- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT04616235
Esercizio acuto e regolazione delle cellule NK nei tessuti e nella circolazione dopo il blocco di IL-6R
Esercizio acuto e regolazione delle cellule NK nei tessuti e nella circolazione dopo il blocco di IL-6R: uno studio controllato randomizzato
Panoramica dello studio
Stato
Descrizione dettagliata
Obiettivi:
Obiettivo primario:
- Per esplorare l'associazione tra esercizio acuto, blocco di IL-6 e regolazione NK in circolazione.
- Per esplorare se le cellule NK attivate dall'esercizio hanno un fenotipo unico utilizzando il sequenziamento dell'RNA a singola cellula.
Obiettivi secondari:
- Esplorare l'effetto dell'esercizio aerobico acuto sul numero di cellule NK e sull'attività in circolazione, muscolo e tessuto adiposo, in giovani maschi sani, al fine di esplorare indirettamente l'esercizio come rimedio antitumorale.
- Valutare la cinetica della risposta delle cellule NK e, se possibile, indagare cronologicamente l'aspetto e l'ubicazione delle cellule NK attivate.
Obiettivi esplorativi
- Stabilire un protocollo riproducibile per tracciare varie cellule immunitarie e il loro coinvolgimento nella risposta acuta all'esercizio negli esseri umani
- Studiare nuove molecole segnale rilasciate dal muscolo durante l'esercizio con importanza immunologica.
- Indagare il possibile ruolo dell'IL-6 indotto dall'esercizio sui sentimenti soggettivi di fame e sazietà dopo l'esercizio e l'assunzione di cibo. • Per esplorare l'effetto del blocco del recettore IL-6 sul proteoma e sul metaboloma dell'esercizio, utilizzando la spettrometria di massa
Metodi:
30 giovani maschi sani attivi in modo ricreativo saranno inclusi in questo studio di esercizio acuto in cui la cinetica e la regolazione delle cellule NK saranno studiate in risposta all'esercizio aerobico acuto e al blocco di IL-6R o al placebo.
Lo studio si compone di 2 visite. All'inclusione (visita 1) tutti i soggetti saranno sottoposti a valutazione comprendente: screening medico di base (auscultazione, pressione sanguigna, ECG), determinazione della composizione corporea (DXA), idoneità cardiovascolare (VO2max) e biochimica del sangue a digiuno standard che verrà analizzato immediatamente. La visita 2 consisterà in una biopsia muscolare e adiposa rispettivamente della gamba dominante e del deposito di grasso sottocutaneo addominale (entrambi in condizioni di riposo), che fungeranno quindi da tessuto di riferimento per l'ulteriore analisi tissutale. Quindi, verrà assicurato un accesso venoso periferico antecubitale 18G prima di iniziare con l'infusione di IL-6R. 2 ore dopo la procedura di infusione i soggetti saranno sottoposti a un protocollo di esercizio acuto. I soggetti saranno quindi sfidati da un esercizio aerobico acuto ad alta intensità, utilizzando un cicloergometro. I campioni di sangue verranno prelevati prima dell'infusione e dell'esercizio, durante l'esercizio, nonché immediatamente, ½, 1, 1½ e 2 ore dopo l'esercizio e fino a 4 ore dopo l'esercizio nel sottostudio sulla regolazione dell'appetito. I campioni di sangue verranno immediatamente analizzati per il conteggio e la differenziazione dei leucociti, nonché per la biochimica del plasma. Inoltre, i campioni di sangue saranno utilizzati per l'isolamento delle cellule NK con successivo sequenziamento dell'RNA a singola cellula, distribuzione delle cellule immunitarie e capacità di uccidere le cellule tumorali. Inoltre, i campioni di plasma saranno raccolti e congelati per la successiva determinazione di cortisolo, prolattina e citochine circolanti, inclusi ma non limitati a IL-6 e G-CSF. Infine, nel sottostudio sull'appetito, verranno misurati l'insulina, il GLP-1 e gli acidi grassi liberi.
I campioni di tessuto saranno ottenuti 2 ore dopo l'esercizio per ottimizzare l'analisi dell'espressione genica. Sia i campioni di tessuto muscolare che quello adiposo saranno analizzati per marcatori infiammatori e anti-infiammatori, contenuto di cellule NK e fenotipizzazione di queste cellule NK utilizzando marcatori ottenuti dal sequenziamento di singole cellule, condotto sulle cellule NK trasmesse dal sangue. Inoltre, l'infiltrazione delle cellule immunitarie sarà valutata mediante istologia. Tutti i campioni di tessuto saranno ottenuti utilizzando un ago Bergström in condizioni sterili durante l'anestesia locale al fine di ridurre al minimo qualsiasi disagio o infezione correlata al campione.
Dopo il campione di tessuto, verrà servito un pasto ad libitum, i soggetti possono mangiare quanto più possibile, ma vengono istruiti a non consumare troppo poiché qualsiasi cibo avanzato può essere portato a casa. Verrà somministrato paracetamolo (1,5 g) per valutare lo svuotamento gastrico.
Tutti i partecipanti saranno sottoposti alle 2 visite di studio alla stessa ora approssimativa della giornata (9:00) Dopo il completamento dello studio, l'eventuale materiale residuo verrà trasferito alla biobanca CFAS.
Soggetti: i soggetti inclusi saranno 30 giovani maschi in buona salute, moderatamente allenati, di età compresa tra 18 e 40 anni. I criteri di esclusione sono: malattie cardiovascolari, reumatologiche e metaboliche, sport d'élite o stato di allenamento aerobico elevato. Uso cronico di farmaci antinfiammatori non steroidei (FANS) o altri immunosoppressori.
Intervento: i soggetti saranno randomizzati all'esercizio acuto, con (n=15) o senza (n=15) precedente blocco di IL-6R. L'intervento di esercizio consisterà in un incontro di esercizio aerobico basato su un intervallo di ≈45 minuti altamente faticoso, condotto su un cicloergometro fisso. Dopo un riscaldamento iniziale di 5 minuti al 50-60% della FCmax, i soggetti saranno sottoposti a sette intervalli di 3 minuti, incoraggiati verbalmente, a oltre il 90% della FCmax, intervallati da 3 minuti di pedalata a bassa intensità. I campioni di sangue verranno prelevati prima, durante e immediatamente, ½, 1, 1½ e 2 ore dopo l'esercizio insieme al prelievo di tessuto al punto temporale di 2 ore.
Per valutare la regolazione dell'appetito, verranno prelevati ulteriori campioni di sangue dalle 2 alle 4 ore dopo l'esercizio.
Considerazioni statistiche: sulla base dei dati del nostro studio pilota, prevediamo una mobilizzazione massima delle cellule NK inferiore del ≈ 45% nel gruppo di inibizione dell'IL6R rispetto al CON e una differenza del 29% nel nadir delle cellule NK con i valori più bassi ottenuti nel gruppo di inibizione dell'IL6R. Assumendo un livello di significatività del 5% nei test bilaterali, dobbiamo includere 9 pazienti in ciascun gruppo per ottenere una potenza del 90% per rilevare una differenza relativa del 45% nel gruppo di intervento. Per tenere conto di potenziali abbandoni/esclusi, a causa della configurazione alquanto invasiva, includeremo un totale di 30 pazienti (15 per gruppo).
Reclutamento: i soggetti verranno reclutati tramite forsøgsperson.dk o siti simili insieme alla pubblicità su siti pertinenti.
I soggetti ci contatteranno al CFAS e avranno la possibilità di scegliere se ricevere informazioni sullo studio pr. telefono (negando così la possibilità di un passante) o un incontro faccia a faccia presso il CFAS. Tutte queste informazioni saranno fornite dall'investigatore primario. Se il soggetto è interessato a saperne di più sullo studio, i documenti pertinenti verranno inviati via e-mail. Se il soggetto è interessato a partecipare allo studio dopo aver ricevuto informazioni scritte o orali, avrà 24 ore di tempo per considerare la partecipazione allo studio. Quando il soggetto è stato informato telefonicamente o faccia a faccia e accetta la partecipazione allo studio, sarà invitato a visitare 1 dove sarà ottenuto il consenso scritto e informato (o firmato e portato da casa dal partecipante).
Rischi e reazioni avverse: i soggetti possono avvertire un lieve disagio per quanto riguarda i campioni di sangue e di tessuto. Il volume di sangue prelevato è trascurabile e non sarà associato ad alcun rischio per la salute. Tutti i campionamenti di tessuti saranno eseguiti in condizioni sterili durante l'anestesia locale e saranno quindi associati a poco dolore o disagio e pochissimo rischio di infezione. Durante il test da sforzo, i partecipanti possono avvertire mancanza di respiro.
L'inibizione dell'IL-6R è generalmente ben tollerata con solo pochi effetti collaterali. La dose di paracetamolo è bassa e non è associata ad alcun rischio.
Le informazioni di contatto del medico coinvolto saranno fornite ai partecipanti all'inclusione nello studio, in modo che qualsiasi evento avverso possa essere segnalato e risolto.
Diffusione dei risultati dello studio: i risultati positivi, negativi e inconcludenti saranno pubblicati su riviste scientifiche internazionali pertinenti.
Considerazione etica: si prevede che il progetto causi rischi, effetti collaterali e disagi limitati. Tutte le procedure saranno eseguite da medici esperti e fisiologi con relativa sicurezza. Tocilizumab è generalmente ben tollerato e la dose di paracetamolo è bassa. I soggetti inclusi possono in qualsiasi momento, e senza giustificazione, revocare il proprio consenso alla partecipazione allo studio. Riteniamo che il progetto sia importante e contribuirà con nuove informazioni critiche sulla risposta modificabile delle cellule NK IL-6 all'esercizio acuto sia in circolazione che nel tessuto adiposo e muscolare (poiché attualmente vi sono conoscenze molto limitate su quest'ultimo).
Lo studio è considerato uno studio toolbox da Lægemiddelstyrelsen, e quindi non uno studio farmaceutico
Tipo di studio
Iscrizione (Effettivo)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Luoghi di studio
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Copenhagen Ø, Danimarca, 2100
- Center For Physical Activity (CFAS)
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Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Sessi ammissibili allo studio
Descrizione
Criterio di inclusione:
- attività ricreativa
- moderatamente allenato
- giovani maschi sani di età compresa tra 18 e 40 anni
- BMI da 18-30 kg·m2
Criteri di esclusione:
- Malattia cardiovascolare
- Malattia reumatologica
- malattia metabolica,
- Sport d'élite o stato di allenamento aerobico elevato (VO2max>60 ml O2/min/kg),
- Uso frequente/cronico di farmaci che influenzano le prestazioni fisiche o l'infiammazione (FANS, DMARD)
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: SCIENZA BASILARE
- Assegnazione: RANDOMIZZATO
- Modello interventistico: PARALLELO
- Mascheramento: TRIPLICARE
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
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PLACEBO_COMPARATORE: CON
Questo gruppo eseguirà un intenso esercizio aerobico senza concomitante blocco di IL-6R
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Il gruppo di controllo sarà sottoposto a intenso esercizio aerobico con infusione salina per 1 ora prima dell'esercizio
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ACTIVE_COMPARATORE: BLOCCARE
Questo gruppo eseguirà un intenso esercizio aerobico con concomitante blocco di IL-6R
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Il gruppo di intervento sarà sottoposto a un intenso esercizio aerobico con precedente infusione di IL-6R per 1 ora prima dell'esercizio.
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Cinetica e regolazione delle cellule NK (Natural Killer) durante e dopo l'esercizio acuto
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Variazione della conta delle cellule NK e dei sottogruppi di cellule NK in circolazione prima e dopo l'esercizio aerobico acuto con o senza blocco di IL-6R.
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Fino a 1 giorno
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Fenotipo delle cellule NK in risposta all'esercizio acuto con o senza blocco IL-6R
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Modifica del fenotipo delle cellule NK utilizzando il sequenziamento dell'RNA a singola cellula. Qui, saranno studiate le variazioni all'interno del gruppo dei punti temporali di base rispetto a quelli post esercizio, nonché le differenze tra i gruppi tra il blocco di IL-6 e il placebo. L'attenzione sarà focalizzata sui marcatori di citotossicità, adesione cellulare e segnalazione adrenergica. |
Fino a 1 giorno
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Variazione della conta delle cellule NK nel tessuto adiposo
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Utilizzando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD56, CD57 e altri marcatori di cellule NK, il ricercatore principale identificherà e conterà il numero di cellule NK nel tessuto adiposo
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3 ore dopo l'intervento
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Modifica del fenotipo delle cellule NK nel tessuto adiposo
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Utilizzando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD56, CD57 e altri marcatori di cellule NK, il ricercatore principale identificherà il fenotipo delle cellule NK nel tessuto adiposo
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3 ore dopo l'intervento
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Variazione della conta delle cellule NK nel tessuto muscolare
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Utilizzando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD56, CD57 e altri marcatori di cellule NK, il ricercatore principale identificherà e conterà il numero di cellule NK nel tessuto muscolare
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3 ore dopo l'intervento
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Modifica del fenotipo delle cellule NK nel tessuto muscolare
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Utilizzando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD56, CD57 e altri marcatori di cellule NK, il ricercatore principale identificherà il fenotipo delle cellule NK nel tessuto muscolare
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3 ore dopo l'intervento
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Variazione della conta dei macrofagi nel tessuto muscolare
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Utilizzando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD68, CD163, CD206, TNF-alfa e altri marcatori di macrofagi, il ricercatore principale identificherà e conterà il numero di macrofagi nel tessuto muscolare
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3 ore dopo l'intervento
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Cambiamento nel fenotipo dei macrofagi nel tessuto muscolare
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Usando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD68, CD163, CD206, TNF-alfa e altri marcatori di macrofagi, il ricercatore principale fenotipizzerà i macrofagi (M1/M2) nel tessuto muscolare
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3 ore dopo l'intervento
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Variazione della conta dei macrofagi nel tessuto adiposo
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Utilizzando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD68, CD163, CD206, TNF-alfa e altri marcatori di macrofagi, il ricercatore principale identificherà e conterà il numero di macrofagi nel tessuto adiposo
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3 ore dopo l'intervento
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Cambiamento del fenotipo dei macrofagi nel tessuto adiposo
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Utilizzando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD68, CD163, CD206, TNF-alfa e altri marcatori di macrofagi, il ricercatore principale fenotipizzerà i macrofagi (M1/M2) nel tessuto adiposo
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3 ore dopo l'intervento
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Variazione della conta delle cellule T nel tessuto adiposo
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Utilizzando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD3, CD8 e altri marcatori di cellule T, il ricercatore principale conterà il numero di cellule T nel tessuto adiposo
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3 ore dopo l'intervento
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Modifica del fenotipo delle cellule T nel tessuto adiposo
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Utilizzando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD3, CD8 e altri marcatori di cellule T, il ricercatore principale fenotipizzerà le cellule T nel tessuto adiposo (CD3+/CD8+)
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3 ore dopo l'intervento
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Variazione della conta delle cellule T nel tessuto muscolare
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Utilizzando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD3, CD8 e altri marcatori di cellule T, il ricercatore principale conterà il numero di cellule T nel tessuto muscolare
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3 ore dopo l'intervento
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Modifica del fenotipo delle cellule T nel tessuto muscolare
Lasso di tempo: 3 ore dopo l'intervento
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Utilizzando una combinazione di istologia, western blot e analisi dell'espressione genica per CD3, CD8 e altri marcatori di cellule T, il ricercatore principale fenotipizzerà (CD3+/CD8+) le cellule T nel tessuto muscolare
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3 ore dopo l'intervento
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Variazione della conta dei monociti in circolazione
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Utilizzando la citometria a flusso identificheremo e conteremo i monociti in circolazione
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Fino a 1 giorno
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Variazione della conta delle cellule T in circolazione
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Usando la citometria a flusso gli investigatori conteranno le cellule T in circolazione
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Fino a 1 giorno
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Variazione della conta delle cellule B in circolazione
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Usando la citometria a flusso gli investigatori conteranno le cellule B in circolazione
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Fino a 1 giorno
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Modifica dell'espressione del recettore IL-6 sulle cellule NK in circolazione
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Il cambiamento nell'espressione superficiale del recettore IL-6 sulle cellule NK circolanti mediante citometria a flusso
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Fino a 1 giorno
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Cambiamento nell'IL-6 circolante
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Plasma IL-6 conc.
utilizzando il saggio ELISA
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Fino a 1 giorno
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Alterazione dell'IL-2 circolante
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Plasma IL-2 conc.
utilizzando il saggio ELISA
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Fino a 1 giorno
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Alterazione dell'IL-1 circolante
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Plasma IL-1 conc.
utilizzando il saggio ELISA
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Fino a 1 giorno
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Cambiamento nell'IL-10 circolante
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Plasma IL-10 conc.
utilizzando il saggio ELISA
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Fino a 1 giorno
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Alterazione del TNF-alfa circolante
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Plasma TNF-alpha conc.using
Saggio ELISA
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Fino a 1 giorno
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Alterazione del G-CSF circolante
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Plasma TNF-alfa conc.
utilizzando il saggio ELISA
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Fino a 1 giorno
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Alterazione dell'epinefrina circolante
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Epinefrina ematica conc.
utilizzando il saggio ELISA
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Fino a 1 giorno
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Alterazione della noradrenalina circolante
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Sangue norepinefrina conc.
utilizzando il saggio ELISA
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Fino a 1 giorno
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Variazione dei leucociti totali circolanti
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Conta dei leucociti nel sangue utilizzando sysmex XN
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Fino a 1 giorno
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Alterazione dei neutrofili circolanti
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Conta dei neutrofili nel sangue
sysmex XN
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Fino a 1 giorno
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Alterazione dei reticolociti circolanti
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Conteggio dei reticolociti nel sangue
sysmex XN
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Fino a 1 giorno
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Alterazione degli eosinofili circolanti
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Conteggio degli eosinofili nel sangue
sysmex XN
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Fino a 1 giorno
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Alterazione dei leucociti basofili circolanti
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Conteggio dei leucociti basofili nel sangue
sysmex XN
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Fino a 1 giorno
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Alterazione dei linfociti totali circolanti
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Conteggio dei linfociti nel sangue
sysmex XN
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Fino a 1 giorno
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Alterazione della prolattina circolante
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Prolattina plasmatica conc.
utilizzando sysmex XN
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Fino a 1 giorno
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Alterazione del cortisolo
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Cortisolo plasmatico conc.
utilizzando sysmex XN
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Fino a 1 giorno
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Alterazione dei metamielociti
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Conta dei metamielociti nel sangue utilizzando sysmex XN
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Fino a 1 giorno
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Alterazione dell'ACTH
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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ACTH plasmatico conc.
utilizzando sysmex XN
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Fino a 1 giorno
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Variazione del lattato circolante
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Lattato di sangue usando ABL
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Fino a 1 giorno
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Cambio di PCR
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Plasma CRP conc.
utilizzando sysmex XN
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Fino a 1 giorno
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Modifica di hsCRP
Lasso di tempo: Fino a 1 giorno
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Plasma CRP conc. utilizzando ELISA
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Fino a 1 giorno
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Nuove miochine durante l'esercizio acuto
Lasso di tempo: Immediatamente dopo un attacco acuto di esercizio
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Come risultato esplorativo, i ricercatori indagheranno su possibili nuove molecole di segnale rilasciate durante l'esercizio con importanza immunologica, sia in circolazione che nei tessuti (ad es.
GDNF [fattore neurotrofico derivato da cellule gliali])
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Immediatamente dopo un attacco acuto di esercizio
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VO2max
Lasso di tempo: Linea di base
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VO2max utilizzando il cicloergometro e il sistema Oxicon Online
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Linea di base
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Massa corporea magra
Lasso di tempo: Linea di base
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Massa corporea magra mediante assorbimetria a raggi X a doppia energia (DXA)
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Linea di base
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Massa grassa
Lasso di tempo: Linea di base
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Massa grassa mediante assorbimetria a raggi X a doppia energia (DXA)
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Linea di base
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Densità minerale ossea
Lasso di tempo: Linea di base
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Densità minerale ossea mediante assorbimetria a raggi X a doppia energia (DXA)
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Linea di base
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Valutazione dell'appetito
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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La fame, la sazietà, la pienezza e il consumo futuro di cibo saranno valutati utilizzando una scala analogica visiva (VAS).
Una linea di 20 cm viene tracciata da sinistra a destra su un foglio A4 partendo da 0 cm con "non ho affatto fame" e terminando a 20 cm con "non ho mai avuto più fame in vita mia".
Il soggetto segna una via di mezzo secondo il suo sentimento soggettivo, La lunghezza è riportata e indica il grado di fame, ad es. più lunga è la fila più fame.
In generale, più a lungo la persona segna la linea a destra, più forte è l'abbattimento soggettivo all'interno della domanda data
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4 ore dopo l'intervento
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Apporto calorico ad libitum
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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L'apporto calorico sarà determinato fornendo un pasto composto da un piatto caldo di pasta omogenea alla bolognese (1.440 g, 1.912 kcal, 55 E percento di carboidrati, 30 E percento di grassi, 15 E percento di proteine; composizione omogenea) servito con un bicchiere d'acqua di 150 ml 1 ora dopo l'esercizio.
I partecipanti si siederanno tranquillamente da soli e gli verrà chiesto di mangiare fino a quando non saranno sazi/sazi e di bere tutta l'acqua.
La durata del pasto è fissata a 30 minuti
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4 ore dopo l'intervento
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Svuotamento gastrico
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Lo svuotamento gastrico sarà valutato dai partecipanti bevendo 100 ml in cui è disciolto 1,5 g di paracetamolo.
La concentrazione di paracetamolo sarà determinata mediante Sandwich Electro-Chemiluminescence-Immunoassay (ECLIA)
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4 ore dopo l'intervento
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Modifica della BPL1
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Plasma GLP1 conc.
utilizzando il saggio ELISA
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4 ore dopo l'intervento
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Cambio in PYY
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Plasma PYY conc.
utilizzando il saggio ELISA
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4 ore dopo l'intervento
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Cambio di CCK
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Plasma CCK conc.
utilizzando il saggio ELISA
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4 ore dopo l'intervento
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Variazione del glucosio
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Glucosio plasmatico conc.
utilizzando utilizzando sysmex XN
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4 ore dopo l'intervento
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Cambiamento di insulina
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Insulina plasmatica conc.
utilizzando utilizzando sysmex XN
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4 ore dopo l'intervento
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Cambiamento nel peptide C
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Peptide C plasmatico conc.
utilizzando utilizzando sysmex XN
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4 ore dopo l'intervento
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Variazione degli acidi grassi liberi
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Acidi grassi liberi plasmatici conc.
utilizzando sysmex XN
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4 ore dopo l'intervento
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Cambio di acetoacetato
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Acetoacetato plasmatico conc.
utilizzando la spettrometria di massa
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4 ore dopo l'intervento
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Variazione del betaidrossibutirrato
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Betaidrossibutirrato plasmatico conc.
utilizzando la spettrometria di massa
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4 ore dopo l'intervento
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Modifica in CRH
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Plasma CRH conc. utilizzando ELISA
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4 ore dopo l'intervento
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Cambio di AVP
Lasso di tempo: 4 ore dopo l'intervento
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Plasma AVP conc. utilizzando ELISA
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4 ore dopo l'intervento
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Collaboratori e investigatori
Sponsor
Investigatori
- Investigatore principale: Andreas K Ziegler, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Investigatore principale: Jesper F Christensen, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Investigatore principale: Claus Brandt, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Kenfield SA, Stampfer MJ, Giovannucci E, Chan JM. Physical activity and survival after prostate cancer diagnosis in the health professionals follow-up study. J Clin Oncol. 2011 Feb 20;29(6):726-32. doi: 10.1200/JCO.2010.31.5226. Epub 2011 Jan 4.
- Amar, D., Lindholm, M. E., Norrbom, J., Wheeler, M. T., Rivas, M., & Ashley, E. A. (2020). Differential Response Trajectories to Acute Exercise in Blood and Muscle. SSRN Electronic Journal, 1-43. https://doi.org/10.2139/ssrn.3508810
- Bergstrom J. Percutaneous needle biopsy of skeletal muscle in physiological and clinical research. Scand J Clin Lab Invest. 1975 Nov;35(7):609-16. No abstract available.
- Bigley AB, Rezvani K, Chew C, Sekine T, Pistillo M, Crucian B, Bollard CM, Simpson RJ. Acute exercise preferentially redeploys NK-cells with a highly-differentiated phenotype and augments cytotoxicity against lymphoma and multiple myeloma target cells. Brain Behav Immun. 2014 Jul;39:160-71. doi: 10.1016/j.bbi.2013.10.030. Epub 2013 Nov 5.
- Chan CJ, Smyth MJ, Martinet L. Molecular mechanisms of natural killer cell activation in response to cellular stress. Cell Death Differ. 2014 Jan;21(1):5-14. doi: 10.1038/cdd.2013.26. Epub 2013 Apr 12.
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