- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT04616235
Ostre ćwiczenia i regulacja komórek NK w tkankach i krążeniu po blokadzie IL-6R
Ostre ćwiczenia i regulacja komórek NK w tkankach i krążeniu po blokadzie IL-6R — randomizowana, kontrolowana próba
Przegląd badań
Status
Szczegółowy opis
Cele:
Podstawowy cel:
- Zbadanie związku między intensywnym wysiłkiem fizycznym, blokadą IL-6 i regulacją krążenia NK.
- Zbadanie, czy komórki NK aktywowane wysiłkiem fizycznym mają unikalny fenotyp przy użyciu sekwencjonowania RNA pojedynczej komórki.
Cele drugorzędne:
- Zbadanie wpływu intensywnych ćwiczeń aerobowych na liczbę i aktywność komórek NK w krążeniu, tkance mięśniowej i tłuszczowej u zdrowych młodych mężczyzn, w celu pośredniego zbadania ćwiczeń jako środka przeciwnowotworowego.
- Aby ocenić kinetykę odpowiedzi komórek NK i, jeśli to możliwe, chronologicznie zbadać wygląd i lokalizację aktywowanych komórek NK.
Cele eksploracyjne
- Ustanowienie powtarzalnego protokołu śledzenia różnych komórek odpornościowych i ich zaangażowania w ostrą reakcję na wysiłek fizyczny u ludzi
- Zbadanie nowych cząsteczek sygnałowych uwalnianych z mięśni podczas ćwiczeń o znaczeniu immunologicznym.
- Zbadanie możliwej roli IL-6 wywołanej wysiłkiem fizycznym na subiektywne uczucie głodu i sytości po wysiłku fizycznym i spożyciu pokarmu. • Zbadanie wpływu blokady receptora IL-6 na proteom i metabolom wysiłkowy za pomocą spektrometrii mas
Metody:
30 zdrowych, aktywnych rekreacyjnie młodych mężczyzn zostanie włączonych do tego badania intensywnego wysiłku fizycznego, w którym kinetyka i regulacja komórek NK będą badane w odpowiedzi na ostre ćwiczenia aerobowe i blokadę IL-6R lub placebo.
Badanie składa się z 2 wizyt. Podczas włączenia (wizyta 1) wszyscy uczestnicy zostaną poddani ocenie obejmującej: podstawowe medyczne badania przesiewowe (osłuchiwanie, ciśnienie krwi, EKG), określenie składu ciała (DXA), wydolności układu sercowo-naczyniowego (VO2max) oraz standardową biochemię krwi na czczo, która zostanie natychmiast przeanalizowana. Wizyta 2 będzie składać się z biopsji mięśnia i tkanki tłuszczowej odpowiednio z dominującej nogi iz brzucha (oba w warunkach spoczynku), które będą służyć jako tkanka referencyjna do dalszej analizy tkanek. Następnie, przed rozpoczęciem wlewu IL-6R, zapewniony zostanie dostęp do żyły obwodowej 18G przedłokciowej. 2 godziny po procedurze infuzji osobniki będą przechodzić protokół intensywnych ćwiczeń. Następnie badani zostaną wyzwani w ostrych ćwiczeniach aerobowych o wysokiej intensywności, z wykorzystaniem ergometru rowerowego. Próbki krwi będą pobierane przed infuzją i wysiłkiem fizycznym, w trakcie wysiłku, jak również natychmiast, ½, 1, 1½ i 2 godziny po wysiłku oraz do 4 godzin po wysiłku w części dotyczącej regulacji apetytu. Próbki krwi zostaną natychmiast przeanalizowane pod kątem liczby i różnicowania leukocytów, a także biochemii osocza. Ponadto próbki krwi zostaną wykorzystane do izolacji komórek NK z późniejszym sekwencjonowaniem RNA pojedynczej komórki, dystrybucją komórek odpornościowych i zdolnością zabijania komórek nowotworowych. Ponadto próbki osocza zostaną pobrane i zamrożone w celu późniejszego oznaczenia kortyzolu, prolaktyny i krążących cytokin, w tym między innymi IL-6 i G-CSF. Na koniec, w badaniu podrzędnym dotyczącym apetytu, zmierzona zostanie insulina, GLP-1 i wolne kwasy tłuszczowe.
Próbki tkanek zostaną pobrane 2 godziny po wysiłku w celu optymalizacji analizy ekspresji genów. Zarówno próbki mięśni, jak i tkanki tłuszczowej zostaną przeanalizowane pod kątem markerów zapalnych i przeciwzapalnych, zawartości komórek NK i fenotypowania tych komórek NK przy użyciu markerów uzyskanych z sekwencjonowania pojedynczych komórek, przeprowadzonego na krwiopochodnych komórkach NK. Ponadto naciek komórek odpornościowych zostanie oceniony przy użyciu histologii. Wszystkie próbki tkanek zostaną pobrane za pomocą igły Bergström w sterylnych warunkach podczas znieczulenia miejscowego, aby zminimalizować dyskomfort lub infekcję związaną z próbką.
Po pobraniu próbki tkanki zostanie podany posiłek ad libitum, badani mogą zjeść tyle, ile mogą, ale są poinstruowani, aby nie przejadać się, ponieważ resztki jedzenia można zabrać do domu. Paracetamol (1,5 g) zostanie podany w celu oceny opróżniania żołądka.
Wszyscy uczestnicy przejdą 2 wizyty studyjne o mniej więcej tej samej porze dnia (9:00) Po zakończeniu badania wszelki pozostały materiał zostanie przekazany do biobanku CFAS.
Uczestnicy: Uczestnikami będzie 30 aktywnych rekreacyjnie, średnio wytrenowanych, zdrowych młodych mężczyzn w wieku 18-40 lat. Kryteriami wykluczającymi są: choroby sercowo-naczyniowe, reumatologiczne i metaboliczne, sporty elitarne lub wysoki status wytrenowania aerobowego. Przewlekłe stosowanie niesteroidowych leków przeciwzapalnych (NLPZ) lub innych leków immunosupresyjnych.
Interwencja: Pacjenci zostaną losowo przydzieleni do grupy intensywnych ćwiczeń, z (n=15) lub bez (n=15) wcześniejszej blokady IL-6R. Interwencja ćwiczeniowa będzie się składać z bardzo obciążających ≈45-minutowych interwałów, ćwiczeń aerobowych, prowadzonych na stacjonarnym ergometrze rowerowym. Po początkowej 5-minutowej rozgrzewce przy 50-60% HRmax, badani przejdą siedem, zachęcanych słownie, 3-minutowych interwałów przy powyżej 90% HRmax, przeplatanych 3-minutowymi pedałowaniami o niskiej intensywności. Próbki krwi zostaną pobrane przed, w trakcie, jak również bezpośrednio, ½, 1, 1½ i 2 godziny po wysiłku wraz z pobieraniem próbek tkanek w punkcie czasowym 2 godzin.
Aby ocenić regulację apetytu, kolejne próbki krwi zostaną pobrane od 2 do 4 godzin po wysiłku.
Uwagi statystyczne: Na podstawie danych z naszego badania pilotażowego przewidujemy o ≈ 45% niższą maksymalną mobilizację komórek NK w grupie z hamowaniem IL6R w porównaniu z CON oraz 29% różnicę w nadirach komórek NK przy najniższych wartościach uzyskanych w grupie z hamowaniem IL6R. Zakładając poziom istotności 5% w testach dwustronnych, musimy włączyć 9 pacjentów do każdej grupy, aby osiągnąć 90% moc wykrywania względnej różnicy 45% w grupie interwencyjnej. Aby uwzględnić potencjalne odpady/wykluczenia, ze względu na nieco inwazyjną konfigurację, włączymy łącznie 30 pacjentów (15 na grupę).
Rekrutacja: Uczestnicy będą rekrutowani za pośrednictwem forsøgsperson.dk lub podobnych witryn wraz z reklamami na odpowiednich stronach.
Badani skontaktują się z nami w CFAS i otrzymają wybór, czy chcą otrzymywać informacje o badaniu pr. telefon (tym samym pozbawiając możliwości obecności osoby postronnej) lub spotkanie twarzą w twarz w CFAS. Wszystkie te informacje zostaną podane przez głównego badacza. Jeśli osoba jest zainteresowana dalszymi informacjami na temat badania, odpowiednie dokumenty zostaną przesłane pocztą elektroniczną. Jeżeli osoba jest zainteresowana przystąpieniem do badania po otrzymaniu pisemnej lub ustnej informacji, będzie miała 24h na rozważenie udziału w badaniu. Gdy pacjent został poinformowany telefonicznie lub osobiście i wyrazi zgodę na udział w badaniu, zostanie zaproszony na wizytę 1, gdzie uzyskana zostanie pisemna i świadoma zgoda (lub podpisana i przyniesiona z domu przez uczestnika).
Zagrożenia i działania niepożądane: Pacjenci mogą odczuwać niewielki dyskomfort w odniesieniu do próbek krwi i tkanek. Objętość pobieranej krwi jest znikoma i nie będzie wiązała się z żadnym zagrożeniem dla zdrowia. Wszystkie próbki tkanek będą pobierane w sterylnych warunkach podczas znieczulenia miejscowego, a zatem będą się wiązać z niewielkim bólem lub dyskomfortem oraz bardzo niewielkim ryzykiem infekcji. Podczas próby wysiłkowej uczestnicy mogą odczuwać duszność.
Hamowanie IL-6R jest na ogół dobrze tolerowane i ma tylko kilka skutków ubocznych. Dawka paracetamolu jest niska i nie wiąże się z żadnym ryzykiem.
Dane kontaktowe zaangażowanego lekarza zostaną podane uczestnikom w momencie włączenia do badania, aby można było zgłosić i rozwiązać wszelkie zdarzenia niepożądane.
Rozpowszechnianie wyników badań: Zarówno pozytywne, negatywne, jak i niejednoznaczne wyniki zostaną opublikowane w odpowiednich międzynarodowych czasopismach naukowych.
Względy etyczne: Oczekuje się, że projekt spowoduje ograniczone ryzyko, skutki uboczne i dyskomfort. Wszystkie zabiegi będą wykonywane przez doświadczonych lekarzy i fizjologów z zachowaniem odpowiednich środków bezpieczeństwa. Tocilizumab jest na ogół dobrze tolerowany, a dawka paracetamolu jest niska. Osoby objęte badaniem mogą w dowolnym momencie i bez uzasadnienia wycofać swoją zgodę na udział w badaniu. Wierzymy, że projekt jest ważny i przyczyni się do zdobycia nowych krytycznych informacji na temat odpowiedzi komórek NK podlegających modyfikacji IL-6 na ostry wysiłek fizyczny zarówno w układzie krążenia, jak iw tkance tłuszczowej i mięśniowej (ponieważ wiedza na ten temat jest obecnie bardzo ograniczona).
Badanie jest uważane przez Lægemiddelstyrelsen za zestaw narzędzi, a zatem nie w badaniu farmaceutycznym
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Nie dotyczy
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
-
Copenhagen Ø, Dania, 2100
- Center For Physical Activity (CFAS)
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria przyjęcia:
- aktywny rekreacyjnie
- średnio wyszkolony
- zdrowych młodych mężczyzn w wieku 18-40 lat
- BMI od 18-30 kg·m2
Kryteria wyłączenia:
- Choroba sercowo-naczyniowa
- Choroba reumatologiczna
- choroba metaboliczna,
- Sporty elitarne lub wysoki status wytrenowania aerobowego (VO2max>60ml O2/min/kg),
- Częste/przewlekłe stosowanie leków wpływających na wydolność fizyczną lub stany zapalne (NSAIDS, DMARDS)
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: PODSTAWOWA NAUKA
- Przydział: LOSOWO
- Model interwencyjny: RÓWNOLEGŁY
- Maskowanie: POTROIĆ
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
---|---|
PLACEBO_COMPARATOR: KON
Ta grupa będzie wykonywać intensywne ćwiczenia aerobowe bez jednoczesnej blokady IL-6R
|
Grupa kontrolna zostanie poddana intensywnym ćwiczeniom aerobowym z infuzją soli fizjologicznej przez 1 godzinę przed sesją ćwiczeń
|
ACTIVE_COMPARATOR: BLOK
Ta grupa będzie wykonywać intensywne ćwiczenia aerobowe z jednoczesną blokadą IL-6R
|
Grupa interwencyjna będzie poddawana intensywnym ćwiczeniom aerobowym z wcześniejszym wlewem IL-6R przez 1 godzinę przed sesją ćwiczeń.
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
---|---|---|
Kinetyka i regulacja komórek NK (Natural Killer) podczas i po intensywnym wysiłku fizycznym
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Zmiana liczby komórek NK i podzbioru komórek NK w krążeniu przed i po ostrym wysiłku aerobowym z blokadą IL-6R lub bez niej.
|
Do 1 dnia
|
Fenotyp komórek NK w odpowiedzi na ostry wysiłek fizyczny z blokadą IL-6R lub bez niej
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Zmiana fenotypu komórek NK za pomocą sekwencjonowania RNA pojedynczej komórki. Tutaj zbadane zostaną wewnątrzgrupowe zmiany punktów czasowych linii podstawowej w stosunku do punktów czasowych po wysiłku, jak również różnice między grupami między blokadą IL-6 a placebo. Nacisk zostanie położony na markery cytotoksyczności, adhezji komórek i sygnalizacji adrenergicznej. |
Do 1 dnia
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
---|---|---|
Zmiana liczby komórek NK w tkance tłuszczowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD56, CD57 i innych markerów komórek NK, główny badacz zidentyfikuje i policzy liczbę komórek NK w tkance tłuszczowej
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana fenotypu komórek NK w tkance tłuszczowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD56, CD57 i innych markerów komórek NK, główny badacz zidentyfikuje fenotyp komórek NK w tkance tłuszczowej
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana liczby komórek NK w tkance mięśniowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD56, CD57 i innych markerów komórek NK, główny badacz zidentyfikuje i policzy liczbę komórek NK w tkance mięśniowej
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana fenotypu komórek NK w tkance mięśniowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD56, CD57 i innych markerów komórek NK, główny badacz zidentyfikuje fenotyp komórek NK w tkance mięśniowej
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana liczby makrofagów w tkance mięśniowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD68, CD163, CD206, TNF-alfa i innych markerów makrofagów, główny badacz zidentyfikuje i policzy liczbę makrofagów w tkance mięśniowej
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana fenotypu makrofagów w tkance mięśniowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD68, CD163, CD206, TNF-alfa i innych markerów makrofagów, główny badacz dokona fenotypu (M1/M2) makrofagów w tkance mięśniowej
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana liczby makrofagów w tkance tłuszczowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD68, CD163, CD206, TNF-alfa i innych markerów makrofagów, główny badacz zidentyfikuje i policzy liczbę makrofagów w tkance tłuszczowej
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana fenotypu makrofagów w tkance tłuszczowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD68, CD163, CD206, TNF-alfa i innych markerów makrofagów, główny badacz dokona fenotypu (M1/M2) makrofagów w tkance tłuszczowej
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana liczby komórek T w tkance tłuszczowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD3, CD8 i innych markerów komórek T, główny badacz policzy liczbę komórek T w tkance tłuszczowej
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana fenotypu komórek T w tkance tłuszczowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD3, CD8 i innych markerów komórek T, główny badacz fenotypuje komórki T w tkance tłuszczowej (CD3+/CD8+)
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana liczby komórek T w tkance mięśniowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD3, CD8 i innych markerów komórek T, główny badacz policzy liczbę komórek T w tkance mięśniowej
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana fenotypu komórek T w tkance mięśniowej
Ramy czasowe: 3 godziny po interwencji
|
Wykorzystując połączenie histologii, western blot i analizy ekspresji genów dla CD3, CD8 i innych markerów komórek T, główny badacz dokona fenotypu (CD3+/CD8+) komórek T w tkance mięśniowej
|
3 godziny po interwencji
|
Zmiana liczby monocytów w krążeniu
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Za pomocą cytometrii przepływowej zidentyfikujemy i policzymy monocyty w krążeniu
|
Do 1 dnia
|
Zmiana liczby limfocytów T w krążeniu
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Za pomocą cytometrii przepływowej badacze policzą limfocyty T w krążeniu
|
Do 1 dnia
|
Zmiana liczby limfocytów B w krążeniu
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Za pomocą cytometrii przepływowej badacze policzą krążące komórki B
|
Do 1 dnia
|
Zmiana ekspresji receptora IL-6 na krążących komórkach NK
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Zmiana ekspresji powierzchniowej receptora IL-6 na krążących komórkach NK za pomocą cytometrii przepływowej
|
Do 1 dnia
|
Zmiana krążącej IL-6
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Osocze IL-6 stęż.
za pomocą testu ELISA
|
Do 1 dnia
|
Zmiana krążącej IL-2
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Osocze IL-2 stęż.
za pomocą testu ELISA
|
Do 1 dnia
|
Zmiana krążącej IL-1
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Osocze IL-1 stęż.
za pomocą testu ELISA
|
Do 1 dnia
|
Zmiana krążącej IL-10
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Osocze IL-10 stęż.
za pomocą testu ELISA
|
Do 1 dnia
|
Zmiana w krążącym TNF-alfa
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Stężenie osocza TNF-alfa przy użyciu
test ELISA
|
Do 1 dnia
|
Zmiana w krążącym G-CSF
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Osocze TNF-alfa stęż.
za pomocą testu ELISA
|
Do 1 dnia
|
Zmiana krążącej epinefryny
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Stężenie epinefryny we krwi
za pomocą testu ELISA
|
Do 1 dnia
|
Zmiana krążącej noradrenaliny
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Stężenie norepinefryny we krwi
za pomocą testu ELISA
|
Do 1 dnia
|
Zmiana liczby krążących leukocytów
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Liczba leukocytów we krwi za pomocą sysmex XN
|
Do 1 dnia
|
Zmiana liczby krążących neutrofili
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Liczba neutrofili we krwi.za pomocą
sysmex XN
|
Do 1 dnia
|
Zmiana w krążących retikulocytach
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Zliczanie retikulocytów we krwi za pomocą
sysmex XN
|
Do 1 dnia
|
Zmiana w krążących eozynofilach
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Liczba eozynofili we krwi.za pomocą
sysmex XN
|
Do 1 dnia
|
Zmiana w krążących leukocytach bazofilowych
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Zliczanie leukocytów bazofili we krwi.za pomocą
sysmex XN
|
Do 1 dnia
|
Zmiana całkowitej liczby krążących limfocytów
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Liczba limfocytów we krwi.za pomocą
sysmex XN
|
Do 1 dnia
|
Zmiana krążącej prolaktyny
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Prolaktyna w osoczu stęż.
za pomocą sysmexa XN
|
Do 1 dnia
|
Zmiana poziomu kortyzolu
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Stężenie kortyzolu w osoczu
za pomocą sysmexa XN
|
Do 1 dnia
|
Zmiana w metamielocytach
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Liczba metamielocytów we krwi za pomocą sysmex XN
|
Do 1 dnia
|
Zmiana ACTH
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
ACTH w osoczu stęż.
za pomocą sysmexa XN
|
Do 1 dnia
|
Zmiana krążącego mleczanu
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Mleczan we krwi za pomocą ABL
|
Do 1 dnia
|
Zmiana CRP
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Osocze CRP stęż.
za pomocą sysmexa XN
|
Do 1 dnia
|
Zmiana hsCRP
Ramy czasowe: Do 1 dnia
|
Osocze CRP stęż. za pomocą testu ELISA
|
Do 1 dnia
|
Nowe miokiny podczas ostrych ćwiczeń
Ramy czasowe: Bezpośrednio po ostrym wysiłku fizycznym
|
W ramach eksploracji badacze zbadają możliwe nowe cząsteczki sygnałowe uwalniane podczas ćwiczeń o znaczeniu immunologicznym, zarówno w krążeniu, jak iw tkankach (tj.
GDNF [czynnik neurotroficzny pochodzenia glejowego])
|
Bezpośrednio po ostrym wysiłku fizycznym
|
VO2maks
Ramy czasowe: Linia bazowa
|
VO2max za pomocą ergometru rowerowego i systemu Oxicon Online
|
Linia bazowa
|
Beztłuszczowa masa ciała
Ramy czasowe: Linia bazowa
|
Beztłuszczowa masa ciała przy użyciu absorpcjometrii rentgenowskiej o podwójnej energii (DXA)
|
Linia bazowa
|
Masa tłuszczowa
Ramy czasowe: Linia bazowa
|
Masa tłuszczu przy użyciu absorpcjometrii rentgenowskiej o podwójnej energii (DXA)
|
Linia bazowa
|
Gęstość mineralna kości
Ramy czasowe: Linia bazowa
|
Gęstość mineralna kości przy użyciu absorpcjometrii rentgenowskiej o podwójnej energii (DXA)
|
Linia bazowa
|
Ocena apetytu
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Głód, sytość, sytość i przewidywane spożycie żywności zostaną ocenione za pomocą wizualnej skali analogowej (VAS).
Linia o długości 20 cm jest rysowana od lewej do prawej strony na papierze A4, zaczynając od 0 cm z „w ogóle nie jestem głodny” kończąc na 20 cm z „nigdy w życiu nie byłem bardziej głodny”.
Podmiot zaznacza gdzieś pomiędzy według jego subiektywnego odczucia, Długość jest podawana i wskazuje stopień głodu, np. im dłuższa kolejka, tym większy głód.
Ogólnie rzecz biorąc, im dłużej w prawo osoba zaznacza linię, tym silniejsza jest subiektywna ocena w ramach zadanego pytania
|
4 godziny po interwencji
|
Spożycie kalorii ad libitum
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Spożycie kaloryczne zostanie określone poprzez podanie posiłku składającego się z gorącego garnka jednorodnego makaronu bolońskiego (1440 g, 1912 kcal, 55 E procent węglowodanów, 30 E procent tłuszczu, 15 E procent białka; jednorodny skład) podanego ze szklanką wody o pojemności 150 ml 1 h po wysiłku.
Uczestnicy będą siedzieć cicho sami i proszeni są o jedzenie do momentu pełnego/nasycenia i wypicie całej wody.
Czas trwania posiłku to 30 minut
|
4 godziny po interwencji
|
Opróżnianie żołądka
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Opróżnianie żołądka zostanie ocenione po wypiciu przez uczestników 100 ml, w którym rozpuszczono 1,5 g paracetamolu.
Stężenie paracetamolu zostanie określone metodą Sandwich Electro-Chemiluminescence-Immunoassay (ECLIA)
|
4 godziny po interwencji
|
Zmiana w GLP1
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Osocze GLP1 stęż.
za pomocą testu ELISA
|
4 godziny po interwencji
|
Zmiana w PYY
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Osocze PYY stęż.
za pomocą testu ELISA
|
4 godziny po interwencji
|
Zmiana w CCK
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Osocze CCK stęż.
za pomocą testu ELISA
|
4 godziny po interwencji
|
Zmiana poziomu glukozy
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Stężenie glukozy w osoczu
przy użyciu sysmex XN
|
4 godziny po interwencji
|
Zmiana insuliny
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Insulina w osoczu stęż.
przy użyciu sysmex XN
|
4 godziny po interwencji
|
Zmiana w peptydzie C
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Stężenie peptydu C w osoczu
przy użyciu sysmex XN
|
4 godziny po interwencji
|
Zmiana wolnych kwasów tłuszczowych
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Wolne kwasy tłuszczowe w osoczu stęż.
za pomocą sysmexa XN
|
4 godziny po interwencji
|
Zmiana acetylooctanu
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Acetooctan osocza stęż.
za pomocą spektrometrii mas
|
4 godziny po interwencji
|
Zmiana betahydroksymaślanu
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Betahydroksymaślan w osoczu stęż.
za pomocą spektrometrii mas
|
4 godziny po interwencji
|
Zmiana w CRH
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
CRH w osoczu stęż. za pomocą testu ELISA
|
4 godziny po interwencji
|
Zmiana w AVP
Ramy czasowe: 4 godziny po interwencji
|
Osocze AVP stęż. za pomocą testu ELISA
|
4 godziny po interwencji
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Śledczy
- Główny śledczy: Andreas K Ziegler, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Główny śledczy: Jesper F Christensen, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Główny śledczy: Claus Brandt, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Kenfield SA, Stampfer MJ, Giovannucci E, Chan JM. Physical activity and survival after prostate cancer diagnosis in the health professionals follow-up study. J Clin Oncol. 2011 Feb 20;29(6):726-32. doi: 10.1200/JCO.2010.31.5226. Epub 2011 Jan 4.
- Amar, D., Lindholm, M. E., Norrbom, J., Wheeler, M. T., Rivas, M., & Ashley, E. A. (2020). Differential Response Trajectories to Acute Exercise in Blood and Muscle. SSRN Electronic Journal, 1-43. https://doi.org/10.2139/ssrn.3508810
- Bergstrom J. Percutaneous needle biopsy of skeletal muscle in physiological and clinical research. Scand J Clin Lab Invest. 1975 Nov;35(7):609-16. No abstract available.
- Bigley AB, Rezvani K, Chew C, Sekine T, Pistillo M, Crucian B, Bollard CM, Simpson RJ. Acute exercise preferentially redeploys NK-cells with a highly-differentiated phenotype and augments cytotoxicity against lymphoma and multiple myeloma target cells. Brain Behav Immun. 2014 Jul;39:160-71. doi: 10.1016/j.bbi.2013.10.030. Epub 2013 Nov 5.
- Chan CJ, Smyth MJ, Martinet L. Molecular mechanisms of natural killer cell activation in response to cellular stress. Cell Death Differ. 2014 Jan;21(1):5-14. doi: 10.1038/cdd.2013.26. Epub 2013 Apr 12.
- Christensen JF, Simonsen C, Hojman P. Exercise Training in Cancer Control and Treatment. Compr Physiol. 2018 Dec 13;9(1):165-205. doi: 10.1002/cphy.c180016.
- Dogra P, Rancan C, Ma W, Toth M, Senda T, Carpenter DJ, Kubota M, Matsumoto R, Thapa P, Szabo PA, Li Poon MM, Li J, Arakawa-Hoyt J, Shen Y, Fong L, Lanier LL, Farber DL. Tissue Determinants of Human NK Cell Development, Function, and Residence. Cell. 2020 Feb 20;180(4):749-763.e13. doi: 10.1016/j.cell.2020.01.022. Epub 2020 Feb 13.
- Ghanemi A, St-Amand J. Interleukin-6 as a "metabolic hormone". Cytokine. 2018 Dec;112:132-136. doi: 10.1016/j.cyto.2018.06.034. Epub 2018 Jul 6.
- Gjevestad GO, Holven KB, Ulven SM. Effects of Exercise on Gene Expression of Inflammatory Markers in Human Peripheral Blood Cells: A Systematic Review. Curr Cardiovasc Risk Rep. 2015;9(7):34. doi: 10.1007/s12170-015-0463-4.
- Gupta P, Bigley AB, Markofski M, Laughlin M, LaVoy EC. Autologous serum collected 1 h post-exercise enhances natural killer cell cytotoxicity. Brain Behav Immun. 2018 Jul;71:81-92. doi: 10.1016/j.bbi.2018.04.007. Epub 2018 Apr 12.
- Hanna J, Bechtel P, Zhai Y, Youssef F, McLachlan K, Mandelboim O. Novel insights on human NK cells' immunological modalities revealed by gene expression profiling. J Immunol. 2004 Dec 1;173(11):6547-63. doi: 10.4049/jimmunol.173.11.6547. Erratum In: J Immunol. 2015 Mar 1;194(5):2447-8.
- Larrabee RC. Leucocytosis after violent Exercise. J Med Res. 1902 Jan;7(1):76-82. No abstract available.
- Larsen SK, Gao Y, Basse PH. NK cells in the tumor microenvironment. Crit Rev Oncog. 2014;19(1-2):91-105. doi: 10.1615/critrevoncog.2014011142.
- Lukaski HC. Soft tissue composition and bone mineral status: evaluation by dual-energy X-ray absorptiometry. J Nutr. 1993 Feb;123(2 Suppl):438-43.
- Macpherson RE, Huber JS, Frendo-Cumbo S, Simpson JA, Wright DC. Adipose Tissue Insulin Action and IL-6 Signaling after Exercise in Obese Mice. Med Sci Sports Exerc. 2015 Oct;47(10):2034-42. doi: 10.1249/MSS.0000000000000660.
- Meyerhardt JA, Giovannucci EL, Ogino S, Kirkner GJ, Chan AT, Willett W, Fuchs CS. Physical activity and male colorectal cancer survival. Arch Intern Med. 2009 Dec 14;169(22):2102-8. doi: 10.1001/archinternmed.2009.412.
- Nieman DC, Miller AR, Henson DA, Warren BJ, Gusewitch G, Johnson RL, Davis JM, Butterworth DE, Nehlsen-Cannarella SL. Effects of high- vs moderate-intensity exercise on natural killer cell activity. Med Sci Sports Exerc. 1993 Oct;25(10):1126-34.
- Ostrowski K, Rohde T, Asp S, Schjerling P, Pedersen BK. Pro- and anti-inflammatory cytokine balance in strenuous exercise in humans. J Physiol. 1999 Feb 15;515 ( Pt 1)(Pt 1):287-91. doi: 10.1111/j.1469-7793.1999.287ad.x.
- Pedersen BK, Hoffman-Goetz L. Exercise and the immune system: regulation, integration, and adaptation. Physiol Rev. 2000 Jul;80(3):1055-81. doi: 10.1152/physrev.2000.80.3.1055.
- Pedersen L, Idorn M, Olofsson GH, Lauenborg B, Nookaew I, Hansen RH, Johannesen HH, Becker JC, Pedersen KS, Dethlefsen C, Nielsen J, Gehl J, Pedersen BK, Thor Straten P, Hojman P. Voluntary Running Suppresses Tumor Growth through Epinephrine- and IL-6-Dependent NK Cell Mobilization and Redistribution. Cell Metab. 2016 Mar 8;23(3):554-62. doi: 10.1016/j.cmet.2016.01.011. Epub 2016 Feb 16.
- Perez SA, Mahaira LG, Demirtzoglou FJ, Sotiropoulou PA, Ioannidis P, Iliopoulou EG, Gritzapis AD, Sotiriadou NN, Baxevanis CN, Papamichail M. A potential role for hydrocortisone in the positive regulation of IL-15-activated NK-cell proliferation and survival. Blood. 2005 Jul 1;106(1):158-66. doi: 10.1182/blood-2004-08-3232. Epub 2005 Mar 8.
- Radom-Aizik S, Zaldivar F, Haddad F, Cooper DM. Impact of brief exercise on peripheral blood NK cell gene and microRNA expression in young adults. J Appl Physiol (1985). 2013 Mar 1;114(5):628-36. doi: 10.1152/japplphysiol.01341.2012. Epub 2013 Jan 3.
- Rooney BV, Bigley AB, LaVoy EC, Laughlin M, Pedlar C, Simpson RJ. Lymphocytes and monocytes egress peripheral blood within minutes after cessation of steady state exercise: A detailed temporal analysis of leukocyte extravasation. Physiol Behav. 2018 Oct 1;194:260-267. doi: 10.1016/j.physbeh.2018.06.008. Epub 2018 Jun 7.
- Schlahsa L, Jaimes Y, Blasczyk R, Figueiredo C. Granulocyte-colony-stimulatory factor: a strong inhibitor of natural killer cell function. Transfusion. 2011 Feb;51(2):293-305. doi: 10.1111/j.1537-2995.2010.02820.x. Epub 2010 Aug 16.
- Smolen JS, Beaulieu A, Rubbert-Roth A, Ramos-Remus C, Rovensky J, Alecock E, Woodworth T, Alten R; OPTION Investigators. Effect of interleukin-6 receptor inhibition with tocilizumab in patients with rheumatoid arthritis (OPTION study): a double-blind, placebo-controlled, randomised trial. Lancet. 2008 Mar 22;371(9617):987-97. doi: 10.1016/S0140-6736(08)60453-5.
- Stewart, B. and Wild, C.P. (eds.), International Agency for Research on Cancer, W. (2014). World Cancer Report 2014. World Cancer Report 2014 [Online].
- Vivier E, Tomasello E, Baratin M, Walzer T, Ugolini S. Functions of natural killer cells. Nat Immunol. 2008 May;9(5):503-10. doi: 10.1038/ni1582.
- Wang Y, Jacobs EJ, Gapstur SM, Maliniak ML, Gansler T, McCullough ML, Stevens VL, Patel AV. Recreational Physical Activity in Relation to Prostate Cancer-specific Mortality Among Men with Nonmetastatic Prostate Cancer. Eur Urol. 2017 Dec;72(6):931-939. doi: 10.1016/j.eururo.2017.06.037. Epub 2017 Jul 12.
- Weber MM, Michl P, Auernhammer CJ, Engelhardt D. Interleukin-3 and interleukin-6 stimulate cortisol secretion from adult human adrenocortical cells. Endocrinology. 1997 May;138(5):2207-10. doi: 10.1210/endo.138.5.5239.
- Wendt K, Wilk E, Buyny S, Buer J, Schmidt RE, Jacobs R. Gene and protein characteristics reflect functional diversity of CD56dim and CD56bright NK cells. J Leukoc Biol. 2006 Dec;80(6):1529-41. doi: 10.1189/jlb.0306191. Epub 2006 Sep 11.
- Wu J, Lanier LL. Natural killer cells and cancer. Adv Cancer Res. 2003;90:127-56. doi: 10.1016/s0065-230x(03)90004-2.
- Yamada M, Suzuki K, Kudo S, Totsuka M, Nakaji S, Sugawara K. Raised plasma G-CSF and IL-6 after exercise may play a role in neutrophil mobilization into the circulation. J Appl Physiol (1985). 2002 May;92(5):1789-94. doi: 10.1152/japplphysiol.00629.2001.
- Zimmer P, Schenk A, Kieven M, Holthaus M, Lehmann J, Lovenich L, Bloch W. Exercise induced alterations in NK-cell cytotoxicity - methodological issues and future perspectives. Exerc Immunol Rev. 2017;23:66-81.
- Dorling J, Broom DR, Burns SF, Clayton DJ, Deighton K, James LJ, King JA, Miyashita M, Thackray AE, Batterham RL, Stensel DJ. Acute and Chronic Effects of Exercise on Appetite, Energy Intake, and Appetite-Related Hormones: The Modulating Effect of Adiposity, Sex, and Habitual Physical Activity. Nutrients. 2018 Aug 22;10(9):1140. doi: 10.3390/nu10091140.
- Steensberg A, van Hall G, Osada T, Sacchetti M, Saltin B, Klarlund Pedersen B. Production of interleukin-6 in contracting human skeletal muscles can account for the exercise-induced increase in plasma interleukin-6. J Physiol. 2000 Nov 15;529 Pt 1(Pt 1):237-42. doi: 10.1111/j.1469-7793.2000.00237.x.
- Dantzer R. Cytokine-induced sickness behavior: mechanisms and implications. Ann N Y Acad Sci. 2001 Mar;933:222-34. doi: 10.1111/j.1749-6632.2001.tb05827.x.
- van Gameren MM, Willemse PH, Mulder NH, Limburg PC, Groen HJ, Vellenga E, de Vries EG. Effects of recombinant human interleukin-6 in cancer patients: a phase I-II study. Blood. 1994 Sep 1;84(5):1434-41.
- Timper K, Denson JL, Steculorum SM, Heilinger C, Engstrom-Ruud L, Wunderlich CM, Rose-John S, Wunderlich FT, Bruning JC. IL-6 Improves Energy and Glucose Homeostasis in Obesity via Enhanced Central IL-6 trans-Signaling. Cell Rep. 2017 Apr 11;19(2):267-280. doi: 10.1016/j.celrep.2017.03.043.
- Lang Lehrskov L, Lyngbaek MP, Soederlund L, Legaard GE, Ehses JA, Heywood SE, Wewer Albrechtsen NJ, Holst JJ, Karstoft K, Pedersen BK, Ellingsgaard H. Interleukin-6 Delays Gastric Emptying in Humans with Direct Effects on Glycemic Control. Cell Metab. 2018 Jun 5;27(6):1201-1211.e3. doi: 10.1016/j.cmet.2018.04.008. Epub 2018 May 3.
- Ellingsgaard H, Seelig E, Timper K, Coslovsky M, Soederlund L, Lyngbaek MP, Wewer Albrechtsen NJ, Schmidt-Trucksass A, Hanssen H, Frey WO, Karstoft K, Pedersen BK, Boni-Schnetzler M, Donath MY. GLP-1 secretion is regulated by IL-6 signalling: a randomised, placebo-controlled study. Diabetologia. 2020 Feb;63(2):362-373. doi: 10.1007/s00125-019-05045-y. Epub 2019 Dec 3.
- Begg DP, Woods SC. The endocrinology of food intake. Nat Rev Endocrinol. 2013 Oct;9(10):584-97. doi: 10.1038/nrendo.2013.136. Epub 2013 Jul 23.
- Medhus AW, Sandstad O, Bredesen J, Husebye E. Delay of gastric emptying by duodenal intubation: sensitive measurement of gastric emptying by the paracetamol absorption test. Aliment Pharmacol Ther. 1999 May;13(5):609-20. doi: 10.1046/j.1365-2036.1999.00519.x.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (RZECZYWISTY)
Zakończenie podstawowe (RZECZYWISTY)
Ukończenie studiów (RZECZYWISTY)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (RZECZYWISTY)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (RZECZYWISTY)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Inne numery identyfikacyjne badania
- jr. nr. H-20028611
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .