD68, CD163, CD206, TNF-알파 및 기타 대식세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 수석 조사자는 지방 조직에서 표현형(M1/M2) 대식세포를 분석합니다.
개입 후 3시간
지방 조직의 T 세포 수 변화
기간: 개입 후 3시간
CD3, CD8 및 기타 T 세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 수석 조사관은 지방 조직의 T 세포 수를 계산합니다.
개입 후 3시간
지방 조직에서 T 세포 표현형의 변화
기간: 개입 후 3시간
CD3, CD8 및 기타 T 세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 수석 연구원은 지방(CD3+/CD8+) 조직의 T 세포 표현형을 지정합니다.
개입 후 3시간
근육 조직의 T 세포 수 변화
기간: 개입 후 3시간
CD3, CD8 및 기타 T 세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 수석 조사관은 근육 조직의 T 세포 수를 계산합니다.
개입 후 3시간
근육 조직에서 T 세포 표현형의 변화
기간: 개입 후 3시간
CD3, CD8 및 기타 T 세포 마커에 대한 조직학, 웨스턴 블롯 및 유전자 발현 분석의 조합을 사용하여 수석 연구원은 근육 조직의 T 세포를 표현형(CD3+/CD8+)합니다.
개입 후 3시간
순환 중 단핵구 수의 변화
기간: 최대 1일
유동 세포 계측법을 사용하여 순환 중인 단핵구를 식별하고 계산합니다.
최대 1일
순환 중인 T 세포 수의 변화
기간: 최대 1일
유동 세포 계측법을 사용하여 조사관은 순환 중인 T 세포 수를 세게 됩니다.
최대 1일
순환하는 B 세포 수의 변화
기간: 최대 1일
유동 세포 계측법을 사용하여 조사관은 순환하는 B 세포 수를 세게 됩니다.
최대 1일
순환 중인 NK 세포의 IL-6 수용체 발현 변화
기간: 최대 1일
유세포 분석법을 이용한 순환 NK 세포의 IL-6 수용체 표면 발현 변화
최대 1일
순환하는 IL-6의 변화
기간: 최대 1일
혈장 IL-6 농도 ELISA 분석을 사용하여
최대 1일
순환 IL-2의 변화
기간: 최대 1일
혈장 IL-2 농도 ELISA 분석을 사용하여
최대 1일
순환 IL-1의 변화
기간: 최대 1일
혈장 IL-1 농도 ELISA 분석을 사용하여
최대 1일
순환 IL-10의 변화
기간: 최대 1일
혈장 IL-10 농도 ELISA 분석을 사용하여
최대 1일
순환하는 TNF-알파의 변화
기간: 최대 1일
Plasma TNF-alpha conc.using ELISA 분석
최대 1일
순환 G-CSF의 변화
기간: 최대 1일
혈장 TNF-알파 농도 ELISA 분석을 사용하여
최대 1일
순환하는 에피네프린의 변화
기간: 최대 1일
혈액 에피네프린 농도 ELISA 분석을 사용하여
최대 1일
순환 노르에피네프린의 변화
기간: 최대 1일
혈액 노르에피네프린 농도 ELISA 분석을 사용하여
최대 1일
순환 총 백혈구의 변화
기간: 최대 1일
Sysmex XN을 사용한 혈액 백혈구 수
최대 1일
순환 호중구의 변화
기간: 최대 1일
혈액 호중구 수.이용 시스멕스 XN
최대 1일
순환하는 망상적혈구의 변화
기간: 최대 1일
혈액 망상적혈구 카운트.이용 시스멕스 XN
최대 1일
순환 호산구의 변화
기간: 최대 1일
혈액 호산구 수.이용 시스멕스 XN
최대 1일
순환하는 바소파일 백혈구의 변화
기간: 최대 1일
혈액 basofile 백혈구 count.using 시스멕스 XN
최대 1일
순환 총 림프구의 변화
기간: 최대 1일
혈액 림프구 수.이용 시스멕스 XN
최대 1일
순환하는 프로락틴의 변화
기간: 최대 1일
혈장 프로락틴 농도 sysmex XN 사용
최대 1일
코티솔의 변화
기간: 최대 1일
혈장 코르티솔 농도 sysmex XN 사용
최대 1일
후골수구의 변화
기간: 최대 1일
Sysmex XN을 이용한 혈액 골수 세포 수
최대 1일
ACTH의 변화
기간: 최대 1일
혈장 ACTH 농도 sysmex XN 사용
최대 1일
순환하는 젖산의 변화
기간: 최대 1일
ABL을 이용한 혈중 젖산
최대 1일
CRP의 변화
기간: 최대 1일
플라즈마 CRP 농도 sysmex XN 사용
최대 1일
HsCRP의 변화
기간: 최대 1일
플라즈마 CRP 농도 ELISA를 사용하여
최대 1일
급성 운동 중 새로운 myokines
기간: 격렬한 운동 직후
탐색적 결과로서 조사자들은 순환계 또는 조직(즉, GDNF [신경교세포유래신경영양인자])
격렬한 운동 직후
VO2max
기간: 기준선
자전거 에르고미터와 Oxicon 온라인 시스템을 사용한 VO2max
기준선
제지방량
기간: 기준선
이중 에너지 X선 흡수계측법(DXA)을 사용한 제지방량
기준선
체지방량
기간: 기준선
이중 에너지 X선 흡광계(DXA)를 사용한 체지방
기준선
골밀도
기간: 기준선
이중 에너지 X선 흡수측정법(DXA)을 사용한 골밀도
기준선
식욕 평가
기간: 개입 후 4시간
배고픔, 포만감, 포만감, 예상 음식 소비량은 시각적 아날로그 척도(VAS)를 사용하여 평가됩니다. A4 용지에 왼쪽에서 오른쪽으로 0cm에서 시작하여 "전혀 배고프지 않다"에서 20cm에서 "내 인생에서 이보다 배고픈 적은 없었습니다"로 끝나는 20cm의 선을 긋습니다. 주관적 느낌에 따라 그 사이 어딘가에 주제 표시를 하고, 길이를 보고하여 배고픔의 정도를 나타냅니다. 줄이 길수록 배가 더 고파집니다. 일반적으로 사람이 선을 표시하는 시간이 길수록 주어진 질문 내에서 주관적인 벌목이 더 강해집니다.
개입 후 4시간
임의 칼로리 섭취량
기간: 개입 후 4시간
열량 섭취량은 균질 파스타 볼로네즈(1,440g, 1,912kcal, 55E% 탄수화물, 30E% 지방, 15E% 단백질, 균질 조성)의 뜨거운 냄비로 구성된 식사를 150g의 물 한 잔과 함께 제공하여 결정됩니다. ml 운동 1시간 후. 참가자는 조용히 앉아서 편안하게 포만감이 들 때까지 먹고 모든 물을 마시도록 요청받습니다. 식사시간은 30분 이내로
개입 후 4시간
위 배출
기간: 개입 후 4시간
위 배출은 1.5g 파라세타몰이 용해된 100ml를 마시는 참가자에 의해 평가됩니다. Paracetamol 농도는 Sandwich Electro-Chemiluminescence-Immunoassay(ECLIA)에 의해 결정됩니다.
개입 후 4시간
GLP1의 변화
기간: 개입 후 4시간
혈장 GLP1 농도 ELISA 분석을 사용하여
개입 후 4시간
PYY의 변화
기간: 개입 후 4시간
플라즈마 PYY 농도 ELISA 분석을 사용하여
개입 후 4시간
CCK의 변화
기간: 개입 후 4시간
플라즈마 CCK 농도 ELISA 분석을 사용하여
개입 후 4시간
포도당의 변화
기간: 개입 후 4시간
혈장 포도당 농도 sysmex XN 사용
개입 후 4시간
인슐린의 변화
기간: 개입 후 4시간
혈장 인슐린 농도 sysmex XN 사용
개입 후 4시간
C-펩타이드의 변화
기간: 개입 후 4시간
혈장 C-펩티드 농도 sysmex XN 사용
개입 후 4시간
유리 지방산의 변화
기간: 개입 후 4시간
혈장 유리 지방산 농도. sysmex XN 사용
개입 후 4시간
아세토아세테이트의 변화
기간: 개입 후 4시간
혈장 아세토아세테이트 농도 질량 분석법 사용
개입 후 4시간
베타하이드록시부티레이트의 변화
기간: 개입 후 4시간
혈장 betahydroxybutyrate conc. 질량 분석법 사용
개입 후 4시간
CRH의 변화
기간: 개입 후 4시간
플라즈마 CRH 농도 ELISA를 사용하여
개입 후 4시간
AVP의 변화
기간: 개입 후 4시간
플라즈마 AVP 농도 ELISA를 사용하여
개입 후 4시간

공동 작업자 및 조사자

여기에서 이 연구와 관련된 사람과 조직을 찾을 수 있습니다.

수사관

  • 수석 연구원: Andreas K Ziegler, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
  • 수석 연구원: Jesper F Christensen, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
  • 수석 연구원: Claus Brandt, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet

간행물 및 유용한 링크

연구에 대한 정보 입력을 담당하는 사람이 자발적으로 이러한 간행물을 제공합니다. 이것은 연구와 관련된 모든 것에 관한 것일 수 있습니다.

일반 간행물

연구 기록 날짜

이 날짜는 ClinicalTrials.gov에 대한 연구 기록 및 요약 결과 제출의 진행 상황을 추적합니다. 연구 기록 및 보고된 결과는 공개 웹사이트에 게시되기 전에 특정 품질 관리 기준을 충족하는지 확인하기 위해 국립 의학 도서관(NLM)에서 검토합니다.

연구 주요 날짜

연구 시작 (실제)

2021년 3월 15일

기본 완료 (실제)

2021년 10월 4일

연구 완료 (실제)

2021년 10월 4일

연구 등록 날짜

최초 제출

2020년 10월 20일

QC 기준을 충족하는 최초 제출

2020년 10월 30일

처음 게시됨 (실제)

2020년 11월 4일

연구 기록 업데이트

마지막 업데이트 게시됨 (실제)

2022년 8월 22일

QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출

2022년 8월 19일

마지막으로 확인됨

2022년 8월 1일

추가 정보

이 연구와 관련된 용어

기타 연구 ID 번호

  • jr. nr. H-20028611

개별 참가자 데이터(IPD) 계획

개별 참가자 데이터(IPD)를 공유할 계획입니까?

아니요

약물 및 장치 정보, 연구 문서

미국 FDA 규제 의약품 연구

아니

미국 FDA 규제 기기 제품 연구

아니

이 정보는 변경 없이 clinicaltrials.gov 웹사이트에서 직접 가져온 것입니다. 귀하의 연구 세부 정보를 변경, 제거 또는 업데이트하도록 요청하는 경우 register@clinicaltrials.gov. 문의하십시오. 변경 사항이 clinicaltrials.gov에 구현되는 즉시 저희 웹사이트에도 자동으로 업데이트됩니다. .

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