- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT04616235
Exercício agudo e regulação de células NK em tecidos e circulação após bloqueio de IL-6R
Exercício agudo e regulação de células NK em tecidos e circulação após bloqueio de IL-6R - um estudo controlado randomizado
Visão geral do estudo
Status
Descrição detalhada
Objetivos.
Objetivo primário:
- Explorar a associação entre exercício agudo, bloqueio de IL-6 e regulação NK na circulação.
- Explorar se as células NK ativadas por exercício têm um fenótipo único usando sequenciamento de RNA de célula única.
Objetivos Secundários:
- Explorar o efeito do exercício aeróbico agudo no número de células NK e atividade na circulação, músculo e tecido adiposo, em homens jovens saudáveis, a fim de explorar indiretamente o exercício como um remédio anticancerígeno.
- Avaliar a cinética da resposta das células NK e, se possível, investigar cronologicamente o aparecimento e localização das células NK ativadas.
Objetivos exploratórios
- Estabelecer um protocolo reprodutível para rastrear várias células imunes e seu envolvimento na resposta aguda ao exercício em humanos
- Investigar novas moléculas sinalizadoras liberadas pelo músculo durante o exercício com importância imunológica.
- Investigar o possível papel da IL-6 induzida por exercício nas sensações subjetivas de fome e saciedade pós-exercício e ingestão de alimentos. • Explorar o efeito do bloqueio do receptor de IL-6 no proteoma e metaboloma do exercício, usando espectrometria de massa
Métodos:
30 jovens saudáveis do sexo masculino recreacionalmente ativos serão incluídos neste estudo de exercício agudo no qual a cinética e regulação das células NK serão estudadas em resposta ao exercício aeróbico agudo e bloqueio de IL-6R ou placebo.
O estudo consiste em 2 visitas. Na inclusão (visita 1), todos os indivíduos serão submetidos a uma avaliação que abrange: triagem médica inicial (auscultação, pressão arterial, ECG), determinação da composição corporal (DXA), aptidão cardiovascular (VO2max) e bioquímica sanguínea padrão em jejum, que serão analisados imediatamente. A visita 2 consistirá em uma biópsia de músculo e gordura da perna dominante e depósito de gordura subcutânea abdominal, respectivamente (ambos em condições de repouso), que atuarão como tecido de referência para a análise posterior do tecido. Em seguida, um acesso venoso periférico antecubital 18G será garantido antes de iniciar a infusão de IL-6R. 2 horas após o procedimento de infusão os sujeitos serão submetidos a um protocolo de exercícios agudos. Os indivíduos serão então desafiados por uma sessão de exercício aeróbico agudo de alta intensidade, utilizando uma bicicleta ergométrica. Amostras de sangue serão coletadas antes da infusão e do exercício, durante o exercício, bem como imediatamente, ½, 1, 1½ e 2h pós-exercício e até 4h pós-exercício no subestudo de regulação do apetite. Amostras de sangue serão imediatamente analisadas para contagem e diferenciação de leucócitos, bem como bioquímica plasmática. Além disso, amostras de sangue serão utilizadas para isolamento de células NK com posterior sequenciamento de RNA de célula única, distribuição de células imunes e capacidade de matar células cancerígenas. Além disso, amostras de plasma serão coletadas e congeladas para posterior determinação de cortisol, prolactina e citocinas circulantes, incluindo mas não limitado a IL-6 e G-CSF. Por fim, no subestudo do apetite, serão dosados a insulina, o GLP-1 e os ácidos graxos livres.
Amostras de tecido serão obtidas 2h após o exercício para otimizar a análise de expressão gênica. Amostras de tecido muscular e adiposo serão analisadas para marcadores inflamatórios e anti-inflamatórios, conteúdo de células NK e fenotipagem dessas células NK usando marcadores obtidos a partir de sequenciamento de célula única, conduzido nas células NK transmitidas pelo sangue. Além disso, a infiltração de células imunes será avaliada por meio de histologia. Todas as amostras de tecido serão obtidas usando uma agulha Bergström sob condições estéreis durante anestesia local, a fim de minimizar qualquer desconforto ou infecção relacionada à amostra.
Após a coleta da amostra de tecido, será servida uma refeição ad libitum, os sujeitos podem comer o quanto puderem, mas são instruídos a não consumir em excesso, pois qualquer sobra de comida pode ser levada para casa. Paracetamol (1,5g) será administrado para avaliar o esvaziamento gástrico.
Todos os participantes serão submetidos às 2 visitas do estudo no mesmo horário aproximado do dia (9h00) Após a conclusão do estudo, qualquer material restante será transferido para o biobanco do CFAS.
Indivíduos: Os indivíduos incluídos serão 30 jovens do sexo masculino recreacionalmente ativos, moderadamente treinados e saudáveis, com idades entre 18 e 40 anos. Os critérios de exclusão são: doenças cardiovasculares, reumatológicas e metabólicas, esportes de elite ou alto nível de treinamento aeróbico. Uso crônico de anti-inflamatório não esteróide (AINE) ou outros imunossupressores.
Intervenção: Os indivíduos serão randomizados para exercícios agudos, com (n=15) ou sem (n=15) bloqueio prévio de IL-6R. A intervenção de exercício consistirá em um intervalo de ≈45 minutos baseado em exercícios aeróbicos altamente desgastantes, conduzido em uma bicicleta ergométrica estacionária. Após um aquecimento inicial de 5 minutos a 50-60% da FCmáx, os sujeitos passarão por sete intervalos de 3 minutos, verbalmente encorajados, acima de 90% da FCmáx, intercalados por 3 minutos de pedalada de baixa intensidade. Amostras de sangue serão coletadas antes, durante e imediatamente, ½, 1, 1½ e 2h após o exercício, juntamente com amostragem de tecido no ponto de tempo de 2h.
Para avaliar a regulação do apetite, outras amostras de sangue serão coletadas de 2h a 4h após o exercício.
Considerações estatísticas: Com base nos dados de nosso estudo piloto, prevemos uma mobilização máxima de células NK ≈ 45% menor no grupo de inibição de IL6R em comparação com CON e uma diferença de 29% no nadir de células NK com os valores mais baixos obtidos no grupo de inibição de IL6R. Assumindo um nível de significância de 5% em testes bilaterais, precisamos incluir 9 pacientes em cada grupo para atingir 90% de poder para detectar uma diferença relativa de 45% no grupo de intervenção. Para contabilizar possíveis desistentes/excluídos, devido à configuração um tanto invasiva, incluiremos um total de 30 pacientes (15 por grupo).
Recrutamento: Os indivíduos serão recrutados por meio de forsøgsperson.dk ou sites semelhantes juntamente com anúncios em sites relevantes.
Os participantes entrarão em contato conosco no CFAS e terão a opção de receber informações do estudo pr. telefone (negando assim a opção de um espectador) ou uma reunião cara a cara no CFAS. Todas essas informações serão fornecidas pelo investigador principal. Se o sujeito estiver interessado em saber mais sobre o estudo, os documentos relevantes serão enviados por e-mail. Se o sujeito estiver interessado em ingressar no estudo após ter recebido informações escritas ou orais, ele terá 24h para considerar a participação no estudo. Quando o sujeito tiver sido informado por telefone ou pessoalmente e aceitar a participação no estudo, ele será convidado a visitar 1 onde será obtido o consentimento por escrito e informado (ou assinado e trazido de casa pelo participante).
Riscos e reações adversas: Os indivíduos podem sentir um pequeno desconforto em relação às amostras de sangue e tecido. O volume de sangue coletado é insignificante e não estará associado a nenhum risco à saúde. Todas as amostras de tecidos serão realizadas sob condições estéreis durante a anestesia local e, portanto, estarão associadas a pouca dor ou desconforto e muito pouco risco de infecção. Durante o teste de esforço, os participantes podem sentir falta de ar.
A inibição de IL-6R é geralmente bem tolerada com poucos efeitos colaterais. A dose de paracetamol é baixa e não está associada a nenhum risco.
As informações de contato do médico envolvido serão fornecidas aos participantes no momento da inclusão no estudo, para que qualquer evento adverso possa ser relatado e resolvido.
Divulgação dos resultados do estudo: Os resultados positivos, negativos e inconclusivos serão publicados em revistas científicas internacionais relevantes.
Consideração ética: Espera-se que o projeto cause riscos limitados, efeitos colaterais e desconforto. Todos os procedimentos serão realizados por médicos e fisiologistas experientes com segurança relevante. Tocilizumab é geralmente bem tolerado e a dose de paracetamol é baixa. Os sujeitos incluídos podem, a qualquer momento e sem justificativa, retirar seu consentimento de participação no estudo. Acreditamos que o projeto é importante e contribuirá com novas informações críticas sobre a resposta das células NK modificáveis por IL-6 ao exercício agudo tanto na circulação quanto no tecido adiposo e muscular (já que atualmente há conhecimento muito limitado sobre o último).
O estudo é considerado um estudo de caixa de ferramentas por Lægemiddelstyrelsen e, portanto, não é um estudo farmacêutico
Tipo de estudo
Inscrição (Real)
Estágio
- Não aplicável
Contactos e Locais
Locais de estudo
-
-
-
Copenhagen Ø, Dinamarca, 2100
- Center For Physical Activity (CFAS)
-
-
Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Gêneros Elegíveis para o Estudo
Descrição
Critério de inclusão:
- recreativamente ativo
- moderadamente treinado
- homens jovens saudáveis de 18 a 40 anos
- IMC de 18-30 kg·m2
Critério de exclusão:
- Doença cardiovascular
- doença reumatológica
- doença metabólica,
- Esportes de elite ou alto status de treinamento aeróbico (VO2max>60ml O2/min/kg),
- Uso frequente/crônico de medicamentos que afetam o desempenho físico ou inflamação (AINEs, DMARDS)
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: CIÊNCIA BÁSICA
- Alocação: RANDOMIZADO
- Modelo Intervencional: PARALELO
- Mascaramento: TRIPLO
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
|---|---|
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PLACEBO_COMPARATOR: VIGARISTA
Este grupo fará exercício aeróbico intenso sem bloqueio concomitante de IL-6R
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O grupo controle será submetido a exercício aeróbico intenso com infusão salina por 1h antes da sessão de exercícios
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ACTIVE_COMPARATOR: BLOQUEAR
Este grupo fará exercícios aeróbicos intensos com bloqueio de IL-6R concomitante
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O grupo intervenção será submetido a exercício aeróbico intenso com infusão prévia de IL-6R por 1h antes da sessão de exercício.
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Cinética e regulação das células NK (Natural Killer) durante e após o exercício agudo
Prazo: Até 1 dia
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Mudança na contagem de células NK e subconjunto de células NK em circulação antes e depois do exercício aeróbico agudo com ou sem bloqueio de IL-6R.
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Até 1 dia
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Fenótipo da célula NK em resposta ao exercício agudo com ou sem bloqueio de IL-6R
Prazo: Até 1 dia
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Mudança no fenótipo de células NK usando sequenciamento de RNA de célula única. Aqui, serão investigadas as alterações dentro do grupo dos pontos de tempo iniciais vs. pós-exercício, bem como entre as diferenças entre os grupos entre o bloqueio de IL-6 e o placebo. O foco será em marcadores de citotoxicidade, adesão celular e sinalização adrenérgica. |
Até 1 dia
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Alteração na contagem de células NK no tecido adiposo
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD56, CD57 e outros marcadores de células NK, o investigador principal identificará e contará o número de células NK no tecido adiposo
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3 horas após a intervenção
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Alteração no fenótipo das células NK no tecido adiposo
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD56, CD57 e outros marcadores de células NK, o investigador principal identificará o fenótipo das células NK no tecido adiposo
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3 horas após a intervenção
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Alteração na contagem de células NK no tecido muscular
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD56, CD57 e outros marcadores de células NK, o investigador principal identificará e contará o número de células NK no tecido muscular
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3 horas após a intervenção
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Alteração no fenótipo das células NK no tecido muscular
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD56, CD57 e outros marcadores de células NK, o investigador principal identificará o fenótipo das células NK no tecido muscular
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3 horas após a intervenção
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Alteração na contagem de macrófagos no tecido muscular
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD68, CD163, CD206, TNF-alfa e outros marcadores de macrófagos, o investigador principal identificará e contará o número de macrófagos no tecido muscular
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3 horas após a intervenção
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Mudança no fenótipo do macrófago no tecido muscular
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD68, CD163, CD206, TNF-alfa e outros marcadores de macrófagos, o investigador principal fará o fenótipo (M1/M2) de macrófagos no tecido muscular
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3 horas após a intervenção
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Alteração na contagem de macrófagos no tecido adiposo
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD68, CD163, CD206, TNF-alfa e outros marcadores de macrófagos, o investigador principal identificará e contará o número de macrófagos no tecido adiposo
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3 horas após a intervenção
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Alteração no fenótipo dos macrófagos no tecido adiposo
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD68, CD163, CD206, TNF-alfa e outros marcadores de macrófagos, o investigador principal fará o fenótipo (M1/M2) de macrófagos no tecido adiposo
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3 horas após a intervenção
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Alteração na contagem de células T no tecido adiposo
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD3, CD8 e outros marcadores de células T, o investigador principal contará o número de células T no tecido adiposo
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3 horas após a intervenção
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Mudança no fenótipo das células T no tecido adiposo
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD3, CD8 e outros marcadores de células T, o investigador principal fará o fenótipo das células T no tecido adiposo (CD3+/CD8+)
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3 horas após a intervenção
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Alteração na contagem de células T no tecido muscular
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD3, CD8 e outros marcadores de células T, o investigador principal contará o número de células T no tecido muscular
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3 horas após a intervenção
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Alteração no fenótipo das células T no tecido muscular
Prazo: 3 horas após a intervenção
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Usando uma combinação de histologia, western blot e análise de expressão gênica para CD3, CD8 e outros marcadores de células T, o investigador principal fará o fenótipo (CD3+/CD8+) das células T no tecido muscular
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3 horas após a intervenção
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Mudança na contagem de monócitos em circulação
Prazo: Até 1 dia
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Usando citometria de fluxo, vamos identificar e contar monócitos em circulação
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Até 1 dia
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Mudança na contagem de células T em circulação
Prazo: Até 1 dia
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Usando citometria de fluxo, os investigadores contarão as células T em circulação
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Até 1 dia
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Mudança na contagem de células B em circulação
Prazo: Até 1 dia
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Usando citometria de fluxo, os investigadores contarão as células B em circulação
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Até 1 dia
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Alteração na expressão do receptor de IL-6 em células NK em circulação
Prazo: Até 1 dia
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A mudança na expressão da superfície do receptor de IL-6 em células NK circulantes usando citometria de fluxo
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Até 1 dia
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Alteração na IL-6 circulante
Prazo: Até 1 dia
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Plasma IL-6 conc.
usando ensaio ELISA
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Até 1 dia
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Alteração na IL-2 circulante
Prazo: Até 1 dia
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Plasma IL-2 conc.
usando ensaio ELISA
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Até 1 dia
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Alteração na IL-1 circulante
Prazo: Até 1 dia
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Plasma IL-1 conc.
usando ensaio ELISA
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Até 1 dia
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Alteração na IL-10 circulante
Prazo: Até 1 dia
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Plasma IL-10 conc.
usando ensaio ELISA
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Até 1 dia
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Mudança no TNF-alfa circulante
Prazo: Até 1 dia
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Plasma TNF-alfa conc.usando
ensaio ELISA
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Até 1 dia
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Mudança no G-CSF circulante
Prazo: Até 1 dia
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Plasma TNF-alfa conc.
usando ensaio ELISA
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Até 1 dia
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Alteração na epinefrina circulante
Prazo: Até 1 dia
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Sangue epinefrina conc.
usando ensaio ELISA
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Até 1 dia
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Alteração na norepinefrina circulante
Prazo: Até 1 dia
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Norepinefrina sanguínea conc.
usando ensaio ELISA
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Até 1 dia
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Mudança nos leucócitos totais circulantes
Prazo: Até 1 dia
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Contagem de leucócitos no sangue usando sysmex XN
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Até 1 dia
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Mudança nos neutrófilos circulantes
Prazo: Até 1 dia
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Contagem de neutrófilos no sangue.usando
sysmex XN
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Até 1 dia
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Alterações nos reticulócitos circulantes
Prazo: Até 1 dia
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Contagem de reticulócitos sanguíneos.usando
sysmex XN
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Até 1 dia
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Alteração nos eosinófilos circulantes
Prazo: Até 1 dia
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Contagem de eosinófilos no sangue.usando
sysmex XN
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Até 1 dia
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Alteração nos leucócitos basófilos circulantes
Prazo: Até 1 dia
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Contagem de leucócitos basofile sanguíneos.usando
sysmex XN
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Até 1 dia
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Alteração nos linfócitos totais circulantes
Prazo: Até 1 dia
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Contagem de linfócitos no sangue. usando
sysmex XN
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Até 1 dia
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Alteração na prolactina circulante
Prazo: Até 1 dia
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Plasma Prolactina conc.
usando sysmex XN
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Até 1 dia
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Mudança no cortisol
Prazo: Até 1 dia
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Cortisol plasmático conc.
usando sysmex XN
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Até 1 dia
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Alteração nos metamielócitos
Prazo: Até 1 dia
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Contagem de metamielócitos no sangue usando sysmex XN
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Até 1 dia
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Mudança no ACTH
Prazo: Até 1 dia
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Plasma ACTH conc.
usando sysmex XN
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Até 1 dia
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Mudança no lactato circulante
Prazo: Até 1 dia
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Lactato sanguíneo usando ABL
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Até 1 dia
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Alteração na PCR
Prazo: Até 1 dia
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Plasma CRP conc.
usando sysmex XN
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Até 1 dia
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Alteração no hsCRP
Prazo: Até 1 dia
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Plasma CRP conc. usando ELISA
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Até 1 dia
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Novas miocinas durante o exercício agudo
Prazo: Imediatamente após uma sessão aguda de exercício
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Como resultado exploratório, os investigadores investigarão possíveis novas moléculas sinalizadoras liberadas durante o exercício com importância imunológica, seja na circulação ou nos tecidos (i.e.
GDNF [Fator Neurotrófico Derivado de Células Gliais])
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Imediatamente após uma sessão aguda de exercício
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VO2max
Prazo: Linha de base
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VO2max usando bicicleta ergométrica e sistema Oxicon Online
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Linha de base
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Massa corporal magra
Prazo: Linha de base
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Massa corporal magra usando absorciometria de raio-x de dupla energia (DXA)
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Linha de base
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Massa gorda
Prazo: Linha de base
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Massa gorda usando absorciometria de raio-x de dupla energia (DXA)
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Linha de base
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Densidade mineral óssea
Prazo: Linha de base
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Densidade Mineral Óssea usando absorciometria de raios X de dupla energia (DXA)
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Linha de base
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Avaliação do apetite
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Fome, saciedade, saciedade e consumo alimentar prospectivo serão avaliados usando uma escala visual analógica (VAS).
Uma linha de 20 cm é traçada da esquerda para a direita em papel A4 começando em 0 cm com "sem fome nenhuma" terminando em 20 cm com "nunca tive tanta fome na minha vida".
O sujeito marca em algum lugar intermediário de acordo com seu sentimento subjetivo. O comprimento é relatado e indica o grau de fome, por exemplo. quanto mais longa a fila, mais fome.
Em geral, quanto mais tempo para acertar a pessoa marca a linha, mais forte é o sentimento subjetivo dentro da questão dada
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4 horas após a intervenção
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Ingestão calórica ad libitum
Prazo: 4 horas após a intervenção
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A ingestão calórica será determinada pelo fornecimento de refeição composta por uma panela quente de massa homogênea à bolonhesa (1.440 g, 1.912 kcal, 55 E por cento de carboidrato, 30 E por cento de gordura, 15 E por cento de proteína; composição homogênea) servida com um copo de água de 150 ml 1 hora após o exercício.
Os participantes sentam-se sozinhos e são solicitados a comer até ficarem confortavelmente cheios/satisfeitos e a beber toda a água.
A duração da refeição é de 30 minutos
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4 horas após a intervenção
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Esvaziamento gástrico
Prazo: 4 horas após a intervenção
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O esvaziamento gástrico será avaliado pelos participantes bebendo 100 ml em que 1,5 g de paracetamol é dissolvido.
A concentração de Paracetamol será determinada por Sandwich Electro-Quimiluminescência-Immunoensaio (ECLIA)
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4 horas após a intervenção
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Alteração no GLP1
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Plasma GLP1 conc.
usando ensaio ELISA
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4 horas após a intervenção
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Mudança em PYY
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Plasma PYY conc.
usando ensaio ELISA
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4 horas após a intervenção
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Mudança no CCK
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Plasma CCK conc.
usando ensaio ELISA
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4 horas após a intervenção
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Mudança na glicose
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Glicose plasmática conc.
usando usando sysmex XN
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4 horas após a intervenção
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Mudança na insulina
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Insulina plasmática conc.
usando usando sysmex XN
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4 horas após a intervenção
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Alteração no peptídeo C
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Plasma C-peptídeo conc.
usando usando sysmex XN
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4 horas após a intervenção
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Alteração nos ácidos graxos livres
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Ácidos graxos livres plasmáticos conc.
usando sysmex XN
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4 horas após a intervenção
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Mudança no acetoacetato
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Acetoacetato plasmático conc.
usando espectrometria de massa
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4 horas após a intervenção
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Alteração no beta-hidroxibutirato
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Beta-hidroxibutirato plasmático conc.
usando espectrometria de massa
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4 horas após a intervenção
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Mudança no CRH
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Plasma CRH conc. usando ELISA
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4 horas após a intervenção
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Mudança no AVP
Prazo: 4 horas após a intervenção
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Plasma AVP conc. usando ELISA
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4 horas após a intervenção
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Andreas K Ziegler, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Investigador principal: Jesper F Christensen, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
- Investigador principal: Claus Brandt, PhD, CFAS (Center For Physical Activity) Rigshospitalet
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Kenfield SA, Stampfer MJ, Giovannucci E, Chan JM. Physical activity and survival after prostate cancer diagnosis in the health professionals follow-up study. J Clin Oncol. 2011 Feb 20;29(6):726-32. doi: 10.1200/JCO.2010.31.5226. Epub 2011 Jan 4.
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- Dogra P, Rancan C, Ma W, Toth M, Senda T, Carpenter DJ, Kubota M, Matsumoto R, Thapa P, Szabo PA, Li Poon MM, Li J, Arakawa-Hoyt J, Shen Y, Fong L, Lanier LL, Farber DL. Tissue Determinants of Human NK Cell Development, Function, and Residence. Cell. 2020 Feb 20;180(4):749-763.e13. doi: 10.1016/j.cell.2020.01.022. Epub 2020 Feb 13.
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