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- Essai clinique NCT04616235
Exercice aigu et régulation des cellules NK dans les tissus et la circulation après le blocage de l'IL-6R
Exercice aigu et régulation des cellules NK dans les tissus et la circulation après le blocage de l'IL-6R - un essai contrôlé randomisé
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Description détaillée
Objectifs:
Objectif principal:
- Explorer l'association entre l'exercice aigu, le blocage de l'IL-6 et la régulation des NK en circulation.
- Explorer si les cellules NK activées par l'exercice ont un phénotype unique en utilisant le séquençage d'ARN unicellulaire.
Objectifs secondaires :
- Explorer l'effet de l'exercice aérobie aigu sur le nombre de cellules NK et l'activité dans la circulation, les muscles et le tissu adipeux, chez de jeunes hommes en bonne santé, afin d'explorer indirectement l'exercice en tant que remède anticancéreux.
- Évaluer la cinétique de la réponse des cellules NK et, si possible, étudier chronologiquement l'apparence et la localisation des cellules NK activées.
Objectifs exploratoires
- Établir un protocole reproductible pour le suivi de diverses cellules immunitaires et leur implication dans la réponse aiguë à l'exercice chez l'homme
- Étudier de nouvelles molécules signal libérées par le muscle pendant l'exercice avec une importance immunologique.
- Étudier le rôle possible de l'IL-6 induite par l'exercice sur les sensations subjectives de faim et de satiété après l'exercice et la prise de nourriture. • Explorer l'effet du blocage des récepteurs de l'IL-6 sur le protéome et le métabolome de l'exercice, en utilisant la spectrométrie de masse
Méthodes :
30 jeunes hommes actifs et récréatifs en bonne santé seront inclus dans cette étude d'exercice aigu dans laquelle la cinétique et la régulation des cellules NK seront étudiées en réponse à l'exercice aérobie aigu et au blocage de l'IL-6R ou au placebo.
L'étude consiste en 2 visites. Lors de l'inclusion (visite 1), tous les sujets subiront une évaluation comprenant : un examen médical de base (auscultation, tension artérielle, ECG), la détermination de la composition corporelle (DXA), la forme cardiovasculaire (VO2max) et la biochimie sanguine à jeun standard qui sera analysée immédiatement. La visite 2 consistera en une biopsie musculaire et adipeuse de la jambe dominante et du dépôt de graisse sous-cutanée abdominale respectivement (les deux dans des conditions de repos), qui serviront ensuite de tissu de référence pour l'analyse ultérieure des tissus. Ensuite, un accès veineux périphérique antécubital 18G sera sécurisé avant de commencer la perfusion d'IL-6R. 2 heures après la procédure de perfusion, les sujets subiront un protocole d'exercice aigu. Les sujets seront ensuite mis au défi par un exercice aérobique aigu de haute intensité, en utilisant un vélo ergomètre. Des échantillons de sang seront prélevés avant la perfusion et l'exercice, pendant l'exercice, ainsi qu'immédiatement, ½, 1, 1½ et 2h après l'exercice et jusqu'à 4h après l'exercice dans la sous-étude sur la régulation de l'appétit. Des échantillons de sang seront immédiatement analysés pour le nombre et la différenciation des leucocytes ainsi que la biochimie du plasma. De plus, des échantillons de sang seront utilisés pour l'isolement des cellules NK avec séquençage ultérieur de l'ARN unicellulaire, la distribution des cellules immunitaires et la capacité de destruction des cellules cancéreuses. De plus, des échantillons de plasma seront prélevés et congelés pour une détermination ultérieure du cortisol, de la prolactine et des cytokines circulantes, y compris, mais sans s'y limiter, l'IL-6 et le G-CSF. Enfin, dans la sous-étude de l'appétit, l'insuline, le GLP-1 et les acides gras libres seront mesurés.
Des échantillons de tissus seront obtenus 2h après l'exercice pour optimiser l'analyse de l'expression génique. Des échantillons de tissus musculaires et adipeux seront analysés pour les marqueurs inflammatoires et anti-inflammatoires, la teneur en cellules NK et le phénotypage de ces cellules NK à l'aide de marqueurs obtenus à partir d'un séquençage de cellule unique, effectué sur les cellules NK transmissibles par le sang. De plus, l'infiltration des cellules immunitaires sera évaluée à l'aide de l'histologie. Tous les échantillons de tissus seront obtenus à l'aide d'une aiguille Bergström dans des conditions stériles pendant l'anesthésie locale afin de minimiser tout inconfort ou infection lié à l'échantillon.
Après l'échantillon de tissu, un repas ad libitum sera servi, les sujets peuvent manger autant que possible, mais il leur est demandé de ne pas surconsommer car tout reste de nourriture peut être ramené à la maison. Du paracétamol (1,5g) sera donné aux ânes de la vidange gastrique.
Tous les participants subiront les 2 visites d'étude à la même heure approximative de la journée (9h00) Une fois l'étude terminée, tout matériel restant sera transféré à la biobanque du CFAS.
Sujets : Les sujets inclus seront 30 jeunes hommes en bonne santé, modérément entraînés et actifs dans le cadre de loisirs, âgés de 18 à 40 ans. Les critères d'exclusion sont : les maladies cardiovasculaires, rhumatologiques et métaboliques, les sports d'élite ou le statut d'entraînement aérobie élevé. Utilisation chronique d'anti-inflammatoires non stéroïdiens (AINS) ou d'autres immunosuppresseurs.
Intervention : Les sujets seront randomisés pour un exercice aigu, avec (n = 15) ou sans (n = 15) blocage préalable de l'IL-6R. L'intervention d'exercice consistera en une séance d'exercices aérobiques très éprouvante basée sur un intervalle de ≈45 minutes, menée sur un vélo ergomètre stationnaire. Après un échauffement initial de 5 minutes à 50-60 % de la FCmax, les sujets subiront sept intervalles de 3 minutes, encouragés verbalement, à plus de 90 % de la FCmax, entrecoupés de 3 minutes de pédalage à faible intensité. Des échantillons de sang seront prélevés avant, pendant ainsi qu'immédiatement, ½, 1, 1½ et 2h après l'exercice, ainsi qu'un prélèvement de tissus à 2h.
Pour évaluer la régulation de l'appétit, d'autres échantillons de sang seront prélevés entre 2h et 4h après l'exercice.
Considérations statistiques : sur la base des données de notre étude pilote, nous prévoyons une mobilisation maximale des cellules NK inférieure de ≈ 45 % dans le groupe d'inhibition de l'IL6R par rapport à CON et une différence de 29 % dans le nadir des cellules NK avec les valeurs les plus basses obtenues dans le groupe d'inhibition de l'IL6R. En supposant un niveau de signification de 5 % dans les tests bilatéraux, nous devons inclure 9 patients dans chaque groupe pour obtenir une puissance de 90 % pour détecter une différence relative de 45 % dans le groupe d'intervention. Pour tenir compte des abandons potentiels / exclus, en raison de la configuration quelque peu invasive, nous inclurons un total de 30 patients (15 par groupe).
Recrutement : les sujets seront recrutés via forsøgsperson.dk ou des sites similaires, parallèlement à la publicité sur les sites pertinents.
Les sujets nous contacteront au CFAS et auront le choix de recevoir des informations sur l'étude pr. téléphone (en refusant ainsi l'option d'un spectateur) ou une rencontre face à face au CFAS. Toutes ces informations seront fournies par le chercheur principal. Si le sujet souhaite en savoir plus sur l'étude, les documents pertinents seront envoyés par courrier électronique. Si le sujet est intéressé à rejoindre l'étude après avoir reçu des informations écrites ou orales, il aura 24h pour envisager une participation à l'étude. Lorsque le sujet a été informé soit par téléphone ou en face à face et accepte de participer à l'étude, il sera invité à visiter 1 où un consentement écrit et éclairé sera obtenu (ou signé et apporté de chez lui par le participant).
Risques et effets indésirables : les sujets peuvent ressentir une gêne mineure en ce qui concerne les échantillons de sang et de tissus. Le volume sanguin prélevé est négligeable et ne sera associé à aucun risque pour la santé. Tous les prélèvements de tissus seront effectués dans des conditions stériles sous anesthésie locale et seront donc associés à peu de douleur ou d'inconfort et très peu de risque d'infection. Pendant les tests d'effort, les participants peuvent ressentir un essoufflement.
L'inhibition de l'IL-6R est généralement bien tolérée avec peu d'effets secondaires. La dose de paracétamol est faible et n'est associée à aucun risque.
Les coordonnées du médecin impliqué seront données aux participants lors de l'inclusion dans l'étude, afin que tout événement indésirable puisse être signalé et résolu.
Diffusion des résultats de l'étude : les résultats positifs, négatifs et non concluants seront publiés dans des revues scientifiques internationales pertinentes.
Considération éthique : Le projet devrait entraîner des risques, des effets secondaires et une gêne limités. Toutes les procédures seront effectuées par des médecins et des physiologistes expérimentés avec une sécurité appropriée. Le tocilizumab est généralement bien toléré et la dose de paracétamol est faible. Les sujets inclus peuvent à tout moment, et sans justification, retirer leur consentement à la participation à l'étude. Nous pensons que le projet est important et apportera de nouvelles informations critiques sur la réponse des cellules NK modifiables par l'IL-6 à l'exercice aigu à la fois dans la circulation et dans les tissus adipeux et musculaires (car les connaissances sur ce dernier sont actuellement très limitées).
L'étude est considérée comme une boîte à outils par Lægemiddelstyrelsen, et donc pas comme une étude pharmaceutique
Type d'étude
Inscription (Réel)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
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Copenhagen Ø, Danemark, 2100
- Center For Physical Activity (CFAS)
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-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
La description
Critère d'intégration:
- récréatif actif
- modérément formé
- jeunes hommes en bonne santé âgés de 18 à 40 ans
- IMC de 18 à 30 kg·m2
Critère d'exclusion:
- Maladie cardiovasculaire
- Maladie rhumatologique
- Maladie métabolique,
- Sport d'élite ou statut d'entraînement aérobique élevé (VO2max>60ml O2/min/kg),
- Utilisation fréquente/chronique de médicaments affectant les performances physiques ou l'inflammation (AINS, DMARDS)
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: SCIENCE BASIQUE
- Répartition: ALÉATOIRE
- Modèle interventionnel: PARALLÈLE
- Masquage: TRIPLER
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
|---|---|
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PLACEBO_COMPARATOR: CONTRE
Ce groupe fera des exercices aérobiques intenses sans blocage concomitant de l'IL-6R
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Le groupe de contrôle subira un exercice aérobie intense avec une infusion saline pendant 1 h avant le combat d'exercice
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ACTIVE_COMPARATOR: BLOC
Ce groupe fera des exercices aérobies intenses avec un blocage concomitant de l'IL-6R
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Le groupe d'intervention subira un exercice aérobie intense avec une perfusion préalable d'IL-6R pendant 1 heure avant le combat d'exercice.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Cinétique et régulation des cellules NK (Natural Killer) pendant et après un effort intense
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Modification du nombre de cellules NK et de sous-ensembles de cellules NK en circulation avant et après un exercice aérobie aigu avec ou sans blocage de l'IL-6R.
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Jusqu'à 1 jour
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Phénotype des cellules NK en réponse à un exercice aigu avec ou sans blocage de l'IL-6R
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Modification du phénotype des cellules NK à l'aide du séquençage d'ARN unicellulaire. Ici, les changements au sein du groupe entre les points temporels de référence et post-exercice ainsi que les différences entre les groupes entre le blocage de l'IL-6 et le placebo seront étudiés. L'accent sera mis sur les marqueurs de cytotoxicité, d'adhésion cellulaire et de signalisation adrénergique. |
Jusqu'à 1 jour
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Modification du nombre de cellules NK dans le tissu adipeux
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD56, CD57 et d'autres marqueurs de cellules NK, le chercheur principal identifiera et comptera le nombre de cellules NK dans le tissu adipeux.
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3 heures après l'intervention
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Modification du phénotype des cellules NK dans le tissu adipeux
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD56, CD57 et d'autres marqueurs de cellules NK, le chercheur principal identifiera le phénotype des cellules NK dans le tissu adipeux.
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3 heures après l'intervention
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Modification du nombre de cellules NK dans le tissu musculaire
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD56, CD57 et d'autres marqueurs de cellules NK, le chercheur principal identifiera et comptera le nombre de cellules NK dans le tissu musculaire.
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3 heures après l'intervention
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Modification du phénotype des cellules NK dans le tissu musculaire
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD56, CD57 et d'autres marqueurs de cellules NK, le chercheur principal identifiera le phénotype des cellules NK dans le tissu musculaire.
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3 heures après l'intervention
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Modification du nombre de macrophages dans le tissu musculaire
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD68, CD163, CD206, TNF-alpha et d'autres marqueurs de macrophages, le chercheur principal identifiera et comptera le nombre de macrophages dans le tissu musculaire
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3 heures après l'intervention
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Modification du phénotype des macrophages dans le tissu musculaire
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD68, CD163, CD206, TNF-alpha et d'autres marqueurs de macrophages, le chercheur principal phénotypera (M1/M2) les macrophages dans le tissu musculaire.
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3 heures après l'intervention
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Modification du nombre de macrophages dans le tissu adipeux
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD68, CD163, CD206, TNF-alpha et d'autres marqueurs de macrophages, le chercheur principal identifiera et comptera le nombre de macrophages dans le tissu adipeux.
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3 heures après l'intervention
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Modification du phénotype des macrophages dans le tissu adipeux
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD68, CD163, CD206, TNF-alpha et d'autres marqueurs macrophages, le chercheur principal phénotypera (M1/M2) les macrophages dans le tissu adipeux.
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3 heures après l'intervention
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Modification du nombre de lymphocytes T dans le tissu adipeux
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD3, CD8 et d'autres marqueurs de lymphocytes T, le chercheur principal comptera le nombre de lymphocytes T dans le tissu adipeux.
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3 heures après l'intervention
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Modification du phénotype des lymphocytes T dans le tissu adipeux
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD3, CD8 et d'autres marqueurs de lymphocytes T, le chercheur principal phénotypera les lymphocytes T dans le tissu adipeux (CD3+/CD8+)
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3 heures après l'intervention
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Modification du nombre de lymphocytes T dans le tissu musculaire
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD3, CD8 et d'autres marqueurs de lymphocytes T, le chercheur principal comptera le nombre de lymphocytes T dans le tissu musculaire.
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3 heures après l'intervention
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Modification du phénotype des lymphocytes T dans le tissu musculaire
Délai: 3 heures après l'intervention
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En utilisant une combinaison d'histologie, de Western blot et d'analyse de l'expression génique pour CD3, CD8 et d'autres marqueurs de lymphocytes T, le chercheur principal phénotypera (CD3+/CD8+) les lymphocytes T dans le tissu musculaire.
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3 heures après l'intervention
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Modification du nombre de monocytes en circulation
Délai: Jusqu'à 1 jour
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En utilisant la cytométrie en flux, nous identifierons et compterons les monocytes en circulation
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Jusqu'à 1 jour
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Modification du nombre de lymphocytes T en circulation
Délai: Jusqu'à 1 jour
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À l'aide de la cytométrie en flux, les enquêteurs compteront les lymphocytes T en circulation
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Jusqu'à 1 jour
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Modification du nombre de lymphocytes B en circulation
Délai: Jusqu'à 1 jour
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À l'aide de la cytométrie en flux, les enquêteurs compteront les lymphocytes B en circulation
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Jusqu'à 1 jour
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Modification de l'expression du récepteur IL-6 sur les cellules NK en circulation
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Le changement de l'expression de surface du récepteur IL-6 sur les cellules NK circulantes à l'aide de la cytométrie en flux
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Jusqu'à 1 jour
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Modification de l'IL-6 circulant
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Plasma IL-6 conc.
en utilisant le test ELISA
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Jusqu'à 1 jour
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Modification de l'IL-2 circulante
Délai: Jusqu'à 1 jour
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IL-2 plasmatique conc.
en utilisant le test ELISA
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Jusqu'à 1 jour
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Modification de l'IL-1 circulante
Délai: Jusqu'à 1 jour
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IL-1 plasmatique conc.
en utilisant le test ELISA
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Jusqu'à 1 jour
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Modification de l'IL-10 circulant
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Plasma IL-10 conc.
en utilisant le test ELISA
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Jusqu'à 1 jour
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Modification du TNF-alpha circulant
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Plasma TNF-alpha conc.
Test ELISA
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Jusqu'à 1 jour
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Modification du G-CSF circulant
Délai: Jusqu'à 1 jour
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TNF-alpha plasmatique conc.
en utilisant le test ELISA
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Jusqu'à 1 jour
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Modification de l'épinéphrine circulante
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Conc. épinéphrine sanguine
en utilisant le test ELISA
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Jusqu'à 1 jour
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Modification de la norépinéphrine circulante
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Conc. de norépinéphrine sanguine.
en utilisant le test ELISA
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Jusqu'à 1 jour
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Modification des leucocytes totaux circulants
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Numération des leucocytes sanguins avec sysmex XN
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Jusqu'à 1 jour
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Modification des neutrophiles circulants
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Numération des neutrophiles dans le sang.
Sysmex XN
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Jusqu'à 1 jour
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Modification des réticulocytes circulants
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Numération des réticulocytes sanguins.
Sysmex XN
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Jusqu'à 1 jour
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Modification des éosinophiles circulants
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Numération des éosinophiles sanguins.
Sysmex XN
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Jusqu'à 1 jour
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Modification des leucocytes basofil circulants
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Numération des leucocytes du basofile sanguin.
Sysmex XN
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Jusqu'à 1 jour
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Modification des lymphocytes totaux circulants
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Numération des lymphocytes sanguins.
Sysmex XN
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Jusqu'à 1 jour
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Modification de la prolactine circulante
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Prolactine plasmatique conc.
en utilisant sysmex XN
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Jusqu'à 1 jour
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Modification du cortisol
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Conc. de cortisol plasmatique.
en utilisant sysmex XN
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Jusqu'à 1 jour
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Modification des métamyélocytes
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Numération des métamyélocytes sanguins avec sysmex XN
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Jusqu'à 1 jour
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Modification de l'ACTH
Délai: Jusqu'à 1 jour
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ACTH plasmatique conc.
en utilisant sysmex XN
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Jusqu'à 1 jour
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Modification du lactate circulant
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Lactate sanguin à l'aide d'ABL
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Jusqu'à 1 jour
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Modification du CRP
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Plasma CRP conc.
en utilisant sysmex XN
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Jusqu'à 1 jour
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Modification de la hsCRP
Délai: Jusqu'à 1 jour
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Plasma CRP conc. en utilisant ELISA
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Jusqu'à 1 jour
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Nouvelles myokines pendant l'exercice aigu
Délai: Immédiatement après une séance d'exercice intense
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Comme résultat exploratoire, les chercheurs étudieront de nouvelles molécules signal potentielles libérées pendant l'exercice avec une importance immunologique, soit dans la circulation, soit dans les tissus (c'est-à-dire
GDNF [facteur neurotrophique dérivé des cellules gliales])
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Immédiatement après une séance d'exercice intense
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VO2max
Délai: Ligne de base
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VO2max à l'aide d'un vélo ergomètre et du système Oxicon Online
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Ligne de base
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Masse corporelle mince
Délai: Ligne de base
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Masse corporelle maigre à l'aide de l'absorptiométrie biénergétique à rayons X (DXA)
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Ligne de base
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Masse grasse
Délai: Ligne de base
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Masse grasse par absorptiométrie biénergétique à rayons X (DXA)
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Ligne de base
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Densité minérale osseuse
Délai: Ligne de base
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Densité minérale osseuse à l'aide de l'absorptiométrie à rayons X à double énergie (DXA)
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Ligne de base
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Évaluation de l'appétit
Délai: 4 heures après l'intervention
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La faim, la satiété, la satiété et la consommation alimentaire potentielle seront évaluées à l'aide d'une échelle visuelle analogique (EVA).
Un trait de 20 cm est tracé de gauche à droite sur du papier A4 commençant à 0 cm par « pas faim du tout » se terminant à 20 cm par « jamais eu plus faim de ma vie ».
Le sujet marque quelque part entre les deux selon son ressenti subjectif, La longueur est rapportée et indique le degré de faim, par ex. plus la ligne est longue, plus la faim est grande.
En général, plus la personne marque la ligne à droite, plus le sentiment subjectif dans la question donnée est fort.
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4 heures après l'intervention
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Apport calorique ad libitum
Délai: 4 heures après l'intervention
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L'apport calorique sera déterminé en proposant un repas composé d'une marmite de pâtes bolognaises homogènes (1 440 g, 1 912 kcal, 55 E % de glucides, 30 E % de lipides, 15 E % de protéines ; composition homogène) servie avec un verre d'eau de 150 ml 1 h après l'exercice.
Les participants s'assiéront tranquillement seuls et seront invités à manger jusqu'à ce qu'ils soient confortablement rassasiés et à boire toute l'eau.
La durée du repas est assise à 30 minutes
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4 heures après l'intervention
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Vidange gastrique
Délai: 4 heures après l'intervention
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La vidange gastrique sera évaluée par les participants buvant 100 ml dans lesquels 1,5 g de paracétamol est dissous.
La concentration de Paracétamol sera déterminée par Sandwich Electro-Chemiluminescence-Immunoassay (ECLIA)
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4 heures après l'intervention
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Changement de BPL1
Délai: 4 heures après l'intervention
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Plasma GLP1 conc.
en utilisant le test ELISA
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4 heures après l'intervention
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Changement de PYY
Délai: 4 heures après l'intervention
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Plasma PYY conc.
en utilisant le test ELISA
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4 heures après l'intervention
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Changement de CCK
Délai: 4 heures après l'intervention
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Plasma CCK conc.
en utilisant le test ELISA
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4 heures après l'intervention
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Changement de glucose
Délai: 4 heures après l'intervention
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Conc. de glucose plasmatique
en utilisant en utilisant sysmex XN
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4 heures après l'intervention
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Changement d'insuline
Délai: 4 heures après l'intervention
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Conc. d'insuline plasmatique
en utilisant en utilisant sysmex XN
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4 heures après l'intervention
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Modification du peptide C
Délai: 4 heures après l'intervention
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Conc. de peptide C plasmatique.
en utilisant en utilisant sysmex XN
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4 heures après l'intervention
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Modification des acides gras libres
Délai: 4 heures après l'intervention
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Conc. d'acides gras sans plasma.
en utilisant sysmex XN
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4 heures après l'intervention
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Changement d'acétoacétate
Délai: 4 heures après l'intervention
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Conc. d'acétoacétate plasmatique.
utilisant la spectrométrie de masse
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4 heures après l'intervention
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Modification du bêtahydroxybutyrate
Délai: 4 heures après l'intervention
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Conc. de bêtahydroxybutyrate plasmatique.
utilisant la spectrométrie de masse
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4 heures après l'intervention
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Changement de CRH
Délai: 4 heures après l'intervention
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Conc. de CRH plasmatique en utilisant ELISA
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4 heures après l'intervention
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Changement d'AVP
Délai: 4 heures après l'intervention
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Plasma AVP conc. en utilisant ELISA
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4 heures après l'intervention
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Andreas K Ziegler, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Chercheur principal: Jesper F Christensen, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Chercheur principal: Claus Brandt, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
Publications et liens utiles
Publications générales
- Kenfield SA, Stampfer MJ, Giovannucci E, Chan JM. Physical activity and survival after prostate cancer diagnosis in the health professionals follow-up study. J Clin Oncol. 2011 Feb 20;29(6):726-32. doi: 10.1200/JCO.2010.31.5226. Epub 2011 Jan 4.
- Amar, D., Lindholm, M. E., Norrbom, J., Wheeler, M. T., Rivas, M., & Ashley, E. A. (2020). Differential Response Trajectories to Acute Exercise in Blood and Muscle. SSRN Electronic Journal, 1-43. https://doi.org/10.2139/ssrn.3508810
- Bergstrom J. Percutaneous needle biopsy of skeletal muscle in physiological and clinical research. Scand J Clin Lab Invest. 1975 Nov;35(7):609-16. No abstract available.
- Bigley AB, Rezvani K, Chew C, Sekine T, Pistillo M, Crucian B, Bollard CM, Simpson RJ. Acute exercise preferentially redeploys NK-cells with a highly-differentiated phenotype and augments cytotoxicity against lymphoma and multiple myeloma target cells. Brain Behav Immun. 2014 Jul;39:160-71. doi: 10.1016/j.bbi.2013.10.030. Epub 2013 Nov 5.
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