- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT04616235
Akute Belastung und NK-Zellregulation in Gewebe und Kreislauf nach IL-6R-Blockade
Akute Belastung und NK-Zellregulation in Gewebe und Kreislauf nach IL-6R-Blockade – eine randomisierte kontrollierte Studie
Studienübersicht
Status
Detaillierte Beschreibung
Ziele:
Hauptziel:
- Untersuchung des Zusammenhangs zwischen akutem Training, IL-6-Blockade und NK-Regulierung im Kreislauf.
- Unter Verwendung von Einzelzell-RNA-Sequenzierung sollte untersucht werden, ob belastungsaktivierte NK-Zellen einen einzigartigen Phänotyp aufweisen.
Sekundäre Ziele:
- Es sollte die Wirkung akuter Aerobic-Übungen auf die Anzahl und Aktivität von NK-Zellen im Kreislauf, Muskel- und Fettgewebe bei gesunden jungen Männern untersucht werden, um Übung indirekt als Mittel gegen Krebs zu untersuchen.
- Um die Kinetik der NK-Zell-Antwort zu beurteilen und, wenn möglich, chronologisch das Auftreten und den Verbleib der aktivierten NK-Zellen zu untersuchen.
Erkundungsziele
- Etablierung eines reproduzierbaren Protokolls zur Verfolgung verschiedener Immunzellen und ihrer Beteiligung an der akuten körperlichen Reaktion beim Menschen
- Untersuchung neuartiger Signalmoleküle, die während des Trainings aus dem Muskel freigesetzt werden, mit immunologischer Bedeutung.
- Es sollte die mögliche Rolle von belastungsinduziertem IL-6 auf subjektive Hunger- und Sättigungsgefühle nach körperlicher Betätigung und Nahrungsaufnahme untersucht werden. • Untersuchung der Wirkung der IL-6-Rezeptorblockade auf das Belastungsproteom und -metabolom unter Verwendung von Massenspektrometrie
Methoden:
30 gesunde, in der Freizeit aktive junge Männer werden in diese akute Belastungsstudie aufgenommen, in der die Kinetik und Regulation von NK-Zellen als Reaktion auf akute aerobe Belastung und IL-6R-Blockade oder Placebo untersucht werden.
Die Studie besteht aus 2 Besuchen. Bei der Aufnahme (Besuch 1) werden alle Probanden einer Bewertung unterzogen, die Folgendes umfasst: medizinisches Basisscreening (Auskultation, Blutdruck, EKG), Bestimmung der Körperzusammensetzung (DXA), kardiovaskuläre Fitness (VO2max) und Standard-Nüchtern-Blutbiochemie, die sofort analysiert werden. Visite 2 besteht aus einer Muskel- und Fettbiopsie aus dem dominanten Bein bzw. dem abdominalen subkutanen Fettdepot (beide unter Ruhebedingungen), die dann als Referenzgewebe für die weitere Gewebeanalyse dienen. Dann wird vor Beginn der IL-6R-Infusion ein 18 G antecubitaler peripherer venöser Zugang gesichert. 2 Stunden nach dem Infusionsverfahren werden die Probanden einem akuten Belastungsprotokoll unterzogen. Die Probanden werden dann durch einen hochintensiven akuten Aerobic-Übungskampf unter Verwendung eines Fahrradergometers herausgefordert. Blutproben werden vor der Infusion und dem Training, während des Trainings sowie unmittelbar, ½, 1, 1½ und 2 Stunden nach dem Training und bis 4 Stunden nach dem Training in der Unterstudie zur Appetitregulierung entnommen. Blutproben werden sofort auf Leukozytenzahl und -differenzierung sowie Plasmabiochemie analysiert. Darüber hinaus werden Blutproben zur Isolierung von NK-Zellen mit anschließender Einzelzell-RNA-Sequenzierung, Immunzellverteilung und Abtötungskapazität gegenüber Krebszellen verwendet. Darüber hinaus werden Plasmaproben entnommen und für die spätere Bestimmung von Cortisol, Prolaktin und zirkulierenden Zytokinen, einschließlich, aber nicht beschränkt auf IL-6 und G-CSF, eingefroren. Schließlich werden in der Teilstudie Appetit Insulin, GLP-1 und freie Fettsäuren gemessen.
Gewebeproben werden 2 Stunden nach der Übung zur Optimierung der Genexpressionsanalyse entnommen. Sowohl Muskel- als auch Fettgewebeproben werden auf entzündliche und entzündungshemmende Marker, den NK-Zellgehalt und die Phänotypisierung dieser NK-Zellen unter Verwendung von Markern analysiert, die aus der Einzelzellsequenzierung gewonnen wurden, die an den im Blut befindlichen NK-Zellen durchgeführt wurde. Darüber hinaus wird die Infiltration von Immunzellen histologisch beurteilt. Alle Gewebeproben werden mit einer Bergström-Nadel unter sterilen Bedingungen während örtlicher Betäubung entnommen, um probenbedingte Beschwerden oder Infektionen zu minimieren.
Nach der Gewebeprobe wird eine Mahlzeit nach Belieben serviert, die Probanden können so viel essen, wie sie können, werden jedoch angewiesen, nicht zu viel zu konsumieren, da Essensreste mit nach Hause genommen werden können. Paracetamol (1,5 g) wird zur Magenentleerung gegeben.
Alle Teilnehmer werden die 2 Studienbesuche ungefähr zur gleichen Tageszeit (9.00 Uhr) absolvieren. Nach Abschluss der Studie wird das verbleibende Material in die CFAS-Biobank überführt.
Probanden: Die eingeschlossenen Probanden sind 30 in der Freizeit aktive, mäßig trainierte, gesunde junge Männer im Alter von 18 bis 40 Jahren. Ausschlusskriterien sind: kardiovaskuläre, rheumatologische und metabolische Erkrankungen, Leistungssport oder hoher aerober Trainingszustand. Chronischer Gebrauch von nichtsteroidalen Antirheumatika (NSAID) oder anderen Immunsuppressiva.
Intervention: Die Probanden werden randomisiert zu akuter körperlicher Betätigung mit (n = 15) oder ohne (n = 15) vorheriger IL-6R-Blockade. Die Übungsintervention besteht aus einem hochanstrengenden ≈45-Minuten-Intervall, basierend auf aeroben Übungen, die auf einem stationären Fahrradergometer durchgeführt werden. Nach einem anfänglichen 5-minütigen Aufwärmen bei 50-60 % der HFmax durchlaufen die Probanden sieben verbal angeregte 3-Minuten-Intervalle bei über 90 % der HFmax, unterbrochen von 3 Minuten Treten mit geringer Intensität. Blutproben werden vor, während sowie unmittelbar, ½, 1, 1½ und 2 Stunden nach dem Training zusammen mit Gewebeproben zum Zeitpunkt 2 Stunden entnommen.
Um die Appetitregulation zu beurteilen, werden 2 bis 4 Stunden nach dem Training weitere Blutproben entnommen.
Statistische Überlegungen: Basierend auf Daten aus unserer Pilotstudie erwarten wir eine ≈ 45 % geringere maximale NK-Zell-Mobilisierung in der IL6R-Inhibitionsgruppe im Vergleich zu CON und einen 29 %igen Unterschied im NK-Zell-Nadir mit den niedrigsten Werten, die in der IL6R-Inhibitionsgruppe erzielt wurden. Unter der Annahme eines 5 %-Signifikanzniveaus in zweiseitigen Tests müssen wir 9 Patienten in jede Gruppe einschließen, um eine 90 %-Power zum Nachweis eines relativen Unterschieds von 45 % in der Interventionsgruppe zu erreichen. Um mögliche Ausfälle/Ausschlüsse aufgrund des etwas invasiven Aufbaus zu berücksichtigen, werden wir insgesamt 30 Patienten (15 pro Gruppe) einschließen.
Rekrutierung: Die Probanden werden über forsøgsperson.dk oder ähnliche Websites zusammen mit Werbung auf relevanten Websites rekrutiert.
Die Probanden kontaktieren uns bei CFAS und haben die Wahl, ob sie Studieninformationen pr erhalten möchten. Telefon (wodurch die Option eines Zuschauers verweigert wird) oder ein persönliches Treffen bei CFAS. Alle diese Informationen werden vom Hauptermittler gegeben. Wenn der Proband daran interessiert ist, mehr über die Studie zu erfahren, werden relevante Dokumente per E-Mail gesendet. Wenn der Proband nach schriftlicher oder mündlicher Information an einer Teilnahme an der Studie interessiert ist, hat er 24 Stunden Zeit, um die Studienteilnahme zu prüfen. Wenn der Proband entweder telefonisch oder persönlich informiert wurde und die Studienteilnahme akzeptiert, wird er zu Besuch 1 eingeladen, wo eine schriftliche und informierte Zustimmung eingeholt wird (oder vom Teilnehmer unterschrieben und von zu Hause mitgebracht wird).
Risiken und Nebenwirkungen: Patienten können im Zusammenhang mit Blut- und Gewebeproben leichte Beschwerden verspüren. Das entnommene Blutvolumen ist vernachlässigbar und mit keinem gesundheitlichen Risiko verbunden. Alle Gewebeentnahmen werden unter sterilen Bedingungen in örtlicher Betäubung durchgeführt und sind daher mit geringen Schmerzen oder Beschwerden und einem sehr geringen Infektionsrisiko verbunden. Während des Belastungstests kann es bei den Teilnehmern zu Kurzatmigkeit kommen.
Die IL-6R-Hemmung wird im Allgemeinen gut vertragen und hat nur wenige Nebenwirkungen. Die Dosierung von Paracetamol ist gering und mit keinem Risiko verbunden.
Die Kontaktinformationen des beteiligten Arztes werden den Teilnehmern beim Studieneinschluss mitgeteilt, damit alle unerwünschten Ereignisse gemeldet und behoben werden können.
Verbreitung der Studienergebnisse: Sowohl positive als auch negative und nicht schlüssige Ergebnisse werden in einschlägigen internationalen Fachzeitschriften veröffentlicht.
Ethische Erwägung: Es wird erwartet, dass das Projekt begrenzte Risiken, Nebenwirkungen und Beschwerden verursacht. Alle Verfahren werden von erfahrenen Ärzten und Physiologen mit entsprechender Sicherheit durchgeführt. Tocilizumab wird im Allgemeinen gut vertragen und die Dosis von Paracetamol ist niedrig. Eingeschlossene Probanden können ihre Einwilligung zur Studienteilnahme jederzeit und ohne Angabe von Gründen widerrufen. Wir glauben, dass das Projekt wichtig ist und wichtige neue Informationen über die IL-6-modifizierbare NK-Zell-Reaktion auf akute Belastung sowohl im Kreislauf als auch im Fett- und Muskelgewebe liefern wird (da derzeit nur sehr begrenztes Wissen über letzteres besteht).
Die Studie wird von Lægemiddelstyrelsen als Toolbox-Studie angesehen und ist daher keine pharmazeutische Studie
Studientyp
Einschreibung (Tatsächlich)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienorte
-
-
-
Copenhagen Ø, Dänemark, 2100
- Center For Physical Activity (CFAS)
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Freizeit aktiv
- mäßig trainiert
- gesunde junge Männer im Alter von 18-40 Jahren
- BMI von 18-30 kg·m2
Ausschlusskriterien:
- Herzkreislauferkrankung
- Rheumatologische Erkrankung
- Stoffwechselkrankheit,
- Leistungssport oder hoher aerober Trainingsstatus (VO2max>60ml O2/min/kg),
- Häufige/chronische Einnahme von Medikamenten, die die körperliche Leistungsfähigkeit oder Entzündungen beeinträchtigen (NSAIDS, DMARDS)
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: GRUNDWISSENSCHAFT
- Zuteilung: ZUFÄLLIG
- Interventionsmodell: PARALLEL
- Maskierung: VERDREIFACHEN
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
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PLACEBO_COMPARATOR: CON
Diese Gruppe führt intensive aerobe Übungen ohne begleitende IL-6R-Blockade durch
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Die Kontrollgruppe wird 1 Stunde vor dem Übungskampf einem intensiven Aerobic-Training mit Kochsalzinfusion unterzogen
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ACTIVE_COMPARATOR: BLOCK
Diese Gruppe führt intensive aerobe Übungen mit gleichzeitiger IL-6R-Blockade durch
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Die Interventionsgruppe wird sich vor dem Übungskampf einer intensiven aeroben Übung mit vorheriger IL-6R-Infusion für 1 Stunde unterziehen.
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Kinetik und Regulation von NK (Natural Killer)-Zellen während und nach akutem Training
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Veränderung der Anzahl von NK-Zellen und NK-Zelluntergruppen im Kreislauf vor und nach akuter aerober Belastung mit oder ohne IL-6R-Blockade.
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Bis zu 1 Tag
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NK-Zell-Phänotyp als Reaktion auf akutes Training mit oder ohne IL-6R-Blockade
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Änderung des NK-Zell-Phänotyps durch Einzelzell-RNA-Sequenzierung. Hier werden gruppeninterne Änderungen der Baseline- vs. Post-Workout-Zeitpunkte sowie zwischen Gruppenunterschieden zwischen IL-6-Blockade und Placebo untersucht. Der Fokus liegt auf Markern für Zytotoxizität, Zelladhäsion und adrenerge Signaltransduktion. |
Bis zu 1 Tag
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Veränderung der NK-Zellzahl im Fettgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
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Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD56, CD57 und andere NK-Zell-Marker identifiziert und zählt der Hauptforscher die Anzahl der NK-Zellen im Fettgewebe
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3 Stunden nach Eingriff
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Veränderung des NK-Zell-Phänotyps im Fettgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
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Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD56, CD57 und andere NK-Zell-Marker wird der Hauptforscher den Phänotyp von NK-Zellen im Fettgewebe identifizieren
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3 Stunden nach Eingriff
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Veränderung der NK-Zellzahl im Muskelgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
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Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD56, CD57 und andere NK-Zell-Marker identifiziert und zählt der Hauptforscher die Anzahl der NK-Zellen im Muskelgewebe
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3 Stunden nach Eingriff
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Veränderung des NK-Zell-Phänotyps im Muskelgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
|
Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD56, CD57 und andere NK-Zell-Marker wird der Hauptforscher den Phänotyp von NK-Zellen im Muskelgewebe identifizieren
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3 Stunden nach Eingriff
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Veränderung der Makrophagenzahl im Muskelgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
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Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD68, CD163, CD206, TNF-alpha und andere Makrophagenmarker identifiziert und zählt der Hauptforscher die Anzahl der Makrophagen im Muskelgewebe
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3 Stunden nach Eingriff
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Veränderung des Makrophagen-Phänotyps im Muskelgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
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Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD68, CD163, CD206, TNF-alpha und andere Makrophagenmarker wird der Hauptforscher Phänotyp (M1/M2) Makrophagen im Muskelgewebe erstellen
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3 Stunden nach Eingriff
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Veränderung der Makrophagenzahl im Fettgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
|
Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD68, CD163, CD206, TNF-alpha und andere Makrophagenmarker identifiziert und zählt der Hauptforscher die Anzahl der Makrophagen im Fettgewebe
|
3 Stunden nach Eingriff
|
Veränderung des Makrophagen-Phänotyps im Fettgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
|
Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD68, CD163, CD206, TNF-alpha und andere Makrophagenmarker wird der Hauptforscher Phänotyp (M1/M2) Makrophagen im Fettgewebe erstellen
|
3 Stunden nach Eingriff
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Veränderung der T-Zellzahl im Fettgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
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Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD3, CD8 und andere T-Zell-Marker wird der Hauptforscher die Anzahl der T-Zellen im Fettgewebe zählen
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3 Stunden nach Eingriff
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Veränderung des T-Zell-Phänotyps im Fettgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
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Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD3, CD8 und andere T-Zell-Marker wird der Hauptforscher die T-Zellen im Fettgewebe (CD3+/CD8+) phänotypisieren
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3 Stunden nach Eingriff
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Veränderung der T-Zellzahl im Muskelgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
|
Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD3, CD8 und andere T-Zell-Marker wird der Hauptforscher die Anzahl der T-Zellen im Muskelgewebe zählen
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3 Stunden nach Eingriff
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Veränderung des T-Zell-Phänotyps im Muskelgewebe
Zeitfenster: 3 Stunden nach Eingriff
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Unter Verwendung einer Kombination aus Histologie, Western Blot und Genexpressionsanalyse für CD3, CD8 und andere T-Zell-Marker wird der leitende Forscher die T-Zellen im Muskelgewebe phänotypisieren (CD3+/CD8+).
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3 Stunden nach Eingriff
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Veränderung der Monozytenzahl im Kreislauf
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Mittels Durchflusszytometrie identifizieren und zählen wir Monozyten im Kreislauf
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung der T-Zellzahl im Kreislauf
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Mittels Durchflusszytometrie werden die Forscher T-Zellen im Kreislauf zählen
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung der B-Zellzahl im Umlauf
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Mittels Durchflusszytometrie zählen die Forscher die B-Zellen im Kreislauf
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung der IL-6-Rezeptorexpression auf NK-Zellen im Kreislauf
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Die Veränderung der Oberflächenexpression des IL-6-Rezeptors auf zirkulierenden NK-Zellen unter Verwendung von Durchflusszytometrie
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung des zirkulierenden IL-6
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Plasma-IL-6-Konz.
unter Verwendung des ELISA-Assays
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung des zirkulierenden IL-2
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Plasma-IL-2-Konz.
unter Verwendung des ELISA-Assays
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung des zirkulierenden IL-1
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Plasma-IL-1-Konz.
unter Verwendung des ELISA-Assays
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung des zirkulierenden IL-10
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Plasma-IL-10-Konz.
unter Verwendung des ELISA-Assays
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung des zirkulierenden TNF-alpha
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Plasma TNF-alpha Konz. mit
ELISA-Assay
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung des zirkulierenden G-CSF
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Plasma-TNF-alpha-Konz.
unter Verwendung des ELISA-Assays
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung des zirkulierenden Epinephrins
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Blut Epinephrin Konz.
unter Verwendung des ELISA-Assays
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung des zirkulierenden Norepinephrins
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Blut-Noradrenalin-Konz.
unter Verwendung des ELISA-Assays
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung der zirkulierenden Gesamtleukozyten
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Blutleukozytenzählung mit sysmex XN
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung der zirkulierenden Neutrophilen
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Zählung der Neutrophilen im Blut
sysmexXN
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung der zirkulierenden Retikulozyten
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Blutretikulozyten zählen.mit
sysmexXN
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung der zirkulierenden Eosinophilen
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Eosinophilenzahl im Blut
sysmexXN
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung der zirkulierenden Basofile-Leukozyten
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Blut Basofile Leukozytenzählung.Verwendung
sysmexXN
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung der zirkulierenden Gesamtlymphozyten
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Blut-Lymphozyten-Zählung.mit
sysmexXN
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung des zirkulierenden Prolaktins
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Plasma-Prolaktin-Konz.
mit sysmex XN
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Bis zu 1 Tag
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Cortisolveränderung
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Plasma-Cortisol-Konz.
mit sysmex XN
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung der Metamyelozyten
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Metamyelozytenzählung im Blut mit sysmex XN
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Bis zu 1 Tag
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Änderung des ACTH
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Plasma-ACTH-Konz.
mit sysmex XN
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung des zirkulierenden Laktats
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Blutlaktat mit ABL
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Bis zu 1 Tag
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Veränderung des CRP
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Plasma-CRP-Konz.
mit sysmex XN
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Bis zu 1 Tag
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Änderung des hsCRP
Zeitfenster: Bis zu 1 Tag
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Plasma-CRP-Konz. mit ELISA
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Bis zu 1 Tag
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Neuartige Myokine während akuter Belastung
Zeitfenster: Unmittelbar nach akuter körperlicher Belastung
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Als exploratives Ergebnis werden die Forscher mögliche neue Signalmoleküle untersuchen, die während des Trainings mit immunologischer Bedeutung freigesetzt werden, entweder im Kreislauf oder im Gewebe (d.h.
GDNF [von Gliazellen abgeleiteter neurotropher Faktor])
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Unmittelbar nach akuter körperlicher Belastung
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VO2max
Zeitfenster: Grundlinie
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VO2max mit Fahrradergometer und Oxicon Online-System
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Grundlinie
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Magere Körpermasse
Zeitfenster: Grundlinie
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Magere Körpermasse mittels Dual-Energy-Röntgen-Absorptiometrie (DXA)
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Grundlinie
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Fette Masse
Zeitfenster: Grundlinie
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Fettmasse mittels Dual-Energy-Röntgenabsorptiometrie (DXA)
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Grundlinie
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Knochenmineraldichte
Zeitfenster: Grundlinie
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Knochenmineraldichte mittels Dual-Energy-Röntgenabsorptiometrie (DXA)
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Grundlinie
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Appetitbeurteilung
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Hunger, Sättigung, Völlegefühl und voraussichtlicher Nahrungsverzehr werden anhand einer visuellen Analogskala (VAS) bewertet.
Auf A4-Blatt wird von links nach rechts eine Linie von 20 cm gezogen, beginnend bei 0 cm mit „gar nicht hungrig“ und endend bei 20 cm mit „noch nie so hungrig in meinem Leben“.
Der Proband markiert nach seinem subjektiven Empfinden irgendwo dazwischen, die Länge wird angegeben und gibt den Grad des Hungers an, z. Je länger die Schlange, desto größer der Hunger.
Generell gilt, je länger die Person die Linie richtig markiert, desto stärker ist das subjektive Gefühl innerhalb der gestellten Frage
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Kalorienaufnahme ad libitum
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Die Kalorienaufnahme wird bestimmt, indem eine Mahlzeit bereitgestellt wird, die aus einem heißen Topf homogener Bolognese-Nudeln (1.440 g, 1.912 kcal, 55 E-Prozent Kohlenhydrate, 30 E-Prozent Fett, 15 E-Prozent Protein; homogene Zusammensetzung) besteht, die mit einem Glas Wasser von 150 serviert wird ml 1 h nach dem Training.
Die Teilnehmer sitzen ruhig alleine und werden gebeten, zu essen, bis sie angenehm satt/gesättigt sind, und das gesamte Wasser zu trinken.
Die Dauer der Mahlzeit beträgt 30 Minuten
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Magenentleerung
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Die Magenentleerung wird beurteilt, indem die Teilnehmer 100 ml trinken, in denen 1,5 g Paracetamol gelöst sind.
Die Paracetamol-Konzentration wird durch Sandwich Electro-Chemiluminescence-Immunoassay (ECLIA) bestimmt.
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Änderung in GLP1
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Plasma-GLP1-Konz.
unter Verwendung des ELISA-Assays
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Änderung in PYY
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Plasma-PYY-Konz.
unter Verwendung des ELISA-Assays
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Änderung des CCK
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Plasma-CCK-Konz.
unter Verwendung des ELISA-Assays
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Veränderung der Glukose
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Plasmaglukosekonz.
mit sysmex XN verwenden
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Veränderung des Insulins
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Plasmainsulinkonz.
mit sysmex XN verwenden
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Veränderung des C-Peptids
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Plasma-C-Peptid-Konz.
mit sysmex XN verwenden
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Veränderung der freien Fettsäuren
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Plasmafreie Fettsäuren Konz.
mit sysmex XN
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Änderung in Acetoacetat
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Plasma Acetoacetat konz.
mittels Massenspektrometrie
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Veränderung des Betahydroxybutyrats
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Plasma-Betahydroxybutyrat-Konz.
mittels Massenspektrometrie
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Änderung des CRH
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Plasma-CRH-Konz. mit ELISA
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4 Stunden nach dem Eingriff
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AVP-Änderung
Zeitfenster: 4 Stunden nach dem Eingriff
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Plasma-AVP-Konz. mit ELISA
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4 Stunden nach dem Eingriff
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Ermittler
- Hauptermittler: Andreas K Ziegler, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Hauptermittler: Jesper F Christensen, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Hauptermittler: Claus Brandt, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Kenfield SA, Stampfer MJ, Giovannucci E, Chan JM. Physical activity and survival after prostate cancer diagnosis in the health professionals follow-up study. J Clin Oncol. 2011 Feb 20;29(6):726-32. doi: 10.1200/JCO.2010.31.5226. Epub 2011 Jan 4.
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- Bergstrom J. Percutaneous needle biopsy of skeletal muscle in physiological and clinical research. Scand J Clin Lab Invest. 1975 Nov;35(7):609-16. No abstract available.
- Bigley AB, Rezvani K, Chew C, Sekine T, Pistillo M, Crucian B, Bollard CM, Simpson RJ. Acute exercise preferentially redeploys NK-cells with a highly-differentiated phenotype and augments cytotoxicity against lymphoma and multiple myeloma target cells. Brain Behav Immun. 2014 Jul;39:160-71. doi: 10.1016/j.bbi.2013.10.030. Epub 2013 Nov 5.
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- Christensen JF, Simonsen C, Hojman P. Exercise Training in Cancer Control and Treatment. Compr Physiol. 2018 Dec 13;9(1):165-205. doi: 10.1002/cphy.c180016.
- Dogra P, Rancan C, Ma W, Toth M, Senda T, Carpenter DJ, Kubota M, Matsumoto R, Thapa P, Szabo PA, Li Poon MM, Li J, Arakawa-Hoyt J, Shen Y, Fong L, Lanier LL, Farber DL. Tissue Determinants of Human NK Cell Development, Function, and Residence. Cell. 2020 Feb 20;180(4):749-763.e13. doi: 10.1016/j.cell.2020.01.022. Epub 2020 Feb 13.
- Ghanemi A, St-Amand J. Interleukin-6 as a "metabolic hormone". Cytokine. 2018 Dec;112:132-136. doi: 10.1016/j.cyto.2018.06.034. Epub 2018 Jul 6.
- Gjevestad GO, Holven KB, Ulven SM. Effects of Exercise on Gene Expression of Inflammatory Markers in Human Peripheral Blood Cells: A Systematic Review. Curr Cardiovasc Risk Rep. 2015;9(7):34. doi: 10.1007/s12170-015-0463-4.
- Gupta P, Bigley AB, Markofski M, Laughlin M, LaVoy EC. Autologous serum collected 1 h post-exercise enhances natural killer cell cytotoxicity. Brain Behav Immun. 2018 Jul;71:81-92. doi: 10.1016/j.bbi.2018.04.007. Epub 2018 Apr 12.
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