- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT04616235
Ejercicio agudo y regulación de células NK en tejido y circulación después del bloqueo de IL-6R
Ejercicio agudo y regulación de células NK en tejido y circulación después del bloqueo de IL-6R: un ensayo controlado aleatorio
Descripción general del estudio
Estado
Descripción detallada
Objetivos:
Objetivo primario:
- Explorar la asociación entre ejercicio agudo, bloqueo de IL-6 y regulación de NK en circulación.
- Explorar si las células NK activadas por el ejercicio tienen un fenotipo único utilizando la secuenciación del ARN de una sola célula.
Objetivos secundarios:
- Explorar el efecto del ejercicio aeróbico agudo sobre el número y la actividad de las células NK en la circulación, el músculo y el tejido adiposo, en hombres jóvenes sanos, para explorar indirectamente el ejercicio como remedio anticancerígeno.
- Evaluar la cinética de la respuesta de las células NK y, si es posible, investigar cronológicamente la apariencia y el paradero de las células NK activadas.
Objetivos exploratorios
- Establecer un protocolo reproducible para rastrear varias células inmunitarias y su participación en la respuesta aguda al ejercicio en humanos.
- Investigar nuevas moléculas de señal liberadas por el músculo durante el ejercicio con importancia inmunológica.
- Investigar el posible papel de la IL-6 inducida por el ejercicio en los sentimientos subjetivos de hambre y saciedad después del ejercicio y la ingesta de alimentos. • Explorar el efecto del bloqueo del receptor de IL-6 en el proteoma y metaboloma del ejercicio, mediante espectrometría de masas
Métodos:
Se incluirán 30 varones jóvenes sanos y recreativamente activos en este estudio de ejercicio agudo en el que se estudiará la cinética y la regulación de las células NK en respuesta al ejercicio aeróbico agudo y al bloqueo de IL-6R o placebo.
El estudio consta de 2 visitas. En la inclusión (visita 1), todos los sujetos se someterán a una evaluación que abarcará: evaluación médica inicial (auscultación, presión arterial, ECG), determinación de la composición corporal (DXA), estado cardiovascular (VO2max) y bioquímica sanguínea estándar en ayunas que se analizará de inmediato. La visita 2 consistirá en una biopsia de músculo y grasa de la pierna dominante y un depósito de grasa subcutánea abdominal respectivamente (ambos en condiciones de reposo), que luego actuarán como tejido de referencia para el análisis posterior del tejido. Luego, se asegurará un acceso venoso periférico antecubital de 18G antes de comenzar con la infusión de IL-6R. 2 horas después del procedimiento de infusión, los sujetos se someterán a un protocolo de ejercicio agudo. Luego, los sujetos serán desafiados por una serie de ejercicios aeróbicos agudos de alta intensidad, utilizando una bicicleta ergométrica. Se extraerán muestras de sangre antes de la infusión y el ejercicio, durante el ejercicio, así como inmediatamente, ½, 1, 1½ y 2 h después del ejercicio y hasta 4 h después del ejercicio en el subestudio de regulación del apetito. Las muestras de sangre se analizarán inmediatamente para el recuento y la diferenciación de leucocitos, así como para la bioquímica del plasma. Además, las muestras de sangre se utilizarán para el aislamiento de células NK con la posterior secuenciación de ARN de células individuales, distribución de células inmunitarias y capacidad de eliminación de células cancerosas. Además, las muestras de plasma se recolectarán y congelarán para la posterior determinación de cortisol, prolactina y citocinas circulantes, incluidas, entre otras, IL-6 y G-CSF. Por último, en el subestudio de apetito se medirá insulina, GLP-1 y ácidos grasos libres.
Las muestras de tejido se obtendrán 2 horas después del ejercicio para optimizar el análisis de expresión génica. Tanto las muestras de músculo como las de tejido adiposo se analizarán en busca de marcadores inflamatorios y antiinflamatorios, contenido de células NK y fenotipado de estas células NK utilizando marcadores obtenidos de la secuenciación de células individuales, realizada en las células NK transmitidas por la sangre. Además, la infiltración de células inmunitarias se evaluará mediante histología. Todas las muestras de tejido se obtendrán con una aguja Bergström en condiciones estériles durante la anestesia local para minimizar cualquier molestia o infección relacionada con la muestra.
Después de la muestra de tejido, se servirá una comida ad libitum, los sujetos pueden comer todo lo que puedan, pero se les indica que no consuman en exceso, ya que cualquier comida sobrante puede llevarse a casa. Se administrará paracetamol (1,5 g) para evaluar el vaciamiento gástrico.
Todos los participantes realizarán las 2 visitas de estudio a la misma hora aproximada del día (9:00 a. m.) Una vez finalizado el estudio, cualquier material sobrante se transferirá al biobanco CFAS.
Sujetos: Los sujetos incluidos serán 30 hombres jóvenes sanos, recreativamente activos, moderadamente entrenados, de entre 18 y 40 años. Los criterios de exclusión son: enfermedades cardiovasculares, reumatológicas y metabólicas, deportes de élite o alto nivel de entrenamiento aeróbico. Uso crónico de medicamentos antiinflamatorios no esteroideos (AINE) u otros inmunosupresores.
Intervención: Los sujetos serán asignados aleatoriamente a ejercicio agudo, con (n=15) o sin (n=15) bloqueo previo de IL-6R. La intervención de ejercicio consistirá en una serie de ejercicio aeróbico basada en intervalos de ≈45 minutos altamente exigente, realizada en una bicicleta ergométrica estacionaria. Después de un calentamiento inicial de 5 minutos al 50-60 % de la FCmáx, los sujetos realizarán siete intervalos de 3 minutos, estimulados verbalmente, por encima del 90 % de la FCmáx, intercalados con 3 minutos de pedaleo de baja intensidad. Se extraerán muestras de sangre antes, durante e inmediatamente, ½, 1, 1½ y 2 h después del ejercicio junto con muestras de tejido a las 2 h.
Para evaluar la regulación del apetito, se extraerán más muestras de sangre entre 2 y 4 horas después del ejercicio.
Consideraciones estadísticas: según los datos de nuestro estudio piloto, anticipamos una movilización máxima de células NK ≈ 45 % más baja en el grupo de inhibición de IL6R en comparación con CON y una diferencia del 29 % en el nadir de células NK con los valores más bajos obtenidos en el grupo de inhibición de IL6R. Suponiendo un nivel de significancia del 5 % en las pruebas bilaterales, necesitamos incluir 9 pacientes en cada grupo para lograr un poder del 90 % para detectar una diferencia relativa del 45 % en el grupo de intervención. Para tener en cuenta los posibles abandonos/excluidos debido a la configuración algo invasiva, incluiremos un total de 30 pacientes (15 por grupo).
Reclutamiento: Los sujetos serán reclutados a través de forsøgsperson.dk o sitios similares junto con publicidad en sitios relevantes.
Los sujetos se comunicarán con nosotros en CFAS y se les dará la opción de recibir información del estudio pr. teléfono (lo que niega la opción de un espectador) o una reunión cara a cara en CFAS. Toda esta información será dada por el investigador principal. Si el sujeto está interesado en escuchar más sobre el estudio, se le enviarán por correo electrónico los documentos pertinentes. Si el sujeto está interesado en unirse al estudio después de haber recibido información escrita u oral, tendrá 24 horas para considerar la participación en el estudio. Cuando el sujeto haya sido informado ya sea por teléfono o personalmente y acepte participar en el estudio, se le invitará a la visita 1 donde se obtendrá el consentimiento informado por escrito (o firmado y traído de casa por el participante).
Riesgos y reacciones adversas: Los sujetos pueden experimentar molestias leves con respecto a las muestras de sangre y tejido. El volumen de sangre extraído es insignificante y no se asociará con ningún riesgo para la salud. Todas las muestras de tejidos se realizarán en condiciones estériles durante la anestesia local y, por lo tanto, se asociarán con poco dolor o incomodidad y muy poco riesgo de infección. Durante la prueba de ejercicio, los participantes pueden experimentar dificultad para respirar.
La inhibición de IL-6R generalmente se tolera bien con solo algunos efectos secundarios. La dosis de paracetamol es baja y no se asocia a ningún riesgo.
La información de contacto del médico involucrado se proporcionará a los participantes en el momento de la inclusión en el estudio, de modo que cualquier evento adverso pueda ser informado y resuelto.
Difusión de los resultados del estudio: tanto los resultados positivos como los negativos y los no concluyentes se publicarán en revistas científicas internacionales relevantes.
Consideración ética: Se espera que el proyecto cause riesgos, efectos secundarios e incomodidad limitados. Todos los procedimientos serán realizados por médicos y fisiólogos experimentados con la seguridad pertinente. Tocilizumab es generalmente bien tolerado y la dosis de paracetamol es baja. Los sujetos incluidos podrán en cualquier momento, y sin justificación, retractarse de su consentimiento de participación en el estudio. Creemos que el proyecto es importante y contribuirá con nueva información crítica sobre la respuesta de las células NK modificables por IL-6 al ejercicio agudo tanto en la circulación como en el tejido adiposo y muscular (ya que actualmente hay un conocimiento muy limitado sobre este último).
El estudio se considera un estudio de caja de herramientas de Lægemiddelstyrelsen y, por lo tanto, no es un estudio farmacéutico.
Tipo de estudio
Inscripción (Actual)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Ubicaciones de estudio
-
-
-
Copenhagen Ø, Dinamarca, 2100
- Center For Physical Activity (CFAS)
-
-
Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Géneros elegibles para el estudio
Descripción
Criterios de inclusión:
- recreativamente activo
- moderadamente entrenado
- hombres jóvenes sanos de 18 a 40 años
- IMC de 18-30 kg·m2
Criterio de exclusión:
- Enfermedad cardiovascular
- enfermedad reumatológica
- Enfermedad metabólica,
- Deportes de élite o alto estado de entrenamiento aeróbico (VO2max>60ml O2/min/kg),
- Uso frecuente/crónico de medicamentos que afectan el rendimiento físico o la inflamación (NSAIDS, DMARDS)
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: CIENCIA BÁSICA
- Asignación: ALEATORIZADO
- Modelo Intervencionista: PARALELO
- Enmascaramiento: TRIPLE
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
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PLACEBO_COMPARADOR: ESTAFA
Este grupo realizará ejercicio aeróbico intenso sin bloqueo concomitante de IL-6R
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El grupo control realizará ejercicio aeróbico intenso con infusión salina durante 1h antes de la tanda de ejercicio
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COMPARADOR_ACTIVO: BLOQUEAR
Este grupo realizará ejercicio aeróbico intenso con bloqueo concomitante de IL-6R
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El grupo de intervención realizará ejercicio aeróbico intenso con infusión previa de IL-6R durante 1 hora antes de la sesión de ejercicio.
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Cinética y regulación de las células NK (Natural Killer) durante y después del ejercicio agudo
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Cambio en el recuento de células NK y subconjuntos de células NK en circulación antes y después del ejercicio aeróbico agudo con o sin bloqueo de IL-6R.
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Hasta 1 día
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Fenotipo de células NK en respuesta al ejercicio agudo con o sin bloqueo de IL-6R
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Cambio en el fenotipo de células NK usando secuenciación de ARN de células individuales. Aquí, se investigarán los cambios dentro del grupo de los puntos de tiempo de referencia frente a los posteriores al ejercicio, así como las diferencias entre grupos entre el bloqueo de IL-6 y el placebo. La atención se centrará en los marcadores de citotoxicidad, adhesión celular y señalización adrenérgica. |
Hasta 1 día
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Cambio en el recuento de células NK en el tejido adiposo
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
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Utilizando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD56, CD57 y otros marcadores de células NK, el investigador principal identificará y contará la cantidad de células NK en el tejido adiposo.
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el fenotipo de células NK en tejido adiposo
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
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Utilizando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD56, CD57 y otros marcadores de células NK, el investigador principal identificará el fenotipo de las células NK en el tejido adiposo.
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el recuento de células NK en el tejido muscular
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
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Usando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD56, CD57 y otros marcadores de células NK, el investigador principal identificará y contará la cantidad de células NK en el tejido muscular.
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el fenotipo de las células NK en el tejido muscular
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
|
Utilizando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD56, CD57 y otros marcadores de células NK, el investigador principal identificará el fenotipo de las células NK en el tejido muscular.
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el recuento de macrófagos en el tejido muscular
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
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Usando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD68, CD163, CD206, TNF-alfa y otros marcadores de macrófagos, el investigador principal identificará y contará la cantidad de macrófagos en el tejido muscular.
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el fenotipo de macrófagos en el tejido muscular
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
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Utilizando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD68, CD163, CD206, TNF-alfa y otros marcadores de macrófagos, el investigador principal determinará el fenotipo (M1/M2) de los macrófagos en el tejido muscular.
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el recuento de macrófagos en el tejido adiposo
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
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Usando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD68, CD163, CD206, TNF-alfa y otros marcadores de macrófagos, el investigador principal identificará y contará la cantidad de macrófagos en el tejido adiposo.
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el fenotipo de macrófagos en el tejido adiposo
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
|
Utilizando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD68, CD163, CD206, TNF-alfa y otros marcadores de macrófagos, el investigador principal determinará el fenotipo (M1/M2) de los macrófagos en el tejido adiposo.
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el recuento de células T en el tejido adiposo
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
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Usando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD3, CD8 y otros marcadores de células T, el investigador principal contará la cantidad de células T en el tejido adiposo.
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el fenotipo de células T en tejido adiposo
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
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Usando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD3, CD8 y otros marcadores de células T, el investigador principal determinará el fenotipo de las células T en tejido adiposo (CD3+/CD8+).
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el recuento de células T en el tejido muscular
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
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Usando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD3, CD8 y otros marcadores de células T, el investigador principal contará la cantidad de células T en el tejido muscular.
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el fenotipo de las células T en el tejido muscular
Periodo de tiempo: 3 horas después de la intervención
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Utilizando una combinación de histología, transferencia Western y análisis de expresión génica para CD3, CD8 y otros marcadores de células T, el investigador principal determinará el fenotipo (CD3+/CD8+) de las células T en el tejido muscular.
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3 horas después de la intervención
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Cambio en el recuento de monocitos en circulación
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Mediante citometría de flujo identificaremos y contaremos los monocitos en circulación
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Hasta 1 día
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Cambio en el recuento de células T en circulación
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Mediante citometría de flujo, los investigadores contarán las células T en circulación
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Hasta 1 día
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Cambio en el recuento de células B en circulación
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Usando citometría de flujo, los investigadores contarán las células B en circulación
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Hasta 1 día
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Cambio en la expresión del receptor de IL-6 en las células NK en circulación
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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El cambio en la expresión de la superficie del receptor de IL-6 en las células NK circulantes mediante citometría de flujo
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Hasta 1 día
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Cambio en la IL-6 circulante
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Plasma IL-6 conc.
utilizando el ensayo ELISA
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Hasta 1 día
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Cambio en la IL-2 circulante
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Plasma IL-2 conc.
utilizando el ensayo ELISA
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Hasta 1 día
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Cambio en la IL-1 circulante
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Plasma IL-1 conc.
utilizando el ensayo ELISA
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Hasta 1 día
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Cambio en la IL-10 circulante
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Plasma IL-10 conc.
utilizando el ensayo ELISA
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Hasta 1 día
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Cambio en el TNF-alfa circulante
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Uso de concentración de TNF-alfa en plasma
ensayo ELISA
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Hasta 1 día
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Cambio en el G-CSF circulante
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Concentración plasmática de TNF-alfa
utilizando el ensayo ELISA
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Hasta 1 día
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Cambio en la epinefrina circulante
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Epinefrina en sangre conc.
utilizando el ensayo ELISA
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Hasta 1 día
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Cambio en la norepinefrina circulante
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Concentración de norepinefrina en sangre.
utilizando el ensayo ELISA
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Hasta 1 día
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Cambio en los leucocitos totales circulantes
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Recuento de leucocitos en sangre con sysmex XN
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Hasta 1 día
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Cambio en los neutrófilos circulantes
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Recuento de neutrófilos en sangre.utilizando
Sysmex XN
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Hasta 1 día
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Cambio en los reticulocitos circulantes
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Recuento de reticulocitos en sangre.utilizando
Sysmex XN
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Hasta 1 día
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Cambio en los eosinófilos circulantes
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Recuento de eosinófilos en sangre.utilizando
Sysmex XN
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Hasta 1 día
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Cambio en los leucocitos basófilos circulantes
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Recuento de leucocitos en sangre basofile.usando
Sysmex XN
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Hasta 1 día
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Cambio en los linfocitos totales circulantes
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Recuento de linfocitos en sangre.utilizando
Sysmex XN
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Hasta 1 día
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Cambio en la prolactina circulante
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Prolactina plasmática conc.
usando Sysmex XN
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Hasta 1 día
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Cambio en el cortisol
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Concentración de cortisol en plasma
usando Sysmex XN
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Hasta 1 día
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Cambio en metamielocitos
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Recuento de metamielocitos en sangre con sysmex XN
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Hasta 1 día
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Cambio en ACTH
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Concentración plasmática de ACTH
usando Sysmex XN
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Hasta 1 día
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Cambio en el lactato circulante
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Lactato en sangre usando ABL
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Hasta 1 día
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Cambio en PCR
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Concentración de PCR en plasma
usando Sysmex XN
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Hasta 1 día
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Cambio en hsCRP
Periodo de tiempo: Hasta 1 día
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Concentración de PCR en plasma usando ELISA
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Hasta 1 día
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Nuevas miocinas durante el ejercicio agudo
Periodo de tiempo: Inmediatamente después de una sesión aguda de ejercicio
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Como resultado exploratorio, los investigadores investigarán posibles nuevas moléculas de señal liberadas durante el ejercicio con importancia inmunológica, ya sea en la circulación o en el tejido (es decir,
GDNF [factor neurotrófico derivado de células gliales])
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Inmediatamente después de una sesión aguda de ejercicio
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VO2máx
Periodo de tiempo: Base
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VO2max usando bicicleta ergométrica y sistema Oxicon Online
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Base
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Masa corporal magra
Periodo de tiempo: Base
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Masa corporal magra mediante absorciometría de rayos X de energía dual (DXA)
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Base
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Grasa corporal
Periodo de tiempo: Base
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Masa grasa mediante absorciometría de rayos X de energía dual (DXA)
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Base
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Densidad mineral del hueso
Periodo de tiempo: Base
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Densidad mineral ósea mediante absorciometría de rayos X de energía dual (DXA)
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Base
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Evaluación del apetito
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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El hambre, la saciedad, la saciedad y el posible consumo de alimentos se calificarán mediante escalas analógicas visuales (VAS).
Se dibuja una línea de 20 cm de izquierda a derecha en papel A4 que comienza en 0 cm con "nada de hambre" y termina en 20 cm con "nunca he tenido más hambre en mi vida".
El sujeto marca algún punto intermedio según su sentimiento subjetivo. La longitud se informa e indica el grado de hambre, por ejemplo. cuanto más larga la cola, más hambre.
En general, cuanto más a la derecha la persona marca la línea, más fuerte es la sensación subjetiva dentro de la pregunta dada.
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4 horas después de la intervención
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Ingesta calórica ad libitum
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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El aporte calórico se determinará proporcionando comida consistente en una olla caliente de pasta boloñesa homogénea (1.440 g, 1.912 kcal, 55 E por ciento de carbohidratos, 30 E por ciento de grasas, 15 E por ciento de proteínas; composición homogénea) servida con un vaso de agua de 150 ml 1 h después del ejercicio.
Los participantes se sentarán solos en silencio y se les pedirá que coman hasta que estén cómodamente llenos/saciados y que beban toda el agua.
La duración de la comida es de 30 minutos
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4 horas después de la intervención
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Vaciamiento gástrico
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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El vaciado gástrico se evaluará bebiendo los participantes 100 ml en los que se disuelve 1,5 g de paracetamol.
La concentración de Paracetamol se determinará mediante Sandwich Electro-Quimioluminiscencia-Inmunoensayo (ECLIA)
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4 horas después de la intervención
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Cambio en GLP1
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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Concentración plasmática de GLP1
utilizando el ensayo ELISA
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4 horas después de la intervención
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Cambio en año anual
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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Conc. plasma PYY
utilizando el ensayo ELISA
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4 horas después de la intervención
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Cambio en CCK
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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Concentración de CCK en plasma
utilizando el ensayo ELISA
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4 horas después de la intervención
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Cambio en la glucosa
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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Conc. de glucosa en plasma
usando usando sysmex XN
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4 horas después de la intervención
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Cambio en la insulina
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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Concentración de insulina plasmática
usando usando sysmex XN
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4 horas después de la intervención
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Cambio en el péptido C
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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Concentración de péptido C en plasma.
usando usando sysmex XN
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4 horas después de la intervención
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Cambio en los ácidos grasos libres
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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Ácidos grasos libres en plasma conc.
usando Sysmex XN
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4 horas después de la intervención
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Cambio en acetoacetato
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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Acetoacetato plasmático conc.
utilizando espectrometría de masas
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4 horas después de la intervención
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Cambio en betahidroxibutirato
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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Betahidroxibutirato plasmático conc.
utilizando espectrometría de masas
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4 horas después de la intervención
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Cambio en CRH
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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Concentración de CRH en plasma usando ELISA
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4 horas después de la intervención
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Cambio en AVP
Periodo de tiempo: 4 horas después de la intervención
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Concentración plasmática de AVP usando ELISA
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4 horas después de la intervención
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Andreas K Ziegler, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Investigador principal: Jesper F Christensen, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Investigador principal: Claus Brandt, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Kenfield SA, Stampfer MJ, Giovannucci E, Chan JM. Physical activity and survival after prostate cancer diagnosis in the health professionals follow-up study. J Clin Oncol. 2011 Feb 20;29(6):726-32. doi: 10.1200/JCO.2010.31.5226. Epub 2011 Jan 4.
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